Name: custom engineered tissue culture molds from laser-etched masters
Uploaded: 2018-05-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 56 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Custom Engineered Tissue Culture Molds from Laser-etched Masters at JoVE.com

Yazarlar NIH R00 HL115123 ve Brown Üniversitesi Mühendislik Fakültesi fon kabul etmiş oluyorsunuz. Onlar da eğitim için Brown tasarım atölyesi ve Chris Bull için minnettarız ve lazer kesici ile destek.

<ol>
	<li>Qin, D., Xia, Y., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Soft+lithography+for+micro-+and+nanoscale+patterning.">Soft lithography for micro- and nanoscale patterning.</a> Nat. Protoc. 5, 491 (2010).</li><li>Rogers, J. A., Nuzzo, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recent+progress+in+soft+lithography.">Recent progress in soft lithography.</a> Mater. Today. 8, 50-56 (2005).</li><li>Whitesides, G. M., Ostuni, E., Takayama, S., Jiang, X., Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Soft+Lithography+in+Biology+and+Biochemistry.">Soft Lithography in Biology and Biochemistry.</a> Annu. Rev. Biomed. Eng. 3, 335-373 (2001).</li><li>Isiksacan, Z., Guler, M. T., Aydogdu, B., Bilican, I., Elbuken, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+fabrication+of+microfluidic+PDMS+devices+from+reusable+PDMS+molds+using+laser+ablation.">Rapid fabrication of microfluidic PDMS devices from reusable PDMS molds using laser ablation.</a> J. Micromechanics Microengineering. 26, 035008 (2016).</li><li>Lee, K. Y., Mooney, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hydrogels+for+Tissue+Engineering.">Hydrogels for Tissue Engineering.</a> Chem. Rev. 101, 1869-1880 (2001).</li><li>Kloxin, A., Kloxin, C., Bowman, C., Anseth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanical+properties+of+cellularly+responsive+hydrogels+and+their+experimental+determination.">Mechanical properties of cellularly responsive hydrogels and their experimental determination.</a> Adv. Mater. Deerfield Beach Fla. 22, 3484-3494 (2010).</li><li>Aubin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Directed+3D+cell+alignment+and+elongation+in+microengineered+hydrogels.">Directed 3D cell alignment and elongation in microengineered hydrogels.</a> Biomaterials. 31, 6941-6951 (2010).</li><li>Jaiswal, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vacancy-Driven+Gelation+Using+Defect-Rich+Nanoassemblies+of+2D+Transition+Metal+Dichalcogenides+and+Polymeric+Binder+for+Biomedical+Applications.">Vacancy-Driven Gelation Using Defect-Rich Nanoassemblies of 2D Transition Metal Dichalcogenides and Polymeric Binder for Biomedical Applications.</a> Adv. Mater. 29, (2017).</li><li>Lian, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Directed+cardiomyocyte+differentiation+from+human+pluripotent+stem+cells+by+modulating+Wnt/&#946;-catenin+signaling+under+fully+defined+conditions.">Directed cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells by modulating Wnt/&#946;-catenin signaling under fully defined conditions.</a> Nat. Protoc. 8, 162-175 (2013).</li><li>Boxshall, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simple+surface+treatments+to+modify+protein+adsorption+and+cell+attachment+properties+within+a+poly(dimethylsiloxane)+micro-bioreactor.">Simple surface treatments to modify protein adsorption and cell attachment properties within a poly(dimethylsiloxane) micro-bioreactor.</a> Surf. Interface Anal. 38, 198-201 (2006).</li><li>Pins, G. D., Christiansen, D. L., Patel, R., Silver, F. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Self-assembly+of+collagen+fibers.+Influence+of+fibrillar+alignment+and+decorin+on+mechanical+properties.">Self-assembly of collagen fibers. Influence of fibrillar alignment and decorin on mechanical properties.</a> Biophys. J. 73, 2164-2172 (1997).</li><li>Pipan, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+antifibrinolytic+agents+on+the+life+span+of+fibrin+sealant.">Effects of antifibrinolytic agents on the life span of fibrin sealant.</a> J. Surg. Res. 53, 402-407 (1992).</li><li>Roberts, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stromal+Cells+in+Dense+Collagen+Promote+Cardiomyocyte+and+Microvascular+Patterning+in+Engineered+Human+Heart+Tissue.">Stromal Cells in Dense Collagen Promote Cardiomyocyte and Microvascular Patterning in Engineered Human Heart Tissue.</a> Tissue Eng. Part A. 22, 633-644 (2016).</li><li>Ye, K. Y., Sullivan, K. E., Black, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Encapsulation+of+Cardiomyocytes+in+a+Fibrin+Hydrogel+for+Cardiac+Tissue+Engineering.">Encapsulation of Cardiomyocytes in a Fibrin Hydrogel for Cardiac Tissue Engineering.</a> JoVE. , (2011).</li><li>Zimmermann, W. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue+Engineering+of+a+Differentiated+Cardiac+Muscle+Construct.">Tissue Engineering of a Differentiated Cardiac Muscle Construct.</a> Circ. Res. 90, 223-230 (2002).</li><li>McCain, M. L., Agarwal, A., Nesmith, H. W., Nesmith, A. P., Parker, K. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Micromolded+Gelatin+Hydrogels+for+Extended+Culture+of+Engineered+Cardiac+Tissues.">Micromolded Gelatin Hydrogels for Extended Culture of Engineered Cardiac Tissues.</a> Biomaterials. 35, 5462-5471 (2014).</li><li>Hu, J. J., Chen, G. W., Liu, Y. C., Hsu, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+Specimen+Geometry+on+the+Estimation+of+the+Planar+Biaxial+Mechanical+Properties+of+Cruciform+Specimens.">Influence of Specimen Geometry on the Estimation of the Planar Biaxial Mechanical Properties of Cruciform Specimens.</a> Exp. Mech. 54, 615-631 (2014).</li><li>Munarin, F., Kaiser, N. J., Kim, T. Y., Choi, B. R., Coulombe, K. L. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laser-Etched+Designs+for+Molding+Hydrogel-Based+Engineered+Tissues.">Laser-Etched Designs for Molding Hydrogel-Based Engineered Tissues.</a> Tissue Eng. Part C Methods. 23, 311-321 (2017).</li><li>Zhang, H., Chiao, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anti-fouling+Coatings+of+Poly(dimethylsiloxane)+Devices+for+Biological+and+Biomedical+Applications.">Anti-fouling Coatings of Poly(dimethylsiloxane) Devices for Biological and Biomedical Applications.</a> J. Med. Biol. Eng. 35, 143-155 (2015).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Doku kültürü ile uyumlu olan özelleştirilmiş PDMS kalıp geometrileri hücre hizalama, difüzyon oranı ve etkili sertlik gibi önemli mühendislik doku özelliklerini ayarlamanın büyük yarar var. Ayrıca, bu kalıpları çok geometri mekanik test16,17gibi önemli olduğu çözümleme uygulamaları için doku hazırlamak için yararlıdır. Bu aygıtlardan Lazer hazırlanıyor negatif Ana kalıp teklif etmek zaman özellikle zaman ve maliyeti ile geleneksel microfabrication göre bu araçları kullanan, facile, hızlı ve düşük maliyetli bir yöntem kes. Lazer kesim aynı zamanda büyük bir maksimum kalıp boyutu, yalnızca kesici yatak boyutu tarafından sınırlı izin verir. Biz başarıyla çalışmaları ile mühendislik kardiyak dokular, Aksiyon potansiyeli yayılma optik haritalama, güç üretim ve pasif mekanik özellikleri ve implantasyon değerlendirme de dahil olmak üzere çok çeşitli yürütmek için bu çok yönlü kalıplar kullanmıştır bir sıçan modelinde miyokard infarktüsü13,18. Biz araştırma niş kardiyovasküler Rejeneratif Mühendislik alanları doku mühendisliği, ilaç dağıtım ve malzeme araştırma uygulamalarda büyük tanır.
Kalıp kendilerini fabrikasyon birkaç teknik olarak zor adım iken, orada birkaç kritik adım fonksiyonel doku oluşturmada. Yapıları çevreleyen matris 24 h sonra kompakt için başarısız olursa, öncelikle mühendislik dokuların canlılığı boyama yoluyla hücre canlılığı onaylamak. Hücre canlılığı yüksekse, dokuların sonraki seti için yapı kompozisyon değiştirme göz önünde bulundurun. Sonuçlar büyük ölçüde hücre nüfus bağlı olarak değişiklik gösterir iken, yüksek sıkıştırma daha yüksek tohum yoğunlukları ve alt kollajen konsantrasyonları ile ilgili gözlemledim. Son olarak, aynı zamanda numaralı seribaşı hücre nüfus sıkıştırma teşvik etmek için de matris, tadilat nedeniyle fibroblastlar gibi uygun bir hücre tipi ile tamamlamak yararlı olabilir.
Bu kalıpları bir sınırlama PDMS küçük hidrofobik moleküller absorbe için potansiyel mevcuttur. Süre bizim uygulamaları için bu sorunlu olmuştur değil, endişe içinde deneyleri bu moleküller kaybına yol çok hassas olabilir. Bu gibi durumlarda, PDMS protein Adsorpsiyon Malzemeleri19polyhydrophilic veya polyzwitterionic gibi bir zehirli aracı ile tedavi yoluyla azaltılabilir. Alternatif olarak, steril bir PDMS kalıp olarak özel gibi başka sigara adsorbent malzeme artığını bir negatif ustadan (lazer kazınmış olumlu küf) bir kültür kalıp için hazırlanmış.

Son iki yılda, yumuşak litografi kapsamlı bir imalat Teknik olarak özellikle havacilik, malzeme araştırma ve doku mühendisliği1,2alanlarında bilimsel araştırmaları desteklemek için kullanılmıştır, 3. Nesne istenen şeklinde bir negatif Ana kalıp, oluşturulduğu yineleme kalıplama üreten bir uygun ve ucuz Yöntem PDMS çoğaltır olumlu hydrogels şeklinde döküm için kullanılabilir sunar. Ancak, gerekli negatif ana kalıpları genellikle pahalı, zaman alıcı, boyutu, sınırlı microfabrication teknikleri kullanılarak üretilen ve temiz oda alanı ve gelişmiş donanımları gerektirir. 3D baskı olası bir alternatif sunarken, yararını biraz daha düşük maliyetli yazıcılar ve yaygın 3D printerlere harcama maddeler polimerler ve kür engellediğini PDMS arasındaki kimyasal etkileşimler çözünürlük sınırları nedeniyle sınırlıdır.
Lazer kesme sistemleri hem kesme ve plastik, ahşap, cam ve metal gibi maddeler aşındırma özelliği son zamanlarda büyük ölçüde daha ucuz ve bu nedenle araştırma araçları imalatı için daha erişilebilir hale gelmiştir. Ticari kalite Lazer kesiciler nesneleri en az özelliklerle 25 µm küçük santimetre ölçekte imalatı yeteneğine ve daha fazla en az terbiye, uzmanlık ve kullanmak için zaman gerektirir. Lazer ablasyon PDMS, daha önce Havacilik cihazlar fabrikasyon kullanılan iken bilgimizi yok el yazması bir işlem tarafından hangi milimetre ve santimetre negatif ana kalıpları4 kesme lazer ölçek kalıpları fabrikasyon nitelendirdi .
Öncelikle besin difüzyon, hücresel hizalama ve mekanik özellikleri5,6,7geliştirmek için tasarlanmış doku şeklinde işlemek için bu tekniği kullanmış. Ancak, bu teknik çok yönlülüğü kalıp hydrogels ilaç teslim ve malzeme bilimi araştırma8gibi ilgi nerede herhangi bir alanda kullanımı için izin verir. Bir lazer kesici erişim sayesinde, neredeyse herhangi bir geometri (yani kaldırma bu yazının kapsamı dışındadır bir çok parçalı kalıp olmadan inhibe) çıkıntılar olmadan için PDMS kalıp çoğaltır yapılabilir ve lazer bed boyutlarının içinde uyuyor.

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;Item&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bovine fibrinogen</td><td>Sigma</td><td>F8630-5G</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>Bovine thrombin</td><td>Sigma</td><td>T6634-250UN</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>Bovine aprotinin</td><td>Sigma</td><td>10820-25MG</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>Rat tail collagen I, 4 mg/mL</td><td>Advanced Biomatrix</td><td>5153-100MG</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>Sodim chloride</td><td>Fisher</td><td>BP358-10</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Life Technologies</td><td>14190-250</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>Fine forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11252-20</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>Sylgard 184 silicone elastomer</td><td>Corning</td><td>4019862</td><td>PDMS Molds</td></tr><tr><td>Lab tape</td><td>Fisher</td><td>15-901-5R</td><td>PDMS Molds</td></tr><tr><td>Acrylic, 1/4&quot; thick</td><td>McMaster-Carr</td><td>8560K356</td><td>PDMS Molds</td></tr><tr><td>HEPES Buffer, 1 M</td><td>Sigma</td><td>H3537-100ML</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>RPMI 1640 medium, powder</td><td>Fisher</td><td>31800-089</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>Calcium chloride dihydrate</td><td>Fisher</td><td>AC423520250</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>Magnesium chloride hexahydrate</td><td>Fisher</td><td>M33 500</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>Potassium chloride</td><td>Sigma</td><td>P9541-500G</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>Sodium phosphate dibasic heptahydrate</td><td>Sigma</td><td>S9390-500G</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>Glucose</td><td>Sigma</td><td>G5767-25G</td><td>Constructs</td></tr><tr><td>OCT</td><td>VWR</td><td>25608-930</td><td>Histology</td></tr><tr><td>Frozen block molds</td><td>VWR</td><td>25608-916</td><td>Histology</td></tr><tr><td>Hematoxylin</td><td>Fisher</td><td>3530 1</td><td>Histology</td></tr><tr><td>Eosin Y</td><td>Fisher</td><td>AC152880250</td><td>Histology</td></tr><tr><td>Fast green FCF</td><td>Fisher</td><td>AC410530250</td><td>Histology</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Software&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Illustrator</td><td>Adobe Systems</td><td></td><td>Vector Graphics</td></tr><tr><td>Inkscape</td><td>(Open Source)</td><td></td><td>Vector Graphics</td></tr><tr><td>UCP (Universal Control Panel)</td><td>Universal Laser Systems</td><td></td><td>Laser Cutter Interface</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Equipment&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PLS6.75 Laser Cutter</td><td>Universal Laser Systems</td><td></td><td>Laser Cutter</td></tr><tr><td>Micromechanical Analyzer</td><td>Aurora Scientific</td><td>1530A with 5 mN load cell</td><td>Mechanical Analysis</td></tr></tbody></table>

custom engineered tissue culture molds from laser-etched masters

Doku mühendisliği alanında olgun devam etmiştir olarak artan doku parametreleri, doku şekli de dahil olmak üzere geniş bir ilgi oluştu. Doku şekil mikrometre santimetre ölçek üzerinde manipüle hücre hizalama doğrudan, etkili mekanik özelliklerini değiştirmek ve gerekeni yapabileceğimizi için besin difüzyon ile ilgili sınırlamalar. Buna ek olarak, bir doku hazırlanan gemi mekanik dokusu daha fazla hücre ve matris yapısı etkileyebilir stres alanlarında sonuçlanan, kısıtlamalar aktarabilir. Son derece tekrarlanabilir boyutları şekilli kurcalayarak hangi örneğinde tüm doku mekanik analizi gibi kritik boyutlardır vitro deneyleri için yardımcı programı da mevcuttur.
Bu el yazması lazer kazınmış akrilik hazırlanan negatif ana kalıpları kullanan bir alternatif üretim yöntemini açıklar: bu kalıpları de polydimethylsiloxane (PDMS) ile gerçekleştirmek, santimetre ölçekte ve özellik boyutlu tasarımlar izin boyutları 25 µm, daha küçük ve hızlı bir şekilde tasarlanmış ve düşük bir maliyetle ve en az uzmanlığı ile imal edilmiştir. Çok az zaman ve maliyet gereksinimleri lazer kazınmış kalıpları için isteğe bağlı bir tasarım belirlenir kadar hızla üzerine tekrarlanır ve ilgi, doku mühendisliği alanı dışında da dahil olmak üzere herhangi bir tahlil uyacak şekilde kolayca adapte olmak için izin verir.

Optik lazer kesici kazınmış alanları çok hafif derinlik artar aşındırma olarak boyutları düştü neden olur ve sonuçlarında duvarlar çok ince bir eğim ile nedeniyle lazer demeti sivrilen için kalıp. Bu döküm PDMS kalıpları kaldırılmasını kolaylaştırmak yardımcı olur, ancak çok derinden negatif ana kalıpları kazınmış eğer dikkatle düşünülmelidir (> 6 mm) vardır (Şekil 1) gerekli.
Kültür zaman içinde cellularized yapıları nedeniyle, yine de oranı ve için bu hücre yük, iskele kompozisyona bağlıdır gerçekleştiği ölçüde remodeling ve koşullar kültür matris düzenleyin.
Matris remodeling reorganizasyon ve bozulma, yasam çevresindeki matris (aynı zamanda yeni matris birikimi) ile ortaya çıkabilir, ama genellikle mekanik sertlik kesit alanı azalma nedeniyle bir artış ile ilişkilidir. Salt kollajen yapıları ile 1.6 mg/mL kollajen ve 12 x 106 cardiomyocytes/mL oluşan yapıları bkz: kompakt 19.7 ± 2.8 oranında ilk genişliklerini sıkıştırma tahlil döküm (Şekil 2) aşağıdaki dört gün içinde. Bu tahlil 3D bir süreç bir temsilcisi 2D yaklaşım verir, veri toplama ve non-yıkıcı doğa kolaylığı yaparken, bu yapı geliştirme süreci eğitim için güçlü bir araç. Hücreleri, yokluğunda bile hücre kültür koşullarda kollajen mekaniği nedeniyle her ikisi de zamanla kendinden montajlı değişebileceğini Not ve cross-linking11. Fibrin hızla fibrinolitik tarafından bozulmuş vivo içinde ve vitro huzurunda bir antifibrinolytic Eğer, aprotinin veya aminocaproic asit12gibi. Bu nedenle, uzun vadeli doku kalkınma ve sadece doku oluşumu, iskele bileşenleri etkisini bir yapı formülasyon seçerken dikkate alınmalıdır. Son doku boyutu belirli bir uygulama için önemli ise, sıkıştırma da kalıp tasarımı ve ampirik olarak düşünülmelidir belirlenen hücre türleri ve matris kompozisyona göre. Bu doku sıkıştırma da stres alanları cellularized yapıları hücre hizalama (Şekil 4) teşvik etmek için manipüle edilebilir doku içinde neden olabilir unutmayın.
Literatürde mühendislik dokular oluşturmak için kullanılan çok çeşitli iskele polimer konsantrasyonları ve ilk hücre yoğunluğu tohum ve bu öncelikle çeşitli hücre tipleri, hücre satırları ve uygulamalar için farklı gereksinimleri bağlanabilir. HiPSC elde edilen cardiomyocytes ile kendi çalışmalarını dayanarak, inanıyoruz ki 1.25 mg/mL ve tohum yoğunluğu kollajen konsantrasyon ~ 15 milyon hücre/mL olan iyi bir başlangıç noktası13. Alternatif olarak, fibrin yaygın bir kalp doku iskele malzeme olarak de, genellikle 3-4 mg/mL14aralığında kullanılır. Bir dizi faktöre bağlı olarak uygulamanın temel hücre yoğunluğu tohum seçilebilir, ancak yerel doku hücre yoğunlukları iyi referans noktası sağlar. Ayrıca yüksek konsantrasyonlu hücre çözümleri özellikle küçük birimler için çalışmak zor olabilir düşünün. Belli bir hücre nüfus için iskele formülasyonu ayarlanabilir; dokular çok kırılgan veya sıkıştırma ve dokular çok sert ya da başaramamak-e doğru15kompakt polimer konsantrasyon artırma üzerine kırmak genellikle ile polimer konsantrasyonu artan.
Herhangi bir zamanda pasif mekanik analiz gerçekleştirmeden önce kültür sırasında noktası, mekanik yapı örnek yaygõn uygun olabilir. Doğal polimer hydrogels Önkoşullanma ve mühendislik doku malzeme alakalıdır nedeniyle test sonucunun tekrarlanabilirlik artırmak ve yapý bir klinik sergileyecek özellikleri daha iyi bir gösterge sağlar uygulama. Biz bir üçgen dalga mekanik değerlendirme (Şekil 3) başlamadan önce zorlanma/dk % 10 oranında % 10 baskı 8 döngüleri kullanın.
Doku ve hücre tipi belirli morfoloji Histoloji ve immünhistokimya geleneksel yöntemleri ile tespit edilebilir. Ancak, bu duruma getirilmesi için karşılaştırıldığında mühendislik kalp doku kaplama hücreleri veya yerel kesitli parafin katıştırma, kesit, antijen alma ve boyama gerekli olmuştur işleme, neredeyse tüm adımları bulduk doku (Şekil 4).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57239/57239fig1.jpg"> Resim 1 : Tasarlama ve lazer üzerinden PDMS kalıpları hazırlama sürecinin hatları kesilmiş akrilik masters. (A)kalıp tasarım vektör grafik biçiminde hazırlanmıştır. (B) Cleaned lazer kazınmış akrilik negatif usta. (C) PDMS bantlanmış akrilik Ana kalıp yüzeyinde döküm. (D) elde edilen PDMS doku kültürü önce sterilizasyon için hazır kalıp. İç metin: üstten görünüm, aynı ölçek. <a href="/files/ftp_upload/57239/57239fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57239/57239fig2.jpg"> Resim 2 : İnşa sıkıştırma zaman içinde kültür. Zaman içinde kültür onaylatılacak sıkıştırma içinde hazırlanan dikdörtgen yapıları,(a)görüntüler. Yeşil bindirmeleri görüntü analizi için görünür yapı alanı hesaplamak için kullanılan maskeler temsil eder. (B) Arsa yapı alanı (yapı sıkıştırma, iki boyutlu ölçülü) zaman içinde. Yatay çizgiler ortalama değerleri temsil eder ve hata çubukları standart sapma gösterir. Tüm grupların, n = 3 ve * p gösterir < ANOVA tarafından değerlendirilen olarak 0,05. <a href="/files/ftp_upload/57239/57239fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57239/57239fig3.jpg"> Şekil 3 : Mekanik mühendislik kalp dokuları karakterizasyonu için ham izleri. İnsets bir tek temsilcisi seğirme daralma izleme (ana arsa olarak aynı eksen) görüntüler. (A)etkin mekanik yanıt hızlı adımları tutar % 5 zorlanma artışlarla, ardından kaynaklanan. Bir çekme sonu test % 10 zorlanma/dk hızında kaynaklanan (B) pasif mekanik yanıt. Tüm örneklerini bir Tyrode'nın çözüm 37 ° C banyosunda analiz edildi. <a href="/files/ftp_upload/57239/57239fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57239/57239fig4.jpg"> Şekil 4 : Parafin blok mühendislik kalp doku yapıları çeşitli tasarımlar için Histoloji görüntüler. Parafin blok Histoloji görüntüler mühendislik kalp doku yapıları çeşitli tasarımlar için(a)Hematoksilen ve eozin, (B) diaminobenzidine (Anti-kardiyak troponin T, kahverengi) ve Hematoksilen nükleer counterstain, (C ile lekeli ) picrosirius kırmızı leke kollajen hızlı yeşil sitoplazmik counterstain ve (D) fare anti-α-Aktinin antikor (yeşil) ve 4', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) nükleer counterstain (mavi) ile için. Hücre hizalama yapı tasarım ve doku sıkıştırma işlemi sonucu olarak farklıdır. Ölçek çubuğu a B ve C için de geçerlidir. D iç metin çizgili cardiomyocytes gösterir. <a href="/files/ftp_upload/57239/57239fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Custom Engineered Tissue Culture Molds from Laser-etched Masters at JoVE.com

Custom Engineered Tissue Culture Molds from Laser-etched Masters

Burada biz hidrojel tabanlı karmaşık geometriler mühendislik kurcalayarak üretmek için kullanılan özel polydimethylsiloxane kalıpları imalatı için hızlı, facile ve düşük maliyetli bir yöntem mevcut. Ayrıca bu tekniği kullanılarak üretilen mühendislik kalp dokuları üzerinde yürütülen mekanik ve histolojik değerlendirme sonuçları açıklanmıştır.

Özel doku kültürü kalıpları lazer kazınmış ustalardan mühendislik

As the field of tissue engineering has continued to mature, there has been increased interest in a wide range of tissue parameters, including tissue ...

custom-engineered-tissue-culture-molds-from-laser-etched-masters

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Bioengineering

6.4K Görüntüleme.  Brown University. Burada biz hidrojel tabanlı karmaşık geometriler mühendislik kurcalayarak üretmek için kullanılan özel polydimethylsiloxane kalıpları imalatı için hızlı, facile ve düşük maliyetli bir yöntem mevcut. Ayrıca bu tekniği kullanılarak üretilen mühendislik kalp dokuları üzerinde yürütülen mekanik ve histolojik değerlendirme sonuçları açıklanmıştır.

Video: Custom Engineered Tissue Culture Molds from Laser-etched Masters

Microfabricated Platforms for Mechanically Dynamic Cell Culture

The ability to systematically probe in vitro cellular response to combinations of mechanobiological stimuli for tissue engineering, drug discovery or fundamental cell biology studies is limited by current bioreactor technologies, which cannot simultaneously apply a variety of mechanical stimuli to cultured cells. In order to address this issue, we have developed a series of microfabricated platforms designed to screen for the effects of mechanical stimuli in a high-throughput format. In this protocol, we demonstrate the fabrication of a microactuator array of vertically displaced posts on which the technology is based, and further demonstrate how this base technology can be modified to conduct high-throughput mechanically dynamic cell culture in both two-dimensional and three-dimensional culture paradigms.

In this protocol, we demonstrate the fabrication of a microactuator array of vertically displaced posts on which the technology is based, and how this base technology can be modified to conduct high-throughput mechanically dynamic cell culture in both two-dimensional and three-dimensional culture paradigms.

Mekanik Dinamik Hücre Kültürü için Microfabricated platformlar

The ability to systematically probe in vitro cellular response to combinations of mechanobiological stimuli for tissue engineering, drug discovery or ...

Biyomühendislik

Directed Cellular Self-Assembly to Fabricate Cell-Derived Tissue Rings for Biomechanical Analysis and Tissue Engineering

Each year, hundreds of thousands of patients undergo coronary artery bypass surgery in the United States.1 Approximately one third of these patients do not have suitable autologous donor vessels due to disease progression or previous harvest. The aim of vascular tissue engineering is to develop a suitable alternative source for these bypass grafts. In addition, engineered vascular tissue may prove valuable as living vascular models to study cardiovascular diseases. Several promising approaches to engineering blood vessels have been explored, with many recent studies focusing on development and analysis of cell-based methods.2-5 Herein, we present a method to rapidly self-assemble cells into 3D tissue rings that can be used in vitro to model vascular tissues.
To do this, suspensions of smooth muscle cells are seeded into round-bottomed annular agarose wells. The non-adhesive properties of the agarose allow the cells to settle, aggregate and contract around a post at the center of the well to form a cohesive tissue ring.6,7 These rings can be cultured for several days prior to harvesting for mechanical, physiological, biochemical, or histological analysis. We have shown that these cell-derived tissue rings yield at 100-500 kPa ultimate tensile strength8 which exceeds the value reported for other tissue engineered vascular constructs cultured for similar durations (&lt;30 kPa).9,10 Our results demonstrate that robust cell-derived vascular tissue ring generation can be achieved within a short time period, and offers the opportunity for direct and quantitative assessment of the contributions of cells and cell-derived matrix (CDM) to vascular tissue structure and function.

This article outlines a versatile method to create cell-derived tissue rings by cellular self-assembly. Smooth muscle cells seeded into ring-shaped agarose wells aggregate and contract to form robust three-dimensional (3D) tissues within 7 days. Millimeter-scale tissue rings are conducive to mechanical testing and serve as building blocks for tissue assembly.

Hücresel Self-Meclis Biyomekanik Analizi ve Doku Mühendisliği, Hücre-Türetilmiş Doku Yüzüklerin Üretiyor yönelik

Each year, hundreds of thousands of patients undergo coronary artery bypass surgery in the United States.1 Approximately one third of these patients do ...

Evaluation of Cancer Stem Cell Migration Using Compartmentalizing Microfluidic Devices and Live Cell Imaging

In the last 40 years, the United States invested over 200 billion dollars on cancer research, resulting in only a 5% decrease in death rate. A major obstacle for improving patient outcomes is the poor understanding of mechanisms underlying cellular migration associated with aggressive cancer cell invasion, metastasis and therapeutic resistance1. Glioblastoma Multiforme (GBM), the most prevalent primary malignant adult brain tumor2, exemplifies this difficulty. Despite standard surgery, radiation and chemotherapies, patient median survival is only fifteen months, due to aggressive GBM infiltration into adjacent brain and rapid cancer recurrence2. The interactions of aberrant cell migratory mechanisms and the tumor microenvironment likely differentiate cancer from normal cells3. Therefore, improving therapeutic approaches for GBM require a better understanding of cancer cell migration mechanisms. Recent work suggests that a small subpopulation of cells within GBM, the brain tumor stem cell (BTSC), may be responsible for therapeutic resistance and recurrence. Mechanisms underlying BTSC migratory capacity are only starting to be characterized1,4.
Due to a limitation in visual inspection and geometrical manipulation, conventional migration assays5 are restricted to quantifying overall cell populations. In contrast, microfluidic devices permit single cell analysis because of compatibility with modern microscopy and control over micro-environment6-9.
We present a method for detailed characterization of BTSC migration using compartmentalizing microfluidic devices. These PDMS-made devices cast the tissue culture environment into three connected compartments: seeding chamber, receiving chamber and bridging microchannels. We tailored the device such that both chambers hold sufficient media to support viable BTSC for 4-5 days without media exchange. Highly mobile BTSCs initially introduced into the seeding chamber are isolated after migration though bridging microchannels to the parallel receiving chamber. This migration simulates cancer cellular spread through the interstitial spaces of the brain. The phase live images of cell morphology during migration are recorded over several days. Highly migratory BTSC can therefore be isolated, recultured, and analyzed further. 
Compartmentalizing microfluidics can be a versatile platform to study the migratory behavior of BTSCs and other cancer stem cells. By combining gradient generators, fluid handling, micro-electrodes and other microfluidic modules, these devices can also be used for drug screening and disease diagnosis6. Isolation of an aggressive subpopulation of migratory cells will enable studies of underlying molecular mechanisms.

A compartmentalizing microfluidic device for investigating cancer stem cell migration is described. This novel platform creates a viable cellular microenvironment and enables microscopic visualization of live cell locomotion. Highly motile cancer cells are isolated to study molecular mechanisms of aggressive infiltration, potentially leading to more effective future therapies.

Bölümlere Mikroakışkan Cihazlar ve Canlı Hücre Görüntüleme kullanma Kanser Kök Hücre Göç Değerlendirilmesi

In the last 40 years, the United States invested over 200 billion dollars on cancer research, resulting in only a 5% decrease in death rate. A major ...

Tıp

Density Gradient Multilayered Polymerization (DGMP): A Novel Technique for Creating Multi-compartment, Customizable Scaffolds for Tissue Engineering

Complex tissue culture matrices, in which types and concentrations of biological stimuli (e.g. growth factors, inhibitors, or small molecules) or matrix structure (e.g. composition, concentration, or stiffness of the matrix) vary over space, would enable a wide range of investigations concerning how these variables affect cell differentiation, migration, and other phenomena. The major challenge in creating layered matrices is maintaining the structural integrity of layer interfaces without diffusion of individual components from each layer1. Current methodologies to achieve this include photopatterning2-3, lithography4, sequential functionalization5, freeze drying6, microfluidics7, or centrifugation8, many of which require sophisticated instrumentation and technical skills. Others rely on sequential attachment of individual layers, which may lead to delamination of layers9. 
DGMP overcomes these issues by using an inert density modifier such as iodixanol to create layers of varying densities10. Since the density modifier can be mixed with any prepolymer or bioactive molecule, DGMP allows each scaffold layer to be customized. Simply varying the concentration of the density modifier prevents mixing of adjacent layers while they remain aqueous. Subsequent single step polymerization gives rise to a structurally continuous multilayered scaffold, in which each layer has distinct chemical and mechanical properties. The density modifier can be easily removed with sufficient rinsing without perturbation of the individual layers or their components. This technique is therefore well suited for creating hydrogels of various sizes, shapes, and materials.
A protocol for fabricating a 2D-polyethylene glycol (PEG) gel, in which alternating layers incorporate RGDS-350, is outlined below. We use PEG because it is biocompatible and inert. RGDS, a cell adhesion peptide11, is used to demonstrate spatial restriction of a biological cue, and the conjugation of a fluorophore (Alexa Fluor 350) enables us to visually distinguish various layers. This procedure can be adapted for other materials (e.g. collagen, hyaluronan, etc.) and can be extended to fabricate 3D gels with some modifications10.

Density Gradient Multilayered Polymerization DGMP: A Novel Technique for Creating Multi-compartment, Customizable Scaffolds for Tissue Engineering

Here we describe a unique strategy for creating biocompatible, layered matrices with continuous interfaces between distinct layers for tissue engineering. Such a scaffold could provide an ideal customizable environment to modulate cell behavior by various biological, chemical or mechanical cues

Yoğunluk Gradient Katmanlı Polimerizasyonu (DGMP): Multi-bölmesi oluşturma için A Novel Tekniği, Doku Mühendisliği için Özelleştirilebilir İskelesi

Complex tissue culture matrices, in which types and concentrations of biological stimuli (e.g. growth factors, inhibitors, or small molecules) or matrix ...

Microfabrication of Chip-sized Scaffolds for Three-dimensional Cell cultivation

Using microfabrication technologies is a prerequisite to create scaffolds of reproducible geometry and constant quality for three-dimensional cell cultivation. These technologies offer a wide spectrum of advantages not only for manufacturing but also for different applications. The size and shape of formed cell clusters can be influenced by the exact and reproducible architecture of the microfabricated scaffold and, therefore, the diffusion path length of nutrients and gases can be controlled.1 This is unquestionably a useful tool to prevent apoptosis and necrosis of cells due to an insufficient nutrient and gas supply or removal of cellular metabolites.
Our polymer chip, called CellChip, has the outer dimensions of 2 x 2 cm with a central microstructured area. This area is subdivided into an array of up to 1156 microcontainers with a typical dimension of 300 m edge length for the cubic design (cp- or cf-chip) or of 300 m diameter and depth for the round design (r-chip).2
So far, hot embossing or micro injection moulding (in combination with subsequent laborious machining of the parts) was used for the fabrication of the microstructured chips. Basically, micro injection moulding is one of the only polymer based replication techniques that, up to now, is capable for mass production of polymer microstructures.3 However, both techniques have certain unwanted limitations due to the processing of a viscous polymer melt with the generation of very thin walls or integrated through holes. In case of the CellChip, thin bottom layers are necessary to perforate the polymer and provide small pores of defined size to supply cells with culture medium e.g. by microfluidic perfusion of the containers.
In order to overcome these limitations and to reduce the manufacturing costs we have developed a new microtechnical approach on the basis of a down-scaled thermoforming process. For the manufacturing of highly porous and thin walled polymer chips, we use a combination of heavy ion irradiation, microthermoforming and track etching. In this so called "SMART" process (Substrate Modification And Replication by Thermoforming) thin polymer films are irradiated with energetic heavy projectiles of several hundred MeV introducing so-called "latent tracks" Subsequently, the film in a rubber elastic state is formed into three dimensional parts without modifying or annealing the tracks. After the forming process, selective chemical etching finally converts the tracks into cylindrical pores of adjustable diameter.

We present two processes for the microfabrication of porous polymer chips for three-dimensional cell cultivation. The first one is hot embossing combined with a solvent vapour welding process. The second one uses a recently developed microthermoforming process combined with ion track technology leading to a significant simplification of manufacture.

Üç boyutlu Hücre ekimi için Chip-ölçekli Yapı iskeleleri mikroimalat

Using microfabrication technologies is a prerequisite to create scaffolds of reproducible geometry and constant quality for three-dimensional cell ...

Biyoloji

A Multi-compartment CNS Neuron-glia Co-culture Microfluidic Platform

We present a novel multi-compartment neuron co-culture microsystem platform for in vitro CNS axon-glia interaction research, capable of conducting up to six independent experiments in parallel for higher-throughput. We developed a new fabrication method to create microfluidic devices having both micro and macro scale structures within the same device through a single soft-lithography process, enabling mass fabrication with good repeatability.
The multi-compartment microfluidic co-culture platform is composed of one soma compartment for neurons and six axon/glia compartments for oligodendrocytes (OLs). The soma compartment and axon/glia compartments are connected by arrays of axon-guiding microchannels that function as physical barriers to confine neuronal soma in the soma compartment, while allowing axons to grow into axon/glia compartments. OLs loaded into axon/glia compartments can interact only with axons but not with neuronal soma or dendrites, enabling localized axon-glia interaction studies. The microchannels also enabled fluidic isolation between compartments, allowing six independent experiments to be conducted on a single device for higher throughput.
Soft-lithography using poly(dimethylsiloxane) (PDMS) is a commonly used technique in biomedical microdevices. Reservoirs on these devices are commonly defined by manual punching. Although simple, poor alignment and time consuming nature of the process makes this process not suitable when large numbers of reservoirs have to be repeatedly created. The newly developed method did not require manual punching of reservoirs, overcoming such limitations. First, seven reservoirs (depth: 3.5 mm) were made on a poly(methyl methacrylate) (PMMA) block using a micro-milling machine. Then, arrays of ridge microstructures, fabricated on a glass substrate, were hot-embossed against the PMMA block to define microchannels that connect the soma and axon/glia compartments. This process resulted in macro-scale reservoirs (3.5 mm) and micro-scale channels (2.5 &mu;m) to coincide within a single PMMA master. A PDMS replica that served as a mold master was obtained using soft-lithography and the final PDMS device was replicated from this master.
Primary neurons from E16-18 rats were loaded to the soma compartment and cultured for two weeks. After one week of cell culture, axons crossed microchannels and formed axonal only network layer inside axon/glia compartments. Axons grew uniformly throughout six axon/glia compartments and OLs from P1-2 rats were added to axon/glia compartments at 14 days in vitro for co-culture.

We developed a novel multi-compartment neuron co-culture microsystem platform for in vitro CNS axon-glia interaction research. The platform is capable of conducting up to six independent experiments in parallel and was fabricated using a newly developed macro/micro hybrid fabrication method.

Çok bölmesi MSS Nöron glia Co-kültür mikroakışkan Platformu

We present a novel multi-compartment neuron co-culture microsystem platform for in vitro CNS axon-glia interaction research, capable of conducting up to ...

Fabrication of Custom Agarose Wells for Cell Seeding and Tissue Ring Self-assembly Using 3D-Printed Molds

Engineered tissues are being used clinically for tissue repair and replacement, and are being developed as tools for drug screening and human disease modeling. Self-assembled tissues offer advantages over scaffold-based tissue engineering, such as enhanced matrix deposition, strength, and function. However, there are few available methods for fabricating 3D tissues without seeding cells on or within a supporting scaffold. Previously, we developed a system for fabricating self-assembled tissue rings by seeding cells into non-adhesive agarose wells. A polydimethylsiloxane (PDMS) negative was first cast in a machined polycarbonate mold, and then agarose was gelled in the PDMS negative to create ring-shaped cell seeding wells. However, the versatility of this approach was limited by the resolution of the tools available for machining the polycarbonate mold. Here, we demonstrate that 3D-printed plastic can be used as an alternative to machined polycarbonate for fabricating PDMS negatives. The 3D-printed mold and revised mold design is simpler to use, inexpensive to produce, and requires significantly less agarose and PDMS per cell seeding well. We have demonstrated that the resulting agarose wells can be used to create self-assembled tissue rings with customized diameters from a variety of different cell types. Rings can then be used for mechanical, functional, and histological analysis, or for fabricating larger and more complex tubular tissues.

This protocol describes a platform for fabricating self-assembled tissue rings in variable sizes using a customized 3D-printed plastic mold. PDMS negatives are cured in the 3D-printed mold; then agarose is cast in the cured PDMS negatives. Cells are seeded into the resulting agarose wells where they aggregate into tissue rings.

Hücre tohum için özel özel Wells ve kendinden montajlı 3D baskı kalıpları kullanarak doku yüzük imalatı

Engineered tissues are being used clinically for tissue repair and replacement, and are being developed as tools for drug screening and human disease ...

Hastalıkta hücresel etkileşimleri incelemek için fare tendon assembloidlerinin üretilmesi

Engineering Tendon Assembloids to Probe Cellular Crosstalk in Disease and Repair

Tendons enable locomotion by transferring muscle forces to bones. They rely on a tough tendon core comprising collagen fibers and stromal cell populations. This load-bearing core is encompassed, nourished, and repaired by a synovial-like tissue layer comprising the extrinsic tendon compartment. Despite this sophisticated design, tendon injuries are common, and clinical treatment still relies on physiotherapy and surgery. The limitations of available experimental model systems have slowed the development of novel disease-modifying treatments and relapse-preventing clinical regimes. 
In vivo human studies are limited to comparing healthy tendons to end-stage diseased or ruptured tissues sampled during repair surgery and do not allow the longitudinal study of the underlying tendon disease. In vivo animal models also present important limits regarding opaque physiological complexity, the ethical burden on the animals, and large economic costs associated with their use. Further, in vivo animal models are poorly suited to systematic probing of drugs and multicellular, multi-tissue interaction pathways. Simpler in vitro model systems have also fallen short. One major reason is a failure to adequately replicate the three-dimensional mechanical loading necessary to meaningfully study tendon cells and their function. 
The new 3D model system presented here alleviates some of these issues by exploiting murine tail tendon core explants. Importantly, these explants are easily accessible in large numbers from a single mouse, retain 3D in situ loading patterns at the cellular level, and feature an in vivo-like extracellular matrix. In this protocol, step-by-step instructions are given on how to augment tendon core explants with collagen hydrogels laden with muscle-derived endothelial cells, tendon-derived fibroblasts, and bone marrow-derived macrophages to substitute disease- and injury-activated cell populations within the extrinsic tendon compartment. It is demonstrated how the resulting tendon assembloids can be challenged mechanically or through defined microenvironmental stimuli to investigate emerging multicellular crosstalk during disease and injury.

Yazar Spotlight: Hücresel Mekanizmaları Anlamak için Fare Toplulukları Geliştirerek Tendon Araştırmalarını İlerletmek

Here, we present an assembloid model system to mimic tendon cellular crosstalk between the load-bearing tendon core tissue and an extrinsic compartment containing cell populations activated by disease and injury. As an important use case, we demonstrate how the system can be deployed to probe disease-relevant activation of extrinsic endothelial cells.

Özel doku kültürü kalıpları lazer kazınmış ustalardan mühendislik

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Mekanik Dinamik Hücre Kültürü için Microfabricated platformlar

Hücresel Self-Meclis Biyomekanik Analizi ve Doku Mühendisliği, Hücre-Türetilmiş Doku Yüzüklerin Üretiyor yönelik

Bölümlere Mikroakışkan Cihazlar ve Canlı Hücre Görüntüleme kullanma Kanser Kök Hücre Göç Değerlendirilmesi

Yoğunluk Gradient Katmanlı Polimerizasyonu (DGMP): Multi-bölmesi oluşturma için A Novel Tekniği, Doku Mühendisliği için Özelleştirilebilir İskelesi

Üç boyutlu Hücre ekimi için Chip-ölçekli Yapı iskeleleri mikroimalat

Çok bölmesi MSS Nöron glia Co-kültür mikroakışkan Platformu

Hücre tohum için özel özel Wells ve kendinden montajlı 3D baskı kalıpları kullanarak doku yüzük imalatı

Hastalık ve Onarımda Hücresel Karışmayı Araştırmak için Mühendislik Tendon Toplulukları

Hastalık ve Onarımda Hücresel Karışmayı Araştırmak için Mühendislik Tendon Toplulukları

Hastalık ve Onarımda Hücresel Karışmayı Araştırmak için Mühendislik Tendon Toplulukları