JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Special care using "clean techniques" is required to properly collect and process water samples for trace metal studies in aquatic environments. A protocol for sampling, processing, and analytical procedures with the aim of obtaining reliable environmental monitoring data and results with high sensitivity for detailed trace metal studies is presented.

Abstract

Most of the trace metal concentrations in ambient waters obtained a few decades ago have been considered unreliable owing to the lack of contamination control. Developments of some techniques aiming to reduce trace metal contamination in the last couple of decades have resulted in concentrations reported now being orders of magnitude lower than those in the past. These low concentrations often necessitate preconcentration of water samples prior to instrumental analysis of samples. Since contamination can appear in all phases of trace metal analyses, including sample collection (and during preparation of sampling containers), storage and handling, pretreatments, and instrumental analysis, specific care needs to be taken in order to reduce contamination levels at all steps. The effort to develop and utilize "clean techniques" in trace metal studies allows scientists to investigate trace metal distributions and chemical and biological behavior in greater details. This advancement also provides the required accuracy and precision of trace metal data allowing for environmental conditions to be related to trace metal concentrations in aquatic environments.

This protocol that is presented here details needed materials for sample preparation, sample collection, sample pretreatment including preconcentration, and instrumental analysis. By reducing contamination throughout all phases mentioned above for trace metal analysis, much lower detection limits and thus accuracy can be achieved. The effectiveness of "clean techniques" is further demonstrated using low field blanks and good recoveries for standard reference material. The data quality that can be obtained thus enables the assessment of trace metal distributions and their relationships to environmental parameters.

Introduction

وقد اعترف عموما أن بعض النتائج المعادن النزرة التي تم الحصول عليها للمياه الطبيعية قد تكون غير دقيقة بسبب القطع الأثرية الناتجة عن التقنيات غير كافية تطبيقها خلال جمع العينات والعلاجات و1،2 تقرير. تركيزات الحقيقية (في نانومتر الفرعي لمجموعة نانومتر في المياه السطحية 3) من المعادن النزرة المنحلة هي الآن ما يصل الى اثنين أوامر من حجم أقل من القيم التي تم نشرها مسبقا. تم العثور على نفس الوضع في الكيمياء البحرية حيث انخفضت قبلت تركيزات المعادن النزرة الذائبة في مياه المحيطات من حيث الحجم على مدى السنوات ال 40 الماضية أو نحو ذلك كما استحدثت تحسين أساليب أخذ العينات والتحليل. وقد بذلت جهود لتحسين نوعية البيانات مع تطورات "التقنيات النظيفة" التي تهدف إلى خفض أو القضاء على تلوث المعادن النزرة في جميع مراحل تحليل المعادن النزرة 4-8. لتحديد تركيزات المعادن النزرة في المحيط المستويات، في كثير من الأحيان هو مطلوب preconcentration. تقنيات التبادل الأيوني 8-12 طبقت عادة لpreconcentration كفاءة.

تلوث يمكن أن تنشأ من جدران الحاويات وتنظيف الحاويات، وأخذ العينات، عينة المناولة والتخزين، وحفظ العينات والتحليل 7،13. كل الدراسات التي تستخدم أساليب نظيفة أجريت في الآونة الأخيرة تشير إلى أن تركيزات المعادن النزرة في المياه الطبيعية وعادة ما تكون أقل بكثير من حدود الكشف عن الأساليب الروتينية 7. منذ الاعتراف من بيانات التتبع معدنية مشبوهة في 1990s في وقت مبكر، وقد أدرجت الطرق النظيفة في الولايات المتحدة وكالة حماية البيئة (وكالة حماية البيئة) مبادئ توجيهية لتحديد المعادن النزرة 14 واعتمد المسح الجيولوجي الامريكية أساليب نظيفة لرصد نوعية المياه على 15 مشروعا. تحتاج إلى استخدامها في جميع المشاريع من أجل إنشاء قاعدة بيانات واضحة ودقيقة وسائل نظيفة للدراسات المعدنية أثر.

الطبقة = "jove_content"> من حيث المبدأ، وعينات من المياه المستخدمة لتحديد المعادن النزرة وينبغي جمع مع التروس الملائمة لأخذ العينات من مادة معينة والتكوين، وتخزينها ومعالجتها بشكل صحيح باستخدام أواني والأجهزة المناسبة، قبل الشروع في التحليل الآلي. منذ المواد العالقة (SPM) يمكن أن تخضع لتغييرات خلال الفترة تخزين العينات ويغير تركيب المياه، والفصل السريع لSPM من عينات المياه هو ممارسة شائعة للدراسات المعدنية النادرة في البيئات المائية. لتحديد تراكيز المعادن النزرة الذائبة في المياه الطبيعية، والترشيح ضروري وفي خط تقنيات الترشيح هي مناسبة وفعالة.

توزيع وسلوك المعادن النزرة في البيئات المائية مثل المياه السطحية والجوفية يمكن أن تتأثر الطبيعية (على سبيل المثال، والتجوية) وبشرية المنشأ (على سبيل المثال، المياه المستعملة) العوامل، فضلا عن الظروف البيئية الأخرى، مثل إعادةالجيولوجيا اإلقليمية والصرف، واستخدام الأراضي والغطاء النباتي، والمناخ 16-19. وهذا يمكن أن يؤدي بعد ذلك إلى اختلافات في المعلمات الفيزيائية مثل تركيزات الجسيمات العالقة (SPM)، الكربون العضوي المذاب (DOC)، بروابط البشرية (على سبيل المثال، ثنائي أمين الإيثيلين رباعي حمض الخل، EDTA)، والملح، وإمكانات الأكسدة ودرجة الحموضة 17-20. لذلك، دراسات المعادن النزرة دقيقة وذات الصلة تتطلب جمع المناسب من عينات لتحليل المعادن النزرة وكذلك لتحديد العوامل والمعايير ذات الصلة.

Protocol

1. إعداد عينات

  1. العينات
    1. تجميع العينات من
      1. توصيل طويلة المفلورة الإثيلين والبروبيلين (محطة إثراء الوقود) أنابيب 4 م (ID 0.635 سم، OD 0.95 سم أو ما شابه ذلك) إلى 1.5 متر مقاومة كيميائيا أنبوب السيليكون ضخ (OD 0.635 سم).
      2. إدراج البولي بروبلين Y-في أنبوب موصل الضخ، وتوصيل أنبوب ضخ 50 سم إلى منفذ واحد، و 0.45 ميكرون تصفية كبسولة (عن طريق أنبوب ضخ 20 سم) إلى أخرى.
      3. تجميع الأنابيب في غرفة نظيفة (مقعد) بعد أن يتم تنظيفها (أنظر أدناه)، وتخزين تجمع في طبقتين من أكياس البولي ايثيلين.
    2. تنظيف العينات
      1. ملء (عن طريق ربط أنبوب ضخ 1.5 متر على مضخة تحوي) مجموعة أنابيب مع حل مختبر المنظفات وينقع لمدة 24 ساعة. تدفق أنابيب مع مجموعة دي المتأينة المياه، ثم ملء مع 10٪ (ت / ت) حمض الهيدروكلوريك (الصف الكاشف) وينقع لمدة 48 ساعة.
      2. تماما تدفق أنابيب مع مجموعة غير المتأينة ثالعاطر عدة مرات، وتخزين تجمع في أكياس بلاستيكية. تنظيف Y-الموصلات وأنابيب الضخ القصيرة التي نقع عليها في HNO 50٪ (ت / ت) 3 (الصف الكاشف) حل لمدة 24 ساعة.
    3. مرشحات كبسولة
      1. تنظيف مرشحات كبسولة عن طريق تنظيف لهم أولا مع دي المتأينة المياه، ثم 10٪ (ت / ت) حل حمض الهيدروكلوريك لخطوة تمرغ لمدة 48 ساعة.
      2. بعد تمرغ حامض، وتدفق المرشحات مع دي المتأينة المياه وإضافة 1 مل من 21٪ (الوزن) NH 4 OH حل (جنوب المغلي) في كل مرشح لتحييد الحامض.
      3. ختم مرشح فردي مع حلقة من 30 سم تنظيف ضخ أنبوب يربط بين مدخل ومخرج، وتخزينها في أكياس البولي إثيلين انغلق.
  2. حاويات عينة
    1. استخدام البولي إثيلين (PE، 1000-مل)، ومحطة إثراء الوقود (500 مل و 1000 مل) زجاجات للحاويات لتحديد المعادن النزرة.
      1. تنظيف الزجاجات التي نقع عليها أولا في صناعة المنظفات (1٪)، ثم في 50٪ (ت / ت) HNO 3(الصف الكاشف) و 10٪ (ت ت /) حلول حمض الهيدروكلوريك (الصف الكاشف) لمدة 24 و 48 و 24 ساعة، على التوالي، وشطف زجاجات المياه المتأينة بين اثنين من الخطوات تمرغ.
      2. بعد تمرغ حمض الهيدروكلوريك النهائي، وشطف الزجاجات جيدا بالماء دي المتأينة (DIW) وتجفيف زجاجات (مع غطاء مغلقة) في غرفة نظيفة أو فئة 100 مقاعد البدلاء النظيفة.
      3. ختم زجاجات تنظيف في أكياس انغلق البولي ايثيلين ومزدوجة كيس لهم في أكياس البولي ايثيلين للنقل.
    2. وقوارير زجاجية نظيفة ل(DOC) تقرير الكربون العضوي المذاب
      1. نقع قوارير الزجاج البورسليكات العنبر (40 مل)، لتحليل الكربون العضوي المذاب (DOC)، في 10٪ حمض الهيدروكلوريك لمدة 48 ساعة. شطف زجاج زجاجات تنظيفها بالماء دي المتأينة، وحرق لهم في 480 درجة مئوية لمدة 2 ساعة قبل الاستخدام. ختم الزجاجات بشكل فردي في أكياس البولي إثيلين انغلق للنقل.

2. أخذ العينات

  1. جمع عينة المياه
    1. UPOوصول ن في موقع أخذ العينات، وعلامة رقم تعريف العينة على حقيبة الخارجية، والحفاظ على زجاجات في حقائبهم الأصلية.
    2. في ضفة النهر أو على متن قارب، لدينا شخص واحد فتح حقيبة مع العينات ونعلق 4 م FEP أنابيب إلى القطب البولي بروبلين 3-م (تنظيف). تمديد القطب بقدر من البنك ممكن والحفاظ على مدخل أنابيب محطة إثراء الوقود حوالي 30 سم تحت سطح الماء الجاري النهر قبل تشغيل المضخة.
    3. هل لديك شخص آخر إرفاق أنبوب الضخ في الرأس مضخة مضخة تحوي (مضخة أخذ العينات مع بطاريات داخلية). بدء تشغيل المضخة واستنزاف المياه (الجانب المصب) 3 مرات على الأقل من إجمالي حجم العينات. وضعت على قفازات خالية من مسحوق وفتح كيس من الزجاجات وقبعات للبدء في ملء زجاجات عينة.
      1. بدلا من ذلك، إذا شخص آخر متاح، ويكون الشخص الثالث هو المسؤول عن فتح أكياس الداخلية والقبعات عينة، وعقد أنبوب أخذ العينات التي تستنزف العينة إلى بottle.
    4. جمع عينة غير المرشحة في زجاجة بلاستيكية 125 مل لقياس الموصلية، درجة الحرارة ودرجة الحموضة في هذا المجال.
    5. جمع عينات غير المرشحة (500 مل أو 1000 مل لجمع العينات الجسيمات) أولا (من خلال منفذ بدون فلتر) ثم قم بإغلاق منفذ مع المشبك البلاستيكي لإجبار المياه من خلال الذهاب الى مرشح كبسولة لجمع عينة المياه التي تمت تصفيتها (1 -L لتحديد المعادن النزرة المنحلة).
    6. جمع العينات التي تمت تصفيتها (من خلال منفذ مع فلتر) في 40 مل الزجاجات العنبر الزجاج لقياسات DOC وEDTA.
    7. جمع عينات من المياه بمعدل تدفق 500 مل تقريبي / دقيقة إلى 1000 مل / دقيقة. استبدال مرشحات كبسولة عندما يبدأ الضغط من اجل بناء (وفقا لمواصفات المرشحات "لل). لكل نوع من العينة، وجمع عينات إضافية، وكذلك الفراغات المجال، في مواقع مختارة لتكون بمثابة قسامات مراقبة الجودة.
    8. وضع قوارير الزجاج 40 مل على الجليد الجاف وأنا المخزنةن على الجليد الصدر، وزجاجات البولي ايثيلين في صدورهم الجليد.
  2. مجموعة من الجسيمات العالقة (SPM)
    1. جمع SPM على 0.4 ميكرون البولي (PC) المرشحات الغشائية (حمض غسلها وقبل وزنه) عن طريق الترشيح فراغ، وذلك باستخدام قمع الترشيح البلاستيك وعاء.
    2. تجميد المرشحات الغشائية الجافة في معمل لانتاج تركيزات الجسيمات العالقة وتقديم عينات الجسيمات لتحديد المعادن الجسيمات أثر.

3. عينة ما قبل المعالجة (المنحلة المعادن النزرة)

  1. لتحديد المعادن النزرة المنحل، إضافة 2 مل تركيز المغلي الفرعية HNO 3 (لكل 1-L العينة) في زجاجات عينة. نقل المنحل عينات المعادن النزرة (المحمضة) في زجاجات محطة إثراء الوقود. بالتناوب، والعينات ويمكن جمع مباشرة في زجاجات محطة إثراء الوقود. الأشعة فوق البنفسجية أشرق العينات في زجاجات محطة إثراء الوقود لمدة 24 ساعة (8 15 واط مصابيح الأشعة فوق البنفسجية).

4. Preconcentration والعلاج لتحليل المعادن النزرة

    الراتنج Preconcentration
    1. تزن 2 غرام من راتنج تبادل الأيونات الموجبة إلى (10-30 مل القدرات) كوب صغير من البلاستيك وإضافة كمية صغيرة من 2 N HNO 3 الحل في الكأس. صب الراتنج الى 10 مل عمود القدرة اللوني. تنظيف الراتنج بواسطة غسل العمود مع 5 مل 2 N HNO 3 (الفرعية المغلي) مرتين، وشطف مع المياه عالية النقاء (HPW) 3 مرات.
    2. إضافة 10 مل من 1 M NH 4 OH (شبه المغلي) في عمود لتحويل الراتنج لNH 4 + -form.
  1. عازلة حل (1 M خلات الأمونيوم)
    1. إضافة 57 مل من حمض الخليك الجليدي (شبه المغلي) في حوالي 800 مل من HPW. إضافة ~ 60 مل من هيدروكسيد الأمونيوم (21٪ ودون المغلي) وتخلط مع حمض الخليك. ضبط درجة الحموضة النهائية إلى 5.5 والحجم النهائي إلى 1000 مل.
  2. الإجراء Preconcentration (المنحلة المعادن النزرة)
    1. ضبط درجة الحموضة من العينات المحمضة،-المشع للأشعة فوق البنفسجية إلى 5.5 ± 0.3 بإضافة 30 مل من 1 M ACET الأمونيومأكل حل العازلة وبعض (~ 2.8 مل) NH 4 OH (شبه المغلي) في العينات.
    2. ضع زجاجة عينة ~ 30 سم فوق العمود معبأة مع راتنج التبادل الموجبة (القسم 4.1) وربط زجاجة عينة والعمود preconcentration من قبل ~ 60 سم أنبوب محطة إثراء الوقود وغطاء اللوني وموصل (أنثى لور).
    3. السيطرة على معدل التدفق في 3-5 مل / دقيقة باستخدام 2-الطريقة محبس، متصلة فوق العمود. السماح للعينات لتمرير من خلال الأعمدة preconcentration. بعد مرور العينات العمود، وقطع الأنابيب وقبعات من الأعمدة.
    4. علاج الأعمدة مع 2 HPW × 5 مل و 4 × 5-مل من 1 M خلات الأمونيوم (5.5 درجة الحموضة)، و2 × 5 مل من HPW لفصل الكاتيونات الرئيسية من المعادن النزرة الأخرى.
    5. ضع زجاجة PE حمض غسلها 30 مل أسفل العمود وغسل العمود مع 7 × 1 مل 2 N HNO 3 (شبه المغلي) في زجاجة PE.
    6. تحديد حجم 2 N HNO 3 النفايات السائلة (~ 8.0 مل) من خلال الحصول على وزنالثانية الثقل النوعي من النفايات السائلة 2 N HNO 3.
  3. هضم الجزيئات العالقة
    1. تجميد الفلاتر PC الجافة مع عينات SPM ووزن لهم بعد التجفيف. مكان عينات SPM، مع المرشحات، في الألكانات perfluoroalkoxy وزنه قبل (PFA) السفن (سعة 60 مل)، وإضافة 3 مل من المركز HNO 3 في الأوعية.
    2. تشديد السفن إلى عزم دوران مستمر من 2.5 كجم متر، وهضمها في الفرن التقليدي على 130 درجة مئوية لمدة 12 ساعة. بعد التبريد، وفتح السفن وإضافة 2 مل من HF في الأوعية.
    3. تشديد السفن إلى عزم دوران مستمر من 2.5 كجم متر، وهضمها في الفرن التقليدي على 130 درجة مئوية لمدة 12 ساعة. بعد التبريد، وفتح السفن وإضافة 16 مل من 4.5٪ محلول حامض البوريك في الأوعية.
    4. تشديد السفن إلى عزم دوران مستمر من 2.5 كجم متر، وهضم في الفرن التقليدي على 130 درجة مئوية لمدة 12 ساعة. تزن كل سفينة وتحديد الثقل النوعي من كل حل هضملتسفر عن حجم الملخص النهائي.
    5. حساب عامل التخفيف لكل الهضم من الحجم النهائي ووزن SPM على فلتر (نهائي هضم حجم مقسوما على وزن العينة على فلتر).

تحليل 5. عينة

  1. المعادن النزرة
    1. تحديد المعادن النزرة (الكادميوم، شركة، النحاس، الحديد، المنغنيز والنيكل، والرصاص، والزنك) تركيزات في مرحلة ما قبل تتركز حل عينة والحل من الجسيمات الذري بواسطة اللهب الاستيعاب، والجرافيت الفرن الذري امتصاص، و / أو بالحث بالإضافة البلازما مطياف الكتلة.
    2. تحديد تراكيز الأيونات الرئيسية وبعض المعادن النزرة، في عينات فرعية مرسومة قبل preconcentration والنبذ ​​من الجزيئات العالقة، عن طريق مطياف الانبعاث الذري البلازما إضافة بالحث.
  2. المعلمات الثانوية
    1. تحديد درجة حرارة العينة، ودرجة الحموضة والملوحة والموصلية في الميدان، باستخدام الأجهزة المحمولة.
    2. تحديد المنحل أوالكربون غانيتش (DOC) تركيزات من قبل محلل الكربون إجمالي العضوية، على أساس أكسدة الرطب مع الكشف عن ثاني أكسيد الكربون عن طريق مطياف الأشعة تحت الحمراء 21. تحديد التركيز الكلي EDTA من قبل اللوني السائل عالي الأداء (مع كاشف SPD-M10AV Diodearray) فقا للإجراءات المحددة 22،23.

النتائج

مع تطوير واستخدام "تقنيات النظيفة"، ومن المسلم به الآن جيدا أنه من أجل الحصول على تركيزات المعادن النزرة دقيقة في المياه المحيطة، preconcentration من المعادن النزرة في عينات المياه هو ممارسة شائعة. في حين أن معظم معايير جودة المياه للمعادن النادرة في ?...

Discussion

الحصول على بيانات موثوقة المعادن النزرة في المياه الطبيعية يتطلب عناية كبيرة كما أكد خلال جمع العينات ومعالجتها والمعالجة المسبقة، والتحليلات التي تهدف إلى الحد من التلوث. تتبع تركيزات المعادن في المياه الطبيعية التي تم الحصول عليها باستخدام "التقنيات النظيفة&qu...

Disclosures

The authors have no conflict of interests to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Drs. Bobby J. Presley, Robert Tayloy, Paul Boothe, Mr. Bryan Brattin, and Mr. Mike Metcalf for their assistance during the laborious field sampling and lab work for the practical development and application of "clean techniques".

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Nitric AcidSeastar ChemicalsBaseline grade
Ammonium hydroxideSeastar ChemicalsBaseline grade
Acetic AcidSeastar ChemicalsBaseline grade
Nitric AcidJ. T. Baker9601-05Reagent grade
Hydrochloric acidJ. T. Baker9530-33Reagent grade
Chromatographic columnsBio-Rad7311550 Poly-Prep
Column stack capsBio-Rad7311555
Cap connectors (female Luers)Bio-Rad7318223
2-way stopcocksBio-Rad7328102
Cation exchange resinBio-Rad1422832 Chelex-100
Portable sampler (sampling pump)Cole PalmerEW-07571-00
FEP tubeCole PalmerEW-06450-076.4 mm I.D., 9.5 mm O.D.
Pumping tubeCole PalmerEW-06424-246.4 mm I.D. C-Flex
Capsule filter (0.4 mm)Fisher ScientificWP4HY410F0polypropylene casing
1 L low density polyethylene bottleNALGE NUNC INTERNATIONAL312088-0032
1 L (or 500 ml) FEP bottleNALGE NUNC INTERNATIONAL381600-0032

References

  1. Taylor, H. E., Shiller, A. M. Mississippi River Methods Comparison Study: Implications for water quality monitoring of dissolved trace elements. Environmental Science and Technology. 29, 1313-1317 (1995).
  2. Windom, H. L., Byrd, J. T., Smith, R. G., Huan, F. Inadequacy of NASQAN data for assessing metal trends in the nation's rivers. Environmental Science and Technology. 25 (6), 1137-1142 (1991).
  3. Mason, R. P. . Trace Metals in Aquatic Systems. , (2013).
  4. Wen, L. -. S., Santschi, P., Gill, G., Paternostro, C. Estuarine trace metal distributions in Galveston Bay: importance of colloidal forms in the speciation of the dissolved phase. Marine Chemistry. 63, 185-212 (1999).
  5. Wen, L. -. S., Stordal, M. C., Tang, D., Gill, G. A., Santschi, P. H. An ultraclean cross-flow ultrafiltration technique for the study of trace metal phase speciation in seawater. Marine Chemistry. 55, 129-152 (1996).
  6. Benoit, G. Clean technique measurement of Pb, Ag, and Cd in freshwater: A redefinition of metal pollution. Environmental Science and Technology. 28, 1987-1991 (1994).
  7. Benoit, G., Hunter, K. S., Rozan, T. F. Sources of trace metal contamination artifacts during collection, handling, and analysis of freshwater. Analytical Chemistry. 69 (6), 1006-1011 (1997).
  8. Jiann, K. -. T., Presley, B. J. Preservation and determination of trace metal partitioning in river water by a two-column ion exchange method. Analytical Chemistry. 74 (18), 4716-4724 (2002).
  9. Fardy, J. J., Alfassi, Z. B., Wai, C. M. . Preconcentration Techniques for Trace Elements. , 181-210 (1992).
  10. Pai, S. -. C. Pre-concentration efficiency of Chelex-100 resin for heavy metals in seawater. Part 2. Distribution of heavy metals on a Chelex-100 column and optimization of the column efficiency by a plate simulation method. Analytica Chimica Acta. 211, 271-280 (1988).
  11. Pai, S. -. C., Fang, T. -. H., Chen, C. -. T. A., Jeng, K. -. L. A low contamination Chelex-100 technique for shipboard pre-concentration of heavy metals in seawater. Marine Chemistry. 29, 295-306 (1990).
  12. Pai, S. -. C., Whung, P. -. Y., Lai, R. -. L. Pre-concentration efficiency of Chelex-100 resin for heavy metals in seawater. Part 1. Effects of pH and salts on the distribution ratios of heavy metals. Analytica Chimica Acta. 211, 257-270 (1988).
  13. Salbu, B., Oughton, D. H., Salbu, B., Steinnes, E. . Trace Elements in Natural Waters. , 41-69 (1995).
  14. . U.S. Environmental Protection Agency. Method 1669. Sampling ambient water for trace metals at EPA Water Quality criteria levels Available from: https://www3.epa.gov/caddis/pdf/Metals_Sampling_EPA_method_1669.pdf (1996)
  15. Horowitz, A. J., et al. Problems associated with using filtration to define dissolved trace metal concentrations in natural water samples. Environmental Science and Technology. 30, 954-963 (1996).
  16. Cortecci, G., et al. Geochemistry of trace elements in surface waters of the Arno River Basin, northern Tuscany, Italy. Applied Geochemistry. 24 (5), 1005-1022 (2009).
  17. Markich, S. J., Brown, P. L. Relative importance of natural and anthropogenic influences on the fresh surface water chemistry of the Hawkesbury-Nepean River, south-eastern Australia. The Science of the Total Environment. 217, 201-230 (1998).
  18. Shafer, M. M., Overdier, J. T., Hurley, J. P., Armstrong, D., Webb, D. The influence of dissolved organic carbon, suspended particles, and hydrology on the concentration, partitioning and variability of trace metals in two contrasting Wisconsin watersheds (U.S.A.). Chemical Geology. 136, 71-97 (1997).
  19. Warren, L. A., Haack, E. A. Biogeochemical controls on metal behaviour in freshwater environments. Earth-Science Reviews. 54, 261-320 (2001).
  20. Jiann, K. -. T., Santschi, P. H., Presley, B. J. Relationships between geochemical parameters (pH, DOC, SPM, EDTA Concentrations) and trace metal (Cd, Co, Cu, Fe, Mn, Ni, Pb, Zn) concentrations in river waters of Texas (USA). Aquatic Geochemistry. 19 (2), 173-193 (2013).
  21. Peltzer, E. T., et al. A comparison of methods for the measurement of dissolved organic carbon in natural waters. Marine Chemistry. 54, 85-96 (1996).
  22. Nowack, B., Kari, F., Hilger, S. U., Sigg, L. Determination of dissolved and adsorbed EDTA species in water and sediments by HPLC. Analytical Chemistry. 68 (3), 561-566 (1996).
  23. Bergers, P. J. M., de Groot, A. C. The analysis of EDTA in water by HPLC. Water Research. 28 (3), 639-642 (1994).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

113 preconcentration

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved