Raz Zarivach, İsrail Bilim Vakfı tarafından desteklenmektedir (hibe no. 163/22). Tomer, Eli Ben Yosef ve Arie Moran, İsrail Bilim Vakfı tarafından desteklenmektedir (hibe no. 2047/20). Daniel Gitler ve Ben-Gurion Üniversitesi'ndeki grubuna işbirlikleri, destekleri ve uzmanlıkları için teşekkür ederiz.

1. Hücre transfeksiyonu
<ol><li>Dulbecco'nun modifiye edilmiş Eagle besiortamındaki (DMEM) kültür HEK293T hücreleri, 37 ° C/% 5 CO 2'de nemlendirilmiş bir inkübatörde 10 cm'lik bir plaka (8.8 x 106 toplam hücre) üzerinde birleşene kadar% 10 fetal sığır serumu (FBS),2 mM L-glutamin ve 1x penisilin / streptomisin (Malzeme Tablosuna bakınız).</li>
	<li>12 oyuklu bir plakanın her bir kuyucuğuna bir adet 13 mm'lik lamel yerleştirin. 0.44 x 106 tripsinizli hücreyi 1.1 adımından 12 mL tam DMEM'de seyreltin. Üç ila beş kez yukarı ve aşağı pipetleyerek iyice karıştırın. Her kuyucuğu 1 mL karışık çözelti ile doldurun. Nemlendirilmiş bir inkübatörde gece boyunca 37 °C/%5CO2'de büyütün.</li>
	<li>Her kuyucuktaki tam DMEM'i, her kuyucukta 1 mL serumsuz DMEM ( Malzeme Tablosuna bakınız) ile değiştirin. 12 oyuklu plakayı adım 1.1'deki gibi nemlendirilmiş inkübatöre geri koyun.</li>
	<li>Her transfeksiyon kuyusu için, 1.5 mL'lik bir tüpte 100 μL serumsuz DMEM içinde mCherry floresan proteini (Ek Dosya 1) ile etiketlenmiş ilgilenilen proteini içeren 1 μg pAAV2 plazmidini seyreltin.</li>
	<li>Transfeksiyon başına 100 μL serumsuz DMEM'e 3 μg polietilenimin (PEI, Malzeme Tablosuna bakınız) ekleyin, her transfeksiyon farklı bir 1.5 mL tüpte. Plazmid:PEI oranı 1:3 (μg:μg) olmalıdır.</li>
	<li>Her iki tüpü de adım 1.4 ve adım 1.5'ten 10 saniye boyunca vorteksleyin ve oda sıcaklığında en az 5 dakika dinlenmeye bırakın.</li>
	<li>Adım 1.4'teki DNA çözeltisinin bir kısmını (oyuk başına 100 μL), adım 1.5'teki PEI çözeltisinin bir kısmı (oyuk başına 100 μL) ile karıştırın. Nihai çözeltiyi 10 saniye vorteksleyin ve oda sıcaklığında en az 20 dakika ve 6 saate kadar dinlenmeye bırakın.</li>
	<li>12 oyuklu plakayı inkübatörden alın. Nihai çözeltiyi adım 1.7'den vorteksleyin ve adım 1.3'ten itibaren 12 oyuklu plakadaki kuyucukların her birine 200 μL ekleyin. 12 oyuklu plakayı nemlendirilmiş inkübatöre geri koyun (adım 1.1).</li>
	<li>3 saat sonra, her bir kuyucuktaki ortamı 1 mL tam DMEM ile değiştirin. 12 oyuklu plakayı adım 1.1'deki gibi nemlendirilmiş inkübatöre geri koyun.</li>
	<li>2 gün sonra, transfekte edilmiş hücre kültürünü 37 °C /% 5 CO2 inkübatörden alın ve 10x büyütme kullanarak ters çevrilmiş bir floresan mikroskobuna yerleştirin.</li>
	<li>Mikroskop odak tekerleğini kullanarak, parlak alan ışığını kullanırken hücrelere odaklanın.</li>
	<li>Floresan mCherry uyarma (587 nm) ve emisyon (610 nm) dalga boylarına geçin ve parlak alan ışığını kapatın. ZnT1 mCherry ekspresyonunu doğrulamak için hücrelerin floresansını kontrol edin.</li>
	<li>Boya yükleme çözeltisini hazırlayın.<ol><li>-20 °C'lik bir dondurucuda saklanan ışık korumalı bir stoktan, DMSO (1 μg/μL) içinde çözünmüş asetoksimetil () ester formunda 4 μL çinkoya özgü floresan boyanın (Malzeme Tablosuna bakınız) bir alikotunu alın. Bu form, boyanın basit difüzyonla plazma zarından hücreye girmesine izin verir.</li>
		<li>Adım 1.13.1'deki alikot'a 4 μL %10 pluronik asit (veya 2 μL %20 pluronik asit, Malzeme Tablosuna bakınız) ekleyin. Çözeltiyi üç kez yukarı ve aşağı pipetleyerek iyice karıştırın ve ardından 8 μL'nin tamamını 1,5 mL'lik bir tüpe ekleyin.</li>
		<li>Adım 1.13.2'den tüpe 1 mg / mL (~% 0.1) sığır serum albümini ile takviye edilmiş 750 μL Ringer çözeltisi (evde hazırlanmış, bileşim için Malzeme Tablosuna bakınız) ekleyin ve kuvvetlice girdap yapın. Aynı çözeltiden 750 μL daha ekleyin ve maksimum karıştırmayı sağlamak için tekrar vorteksleyin.</li>
	</ol></li>
	<li>Adım 1.13.3'ten itibaren 750 μL nihai çözeltiyi yeni bir 6 oyuklu kültür plakasındaki iki oyuğa ekleyin. Alüminyum folyo ile kaplayın. NOT: Ağartmayı önlemek için, 6 oyuklu plaka bu adımdan itibaren her zaman alüminyum folyo ile kaplanır.</li>
	<li>İnce bir cımbız kullanarak, transfekte edilmiş hücre kültürü plakasından dört adede kadar çoğaltılmış lamel alın ve bunları adım 1.14'ten itibaren yeni 6 oyuklu plakanın ilk doldurulmuş kuyucuğuna (oyuk başına dört slayta kadar) yerleştirin. İkinci doldurulmuş kuyu için bu işlemi tekrarlayın. NOT: Aynı doldurulmuş kuyudaki tüm lameller aynı durumda olmalıdır. Bununla birlikte, her kuyu farklı koşullar içerebilir.</li>
	<li>Alüminyum folyo ile örtün ve 15-20 dakika hafifçe çalkalayın.</li>
	<li>Boya yükleme solüsyonunu çıkarın ve adım 1.13.3'te kullanıldığı gibi yeni bir Ringer plus albümin yıkama solüsyonu ile değiştirin. Alüminyum folyo ile kaplayın. 20 dakika tekrar sallanmaya bırakın. Bu, esterinin hücre içi esterazlar tarafından bölünmesine izin verir.</li>
</ol>2. Mikroskop hazırlığı
<ol><li>Gerekli araçları (Malzeme Tablosuna bakınız) belirtildiği gibi düzenleyin: GFP ve mCherry floroforlarını tespit edebilen ters çevrilmiş bir floresan mikroskobu, en az iki çözelti arasında geçiş yapmaya izin veren bir perfüzyon sistemi, bir emme sistemi ve bir perfüzyon odası.</li>
	<li>Mikroskobu, ışık kaynağını ve kamerayı açın. Emme sistemini açın.</li>
	<li>Perfüzyon sistemini yıkayın. İlk hazneyi Ringer solüsyonu ile ve ikinci hazneyi 7 μM pirityon (çinko iyonofor, bkz. Malzeme Tablosu) ile takviye edilmiş 7 μM çinko solüsyonu içeren Ringer solüsyonu ile yıkayın. Hava kabarcıklarını veya boşlukları önlemek için, her bölmede biraz sıvı bırakın. NOT: Her iki kap da perfüzyon odasına bağlı aynı tüpe bağlı olduğundan, paylaşılan segmentin her zaman Ringer solüsyonu ile yıkandığından emin olun.</li>
	<li>Muslukları kapatın ve uygun hazneleri adım 2.3'teki gibi Ringer solüsyonu ve Ringer çinko solüsyonu ile doldurun.</li>
</ol>3. Numune hazırlama
<ol><li>Perfüzyon odasını alın ve oluğun dar tarafı yukarı bakacak şekilde yerleştirin. NOT: Oluk, perfüzyon odasının ortasındaki bir deliktir. Perfüzyon sıvısının hücrelere ulaşmasını sağlar. Oluğun bir tarafı dar, karşı tarafı geniştir.</li>
	<li>Oluğun etrafına bir sızdırmazlık silikonu uygulayın (Malzeme Tablosuna bakın). Bir pipet ucu kullanarak oluktaki sızdırmazlık silikonunu temizleyin. NOT: 22 mm'lik bir lamel sızdırmaz hale getirmek için oluğun etrafında yeterli silikon conta olduğundan emin olun.</li>
	<li>İnce bir cımbız kullanarak, yıkama solüsyonundan bir lamel alın ve hücreler aşağı bakacak şekilde oluğun üzerine yerleştirin. Bu şekilde, hücreler deney sırasında oluğu perfüze eden çözeltiye maruz bırakılacaktır.</li>
	<li>13 mm'lik lamellerin üzerine 22 mm'lik bir lamel yerleştirin ve cımbızı kullanarak sıkın. Lamelleri kırmamaya dikkat edin.</li>
	<li>Hazneyi çevirin ve mevcut tüm sıvıları serbest bırakmak için üzerine bastırın. Oluğu 100 μL Ringer yıkama solüsyonu ile doldurun ve sızıntı olmaması için tekrar bastırın. NOT: Bir sızıntı tespit edilirse, sızıntı yerine bir sızdırmazlık maddesi uygulayın ve tekrar test edin.</li>
	<li>Perfüzyon odasını platforma monte edin ve sabitleyin. Perfüzyon ve emme borularını, oluktaki hücreler üzerinde perfüzyona izin verecek şekilde yerleştirin.</li>
	<li>Perfüzyon hızını yaklaşık 2 mL / dak olarak değiştirin ve Ringer çözeltisinin perfüzyonunu açın. Perfüzyon sisteminin sızıntı veya dökülme olmadan çalıştığından emin olun.</li>
</ol>4. Ölçüm hazırlığı
<ol><li>Simgeye çift tıklayarak görüntüleme yazılımını açın (Malzeme Tablosuna bakın). İlgili kimlik bilgileriyle oturum açın. Takılı kamerayı seçin ve Tamam'a basın.</li>
	<li>Mikroskobun sol tarafındaki düğmeyi kullanarak mikroskop büyütmesini 10x'e ayarlayın.</li>
	<li>Canlı görüntüyü seçerek ve joystick'i kullanarak, oluktaki hücrelere odaklanmak için platformu hareket ettirin.</li>
	<li>Perfüzyon açıkken ışıkları kapatın ve arayüzdeki özel düğmeye basarak dalga boyunu mCherry olarak değiştirin. Mikroskop odak tekerleğini kullanarak odağı ayarlayın.</li>
	<li>Mikroskop hücrelere odaklandıktan sonra, uygun hücre yamalarının seçilmesine izin vermek için joystick'i kullanarak platformu hareket ettirin. NOT: Uygun bir alan, ROI için en az 10 hücreli ve arka plan için boş bir alan içeren bir alan olarak kabul edilir.</li>
	<li>ROI'leri Aç/Kapat açılır menüsünü seçin ve Döngüsel ROI'ler Çiz'i seçin.</li>
	<li>mCherry ifade eden hücrelerle hücre kümelerinin ROI'lerini çizin (ZnT1'in ekspresyonunu gösterir).</li>
	<li>Adım 4.6 ile aynı araç çubuğundan, Arka plan ROI'lerini Aç/Kapat düğmesini tıklayın ve arka plan ROI'sinin konumunu ve boyutunu hiç hücre olmayan bir alana ayarlayın.<ol><li>Seçilen arka plan ROI'sinde hiçbir hücre olmadığından emin olmak için mCherry ve EGFP dalga boylarını kontrol edin. NOT: Dalga boyları, mCherry'nin 520 nm'lik bir uyarma dalga boyu ve 610 nm'lik bir emisyon dalga boyu kullandığı ve EGFP'nin 470 nm'lik bir uyarma dalga boyu ve 520 nm'lik bir emisyon dalga boyu kullandığı şekilde ayarlandı.</li>
	</ol></li>
	<li>Dalga boyu (λ) alt sekmesini seçin. Onay kutusunu işaretleyin ve GFP dalga boyunun mevcut olduğundan ve onay kutusunun işaretli olduğundan emin olun. Değilse, ekleyin ve işaretleyin.</li>
	<li>Süre alt sekmesini seçin. Ölçüm aralığını her 5 saniyede bir olarak tanımlayın ve aralık sayısını deneme süresine uyacak şekilde değiştirin.</li>
	<li>Göz merceğinin altındaki mikroskop panelindeki Odak bölümünde, mükemmel odak sistemini (PFS) etkinleştirmek için Açık düğmesine tıklayın.</li>
	<li>PFS odak tekerleğini kullanarak odağı ayarlayın. Yazılım arayüzünde, ND Alımı altında, PFS'nin açık olduğundan emin olun.</li>
	<li>Şimdi çalıştır'a tıklayın.</li>
</ol>5. Deneysel prosedür
<ol><li>Ringer'in çözelti perfüzyonunu kullanarak 90 s'lik bir başlangıç periyodu ölçümü ile başlayın.</li>
	<li>Başlangıç süresi sona erdikten sonra, Ringer'ın çözelti perfüzyonunu kapatın ve ardından Ringer'ın çinko çözeltisi perfüzyonunu açın. Ana arayüz panelinin sağ alt köşesindeki kırmızı bayrağa tıklayarak çözümün geçişini işaretleyin. Floresanda bir artışın ortaya çıkması bekleniyor.</li>
	<li>Floresan artışı doymaya başladığında, Ringer solüsyonu ile perfüzyona geri dönün. Ringer'ın çinko çözeltisi perfüzyonunu kapatın ve ardından Ringer'ın çözelti perfüzyonunu açın.</li>
	<li>Deneme süresi dolana kadar bekleyin. ZnT1 düzgün çalışıyorsa, floresanda gözle görülür ancak sabit bir azalma beklenir.</li>
</ol>6. Veri dışa aktarma
<ol><li>Verileri taban çizgisi çıkarma ile dışa aktarmak için, Taban Çizgisini Çıkar düğmesine basın ve değişiklikleri "ND alma penceresinde" görüntüleyin.</li>
	<li>"ND edinme penceresindeki" yazılım arayüzündeki Dışa Aktar düğmesine tıklayın. Bir excel veri sayfası açılacaktır. İstediğiniz konuma kaydedin.</li>
</ol>7. Veri analizi
<ol><li>Her ROI için, ilk 90-100 sn arasında ortalama bir temel floresan oluşturun.</li>
	<li>Her bir ROI için hesaplanan floresansı, o ROI için arka planın yüzdesi olarak ifade edin.</li>
	<li>Tüm ROI'lerin satır ortalamasını oluşturun ve sonucu bir çizgi grafik olarak çizin. Bu, zamanın bir fonksiyonu olarak tüm ROI'lerin ortalamasını oluşturur.</li>
	<li>Doğrusal uyum işlevini kullanarak, Ringer solüsyonu ile yıkamayı takiben floresanstaki azalma için başlangıç oranını seçin. Denklemin eğim değeri, taşıma hızı ile ilişkilidir.</li>
</ol>

Memeli Hücrelerinde Çinko Taşıma Mekanizmasının FluoZin-3 Testi ile İncelenmesi

<ol>
	<li>Lindskog, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structure+and+mechanism+of+carbonic+anhydrase.">Structure and mechanism of carbonic anhydrase.</a> Pharmacology &amp; Therapeutics. 74 (1), 1-20 (1997).</li><li>Rutherford, J. C., Bird, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Metal-responsive+transcription+factors+that+regulate+iron,+zinc,+and+copper+homeostasis+in+eukaryotic+cells.">Metal-responsive transcription factors that regulate iron, zinc, and copper homeostasis in eukaryotic cells.</a> Eukaryotic Cell. 3 (1), 1-13 (2004).</li><li>Maret, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zinc+Biochemistry:+From+a+single+zinc+enzyme+to+a+key+element+of+life.">Zinc Biochemistry: From a single zinc enzyme to a key element of life.</a> Advances in Nutrition. 4 (1), 82-91 (2013).</li><li>Kimura, T., Kambe, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+functions+of+metallothionein+and+ZIP+and+ZnT+transporters:+An+overview+and+perspective.">The functions of metallothionein and ZIP and ZnT transporters: An overview and perspective.</a> International Journal of Molecular Sciences. 17 (3), 336 (2016).</li><li>Kambe, T., Hashimoto, A., Fujimoto, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+understanding+of+ZIP+and+ZnT+zinc+transporters+in+human+health+and+diseases.">Current understanding of ZIP and ZnT zinc transporters in human health and diseases.</a> Cellular and Molecular Life Sciences. 71 (17), 3281-3295 (2014).</li><li>Kambe, T., Tsuji, T., Hashimoto, A., Itsumura, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+physiological,+biochemical,+and+molecular+roles+of+zinc+transporters+in+zinc+homeostasis+and+metabolism.">The physiological, biochemical, and molecular roles of zinc transporters in zinc homeostasis and metabolism.</a> Physiological Reviews. 95 (3), 749-784 (2015).</li><li>Hara, T., Yoshigai, E., Ohashi, T., Fukada, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zinc+transporters+as+potential+therapeutic+targets:+An+updated+review.">Zinc transporters as potential therapeutic targets: An updated review.</a> Journal of Pharmacological Sciences. 148 (2), 221-228 (2022).</li><li>Kambe, T., Taylor, K. M., Fu, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zinc+transporters+and+their+functional+integration+in+mammalian+cells.">Zinc transporters and their functional integration in mammalian cells.</a> Journal of Biological Chemistry. 296, 100320 (2021).</li><li>Huang, L., Tepaamorndech, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+SLC30+family+of+zinc+transporters+-+A+review+of+current+understanding+of+their+biological+and+pathophysiological+roles.">The SLC30 family of zinc transporters - A review of current understanding of their biological and pathophysiological roles.</a> Molecular Aspects of Medicine. 34 (2), 548-560 (2013).</li><li>Lovell, M. A., Smith, J. L., Xiong, S., Markesbery, W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alterations+in+zinc+transporter+protein-1+(ZnT-1)+in+the+brain+of+subjects+with+mild+cognitive+impairment,+early,+and+late-stage+Alzheimer's+disease.">Alterations in zinc transporter protein-1 (ZnT-1) in the brain of subjects with mild cognitive impairment, early, and late-stage Alzheimer's disease.</a> Neurotoxicity Research. 7 (4), 265-271 (2005).</li><li>Lyubartseva, G., Smith, J. L., Markesbery, W. R., Lovell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alterations+of+zinc+transporter+proteins+ZnT-1,+ZnT-4+and+ZnT-6+in+preclinical+Alzheimer's+disease+brain.">Alterations of zinc transporter proteins ZnT-1, ZnT-4 and ZnT-6 in preclinical Alzheimer's disease brain.</a> Brain Pathology. 20 (2), 343-350 (2010).</li><li>Tsuda, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Expression+of+zinc+transporter+gene,+ZnT-1,+is+induced+after+transient+forebrain+ischemia+in+the+gerbil.">Expression of zinc transporter gene, ZnT-1, is induced after transient forebrain ischemia in the gerbil.</a> The Journal of Neuroscience. 17 (17), 6678-6684 (1997).</li><li>Palmiter, R. d., Findley, S. d. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cloning+and+functional+characterization+of+a+mammalian+zinc+transporter+that+confers+resistance+to+zinc.">Cloning and functional characterization of a mammalian zinc transporter that confers resistance to zinc.</a> The EMBO Journal. 14 (4), 639-649 (1995).</li><li>Cotrim, C. A., Jarrott, R. J., Martin, J. L., Drew, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+structural+overview+of+the+zinc+transporters+in+the+cation+diffusion+facilitator+family.">A structural overview of the zinc transporters in the cation diffusion facilitator family.</a> Acta Crystallographica Section D Structural Biology. 75 (4), 357-367 (2019).</li><li>Shapiro, S. S., Wilk, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+analysis+of+variance+test+for+normality+(complete+samples).">An analysis of variance test for normality (complete samples).</a> Biometrika. 52 (3-4), 591-611 (1965).</li><li>Mann, H. B., Whitney, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+a+test+of+whether+one+of+two+random+variables+is+stochastically+larger+than+the+other.">On a test of whether one of two random variables is stochastically larger than the other.</a> The Annals of Mathematical Statistics. 18 (1), 50-60 (1947).</li><li>Darling, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Kolmogorov-Smirnov,+Cramer-von+Mises+tests.">The Kolmogorov-Smirnov, Cramer-von Mises tests.</a> The Annals of Mathematical Statistics. 28 (4), 823-838 (1957).</li><li>Zhao, J., Bertoglio, B. A., Gee, K. R., Kay, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+zinc+indicator+FluoZin-3+is+not+perturbed+significantly+by+physiological+levels+of+calcium+or+magnesium.">The zinc indicator FluoZin-3 is not perturbed significantly by physiological levels of calcium or magnesium.</a> Cell Calcium. 44 (4), 422-426 (2008).</li><li>Gee, K. R., Zhou, Z. -. L., Ton-That, D., Sensi, S. L., Weiss, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measuring+zinc+in+living+cells.:+A+new+generation+of+sensitive+and+selective+fluorescent+probes.">Measuring zinc in living cells.: A new generation of sensitive and selective fluorescent probes.</a> Cell Calcium. 31 (5), 245-251 (2002).</li><li>Sensi, S. L., Ton-That, D., Weiss, J. H., Rothe, A., Gee, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+mitochondrial+fluorescent+zinc+sensor.">A new mitochondrial fluorescent zinc sensor.</a> Cell Calcium. 34 (3), 281-284 (2003).</li><li>Hessels, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=eZinCh-2:+A+versatile,+genetically+encoded+FRET+sensor+for+cytosolic+and+intraorganelle+Zn2++imaging.">eZinCh-2: A versatile, genetically encoded FRET sensor for cytosolic and intraorganelle Zn2+ imaging.</a> ACS Chemical Biology. 10 (9), 2126-2134 (2015).</li><li>S&#225;nchez-Mart&#237;n, R. M., Cuttle, M., Mittoo, S., Bradley, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microsphere-based+real-time+calcium+sensing.">Microsphere-based real-time calcium sensing.</a> Angewandte Chemie International Edition. 45 (33), 5472-5474 (2006).</li><li>Namdarghanbari, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reaction+of+the+zinc+sensor+FluoZin-3+with+Zn7-metallothionein:+Inquiry+into+the+existence+of+a+proposed+weak+binding+site.">Reaction of the zinc sensor FluoZin-3 with Zn7-metallothionein: Inquiry into the existence of a proposed weak binding site.</a> Journal of Inorganic Biochemistry. 104 (3), 224-231 (2010).</li><li>Devinney, M. J., Reynolds, I. J., Dineley, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simultaneous+detection+of+intracellular+free+calcium+and+zinc+using+fura-2FF+and+FluoZin-3.">Simultaneous detection of intracellular free calcium and zinc using fura-2FF and FluoZin-3.</a> Cell Calcium. 37 (3), 225-232 (2005).</li></ol>

Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması beyan etmezler.

Yukarıda tarif edilen yöntem, hücre içi çinko konsantrasyonunun yüksek zamansal çözünürlükle doğrudan ölçülmesine izin verir. Diğer yöntemlerle karşılaştırıldığında, hücre içi Zn2+'daki değişikliklerin izlenmesini içeren bu yöntem, arka plan gürültüsünü önemli ölçüde azaltabilir. Ek olarak, boyanın çinko için seçiciliği, diğer metal katyonlarla potansiyel çapraz etkileşimleriortadan kaldırır 18,19. Son ...

Çinko, hücresel ortamda önemli bir eser elementtir. Tüm proteinlerin üçte birini içerir ve kataliz1, transkripsiyon2 ve yapısal motifler3 gibi çeşitli hücresel süreçlerde yer alır. Bununla birlikte, redoks-inert olmasına rağmen, yüksek çinko konsantrasyonları hücre için toksiktir, bu nedenle çinko homeostazını düzenleyen mekanizmaların varlığı olmadan hiçbir memeli organizması hayatta kalmamıştır. Memelilerde bu süreçten üç mekanizma sorumludur: (1) çinkoyu yüksek afinitede bağlayan sitozolik sistein açısından zengin proteinler olan metallotiyoninler, böylece aşırı serbest sitozolik çinko4; (2) Plazma zarı yoluyla veyahücre içi organellerden 4,5,6,7,8 sitozole çinko akışından sorumlu çinko taşıyıcıları olan Zrt/Irt benzeri proteinler (ZIP'ler); ve (3) Her yerde bulunan katyon difüzyon kolaylaştırıcı (CDF) ailesinin memeli bir alt kümesi olan ve çinkoyu sitozolden plazma zarı boyunca veya hücre içi organellere 4,5,6,7,8,9 ekstrüde ettikleri için çinko taşıyıcıları olan ZnT'ler. Çinkonun hücresel metabolizma için önemi nedeniyle, hücresel çinko dinamiklerini anlamak hayati önem taşır.
Çinko dinamiklerini değerlendirmeye yönelik önceki yöntemler, farklı çinko koşulları altında mRNA'nın ekspresyon düzeylerinin, sabit dokuların veya hücrelerin hücresel çinko ölçümleri ile ilişkilendirilerek değerlendirilmesine dayanıyordu10,11,12. Bu yöntemler arasında kimyasal tespit ve immünohistokimya boyama yer alır. Bununla birlikte, bu yöntemler yalnızca dolaylı ölçümler sağlar ve bu nedenle, hücre içi çinko konsantrasyonu ile çinko taşıyıcılarının ekspresyonu arasında yalnızca çevrimdışı bir korelasyon belirler. Sonuç olarak, bu yöntemler yüksek zamansal çözünürlük gerektiren herhangi bir parametreyi çıkaramaz.
Zn2+ taşınmasının daha doğrudan bir ölçümü, çinko13'ün radyoaktif izotoplarını kullanır. Bu yöntem, çinko taşınmasını ve kinetiğini izlemek için radyoaktif işaretli Zn2 + ölçümüne dayanır. Bununla birlikte, çinkonun hücresel homeostaz için önemi nedeniyle, çoklu hücresel süreçler hücre içi çinko konsantrasyonunu düzenler. Bunlar arasında hücre dışı bağlanma ve hücre içi Zn2+ seviyelerinin sıkı kontrolünü sağlamak için uyum içinde çalışan çeşitli taşıma sistemleri vardır. Bu işlemlerin kombinasyonu, çinko ile ilgili bireysel taşıma işlevlerinin test edilmesini zorlaştıran önemli bir arka plan gürültüsü oluşturur.
Bu makale, çinkoya özgü bir floresan boya olan FluoZin-3 kullanılarak hücre içi serbest çinko konsantrasyonunu ölçerek çinko taşıma hızını doğrudan izlemek için bir yöntemi göstermektedir. Boya, Zn2+ için yüksek özgüllüğe ve kalsiyum gibi diğer iki değerlikli katyonlardan çok az etkileşime sahiptir. Ek olarak, ester formunda, iyonik olmayan difüzyon yoluyla hücrelere girer ve daha sonra hücre içi di-esterazın aktivitesi nedeniyle tutulur. Bu nedenle, floresansı esas olarak serbest sitozolik çinko konsantrasyonu ile ilişkilidir. Bu deneyler, ZnT ailesinin bir üyesi olan çinko taşıyıcı 1'in (ZnT1) yapı-fonksiyon ilişkisini incelemek için yapılmıştır.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>10 cm plate</td>
			<td>greiner bio-one</td>
			<td>664160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>12-well cell culture plate</td>
			<td>greiner bio-one</td>
			<td>665180</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>13 mm coverslips</td>
			<td>Superior Marienfeld</td>
			<td>111530</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>22 mm cover slides</td>
			<td>Superior Marienfeld</td>
			<td>101050</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-well culture plate</td>
			<td>greiner bio-one</td>
			<td>657160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine serum albumin</td>
			<td>bioWorld</td>
			<td>22070008</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Calcium chloride anhydrous, granular</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>C1016</td>
			<td>Concentration in Ringer solution: 1 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-(+)-Glucose</td>
			<td>Glentham Life Science</td>
			<td>GC6947</td>
			<td>Concentration in Ringer solution: 10 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dubelco&#8217;s Modified Eagle Media (DMEM)&#160;</td>
			<td>Sartorius</td>
			<td>01-055-1A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eclipse Ti inverted microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>TI-DH</td>
			<td>Discontinued. Replaced by Eclipse Ti2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum (FBS)</td>
			<td>Cytiva</td>
			<td>SH30088.03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine tweezers</td>
			<td>Dumont</td>
			<td>0203-55-PS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluozin-3AM</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>F24195</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HyClone Penicillin-Streptomycin 100x solution</td>
			<td>Cytiva</td>
			<td>SV30010&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LED illumination system</td>
			<td>CoolLED</td>
			<td>pE-4000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glutamine</td>
			<td>Biological Industries</td>
			<td>03-020-1B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnesium chloride hexahydrate</td>
			<td>Merck</td>
			<td>1.05833</td>
			<td>Concentration in Ringer solution: 0.8 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N[2-Hydroxyethyl]piperazine-N&#39;-[2-ethanesulfonic acid] (HEPES)</td>
			<td>Formedium</td>
			<td>HEPES10</td>
			<td>Concentration in Ringer solution: 10 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Neo 5.5 sCMOS camera</td>
			<td>ANDOR</td>
			<td>DC-152Q-FI</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NIS-Elements imaging software</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>AR</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pluronic acid F-127</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>540025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pottasium chloride</td>
			<td>Bio-Lab</td>
			<td>163823</td>
			<td>Concentration in Ringer solution: 5.4 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pyrithione</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>H3261</td>
			<td>Concentration in Ringer zinc solution: 7 &#956;M</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicone Grease Kit</td>
			<td>Warner Instruments</td>
			<td>W4 64-0378</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium chloride</td>
			<td>Bio-Lab</td>
			<td>190305</td>
			<td>Concentration in Ringer solution: 120 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zinc sulfate</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Concentration in Ringer zinc solution: 7 &#956;M</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>31665</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

characterizing mammalian zinc transporters using an in vitro zinc transport assay

Zn2+ iyonları gibi geçiş metalleri, hücresel toksisiteleri nedeniyle sıkı bir şekilde düzenlenmelidir. Daha önce, Zn2+ taşıyıcılarının aktivitesi, farklı Zn2+ konsantrasyonları altında taşıyıcının ekspresyon seviyesi belirlenerek dolaylı olarak ölçülüyordu. Bu, immünohistokimya kullanılarak, dokudaki mRNA'yı ölçerek veya hücresel Zn2+ seviyelerini belirleyerek yapıldı. Hücre içi Zn2+ sensörlerinin geliştirilmesiyle, çinko taşıyıcıların aktiviteleri şu anda esas olarak, floresan problar kullanılarak tespit edilen hücre içi Zn 2 + 'daki değişikliklerin Zn2 + taşıyıcılarının ekspresyonu ile ilişkilendirilmesiyle belirlenmektedir. Bununla birlikte, bugün bile, sadece birkaç laboratuvar hücre içi Zn2 + 'daki dinamik değişiklikleri izlemekte ve bunu çinko taşıyıcılarının aktivitesini doğrudan ölçmek için kullanmaktadır. Sorunun bir kısmı, ZnT ailesinin 10 çinko taşıyıcısından, ZnT10 (manganez taşır) hariç, plazma zarında sadece çinko taşıyıcı 1'in (ZnT1) lokalize olmasıdır. Bu nedenle, taşıma aktivitesini hücre içiZn2+ konsantrasyonundaki değişikliklere bağlamak zordur. Bu makale, çinkoya özgü bir floresan boya olan FluoZin-3'e dayalı bir tahlil kullanarak çinko taşıma kinetiğini belirlemenin doğrudan bir yolunu açıklamaktadır. Bu boya, ester formunda memeli hücrelerine yüklenir ve daha sonra hücresel diesteraz aktivitesi nedeniyle sitozolde tutulur. Hücreler, Zn2+ iyonofor pirityonu kullanılarak Zn2+ ile yüklenir. ZnT1 aktivitesi, hücre yıkamasını takiben floresanstaki azalmanın doğrusal kısmından değerlendirilir. 470 nm'lik bir uyarılmada ve 520 nm'lik bir emisyonda ölçülen floresan, serbest hücre içi Zn2+ ile orantılıdır. mCherry florofor ile etiketlenmiş ZnT1'i eksprese eden hücrelerin seçilmesi, yalnızca taşıyıcıyı eksprese eden hücrelerin izlenmesine izin verir. Bu test, ZnT1 proteininin farklı alanlarının, hücreden fazla çinko ekstrüde eden ökaryotik bir transmembran proteini olan insan ZnT1'in taşıma mekanizmasına katkısını araştırmak için kullanılır.

Zinc is an essential trace element in the cellular milieu. It incorporates one-third of all proteins and is involved in various cellular processes, such as catalysis1, transcription2, and structural motifs3. However, despite being redox-inert, high zinc concentrations are toxic to the cell, which is why no mammalian organism has survived without the presence of mechanisms regulating zinc homeostasis. In mammals, three mechanisms are responsible for this process: (1) metallothioneins, which are cytosolic cysteine-rich proteins that bind zinc at a high affinity, thus preventing excess free cytosolic zinc4; (2) Zrt/Irt-like proteins (ZIPs), which are zinc transporters responsible for zinc influx into the cytosol through the plasma membrane or from intracellular organelles4,5,6,7,8; and (3) ZnTs, which are a mammalian subset of the ubiquitous cation diffusion facilitator (CDF) family and are zinc transporters, as they extrude zinc from the cytosol across the plasma membrane or into the intracellular organelles4,5,6,7,8,9. Due to the importance of zinc to cellular metabolism, it is vital to understand cellular zinc dynamics.
Previous methods to assess zinc dynamics depended on assessing the expression levels of mRNA under different zinc conditions by correlating them with cellular zinc measurements of fixed tissues or cells10,11,12. These methods include chemical detection and immunohistochemistry staining. However, these methods yield only indirect measures and, thus, determine only an offline correlation between intracellular zinc concentration and the expression of zinc transporters. Consequently, these methods cannot infer any parameters requiring high temporal resolution.
A more direct measurement of Zn2+ transport uses radioactive isotopes of zinc13. This method relies on the measurement of radiolabeled Zn2+ to monitor zinc transport and its kinetics. However, due to the importance of zinc to cellular homeostasis, multiple cellular processes regulate intracellular zinc concentration. Among these are extracellular binding and several transport systems that work in concert to maintain tight control of intracellular Zn2+ levels. The combination of these processes creates considerable background noise, which makes it difficult to test individual zinc-related transport functions.
This article demonstrates a method to directly monitor the zinc transport rate by measuring the intracellular free zinc concentration using a zinc-specific fluorescent dye, FluoZin-3. The dye has high specificity for Zn2+ and little interference from other divalent cations, such as calcium. In addition, in its ester form, it enters the cells by nonionic diffusion and is then trapped due to the activity of intracellular di-esterase. Thus, its fluorescence is correlated primarily with the free cytosolic zinc concentration. These experiments were conducted to study the structure-function relationship of zinc transporter 1 (ZnT1), a member of the ZnT family.

Yazar Spotlight: ZnT1 İşlevselliği ile Hücresel Çinko Düzenlemesini Keşfetmek 

İn Vitro Çinko Taşıma Testi Kullanılarak Memeli Çinko Taşıyıcılarının Karakterize Edilmesi

My research focuses on the structure-function relationship of mammalian zinc transporters, with special emphasis on the regulation mechanism. Due to the importance of zinc ion to cellular function, it is challenging to obtain accurate measurement of cellular zinc dynamics. Our protocol addresses the low signal-to-noise ratio and low temporal resolution of zinc dynamics.This method allows testing of zinc influx across the cell membrane, with high temporal resolution and considerably less background noise and cross-interactions by other divalent cations. We found that the unstructured extension of the mammalian transporter ZnT1 one C-terminal domain is not involved in the zinc transport function. This allows researchers to focus on other domains of the ZnT1 protein for zinc transport regulation.

ZnT1, hücre plazma zarı13 üzerinde bulunan bir memeli çinko taşıyıcısıdır. Çinkoyu sitozolden hücre dışı milieu14'e ekstrüde eden katyon difüzyon kolaylaştırıcı (CDF) protein ailesinin bir üyesidir. ZnT1 iki alanlı bir mimariye sahiptir: iyonları zar boyunca taşıyan transmembran alanı ve bir C-terminal alanı14. Bilinen diğer CDF proteinlerinden farklı olarak, ZnT1 genişletilmiş yapılandırılmamış bir C-terminal ala...

Watch this Scientific Journal Video about Exploring Cellular Zinc Regulation Through ZnT1 Functionality at JoVE.com

Çinko taşınmasının, protein fonksiyonuna zayıf nedensel bağlantılar ve düşük zamansal çözünürlük nedeniyle ölçülmesinin zor olduğu kanıtlanmıştır. Bu protokol, Zn 2 + duyarlı bir floresan boya kullanarak canlı hücrelerden Zn2 + ekstrüzyonunu yüksek zamansal çözünürlükle izlemek için bir yöntemi açıklar, böylece doğrudan bir Zn2 + akışı ölçümü sağlar.

Transition metals such as Zn2+ ions must be tightly regulated due to their cellular toxicity. Previously, the activity of Zn2+ transporters was measured ...

Araştırmam, düzenleme mekanizmasına özel önem vererek, memeli çinko taşıyıcılarının yapı-işlev ilişkisine odaklanmaktadır. Çinko iyonunun hücresel işlev için önemi nedeniyle, hücresel çinko dinamiklerinin doğru ölçümünü elde etmek zordur. Protokolümüz, çinko dinamiğinin düşük sinyal-gürültü oranını ve düşük zamansal çözünürlüğünü ele alır.Bu yöntem, hücre zarı boyunca çinko akışının, yüksek zamansal çözünürlük ve önemli ölçüde daha az arka plan gürültüsü ve diğer iki değerlikli katyonlar tarafından çapraz etkileşimlerle test edilmesini sağlar. Memeli taşıyıcı ZnT1'in bir C-terminal alanının yapılandırılmamış uzantısının çinko taşıma fonksiyonuna dahil olmadığını bulduk. Bu, araştırmacıların çinko taşıma düzenlemesi için ZnT1 proteininin diğer alanlarına odaklanmalarını sağlar.

characterizing-mammalian-zinc-transporters-using-an-vitro-zinc

Research

JoVE Journal

Biology

Characterizing Mammalian Zinc Transporters Using an In Vitro Zinc Transport Assay

793 Görüntüleme.  Ben-Gurion University. Araştırmam, düzenleme mekanizmasına özel önem vererek, memeli çinko taşıyıcılarının yapı-işlev ilişkisine odaklanmaktadır. Çinko iyonunun hücresel işlev için önemi nedeniyle, hücresel çinko dinamiklerinin doğru ölçümünü elde etmek zordur. Protokolümüz, çinko dinamiğinin düşük sinyal-gürültü oranını ve düşük zamansal çözünürlüğünü ele alır.Bu yöntem, hücre zarı boyunca çinko akışının, yüksek zamansal çözünürlük ve önem...

Video: Yazar Spotlight: ZnT1 İşlevselliği ile Hücresel Çinko Düzenlemesini Keşfetmek 

Transition metals such as Zn2+ ions must be tightly regulated due to their cellular toxicity. Previously, the activity of Zn2+ transporters was measured indirectly by determining the expression level of the transporter under different concentrations of Zn2+. This was done by utilizing immunohistochemistry, measuring mRNA in the tissue, or determining the cellular Zn2+ levels. With the development of intracellular Zn2+ sensors, the activities of zinc transporters are currently primarily determined by correlating changes in intracellular Zn2+, detected using fluorescent probes, with the expression of the Zn2+ transporters. However, even today, only a few labs monitor dynamic changes in intracellular Zn2+ and use it to measure the activity of zinc transporters directly. Part of the problem is that out of the 10 zinc transporters of the ZnT family, except for ZnT10 (transports manganese), only zinc transporter 1 (ZnT1) is localized at the plasma membrane. Therefore, linking the transport activity to changes in the intracellular Zn2+ concentration is hard. This article describes a direct way to determine the zinc transport kinetics using an assay based on a zinc-specific fluorescent dye, FluoZin-3. This dye is loaded into mammalian cells in its ester form and then trapped in the cytosol due to cellular di-esterase activity. The cells are loaded with Zn2+ by utilizing the Zn2+ ionophore pyrithione. The ZnT1 activity is assessed from the linear part of the reduction in fluorescence following the cell washout. The fluorescence measured at an excitation of 470 nm and emission of 520 nm is proportional to the free intracellular Zn2+. Selecting the cells expressing ZnT1 tagged with the mCherry fluorophore allows for monitoring only the cells expressing the transporter. This assay is used to investigate the contribution of different domains of ZnT1 protein to the transport mechanism of human ZnT1, a eukaryotic transmembrane protein that extrudes excess zinc from the cell.

Zinc transport has proven challenging to measure due to the weak causal links to protein function and the low temporal resolution. This protocol describes a method for monitoring, with high temporal resolution, Zn2+ extrusion from living cells by utilizing a Zn2+ sensitive fluorescent dye, thus providing a direct measure of Zn2+ efflux.

Biyoloji

Zinc-Specific Staining of Transfected HEK293T Cells

Begin by analyzing transfected HEK293T cells using an inverted fluorescence microscope. Once the cells are focused using bright-field light, switch to fluorescent mCherry excitation wavelength of 587 nanometers and emission wavelengths of 610 nanometers. After turning off the bright-field light, check for the fluorescence of the cells to confirm the expression of ZnT1 mCherry.To prepare dye-loading solution, take four microliters of zinc-specific fluorescent dye solution. Then add four microliters of 10%pluronic acid. Mix the solution by pipetting up and down, and transfer it to a 1.5-milliliter tube.Add 750 microliters of washing solution into the prepared solution and vortex the tube vigorously. Again, add 750 microliters of wash solution. Once vortexed, add 750 microliters of this solution into two wells of a new six-well culture plate and cover it with aluminum foil.Using tweezers, transfer a 13-millimeter cover slip from the previously cultured HEK293T cell plate into a six-well plate. After covering the plate with foil, gently shake it for 15 to 20 minutes and replace the dye-loading solution with the prepared washing solution. Once the plate is covered, shake it again for 20 minutes.

Transfekte Edilmiş HEK293T Hücrelerinin Çinkoya Özgü Boyanması

Sample Preparation and Fluorescence Measurement of Stained Transfected HEK293T Cells

To begin, turn on the microscope, light source, camera, and suction system. For washing the perfusion system, use Ringer's solution in the first chamber and Ringer's zinc solution supplemented with pyrithione in the second chamber. After closing the tap, fill the chambers with the same solutions.To begin sample preparation, place the perfusion chamber with the narrow side of the groove facing up and apply a sealing silicone around the groove. Then, using a fine tweezer, transfer a 13-millimeter coverslip from the washing solution on top of the groove with cells facing down. Place a 22-millimeter coverslip on top of the 13-millimeter coverslip and tighten it using the tweezer, taking care not to crack the coverslips.Flip the chamber and press it to release the liquids. Then, fill the groove with 100 microliters of Ringer's washing solution and press again, ensuring no leakage. Mount and secure the perfusion chamber onto the platform.Then, attach the perfusion and suction tubes for perfusion over the cells in the groove. Change the perfusion rate to approximately two milliliters per minute and turn on Ringer's solution perfusion. For measurements, open the imaging software.Set the microscope magnification to 10X using the left side button of the microscope. After choosing Live View, use the joystick to move the platform and focus on the cells in the groove. Select the appropriate wavelength for mCherry.Once the cells are focused, move the platform for the selection of appropriate cell patches. Select the Draw ROIs dropdown menu. Choose Draw Circular ROIs and draw ROIs on cell clusters with the mCherry-expressing cells.Create new ROIs beyond the first by holding down the Shift button and then by pressing and dragging the existing ROIs. Select Draw Square Background ROI from the dropdown menu and adjust the location and size of the background ROI where cells are not present. After ensuring the absence of cells in the background ROI, go to the ND Acquisition tab.Select the Wavelength subtab and mark its checkbox. Ensure that the checkbox for GFP wavelength is also marked. Click on the Time subtab and define the measurement interval as every five seconds and duration as 30 minutes.On the microscope panel, press the On to enable the Perfect Focus System, or PFS. Under ND Acquisition, ensure PFS on is ticked. Adjust the focus and click Run now.Start baseline period measurement for 90 seconds using Ringer's solution perfusion. After 90 seconds, switch from the Ringer's solution perfusion to the Ringer's zinc solution perfusion, and click the red flag on the bottom right of the main interface panel once the fluorescence rise starts to saturate. Change back to perfusion with Ringer's solution until the experiment time expires.To export the data with baseline subtraction, press the Background Correction button and view the changes in the ND Acquisition window. Click the Export button to save the data in the desired location. An increase in fluorescence resulted from increased intracellular zinc concentration, while a decrease indicated the activity of ZnT-1 transporting zinc across the cell membrane.The wild type ZnT-1 had a smoother fluorescence curve than the mutant, relating to the variability in the cellular responses to zinc load. A box plot comparing the activities of wild-type and delta USCTD showed similar average transport rates, indicating a lack of difference between the wild type and the mutant. However, the difference in the spread may indicate a functional difference.