JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

كاليفورنيا 2+ إشارات تنظم العمليات البيولوجية المختلفة في النباتات. هنا نقدم النهج لرصد يسببها الإجهاد اللاحيوي الكالسيوم المكاني والزماني 2+ الإشارات في الخلايا والأنسجة باستخدام المشفرة وراثيا الكالسيوم 2+ مؤشرات Aequorin أو Case12 نبات الأرابيدوبسيس.

Abstract

العظة الإنمائية والبيئية تحفز الكالسيوم 2+ التقلبات في الخلايا النباتية. ومست المكانية والزمانية الكالسيوم 2+ أنماط التحفيز محددة من الكالسيوم 2+ ملزم البروتينات الخلوية التي تبدأ الكالسيوم 2+ يشير شلالات. ومع ذلك، ما زلنا لا نعرف إلا القليل حول كيفية التحفيز تتولد إشارات الكالسيوم معين 2+. ويمكن أن يعزى خصوصية إشارة الكالسيوم 2+ لتنظيم متطورة لأنشطة قنوات الكالسيوم 2+ و / أو الناقلين في استجابة لحافز معين. لتحديد هذه المكونات الخلوية وفهم وظائفها، لا بد من استخدام الأنظمة التي تسمح تسجيل حساسة وقوية من إشارات الكالسيوم 2+ في كل من الأنسجة الخلوية والمستويات. وقد وفرت المشفرة وراثيا الكالسيوم 2+ المؤشرات التي تستهدف مقصورات الخلوية المختلفة منبرا للخلية الحية التصوير متحد البؤر الخلوية من الكالسيوم 2+ الإشارات. نحن هنا وصف التعليمق لاستخدام اثنين من الكالسيوم 2+ أنظمة الكشف: aequorin FAS (فيلم الشتلات لاصق) التلألؤ الكالسيوم 2+ التصوير وcase12 استنادا الخلية الحية متحد البؤر مضان الكالسيوم 2+ التصوير القائم. التصوير التلألؤ باستخدام نظام FAS يوفر الكشف بسيطة وقوية وحساسة من المكانية والزمانية الكالسيوم 2+ إشارات على مستوى الأنسجة، في حين أن الخلية الحية التصوير متحد البؤر باستخدام Case12 يتيح الكشف المتزامن للعصاري خلوي والكالسيوم النووية 2+ إشارات بدقة عالية.

Introduction

في الخلية النباتية وتستجيب للبيئة عن طريق الإشارات التي تنسق أعمال الخلية. خلية مبكرة يشير الحدث في الاستجابة للمؤثرات البيئية هي عابرة زيادة الكالسيوم 2+. يتميز نمط، أو التوقيع على زيادة عابرة في حر تركيز الكالسيوم في 2+ من السعة، والتردد، والمدة. المكانية والزمانية التوقيعات الكالسيوم 2+ متميزة تنظم الأنشطة الخلوية المختلفة 1. محفزات معينة، مثل الحرارة والبرودة، والملح، والجفاف، والضوء، أو الهرمونات النباتية، قد صقل النشاط المكانية والزمانية من المترجمة الغشاء قنوات الكالسيوم 2+ و / أو النقل، مما أدى محددة كا 2+ التوقيعات. على الرغم من الكالسيوم 2+ النقل اتسمت أيضا، لا يعرف إلا القليل عن الهويات الجزيئية وظائف قنوات الكالسيوم 2+ في النباتات 1. شاشات الجينية للالمسوخ مع تغيير كا 2+ ردا على التأكيد على المحفزات قد تكون فعالة approach لتحديد المكونات التي تؤلف التوقيعات الكالسيوم 2+. وقد وضعت كا 2+ أنظمة الكشف مؤخرا العديد Aequorin استنادا التي تسهل شاشات الجينية للكا 2+ يشير مكونات ردا على مهاجمة مسببات الأمراض والإجهاد اللاحيوي 2-4.

وقد استخدم Aequorin أول من كشف الكالسيوم 2+ إشارات في النباتات في وقت مبكر 1990s 5. منذ ذلك الحين، تم استهداف Aequorin إلى مقصورات الخلوية المختلفة، مثل السيتوبلازم نواة 6، 7 البلاستيدات الخضراء، tonoplast 8، 9 الميتوكوندريا، و10 سدى، فضلا عن أنواع مختلفة من الخلايا في جذر لمراقبة خلية معينة كا 2 + إشارات 11. تكشف القياسات الكالسيوم Aequorin استنادا 2+ والمكانية والزمانية الكالسيوم 2+ استجابة من مجموعة من الخلايا التأكيد على المحفزات. ومع ذلك، في معظم الحالات، ردود 2+ الكالسيوم من الخلايا واحدة هي unsynchroniزيد في الأنسجة الاستجابة 4. لذا، وتسجيل Aequorin الكالسيوم 2+ لا تفيد بالضرورة إشارة 2+ الكالسيوم في الخلايا الفردية. في السنوات الأخيرة، المشفرة وراثيا بروتين فلوري (FP) القائم على الكالسيوم 2+ المؤشرات، مثل كمليون الأصفر (YCS) 12 و 13 CASEs12 استخدمت لدراسة كا 2+ يشير لقرار التحت خلوية عالية. YCS هي مضان نقل الطاقة الرنين (الحنق) القائم على الكالسيوم 2+ المؤشرات، التي تحتوي على CFP YFP والمتغيرات التي ترتبط كا 2+ -binding كالمودولين البروتين والببتيد كالمودولين ملزم M13. كالمودولين تخضع لعملية تغيير متعلق بتكوين جزئي كما يرتبط الكالسيوم 2+، مما يجلب CFP YFP وأقرب معا، مما يؤدي إلى زيادة نقل الطاقة (تعزيز الحنق). مستوى الحنق على مر الزمن، وتحسب تقريبا كنسبة من YFP إلى CFP شدة إشارة، يعكس الكالسيوم داخل الخلايا 2+ ديناميات. وقد استخدمت العديد من إصدارات البطاقة الصفراء في النباتات. كان YC3.6 رargeted إلى العصارة الخلوية 14،15، 16 النواة، الميتوكوندريا 17، وغشاء البلازما 18، وYC4.6 وD4ER استهدفت ER إلى 15،19، واستهدف D3cpv إلى peroxisomes 20. النباتات المعدلة وراثيا معربا عن YCS تسمح التصوير الخلية الحية من الكالسيوم 2+ ديناميات داخل مقصورات الخلوية المختلفة من أنواع مختلفة من الخلايا. الحالات (ويفترض الكالسيوم lcium حد ذاته nsor) هي بروتينات واحدة دائري مبدل الفلورسنت (cpFPs) بايواء وكالمودولين ملزم كالمودولين الببتيد M13. على الربط إلى الكالسيوم 2+، وحالات تخضع التغييرات متعلق بتكوين، مما يؤدي إلى زيادة كثافة مضان. العلاقة بين استجابة مضان كيس والكالسيوم تركيز الكالسيوم داخل الخلايا 2+ يسمح 2+ ديناميات المراد قياسها كميا. البديل Case12 تمت زيادة 12 أضعاف في مضان أشكال -saturated الكالسيوم 2+. N. النباتات benthiminana عابر EXPRاستخدمت essing Case12 أو النباتات نبات الأرابيدوبسيس التعبير عن ثابت 12 حالة لدراسة كا 2+ الإشارات في الدفاع والضغط 4،21 أحيائية. وقد كشف غير المتزامن الكالسيوم المكاني والزماني 2+ التذبذبات في خلايا الاستجابة للهجوم الممرض، أو للإجهاد الجفاف مع Case12 مقرها كاليفورنيا 2+ التصوير.

هنا، نقدم تعليمات مفصلة لAequorin التصوير التلألؤ على أساس من نسيجيا والمحفزات محدد الكالسيوم 2+ ديناميكية في شتلات نبات الأرابيدوبسيس، والتصوير متحد البؤر من عصاري خلوي والكالسيوم النووي 2+ ديناميكية في الخلايا الجذرية نبات الأرابيدوبسيس التي تعبر عن حالة 12. التلألؤ التصوير FAS يمكن تكييفها لتحليل الإجهاد الناجم عن الكالسيوم 2+ ديناميكية في النباتات أو الأنسجة غير الوارد وصفها هنا سليمة، أو لفحص mutagenized السكان نبات نبات الأرابيدوبسيس لالمسوخ مع الإجهاد الناجم غيرت الكالسيوم 2+ الإشارات. يمكن أن تتكيف الخلية الحية الكالسيوم 2+ الإعداد التصوير لتحليل الكالسيوم2+ ديناميات داخل مقصورات subcelluar مختلفة أو في أنواع مختلفة من الخلايا الأخرى باستخدام المؤشرات الكالسيوم 2+.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

1. Aequorin القائم على الكالسيوم 2+ التصوير باستخدام نظام FAS

  1. إعداد الشتلات للتصوير التلألؤ. تعقيم البذور من النباتات نبات الأرابيدوبسيس معربا عن Aequorin مع 10٪ محلول التبييض التي تحتوي على 0.01٪ تريتون-100. زرع بذور معقمة على طبق مربع (10 × 10 سم مربع طبق بيتري مع الشبكة،) التي تحتوي على كامل قوتها MS (Murashige وسكوغ بصل خليط الملح)، 1٪ سكروز، و 1.2٪ أجار. مكان وحات عموديا في غرفة النمو بعد التقسيم الطبقي في 4 درجة مئوية لمدة 2 يوم (الشكل 1A).
  2. نقل الشتلات على فيلم. وضع الفيلم لاصقة (الشكل 1B) في الجزء العلوي من 7-10 يوم الشتلات القديمة المتزايد على اللوحة. دفع بلطف الفيلم باليد للتأكد من أن الشتلات تلتزم فيلم (الشكل 1C). قشر الفيلم بلطف بحيث تظل شتلات انضمت إلى فيلم (الشكل 1D و1E)
  3. احتضان الشتلات مع العامل المساعد. وضع لالشتلات dhered على لوحة مربعة (10 × 10 سم) تحتوي على 15 مل من 2 ميكروغرام / مل ح CTZ (coelenterazine) في الماء. احتضان الشتلات في درجة حرارة الغرفة لمدة 4 ساعة ليلة وضحاها (الشكل 1F).
  4. التحضير لتصوير التلألؤ. أخذ الفيلم من الحل H-CTZ وقطع عليه في منتصف أسفل، وتشكيل قطعتين. وضع كل قطعة من الفيلم مع الشتلات في مواجهة اثنين من لوحات مختلفة. ترك لوحات في الظلام لمدة 5 دقائق.
  5. الحصول على صور التلألؤ. في الظلام، ووضع لوحات اثنين بجانب بعضها البعض على الساحة من نظام التصوير التلألؤ (الشكل 1G). الحصول على صور فور بإضافة 20 مل من محلول محفزات لوحات في نفس الوقت.
  6. تحليل الصور التلألؤ. اختيار نفس النطاق لعرض جميع الصور التلألؤ. المحاصيل في المنطقة ذات الاهتمام (ROI) وتوليد الصور وملفات JPEG (الشكل 2A). بدلا من ذلك، تصدير الصور كما SPE شكل ملفات واستيرادها إلىيماغيج تحليل الصور البرمجيات. مجموعة القياسات لحساب قيمة الرمادية متوسط ​​العائد على الاستثمار. حدد نفس حجم منطقة العائد على الاستثمار وقياس متوسط ​​البيانات الرمادية والحاضر والرسوم البيانية (الشكل 2B).

2. الخلية الحية متحد البؤر كا 2+ التصوير

  1. إعداد الشتلات للتصوير متحد البؤر. تعقيم البذور من النباتات نبات الأرابيدوبسيس معربا عن case12 مع 10٪ محلول التبييض التي تحتوي على 0.01٪ تريتون. زرع بذور معقمة على لوحة تحتوي على أملاح MS قوة بالدوام الكامل، 1٪ سكروز، و 1.2٪ أجار. مكان وحات عموديا في غرفة النمو بعد التقسيم الطبقي في 4 درجة مئوية لمدة 2 ايام.
  2. غرف التصوير الإعداد
    1. تجميع لغرفة التصوير باستخدام الشرائح وساترة (الغرفة A). وضع قطعة من القطن والصوف غارقة في المياه على منتصف الشريحة. ثم نقل واحد أو اثنين الشتلات القديمة 5 أيام من لوحة على الجزء العلوي من المياه غارقة القطن والصوف. عصا قطع صغيرة من الطين إلى كل ركن من ساترة، ود مكان ساترة على الجزء العلوي من الشتلات لخلق فجوة (غرفة) بين ساترة والشريحة (الشكل 3A، اللوحة اليسرى). قم بتوصيل أحد طرفي الأنبوب البولي ايثيلين (0.58 مم) لحقنة 1 مل ووضع الطرف الآخر من الأنبوب المجاور على الفور إلى غرفة. عقد الأنابيب في مكان مع الشريط (الشكل 3A، اللوحة اليمنى).
    2. تجميع لغرفة التصوير باستخدام غرفة شبكي (الغرفة B).
      1. نشر طبقة رقيقة من السيليكون الشحوم حول اثنين من أنابيب البولي ايثيلين (0.58 مم) واضغط على الأنابيب المغلفة في القنوات على كل جانب من الغرفة شبكي (الشكل 3B يسار لوحة). نشر طبقة رقيقة من السيليكون الشحوم على سطح الغرفة التي تحتوي على الأخاديد أنبوب واضغط ساترة في الشحوم لاغلاق جانب واحد من افتتاح غرفة (قطع).
      2. نقل الشتلات من العمر خمسة أيام من لوحة في غرفة ووضع قطعة من القطن والصوف المنقوع مع الماء على س الأعلىو الشتلات. نشر سيليكون الشحوم على سطح الآخر من الغرفة، ثم اضغط ساترة آخر على رأس لختم. ربط نهاية واحدة من أنابيب إلى حقنة 1 مل. ترك نهاية الأنبوب الآخر المفتوحة (الشكل 3B اللوحة اليمنى).
    3. إعداد غرفة التصوير باستخدام غطاء زجاجي غرف (الغرفة C). تعقيم الزجاج غطاء غرف مع الايثانول 70٪ وترك الأمر على غطاء محرك السيارة حتى تجف. إضافة 0.6 مل أو 0.2 مل من كامل قوتها MS المتوسطة تحتوي على 1٪ سكروز و 0.5٪ phytagel في كل بئر من غرفة 2 جيدا أو الغرفة 8 جيدا (الشكل 3C اللوحة اليمنى)، على التوالي. تعقيم البذور وزرع بذور مباشرة في كوب غطاء غرف تحتوي على طبقة رقيقة من الجل واضحا والسماح لهم تنمو عموديا لمدة 5 أيام (الشكل 3C).
  3. الحصول على صور باستخدام مجهر متحد البؤر. لتطبيق محفزات الإجهاد، مثل الملح والبرد أو بيروكسيد، وضخ ببطء حوالي 200 ميكرولتر من 150 ملي كلوريد الصوديوم، والجليد كولونيلد الماء أو 1 ملم H 2 O 2 حل في غرفة (غرفة A أو B) قبيل الحصول على الصور أو إضافة بلطف 500 ميكرولتر أو 100 ميكرولتر من الحل حافزا لبئر غرفة 2- أو 8 جيدا، على التوالي . التقاط الصور على الفور بعد تطبيق الحل التحفيز باستخدام مقلوب مبائر نيكون A1R الليزر المسح الضوئي المجهر مع عدسة الغمر بالماء 20X (الفتحة العددية 0.75). جمع سلسلة زمنية من الصور في 4 فترات ثانية مع الإثارة وانبعاث موجات من 488 نانومتر و 500 حتي 550 نانومتر، على التوالي، وبدرجة وضوح 512 بكسل x 512.
  4. تحليل صورة
    باستخدام عناصر نيكون، ووضعت رويس حول كل خلية (أو منطقة) من الفائدة. تم قياس كثافة الإجمالية داخل كل ROI مع مرور الوقت باستخدام مربع الحوار وقت القياس (يماغيج يمكن أن تستخدم بدلا من ذلك). تم تصدير مجموع قياسات كثافة ومعالجتها في DataGraph. تم تعريف كاليفورنيا 2+ ارتفاع السعة كما ذروة كثافة ناقص يستريح كثافة ومدة والعشرينالساعة الإلكترونية بين البدء والانتهاء من السنبلة، وفترة والفاصل الزمني بين قمم ارتفاع المجاورة اثنين من المسامير تي استخدمت -test لمقارنة الوسائل.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

النتائج

استخدمت مانيتول، كلوريد الصوديوم وH 2 O 2 كوكلاء للجفاف والملح والاكسدة المحفزات، على التوالي. للتحقق مما إذا أيون المعادن الثقيلة النحاس 2+ تنسجم مع أي من هذه المحفزات الإجهاد الثلاثة، قارنا الكالسيوم 2+ استجابة لكل المثيرات في وجود أو عدم وجود ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

لقد أثبت نظام FAS لتسجيل المكانية والزمانية الكالسيوم 2+ استجابة شتلات نبات الأرابيدوبسيس. يوفر هذا FAS الكالسيوم 2+ نظام تسجيل مقاربة بسيطة وحساسة وقوية التي يمكن تكييفها لقياس الكالسيوم 2+ ديناميات الناجمة عن المنبهات المختلفة بالإضافة إلى محفزات ال?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We are grateful to B. Stevenson for technical assistance and Dr Marc R. Knight for providing Aequorin transgenic line. This work was funded by the National Institutes of Health Grant R01 GM059138.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
10 cm x 10 cm square Petri dishVWR60872-310
Adhesive filmVWR60941-062
Polyethylene tubingPerkinElmer9908265
1 ml syringeVWR53548-000
Silicone greaseBeckman335148
2-well chambered cover glass Nalge Nunc international155379
8-well chambered cover glassNalge Nunc international155409
Luminescence imaging systemPrinceton InstrumentsN/A
Inverted confocal laser-scanning microscopeNikon Instruments Inc.N/ANikon A1R 
Imaging softwareNikon Instruments Inc.N/ANikon Elements 
DataGraphVisual Data Tools IncN/ADataGraph 3.1.1 is the newest version
CoelenterazineNanoLight Technolgies#301B NF-BCTZ-FB
All purpose bleachAny local storeN/A
Triton X-100FisherBP151500
MS saltPhytotechnology LabsM524-50L
SucroseVWRBDH8029-12KG
AgarSigmaA1296-5KG
PhytagelSigmaP8169-1KG

References

  1. Kudla, J., Batistic, O., Hashimoto, K. Calcium signals: the lead currency of plant information processing. Plant Cell. 22 (3), 541-563 (2010).
  2. Pan, Z., Zhao, Y., Zheng, Y., Liu, J., Jiang, X., Guo, Y. A high-throughput method for screening Arabidopsis mutants with disordered abiotic stress-induced calcium signal. J. Genet. Genomics. 39 (5), 225-235 (2012).
  3. Ranf, S., et al. Defense-related calcium signaling mutants uncovered via a quantitative high-throughput screen in Arabidopsis thaliana. Mol. Plant. 5 (1), 115-130 (2012).
  4. Zhu, X., Feng, Y., Liang, G., Liu, N., Zhu, J. K. Aequorin-based luminescence imaging reveals stimulus- and tissue-specific Ca2+ dynamics in Arabidopsis plants. Mol. Plant. 6 (2), 444-455 (2013).
  5. Knight, M. R., Campbell, A. K., Smith, S. M., Trewavas, A. J. Transgenic plant aequorin reports the effects of touch and cold-shock and elicitors on cytoplasmic calcium. Nature. 352 (6335), 524-526 (1991).
  6. Van der Luit, A. H., Olivari, C., Haley, A., Knight, M. R., Trewavas, A. J. Distinct calcium signalling pathways regulate calmodulin gene expression in tobacco. Plant Physiol. 121 (3), 705-714 (1999).
  7. Johnson, C. H., et al. Circadian oscillations of cytosolic and chloroplastic free calcium in plants. Science. 269 (5232), 489-503 (1995).
  8. Knight, H., Trewavas, A. J., Knight, M. R. Cold calcium signaling in Arabidopsis involves two cellular pools and a change in calcium signature after acclimation. Plant Cell. 8 (3), 489-503 (1996).
  9. Logan, D. C., Knight, M. R. Mitochondrial and cytosolic calcium dynamics are differentially regulated in plants. Plant Physiol. 133 (1), 21-24 (2003).
  10. Mehlmer, N., Parvin, N., Hurst, C. H., Knight, M. R., Teige, M., Vothknecht, U. C. A toolset of aequorin expression vectors for in planta studies of subcellular calcium concentrations in Arabidopsis thaliana. J. Exp. Bot. 63 (4), 1751-1761 (2012).
  11. Kiegle, E., Moore, C. A., Haseloff, J., Tester, M. A., Knight, M. R. Cell-type-specific calcium responses to drought, salt and cold in the Arabidopsis root. Plant J. 23 (2), 267-278 (2000).
  12. Palmer, A. E., Tsien, R. Y. Measuring calcium signaling using genetically targetable fluorescent indicators. Nat. Protoc. 1 (3), 1057-1065 (2006).
  13. Souslova, E., et al. Single fluorescent protein-based Ca2+ sensors with increased dynamic range. BMC. Biotechnol. 7, 37-46 (2007).
  14. Tanaka, K., Swanson, S., Gilroy, S., Stacey, G. Extracellular nucleotides elicit cytosolic free calcium oscillations in Arabidopsis. Plant Physiol. 154 (2), 705-719 (2010).
  15. Iwano, M., et al. Fine-tuning of the cytoplasmic Ca2+ concentration is essential for pollen tube growth. Plant Physiol. 150 (3), 1322-1334 (2009).
  16. Sieberer, B., Chabaud, M., Timmers, A., Monin, A., Fournier, J., Barker, D. A nuclear-targeted Cameleon demonstrates intranuclear Ca2+ spiking in Medicago truncatula root hairs in response to rhizobial nodulation factors. Plant Physiol. 151 (3), 1197-1206 (2009).
  17. Loro, G., Drago, I., Pozzan, T., Lo Schiavo, F., Zottini, M., Costa, A. Targeting of Cameleons to different subcellular compartments reveals a strict cytoplasmic/mitochondrial Ca2+ handling relationship in plant cells. Plant J. 71 (1), 1-13 (2012).
  18. Krebs, M., et al. FRET-based genetically encoded sensors allow high-resolution live cell imaging of Ca2+ dynamics. Plant J. 69 (1), 181-192 (2012).
  19. Bonza, M. C., Loro, G., Behera, S., Wong, A., Kudla, J., Costa, A. Analyses of Ca2+ accumulation and dynamics in the endoplasmic reticulum of Arabidopsis root cells using a genetically encoded Cameleon sensor. Plant Physiol. 163 (3), 1230-1241 (2013).
  20. Costa, A., et al. H2O2 in plant peroxisomes: An in vivo analysis uncovers a Ca2+ dependent scavenging system. Plant J. 62 (5), 760-772 (2010).
  21. Zhu, X., Caplan, J., Mamillapalli, P., Czymmek, K., Dinesh-Kumar, S. P. Function of endoplasmic reticulum calcium ATPase in innate immunity-mediated programmed cell death. EMBO J. 29 (5), 1007-1018 (2010).
  22. Roszik, J., Lisboa, D., Szöllosi, J., Vereb, G. Evaluation of intensity-based ratiometric FRET in image cytometry--approaches and a software solution. Cytometry A. 75 (9), 761-767 (2009).
  23. Kotlikoff, M. I. Genetically encoded Ca2+ indicators: using genetics and molecular design to understand complex physiology. J. Physiol. 578 (Pt 1), 55-67 (2007).
  24. Tian, L., et al. Imaging neural activity in worms, flies and mice with improved GCaMP calcium indicators. Nat methods. 6 (12), 875-881 (2009).
  25. Akerboom, J., et al. Optimization of a GCaMP calcium indicator for neural activity imaging. J Neurosci. 32 (40), 13819-13840 (2012).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

91 Aequorin Case12

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved