Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Bioactive and mechanically reliable metal scaffolds have been fabricated through a method which consists of two processes, dynamic freeze casting for the fabrication of porous Ti, and coating and densification of the Ti scaffolds. The densification process is simple, effective and applicable to the fabrication of functionally graded scaffolds.

Abstract

Biometal systems have been widely used for biomedical applications, in particular, as load-bearing materials. However, major challenges are high stiffness and low bioactivity of metals. In this study, we have developed a new method towards fabricating a new type of bioactive and mechanically reliable porous metal scaffolds-densified porous Ti scaffolds. The method consists of two fabrication processes, 1) the fabrication of porous Ti scaffolds by dynamic freeze casting, and 2) coating and densification of the porous scaffolds. The dynamic freeze casting method to fabricate porous Ti scaffolds allowed the densification of porous scaffolds by minimizing the chemical contamination and structural defects. The densification process is distinctive for three reasons. First, the densification process is simple, because it requires a control of only one parameter (degree of densification). Second, it is effective, as it achieves mechanical enhancement and sustainable release of biomolecules from porous scaffolds. Third, it has broad applications, as it is also applicable to the fabrication of functionally graded porous scaffolds by spatially varied strain during densification.

Introduction

بينما الحيوية المعدنية وقد استخدمت على نطاق واسع كما يزرع الحاملة والأجهزة التثبيت الداخلية بسبب قوتها ممتازة الميكانيكية والمرونة، 1-3 أنها تنطوي على تحديين أساسيين: 1) عدم تطابق الميكانيكية لأن المعادن هي أشد بكثير من الأنسجة البيولوجية، مما تسبب في أضرار غير مرغوب فيها إلى الأنسجة المحيطة و2) النشاط الحيوي المنخفض الذي غالبا ما يؤدي إلى ضعف التفاعل مع الأنسجة البيولوجية، وكثيرا ما أثار ردود فعل جسم غريب (مثل التهاب أو تجلط الدم). وقد اقترحت 4-6 السقالات المعدنية المسامية لتعزيز نشوب العظام في الهياكل، وتحسين الاتصال العظام زرع حين قمعت آثار درعا الإجهاد بسبب انخفاض صلابة من 7-9 وعلاوة على ذلك، تم تطبيق مختلف التعديلات السطحية لتعزيز الانشطة البيولوجية ليزرع المعدنية. وتشمل هذه التعديلات طلاء سطح المعدن مع الجزيئات النشطة بيولوجيا (على سبيل المثال، القوات المسلحة الكونغولية النموالاختصاصات) أو الأدوية (مثل فانكومايسين، التتراسيكلين) 10-12 ومع ذلك، المشاكل مثل انخفاض الخواص الميكانيكية للسقالات معدنية مسامية، انخفض صلابة والإفراج السريع لطبقات الطلاء النشطة بيولوجيا لا تزال دون حل. 13-16

على وجه الخصوص، التيتانيوم (تي) وتي سبائك هي واحدة من أنظمة biometal الأكثر شعبية بسبب خصائصها الميكانيكية الممتازة والاستقرار الكيميائية، وتوافق مع الحياة جيدة. 13،17-19 جذبت أيضا تطبيقات على شكل رغوة منها اهتماما متزايدا لأن 3D شبكات مسامية تعزيز نشوب العظام بالإضافة إلى الخواص الميكانيكية مثل العظام. وقد بذلت 20-22 الجهود المبذولة لتحسين الخواص الميكانيكية من خلال تطوير تقنيات التصنيع الجديدة بما في ذلك تكرار من الإسفنج البوليمر، تلبد من جزيئات معدنية، النماذج الأولية السريعة (RP) الأسلوب، و مساحة طريقة حامل من أجل السيطرة على ميزات مختلفة من المسام (على سبيل المثال، المسام جزء،الشكل والحجم والتوزيع والتوصيل) وخصائص المواد (على سبيل المثال، المرحلة المعدنية والنجاسة) 23-25 ​​في الآونة الأخيرة، اكتسبت صب تجميد المياه القائمة على المعادن الطين اهتماما كبيرا لإنتاج تعزيز ميكانيكيا أشكال تي مع المسام متماشية بشكل جيد هياكل من خلال الاستفادة من اتجاه ونمو التغصنات الجليد أثناء التصلب. ومع ذلك، وتلوث الأكسجين الناجم عن الاحتكاك ومساحيق المعادن مع الماء يتطلب رعاية خاصة للحد من التقصف السقالات تي. 14،15

لذلك، وضعنا نهجا جديدا نحو افتعال السقالات تي مسامية النشطة بيولوجيا والانضباطي ميكانيكيا. 25 والسقالات لها في البداية الهياكل التي يسهل اختراقها مع المسامية أكثر من 50٪. تم المغلفة السقالات التي يسهل اختراقها ملفقة مع الجزيئات النشطة بيولوجيا ومن ثم ضغطها باستخدام الصحافة الميكانيكية خلالها المسامية النهائية، كانت تسيطر عليها الخواص الميكانيكية والسلوك تحرر الدواء من قبل تطبيق صحيفةإد سلالة. وقد أظهرت يزرع تي مسامية مكثف المسامية منخفضة مع قوة جيدة على الرغم من صلابة منخفضة مماثلة لتلك التي من العظام (3-20 جيد جدا). 2 لأن طبقة الطلاء، والنشاط الحيوي للمسامية تي مكثف وتحسنت بشكل ملحوظ. وعلاوة على ذلك، بسبب الهياكل المسام مسطحة الفريدة الناجمة عن عملية التكثيف، كان ينظر إلى الجزيئات النشطة بيولوجيا المغلفة ان يفرج عنها تدريجيا من السقالة، والحفاظ على فعاليتها لفترة طويلة.

في هذه الدراسة، قدمنا ​​أسلوبنا الذي أنشئ لافتعال مكثف السقالات تي مسامية لاستخدامها المحتمل في التطبيقات الطبية الحيوية. ويتضمن البروتوكول دينامية الصب تجميد مع عجائن المعدنية والتكثيف من السقالات التي يسهل اختراقها. أولا، لافتعال السقالات تي التي يسهل اختراقها مع ليونة جيدة تم إدخال ديناميكية طريقة التجميد الصب كما هو مبين في الشكل 1A. وقد فرقت مسحوق تي في الكمفين السائل. ثم، من خلال خفض درجة الحرارة،وقد عزز الطور السائل، مما أدى إلى فصل المرحلة بين شبكة مسحوق تي وبلورات الكمفين الصلبة. وفي وقت لاحق، ومتكلس الجسم الخضراء عزز تي الكمفين التي تم مكثف مساحيق تي تي مع الدعامات المستمرة، وتمت إزالة المرحلة الكمفين تماما للحصول على بنية مسامية. كان يعمل في طلاء وعملية التكثيف مع السقالات التي يسهل اختراقها الحصول عليها، تتفاوت درجة التكثيف والمسامية الأولية. وتصور طبقة الطلاء والسلوك صدوره وكميا باستخدام البروتين الفلوري الأخضر (GFP) المغلفة التي يسهل اختراقها تي مع وبدون التكثيف مقارنة كثيفة تي المغلفة GFP. وأخيرا، تم اقتراح متدرج وظيفيا السقالات تي التي لديها اثنين من الهياكل التي يسهل اختراقها مختلفة، وأثبتت من خلال تغيير درجة التكثيف من الأجزاء الداخلية والخارجية من السقالات التي يسهل اختراقها.

Protocol

1. تصنيع السقالات المعدنية المسامية

  1. إعداد عجائن تي الكمفين عن طريق خلط مسحوق تي المتاحة تجاريا، الكمفين، وKD-4 بعد الموازنة بين كميات مناسبة من المواد كما هو موضح في الجدول رقم 1 لالسقالات تي التي يسهل اختراقها مع أربعة المساميات الأولية (40، 50، 60، و 70). صب عجائن إلى 500 مل البولي إثيلين (PE) زجاجات وتدوير الزجاجات على 55 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة في فرن الكرة مطحنة في 30 دورة في الدقيقة.
  2. صب عجائن من زجاجات PE إلى الألومنيوم أسطواني (آل) قوالب التي يبلغ قطرها 60 ملم وارتفاعه 60 ملم. ختم كل قالب آل مع ما يوازيها من آل زلة تغطية وتدوير القوالب في فرن الكرة مطحنة بسرعة 30 دورة في الدقيقة في 55 درجة مئوية لمدة 10 دقيقة.
    1. وفي وقت لاحق، وانخفاض درجة حرارة الفرن الكرة مطحنة إلى 44 درجة مئوية، وبشكل مستمر تدوير قوالب بسرعة 30 دورة في الدقيقة في درجة حرارة ثابتة من 44 درجة مئوية لمدة 12 ساعة.
  3. إخراج القالب من ball-مطحنة الفرن بعد بالإضافة إلى الدورية للقوالب في RT لمدة 1 ساعة لعملية التبريد. إزالة التيتانيوم / الكمفين الجسم الأخضر طدت من العفن آل باستخدام المكبس آل.
  4. ضع التيتانيوم / الكمفين الجسم الأخضر طدت في كيس من المطاط من جهة، وختم تماما حقيبة المطاط من خلال ربط مصب حقيبة مع سلسلة. وضع كيس من المطاط في خزان مياه باردة المتوازنة التضاغط قولبة على (CIP) آلة وتطبيق الضغط المتوازنة التضاغط من 200 ميجا باسكال لمدة 10 دقيقة. إزالة الجسم الأخضر مضغوط من الكيس المطاط.
  5. نقل الجسم الأخضر تي الكمفين الدخول إلى بوتقة الألومينا من جهة، ووضع البوتقة في الجهاز مجفف التجميد. تجميد تجفيف الجسم الأخضر لتسامى المرحلة الكمفين في الجسم الأخضر في - 40 درجة مئوية لمدة 24 ساعة.
  6. وفي وقت لاحق، أغلق بوتقة مع زلة تغطية الألومينا ووضع بوتقة مغلقة في فرن فراغ (أقل من 10 -6 عربة) في RT. ثم، وزيادة درجة حرارة الفرن إلى 1300 درجة مئوية في ص التدفئةأكلت من 5 ° C / دقيقة مع الاستمرار على درجة حرارة 1300 درجة مئوية لمدة 2 ساعة.
  7. بعد المعالجة الحرارية، والحفاظ على مسامية تي متكلس في الفرن لمدة 6-7 ساعة حتى يتم تبريد الفرن تماما RT.
    ملاحظة: خلال 6 ساعات من عملية التبريد، فإن متوسط ​​معدل التبريد من الفرن فوق 400 ° C هو ~ 15 ° C / دقيقة ومتوسط ​​معدل التبريد من الفرن أقل من 400 ° C هو 2 ~ ° C / دقيقة.
  8. إذا لزم الأمر، وقطع كتلة من متكلس مسامية تي في عينات على شكل قرص بقطر 16 مم من خلال تشكيل التفريغ الكهربائي (EDM). 27
    ملاحظة: اعتمادا على حجم قوالب القاعدة، حجم المسامية تي متكلس يحتاج إلى تعديل من خلال عملية تشكيل (الشكل 2A).
  9. وضع دورق زجاجي مع العينات تي مسامية في الأوتوكلاف وتعقيم العينات عند درجة حرارة 121 مئوية لمدة 15 دقيقة. إزالة عينات من الأوتوكلاف. غسل العينات تي المسامية بالماء المقطر مرتين ثم مع 70٪ من الإيثانول مرتين.وأخيرا، وترك تي مسامية في طبق بتري والهواء الجاف العينات في RT على مقاعد البدلاء النظيفة تحت ضوء الأشعة فوق البنفسجية.

2. تراجع طلاء من السقالات مع وكلاء الحيويه

  1. تمييع التجاري الأخضر الإسفار البروتين (GFP) من 1 ملغ / مل إلى 100 ميكروغرام / مل في مقعد نظيفة عن طريق خلط 1 مل من GFP مع 9 مل من الفوسفات مخزنة المالحة (DPBS، ودرجة الحموضة 7.4) حل Dulbecco لفي 10 مل تعقيمها البوليسترين (PS) أنبوب كما هو مبين في الجدول 1.
  2. تزج تي الكثيفة أو التي يسهل اختراقها تعقيمها في 10 مل من محلول GFP المخفف (100 ميكروغرام / مل) عن طريق وضع العينات تي في أنبوب PS مع الحل GFP في RT ووضع على مقعد نظيفة.
  3. وضع أنبوب PS في مجفف فراغ وإجلاء المجفف لمدة 10 دقيقة لضمان حل GFP تخترق مسام تي مسامية على نحو أكثر فعالية.
  4. إزالة التيتانيوم التي يسهل اختراقها من الأنبوب PS باستخدام الملقط. وضع المغلفة GFP مسامية تي في 10 سم القطر بيطبق الثلاثية والهواء الجاف O / N في RT على مقاعد البدلاء النظيفة.
  5. شطف تي يسهل اختراقها مرتين مع 10 مل من Dulbecco والفوسفات مخزنة المالحة (DPBS) في كوب من الزجاج، ونقل تي مسامية إلى 10 سم القطر طبق بتري باستخدام الملقط والهواء الجاف في RT على مقاعد البدلاء النظيفة.

3. التكثيف من المسامية السقالات

  1. وضع مسامية عينات المغلفة GFP تي مع ارتفاعات مختلفة في يموت الصلب أسطواني، وإدراج مجموعة من اللكمات في الثقوب العلوية والسفلية من يموت الصلب (الشكل 3A).
  2. ضغط تي مسامية داخل الجمعية الصلب يموت في RT في اتجاه z من العينة (الشكل 3A) باستخدام آلة الصحافة في معدلات الإجهاد وسيطة من 0.05 ~ 0.1 ثانية -1 ضد سلالات تطبيقها مسبقا هو مبين في الجدول 2. امسك الضغط لمدة 1 دقيقة قبل التفريغ.
  3. إزالة عينات تي مكثف من يموت الصلب. غسل العينات مكثف مرتين مع 10 مل من DPBSفي كوب وO-الهواء الجاف / N في RT على مقاعد البدلاء النظيفة.

4. الإصدار اختبار السقالات المغلفة GFP

  1. تزج ثلاثة أنواع من العينات (المغلفة GFP كثيفة تي (بعد خطوات 2)، المغلفة GFP مسامية تي (بعد الخطوتين 1 و 2) والمغلفة GFP مكثف مسامية تي (بعد الخطوات 1-3)) في 5 مل DPBS (الرقم الهيدروجيني 7.4) الحل الوارد في 10 مل تعقيم أنبوب PS عند 37 درجة مئوية على مقاعد البدلاء النظيفة.
  2. شفط خارج كل حل DPBS من كل أنبوب PS مع عينة المغلفة GFP وتجديد بمحلول 5 مل جديدة DPBS (7.4 درجة الحموضة) باستخدام ماصة وفقا لمرات محددة سلفا من 1، 2، 3، 5، 8، 12، 15 و 22 و 29 يوما بعد الغمر.
  3. أخذ الصور مضان من العينات المغلفة GFP قبل الغمر (يوم 0) وبعد 22 يوما الغمر باستخدام المسح الضوئي ليزر متحد البؤر الطيفي (CLSM).
  4. قياس كثافة إشارة مضان من GFP صدر في 1 مل من محلول من إجمالي 5 مل من محلول DPBS استخلاصها من كل أنبوب PS في القسم 4.2 استخدامالتحليل الطيفي للأشعة فوق البنفسجية عند طول موجي 215 نانومتر ل. تحويل قيمة كثافة في تركيز المحلول GFP باستخدام المنحنى القياسي.
    ملاحظة: قبل قياس، رسم المنحنى القياسي من حل GFP عن طريق قياس كثافة مضان إشارة من الحل GFP في نطاق تركيز 0 نانوغرام / مل - 10 ميكروغرام / مل.

5. تصنيع متدرج المسامية تي السقالات

  1. إنتاج كتلة من مسامية تي متكلس بتكرار الخطوة 1.1 إلى الخطوة 1.7.
  2. آلة الملبدة التي يسهل اختراقها كتلة تي وفقا لتصاميم بنية محددة مسبقا (على سبيل المثال، 5A الشكل و5D) من خلال التنظيم الإداري.
  3. وضع العينات تي تشكيله مع ارتفاع في توزيع يموت الصلب حيث القطر من مسامية تي هو ~ 0.1 ملم أصغر من قطر يموت وإدراج مجموعة من اللكمات في الثقوب العلوية والسفلية من يموت الصلب.
  4. تنفيذ الخطوات 3.2 و 3.3.

6. المسامية عنيasurement من تي السقالات

  1. قياس الكتلة (م ق) من السقالات تي.
  2. حساب حجم واضح (V ق) عن طريق قياس طول وعرض وارتفاع السقالات تي.
  3. حساب المسامية باستخدام المعادلة التالية:
    figure-protocol-8077
    حيث P هي نسبة المسامية الكلية، ρ تي هي الكثافة النظرية من التيتانيوم وم S / V S هو الكثافة المقاسة من العينة.
    ملاحظة: المسامية لعينات تي يمكن استرجاعها مباشرة من الصور microCT بعد إجراء التصوير microCT خارج باستخدام التصوير المقطعي المحوسب الماسح الضوئي الصغير.

النتائج

ويتضح من عملية التصنيع المستخدمة لإنتاج السقالات تي مسامية في الشكل 1A. يتم الاحتفاظ فرقت مسحوق متجانس تي في الكمفين بالتناوب المستمر للحاويات في 44 درجة مئوية لمدة 12 ساعة و، في حين عزز الكمفين السائل تماما، أي رواسب من مسحوق تي ثقيل نسبيا يمكن التقل?...

Discussion

في حين نظم biometal استخدمت على نطاق واسع لالتطبيقات الطبية الحيوية، وخاصة، والمواد الحاملة، وصلابة عالية والنشاط الحيوي منخفض من المعادن تم اعتبار تحديات كبيرة. في هذه الدراسة، أنشأنا طريقة تصنيع نظام المعدن الجديد، وهو مكثف سقالة معدنية مسامية الذي له خصائص الميكاني...

Disclosures

The authors declare that they have no competing financial interests.

Acknowledgements

This research was supported by the Technology Innovation Program (Contract grant No. 0037915, WPM Biomedical Materials-Implant Materials) and Industrial Strategic Technology Development Program (Contract grant No. 10045329, Development of customized implant with porous structure for bone replacement), funded by the Ministry of Trade, industry & Energy (MI, Korea), and BK21 PLUS SNU Materials Division for Educating Creative Global Leaders (Contract grant No. 21A20131912052).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Titanium powderAlfa Aesar#42624-325 mesh, 99.5% (metals basis)
CampheneSigmaAldrich#45605595%, C10H16
KD-4Croda­Hypermer, polymeric dispersant
Phosphate Buffer Solution (PBS)WelgeneML 008-01­
Green Fluorescent Protein (GFP)Genoss Co.->98% purity, 1mg/ml
Ball mill ovenSAMHENUG ENERGYSH-BDO150­
Freeze dryerIlshin Lab.PVTFD50A­
Cold isostatic pressing (CIP) machineSONGWON SYSTEMSCIP 42260­
Vaccum furnaceJEONG MIN INDUSTRIALJM-HP20­
electical chaege machineFANUC robocut0iBExternal use
Press machineCG&SAJP-200­
Confocal laser scanning spectroscopy (CLSM)OlympusFluoView FV1000External use

References

  1. Long, M., Rack, H. Titanium alloys in total joint replacement-a materials science perspective. Biomaterials. 19 (18), 1621-1639 (1998).
  2. Niinomi, M. Recent metallic materials for biomedical applications. Metall. Mater. Trans. A. 33 (3), 477-486 (2002).
  3. Frosch, K. H., Stürmer, K. M. Metallic biomaterials in skeletal repair. Eur. J. Trauma. 32 (2), 149-159 (2006).
  4. Huiskes, R., Weinans, H., Van Rietbergen, B. The relationship between stress shielding and bone resorption around total hip stems and the effects of flexible materials. Clin. Orthop. Relat. Res. 274, 124-134 (1992).
  5. Kanayama, M., et al. In vitro biomechanical investigation of the stability and stress-shielding effect of lumbar interbody fusion devices. J. Neurosurg. Spine. 93 (2), 259-265 (2000).
  6. Jung, H. -. D., Kim, H. -. E., Koh, Y. -. H. Production and evaluation of porous titanium scaffolds with 3-dimensional periodic macrochannels coated with microporous TiO2. 135, 897-902 (2012).
  7. Jones, A. C., et al. Assessment of bone ingrowth into porous biomaterials using MICRO-CT. Biomaterials. 28 (15), 2491-2504 (2007).
  8. Li, J. P., et al. Bone ingrowth in porous titanium implants produced by 3D fiber deposition. Biomaterials. 28 (18), 2810-2820 (2007).
  9. Ahn, M. -. K., Jo, I. -. H., Koh, Y. -. H., Kim, H. -. E. Production of highly porous titanium (Ti) scaffolds by vacuum-assisted foaming of titanium hydride (TiH2) suspension. Mater. Lett. 120 (1), 228-231 (2014).
  10. Baas, J., et al. The effect of pretreating morselized allograft bone with rhBMP-2 and/or pamidronate on the fixation of porous Ti and HA-coated implants. Biomaterials. 29 (19), 2915-2922 (2008).
  11. Peng, L., Bian, W. -. G., Liang, F. -. H., Xu, H. -. Z. Implanting hydroxyapatite-coated porous titanium with bone morphogenetic protein-2 and hyaluronic acid into distal femoral metaphysis of rabbits. Chin. J. Traumatol. (English Edition). 11 (3), 179-185 (2008).
  12. Reiner, T., Kababya, S., Gotman, I. Protein incorporation within Ti scaffold for bone ingrowth using Sol-gel SiO2 as a slow release carrier. J. Mater. Sci. - Mater. Med. 19, 583-589 (2008).
  13. Lee, J. H., Kim, H. E., Shin, K. H., Koh, Y. H. Improving the strength and biocompatibility of porous titanium scaffolds by creating elongated pores coated with a bioactive, nanoporous TiO2 layer. Mater. Lett. 64, 2526-2529 (2010).
  14. Li, J. C., Dunand, D. C. Mechanical properties of directionally freeze-cast titanium foams. Acta Mater. 59 (1), 146-158 (2011).
  15. Chino, Y., Dunand, D. C. Directionally freeze-cast titanium foam with aligned, elongated pores. Acta Mater. 56 (1), 105-113 (2008).
  16. Kim, S. W., et al. Fabrication of porous titanium scaffold with controlled porous structure and net-shape using magnesium as spacer. Mater. Sci. Eng. C. 33 (5), 2808-2815 (2013).
  17. Brentel, A. S., et al. Histomorphometric analysis of pure titanium implants with porous surface versus rough surface. J. Appl. Oral Sci. 14 (3), 213-218 (2006).
  18. Buser, D., et al. Influence of surface characteristics on bone integration of titanium implants. A histomorphometric study in miniature pigs. J. Biomed. Mater. Res. 25 (7), 889-902 (1991).
  19. Cochran, D., Schenk, R., Lussi, A., Higginbottom, F., Buser, D. Bone response to unloaded and loaded titanium implants with a sandblasted and acid-etched surface: a histometric study in the canine mandible. J. Biomed. Mater. Res. 40 (1), 1-11 (1998).
  20. Young, D. R., Robb, R. A., Rock, M. G., Chao, E. Y. Analysis of periprosthetic tissue formation around a porous titanium endoprosthesis using CT-based spatial reconstruction. J. Comput. Assist. Tomo. 18 (3), 461-468 (1994).
  21. Spoerke, E. D., et al. A bioactive titanium foam scaffold for bone repair. Acta Biomater. 1 (5), 523-533 (2005).
  22. Jung, H. D., et al. Highly aligned porous Ti scaffold coated with bone morphogenetic protein-loaded silica/chitosan hybrid for enhanced bone regeneration. J. Biomed. Mater. Res. Part B Appl. Biomater. 102 (5), 913-921 (2013).
  23. Ryan, G. E., Pandit, A. S., Apatsidis, D. P. Porous titanium scaffolds fabricated using a rapid prototyping and powder metallurgy technique. Biomaterials. 29 (27), 3625-3635 (2008).
  24. Vasconcellos, L. M. R., et al. Porous titanium scaffolds produced by powder metallurgy for biomedical applications. Mater. Res. 11 (3), 275-280 (2008).
  25. Jung, H. D., Yook, S. W., Kim, H. E., Koh, Y. H. Fabrication of titanium scaffolds with porosity and pore size gradients by sequential freeze casting. Mater. Lett. 63 (17), 1545-1547 (2009).
  26. Jung, H. -. D., Jang, T. -. S., Wang, L., Kim, H. -. E., Koh, Y. -. H., Song, J. Novel strategy for mechanically tunable and bioactive metal implants. Biomaterials. 37, 49-61 (2015).
  27. Tarng, Y. S., Ma, S. C., Chung, L. K. Determination of optimal cutting parameters in wire electrical discharge machining. Int. J. Mach. Tools Manufact. 35 (12), 1693-1701 (1995).
  28. Jung, H. -. D., et al. Dynamic Freeze Casting for the Production of Porous Titanium (Ti) Scaffolds. Mater. Sci. Eng. C. 33 (1), 59-63 (2013).
  29. Lee, J. -. H., Kim, H. -. E., Shin, K. -. H., Koh, Y. -. H. Improving the strength and biocompatibility of porous titanium scaffolds by creating elongated pores coated with a bioactive, nanoporous TiO2. Mater. Lett. 64 (22), 2526-2529 (2010).
  30. Jung, H. -. D., Yook, S. -. W., Kim, H. -. E., Koh, Y. -. H. Fabrication of titanium scaffolds with porosity and pore size gradients by sequential freeze casting. Mater. Lett. 63 (17), 1545-1547 (2009).
  31. Yook, S. -. W., et al. Reverse freeze casting: A new method for fabricating highly porous titanium scaffolds with aligned large pores. Acta Biomater. 8 (6), 2401-2410 (2012).
  32. Yook, S. W., Yoon, B. H., Kim, H. E., Koh, Y. H., Kim, Y. S. Porous titanium (Ti) scaffolds by freezing TiH2/camphene slurries. Mater. Lett. 62 (30), 4506-4508 (2008).
  33. Yook, S. W., Kim, H. E., Koh, Y. H. Fabrication of porous titanium scaffolds with high compressive strength using camphene-based freeze casting. Mater. Lett. 63 (17), 1502-1504 (2009).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

106

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved