أوفين القطني الفقرية نموذج التنكس القرص الاستفادة من الجانبي خلف الصفاق مثقاب إصابة

Kai-Zheong Lim; Christopher D. Daly; Peter Ghosh; Graham Jenkin; David Oehme; Justin Cooper-White; Taryn Naidoo; Tony Goldschlager

doi:10.3791/55753

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

Summary

انحطاط القرص الفقرية هو مساهم كبير في آلام الظهر وسبب رئيسي للإعاقة في جميع أنحاء العالم. توجد العديد من النماذج الحيوانية من انحطاط القرص الفقرية. علينا أن نظهر نموذج البيضة من انحطاط القرص الفقرية، وذلك باستخدام مثقاب، مما يحقق إصابة القرص ثابت ومستوى استنساخه من انحطاط القرص.

Abstract

انحطاط القرص الفقرية هو مساهم كبير في تطوير آلام الظهر والسبب الرئيسي للإعاقة في جميع أنحاء العالم. وقد تم تطوير العديد من النماذج الحيوانية من انحطاط القرص الفقرية. نموذج الحيوان المثالي يجب أن تحاكي عن كثب القرص الفقري البشري فيما يتعلق التشكل والخصائص الميكانيكية الحيوية وغياب الخلايا نوتوكوردال. نموذج القرص الفقري القطني الأغنام تفي بهذه المعايير. نقدم نموذج البيضة من انحطاط القرص الفقرية باستخدام إصابة مثقاب من خلال نهج خلف الصفاق الجانبي. النهج الجانبي يقلل بشكل كبير من شق والمراضة المحتملة المرتبطة النهج الأمامي التقليدي إلى العمود الفقري البيضة. استخدام طريقة الحفر بت من الإصابة يتيح القدرة على إنتاج إصابة متسقة وقابلة للتكرار، من أبعاد دقيقة، أن يبدأ درجة متناسقة من انحطاط القرص الفقرية. الطبيعة البؤرية للحلقيونواة بولبوسوس عيب يحاكي بشكل وثيق الحالة السريرية للفقر القرص الفقري التنسيق. الخراف يتعافى بسرعة بعد هذا الإجراء وعادة ما تكون النقالة وتناول الطعام في غضون ساعة. ينشأ انحطاط القرص الفقرية والخراف تخضع التشريح والتحليل اللاحق في فترات من ثمانية أسابيع. ونحن نعتقد أن نموذج إصابة بت الحفر من انحطاط القرص الفقرية يوفر مزايا أكثر من نماذج الإصابة الحلقية التقليدية.

Introduction

آلام أسفل الظهر هي السبب الرئيسي للإعاقة في جميع أنحاء العالم ¹ . القطني الفقري انحطاط القرص المرتبطة الألم ديسغوجينيك يعتبر مساهما كبيرا في آلام أسفل الظهر ² . هناك طلب متزايد على نماذج حيوانية موثوقة من مرض القرص الفقري لتوسيع فهم العملية التنكسية وللتحقيق في العلاجات المحتملة.

العديد من النماذج الحيوانية من القرص الفقري انحطاط موجودة ³ . نماذج الحيوانات المستخدمة في التحقيق من التنكسية مجموعة مرض القرص في الحجم من الفئران ⁴ ، إلى الثدييات أكبر مثل الكلاب ⁵ ، الأغنام ⁶ ، والرئيسيات غير البشرية ⁷ . الطرق المستخدمة للحث على انحطاط القرص الفقرية يمكن تصنيفها على نطاق واسع في فئات الميكانيكية (على سبيل المثال ضغط القرص الفقرية ن ⁸ أو إصابات جراحية ⁶ )، الكيميائية ( مثل انحلال النواة الكيميائية ⁵ )، أو أقل شيوعا، انحطاط عفوي ( مثل الفئران الرمال ⁹ ).

ونظرا لتعقيد انحطاط القرص الفقري البشري، لا يوجد نموذج حيواني مثالي. ومع ذلك، تم تحديد اعتبارات هامة في اختيار نموذج حيواني مناسب لمحاكاة هذا الشرط عن كثب ³ . وتشمل هذه الاعتبارات عدم وجود خلايا نوتوكوردال (الخلايا البدائية مع وظيفة الخلية السلف المحتملة ¹⁰ غائبة من نواة الكبار بولبوسوس في البشر والأغنام والماعز والكلاب الغضروفية ولكن موجودة في معظم الثدييات)، أوجه التشابه في حجم القرص الحيوان والفقرات بالنسبة للبشر، والقوى الميكانيكية الحيوية للمقارنة إلى الحالة السريرية، والاعتبارات الميكانيكية والأخلاقية ³ .

jove_content "> القرود غير البشرية تلبي العديد من المعايير المذكورة أعلاه، وقد وصفت نماذج بابون و ماكاك من انحطاط القرص الفقري العفوي ¹¹ ^، ¹² ^، ^13. كلا النوعين يقضون قدرا كبيرا من الوقت في وضعية منتصبة أو شبه منتصبة - ميزة واضحة بالنسبة للنماذج الحيوانية الأخرى، ومع ذلك، فإن النظر الأخلاقي والعملي ( مثل النفقات والإسكان والتأخر في حدوث انحطاط عفوي) يقيد استخدامها في العديد من المؤسسات.

العمود الفقري البيضة هو نموذج راسخ من انحطاط القرص الفقرية، مع مزايا بما في ذلك التشابه الخلوي، الميكانيكا الحيوية والتشريح التشريحي للعمود الفقري البشري ¹⁰ ^، ¹⁴ ^، ¹⁵ . على الرغم من مكانة رباعي الأضلاع من الأغنام القرص الفقري القطني البيضاوي يتعرض لضغوط مماثلة على القرص البشريs = "كريف"> 14. نموذج أوفين هو أيضا أكثر قبولا على نطاق واسع، من منظور أخلاقي، من نماذج الرئيسيات غير البشرية. وقد وصفت أساليب متنوعة لبدء عملية التنكسية، وكثير منها يتطلب الوصول المباشر إلى القرص الفقرية. بسبب إنهاء الحبل الشوكي في المنطقة المقدسة وتحجيم الرباط الطولي الخلفي في العمود الفقري القطني الأوفين، النهج الخلفية للقرص الفقرية هي تحديا من الناحية الفنية وأقل استخداما في الأغنام ¹⁶ . طرق الوصول التقليدية إلى العمود الفقري القطني الأغنام، أي عن طريق النهج الأمامية أو الأمامية، تتطلب شق كبير في البطن، محفوفة بمخاطر الفتق، والأضرار التي لحقت الأحشاء الداخلية وهياكل وعائية عصبية ¹⁶ . قد يؤدي استخدام شق جانبي صغير نسبيا بعيدا عن مناطق البطن التابعة إلى تقليل هذه المخاطر ¹⁷ .

نقدم بيضة موديل التنكسية القطني القرص الفقري المرض باستخدام إصابة مثقاب أجريت من خلال نهج جانبي الحد الأدنى الغازية، ومستوحاة من عمل تشانغ وآخرون. آل ¹⁸ . والهدف من هذا البروتوكول هو تمكين موثوقة نموذج إصابة القرص القطني التي يمكن استنساخها بسهولة، وتنتج إصابة متسقة، وآمنة وجيدة التحمل. هذا النهج هو مناسبة تماما للمحققين تسعى للحث على درجة أقل من انحطاط القرص الفقري القطني من تلك التي لوحظت مع بضع بضع الجراحية التقليدية (بيانات غير منشورة) للتحقيق إما انحطاط القرص الفقرية أو العلاجات التجدد. وسيتم وصف هذه النتائج في منشور قادم.

Protocol

بروتوكول مفصل في هذه المخطوطة يتبع المبادئ التوجيهية رعاية الحيوان من أخلاقيات الحيوان جامعة موناش. وقد تم منح الموافقة الأخلاق الحيوانية لهذا البروتوكول من قبل أخلاقيات الحيوان جامعة موناش. رقم موافقة الأخلاقيات: مكا / 2014/55

1. إعداد الأغنام

ملاحظة: إويس الذين تتراوح أعمارهم بين سنتين إلى أربع سنوات استخدمت.

الأغنام سريعة لمدة 18 ساعة قبل التخدير. تزويد الحيوانات بإمكانية الحصول على المياه حتى 6-12 ساعة قبل التشغيل ¹⁹ .
الحيوانات المخدرة عن طريق الحقن في الوريد من هيدروكلوريد ميديتوميدين (0.015-0.020 ملغ / كلغ) لتسهيل نقل إلى جناح التشغيل.
ملاحظة: هيدروكلوريد ميديتوميدين يعمل على الحد من الإجهاد الحيوان والإثارة المرتبطة بالفصل من الحيوانات الأخرى لنقلها إلى جناح التشغيل.
حقن ثيوبنتون (10-13 مل / كغ) لتحريض التخدير عند الوصول إلى جناح التشغيل.
إدارة داخل وقائيالمضادات الحيوية الوريدية (أموكسيسيلين 1 ز الرابع) مباشرة بعد حقن ثيوبينتون.
الأغنام إنتوبات باستخدام حجم 7.5-9 مم (القطر الداخلي) أنبوب الرغامي ²⁰ .
الحفاظ على التخدير باستخدام إيسوفلوران استنشاق (2-3٪) في الأكسجين 100٪ بمعدل تدفق 2 لتر / دقيقة. إرفاق مقياس التأكسج النبض إلى الأذن الأغنام.
مراقبة عن كثب للعلامات الحيوية الأغنام (معدل ضربات القلب، ومعدل التنفس وتشبع الأكسجين عن طريق مقياس التأكسج النبضي والمراقبة) ومستوى الوعي.
ملاحظة: مؤشرات التخدير الخفيفة مثل المضغ التلقائي، قلس نشط، والحركات العفوية يجب أن يدفع زيادة في مستوى التخدير. علامات العلم الأحمر تشير إلى البرق العاجل من التخدير وتشمل حل وسط الجهاز التنفسي وبطء شديد. دوران العين ليست مؤشر ثابت من عمق التخدير في الأغنام ¹⁹ .

2. مستوى القرص و شق

جمع sالأدوات الملحة اللازمة لهذا الإجراء: كليبرز البيطرية، 20 مل الحقنة لير قفل، 21G الرابع إبرة، # 4 مشرط مقبض، # 22 شفرات مشرط، ملقط جيليز الأنسجة، ميتزنباوم مقص تشريح منحني، ريترا رسام، هوهمان ريتراكتور شفرة 3.5 مم براد نقطة الحفر مثقاب، الحفر مثقاب، الحفر، أوتوكلافابل البيطرية الحفر حقيبة، إبرة حامل، 2-0 خيوط مضفر الاصطناعية امتصاص، 3-0 امتصاص الاصطناعية مضفر خياطة و مايو مقص خياطة.
إعداد جناح التشغيل. تنظيف الطاولة المنطوق وموقف أداة مع 70٪ من الإيثانول. الأوتوكلاف جميع الأدوات الجراحية قبل العملية. إجراء فحص مخدر قبل الجراحة.
وضع الأغنام على طاولة التشغيل في الموقف الجانبي الأيمن.
باستخدام كليبرز الإلكترونية، وحلق المنطقة المحددة متفوقة من قبل الأضلاع السفلى، أدنى من العظم الحرقفي، إنسي من قبل عمليات عرضية القطنية المقابل وحوالي 10 سم الوحشي لعمليات قطنية المماثل المستعرضة.
جس العرف الحرقفي، العمليات المستعرضة القطنية (L1-6) وزاوية كوستو-فقري للمعالم لموقع شق الجراحية. وضع علامة على هذه المعالم مع قلم معقمة.
إعداد البطن الجانبي عن طريق تعقيم مع الكلورهيكسيدين وغسيل الكحول يوديد مطهر.
مراقبة تقنيات العقيم الجراحية القياسية في جميع أنحاء العملية. فرك الفريق الجراحي قبل العملية. وضع معقمة ثنى مربع ثنى على موقع الجراحية، وثنى مربع معقمة كبيرة على الطاولة العلوية.
1. تعقيم جميع العناصر التي سيتم استخدامها داخل موقع المنطوق قبل العملية. مراقبة والحفاظ على العقم من الموقع الجراحي طوال العملية. التأكد من أن جميع العناصر التي أدخلت في مجال العقيمة معقمة ونقلها بطريقة معقمة.
استخدام التكبير العدسة الجراحية ومصباح لتسهيل التصور أثناء العملية الجراحية.
جعل شق طوليباستخدام شفرة # 22 مشرط تعلق على مقبض مشرط # 4 موازية و 1 سم الأمامي إلى واحد إلى اثنين من العمليات المستعرضة القطنية فوق وتحت مستويات القرص الفقرية من الفائدة.
ملاحظة: يمكن العثور على مزيد من المعلومات حول تخطيط شق في المناقشة.
استخدام العلاج بالإنفاذ الحراري أحادي القطب لتقسيم الأنسجة تحت الجلد الكامنة والجانب الجانبي للعضلات جدار البطن. مباشرة تشريح نحو نصائح من العمليات المستعرضة القطنية فوق وتحت الأقراص الفقرية من الفائدة.
تقسيم اللفافة الصدرية القطنية طوليا في ارتباطه إلى العمليات العرضية.
تصور والحفاظ على لومبوروم كوادراتوس الكامنة ، العضلات بسواس والحزم وعائية عصبية اجتياز.
الحفاظ على الارقاء من خلال الإجراء باستخدام الإنفاذ الحراري.
اكتساح الأصابع بين الطائرة من الصفاق والجسم الخلفي للجهاز العضلي في البطن في المعرض الفقري ديمستويات سك لأداء تشريح حادة الرقمية.
التراجع لومبوروم كوادراتوس و بسواس العضلات بوستيرولاتيرالي باستخدام ضام ديفر لمزيد من فضح من الأقراص الفقرية.
جس للأجسام الفقرية مقعرة والأقراص الفقرية محدب.
ضع الكامشات فورا فوق األسطوانات واحرص على عدم تلف األوعية القطنية.
باستخدام التكبير العدسة الجراحية مع المصباح، وتحديد الأوعية القطنية التي تقع حوالي 1 سم الذيلية إلى إندبلات أدنى.
إجراء الأشعة السينية أثناء العملية الجانبية لتأكيد مستوى القرص. ²¹
ملاحظة: إعدادات الأشعة: 47kV. 4 مللي أمبير ²¹
اعتمادا على مستويات القرص المطلوب، فضح القرص الفقرية عن طريق فصل الهياكل المحيطة والمرفقات على النحو التالي.
1. لمستويات L3 / 4 وما فوق، اكتساح جانبا المرفقات العضلية على ديسك باستخدام تشريح حادة الرقمية.
2. لمستويات L4 / 5 وأدناه، وتقسيم حاد ملحقات سمكا الوترية العضلات على القرص باستخدام القطبين الإنفاذ الحراري والمقص.
  ملاحظة: قد يكون من الصعب الوصول إلى القرص L6 / S1 بسبب عرقلة من قبل العرف الحرقفي. إذا تعذر الوصول يمكن أن يتحقق عن طريق النهج الجانبي يمكن استخدام نهج الأمامي.

3. مثقاب إصابة

ملاحظة: ويشمل التخطيط قبل العمليات الجراحية تخصيص مستويات الإصابة / العلاج ومستويات السيطرة. ويمكن الاطلاع على مزيد من المعلومات بشأن تخصيص المستوى في المناقشة.

تحديد نقطة دخول مثقاب من خلال مراقبة الجانب الأيسر والأمامي الأيسر من القرص الفقرية.
ملاحظة: يقع نقطة الدخول في منتصف هذا الربع الأمامي الوحشي الأيسر (التي تحددها الأطراف الأمامية والجانبية للقرص). يتم إدخال بت الحفر في هذه النقطة دخول مع مسار تهدفنحو مركز الأقراص الفقرية وإخراج الجمجمة قليلا إلى عمودي.
تناسب مثقاب نقطة براد في الحفر السلطة. ضمان قطر مثقاب هو أقل قليلا من ارتفاع القرص الفقرية أي ~ 3.5 ملم للقرص الفقري القطني في 60-70 كجم الأغنام.
1. تطبيق وقف بت الحفر لتوفير طول غير مثقبة الحفر قليلا ما يقرب من نصف قطر القرص الفقري القطني أي ~ 12 ملم للأقراص الفقرية القطنية في 60-70 كجم الأغنام.
تطبيق مثقاب إلى نقطة الدخول وتوجيهه في مسار الجمجمة قليلا إلى وسط القرص الفقرية. التجميد الجمجمة طفيف هو تقليل خطر الاصابة إندبلات.
دفع بت الحفر ببطء في القرص الفقرية مع الحفر على انخفاض الطاقة لمدة 1 ثانية. ضبط مسار في الجمجمة طفيف أو الذيلية الأزياء إذا تم مواجهة المقاومة المفرطة
ملاحظة: مثلالمقاومة المفرطة المرجح يشير إلى الاتصال مع إندبلات.

4 - الإغلاق

مرة واحدة يتحقق الارقاء، ري الجرح مع الحل رينجرز.
أداء إغلاق الطبقات، ويفضل أن تستخدم 2-0 خيوط مضفر الاصطناعية امتصاص إلى الأنسجة جدار البطن الجانبي ومستمر 3-0 أونيد يمتص الاصطناعية خياطة تحت الجلد تحت الجلد إلى الجلد.

5. إدارة ما بعد الجراحة

وضع التصحيح عبر الجلد فنتانيل (75 ميكروغرام / ساعة) في المنطقة الأربية للالتسكين بعد الجراحة لمدة 3 أيام.
بالإضافة إلى ذلك، استخدام البوبرينورفين في الوريد (0.005-0.01 ملغ / كلغ) لتسكين أعلى إذا لزم الأمر.
وقف مخدر استنشاق. عندما يحدث التنفس العفوي، وإزالة الأنبوب الرغامي.
السماح للحيوان للتعافي في قفص عقد تحت الملاحظة المستمرة.
ملاحظة: لا ينبغي أن تترك الحيوان غير المراقب حتى استعاد كونسسيو كافيةاستخدام للحفاظ على الاستلقاء القصية.
مرة واحدة الحيوان هو في حالة تأهب تام والوقوف، وإعادة إدخال الغذاء والماء. مرة واحدة تعافى تماما، والعودة الحيوان إلى مرفق المنطوق عقد القلم مع الحيوانات الأخرى.
مراقبة عن كثب لمدة 24 ساعة ومواصلة المراقبة لمدة أسبوع واحد. مراقبة للحصول على أدلة على الألم بعد الجراحة أو الضيق.
ملاحظة: بعد الجراحة عبر الجلد الفنتانيل التصحيح تطبيقها لمدة ثلاثة أيام يجب أن توفر تسكين كافية. متطلبات مسكن إضافية يجب أن يدفع مراجعة الحيوان.
تغذية الأغنام عادة، والسماح الأغنام لتنفيذ الأنشطة العادية دون قيود. مراقبة الأغنام عن أي دليل على العجز العصبي مثل العرج.
ملاحظة: عيب القرص الفقرية التي تنتجها طريقة إصابة بت الحفر هو على الجانب الأمامي الوحشي للقرص وعمق الإصابة يقتصر على وقف بت الحفر إلى النواة المتوسطة. كما تقع العناصر العصبية الخلفية / بوستيرولاترال إلى القرص الفقرية،فإن خطر الحل العصبي الثانوي لنواة أعراض بولبوسوس هو بعيد. هذه السمة التشريحية للنموذج يحول دون استخدام الفحص العصبي للتمييز بين انحطاط القرص الفقري مع وبدون نواة فتق اللبس.
عودة الأغنام إلى مزرعة الجامعة لانتظار القتل الرحيم والتشريح في نهاية الفترة التجريبية.

6. القتل الرحيم

أداء الأغنام القتل الرحيم في الفاصل الزمني المناسب بعد الحفر بت القرص القرص الفقرية.
حقن عن طريق الوريد البنتوباربيتون الصوديوم (> 100 ملغ / كلغ) للقتل الرحيم.

النتائج

قبل الجراحة، خضع الأغنام خط الأساس 3T التصوير بالرنين المغناطيسي (مري) لتقييم التشكل القرص الفقري الكامنة وانحطاط. خضعت الأغنام إضافية داخل المنطوق التصوير الشعاعي الجانبي لتأكيد مستوى القرص الفقرية وحساب مؤشر ارتفاع القرص. ويظهر في مرحلة ما قبل ال...

Discussion

هذا النهج وصول الحد الأدنى الغازية الحد الأدنى هو فعال وآمن مع عدم وجود الفتق بعد الجراحة، تفكك الجرح البطن أو العدوى لوحظ في هذه السلسلة. استخدام نموذج إصابة القرص الفقري بت مثقاب مع توقف عمق يوفر وسيلة استنساخه لإحداث إصابة القرص الفقري متسقة من البعد المعروف ( أ?...

Disclosures

ويعلن المؤلفون أنه ليس لديهم مصالح مالية متنافسة للإفصاح عنها.

Acknowledgements

الدكتور كريس دالي هو المتلقي من مؤسسة للجراحة ريتشارد جيبسون البحوث المنح الدراسية. ويود المؤلفون أن يشكروا الدكتور آن جيبون، والدكتور دونغ تشانغ، وموظفي خدمات موناش الحيوانية، وجامعة موناش لمساعدتهم في جراحة الحيوان والرعاية.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Medetomidine Hydrochloride (10 mL Injection)	Therapon/Zoetis	PFIDOM10	Multiple suppliers: Zoetis/Ilium
Thiopentone	Troy	Triothiopentone	Multiple suppliers: Neon Laboratories, Jagsonphal Pharmaceuticals
Isoflurane (2 - 3 % in oxygen)	Baxter	AHN3636	Multiple suppliers: Baxter/VetOne
Amoxicillin parenteral	GlaxoSmithKline	JO1CA04	Multiple suppliers: GlaxoSmithKline/Merck
Bupivacaine (0.5% Injection 20 mL)	Pfizer	005BUP001	Multiple suppliers: Pfizer/AstraZeneca
PVD Iodine Solution	Jurox	61330	Multiple suppliers: Jurox/Orion
Chlorhexidine 5%w/v	Jurox	Chlorhex C 5L (SCRUB)	Multiple suppliers: Jurox/Pfizer
Transdermal Fental Patch (75 μg/h)	Janssen-Cilag	S8-Dur7.5	Multiple suppliers: Sandoz
Buprenorphine iv	Jurox	504410	Multiple suppliers: LGM Pharma
Atipamezole (Antisedan 0.06 mg/kg - 0.08 mg/kg)	Zoetis	PFIANT10	Multiple suppliers: Ilium
Oster Golden A5 2-Speed Clippers	Oster	078005-140-003	Oster
20 mL luer lock syringe	Terumo	6SS+20L	Multiple suppliers: Medshop Australia/Terumo
21 G IV needle	Terumo	SG3-1225	Multiple suppliers:Medshop Australia/Terumo
#4 scalpel handle	Austvet	AD010/04	Multiple suppliers: Austvet/SurgicalInstruments
#22 scalpel baldes	Austvet
Gillies tissue forceps	Austvet	AB430/15	Multiple suppliers: Austvet/SurgicalInstruments
Metzenbaum curved dissecting scissors	Austvet	AC101/14	Multiple suppliers: Austvet/SurgicalInstruments
Deaver retractor	Surgical Instruments	23.75.03	Multiple suppliers: Surgical Instrument/Austvet
Hohmann retractor	Austvet	KA173/35	Multiple suppliers: Austvet/SurgicalInstruments
Mayo suture scissors	Austvet	AC911/14	Multiple suppliers: Austvet/SurgicalInstruments
Needleholder 14 cm	EliteMedical	18-1030	Multiple suppliers: EliteMedical/Austvet
CMT 3.5 mm Brad-Point Drill	Carbatec	516-035-51	Multiple suppliers: Southeast Tool/Carbatec
Drill Bit Stop 4 mm	Drill Warehouse	20121600	Multiple suppliers: Amazon
Bosch 10.8 V Cordless Angle Drill	Get Tools Direct	GWB10.8V-LIBB	Multiple suppliers:Bunnings/Get Tools Direct
Autoclavable veterinary drill bag	AustVet	DRA043-AV	AustVet
2-0 absorbable synthetic braided sutures	Ethicon	VCP335H	Ethicon
3-0 absorbable synthetic braided sutures	Ethicon	VCP232H	Ethicon
Siemens 3 Tesla Skyra Widebore MRI	Siemens	N/A	Siemens
9.4 Tesla Agilent (Varian) MRI	Agilent Technologies	N/A	Agilent Technologies
Atomscope HF 200 A Radiogaph	Radlink	330003A	Multiple Suppliers: Radlink/DLC Australia
Veterinary Pulse Oximiter	DLC	192500A	Multiple suppliers: DLC Australi Pty Ltd/AustVet

References

Hoy, D., March, L., et al. The global burden of low back pain: estimates from the Global Burden of Disease 2010 study. Ann Rheum Dis. 73 (6), 968-974 (2014).
Luoma, K., Riihimäki, H., Luukkonen, R., Raininko, R., Viikari-Juntura, E., Lammine, A. Low back pain in relation to lumbar disc degeneration. Spine. 25 (4), 487-492 (2000).
Daly, C., Ghosh, P., Jenkin, G., Oehme, D., Goldschlager, T. A Review of Animal Models of Intervertebral Disc Degeneration: Pathophysiology, Regeneration, and Translation to the Clinic. BioMed Res Int. 2016 (3), 5952165 (2016).
Sahlman, J., Inkinen, R., et al. Premature vertebral endplate ossification and mild disc degeneration in mice after inactivation of one allele belonging to the Col2a1 gene for Type II collagen. Spine. 26 (23), 2558-2565 (2001).
Melrose, J., Taylor, T., Ghosh, P., Holbert, C. Intervertebral disc reconstitution after chemonucleolysis with chymopapain is dependent on dosage: An experimental study in beagle dogs. Spine. 21 (1), (1996).
Oehme, D., Goldschlager, T., Shimon, S., Wu, J. Radiological, Morphological, Histological and Biochemical Changes of Lumbar Discs in an Animal Model of Disc Degeneration Suitable for Evaluating the potential regenerative capacity of novel biological agents. J Tiss Sci Eng. , (2015).
Platenberg, R. C., Hubbard, G. B., Ehler, W. J., Hixson, C. J. Spontaneous disc degeneration in the baboon model: magnetic resonance imaging and histopathologic correlation. J Med Primatol. 30 (5), 268-272 (2001).
Iatridis, J. C., Mente, P. L., Stokes, I. A. F., Aronsson, D. D., Alini, M. Compression-Induced Changes in Intervertebral Disc Properties in a Rat Tail Model. Spine. 24 (10), 996 (1999).
Silberberg, R., Aufdermaur, M., Adler, J. H. Degeneration of the intervertebral disks and spondylosis in aging sand rats. Arch Pathol Lab Med. 103 (5), 231-235 (1979).
Alini, M., Eisenstein, S. M., et al. Are animal models useful for studying human disc disorders/degeneration. Eur Spine J. 17 (1), 2-19 (2007).
Lauerman, W. C., Platenberg, R. C., Cain, J. E., Deeney, V. F. Age-related disk degeneration: preliminary report of a naturally occurring baboon model. J Spinal Disord. 5 (2), 170-174 (1992).
Platenberg, R. C., Hubbard, G. B., Ehler, W. J., Hixson, C. J. Spontaneous disc degeneration in the baboon model: magnetic resonance imaging and histopathologic correlation. J Med Primatol. 30 (5), 268-272 (2001).
Nuckley, D. J., Kramer, P. A., Del Rosario, ., Fabro, A., Baran, N., S, R. P., Ching, Intervertebral disc degeneration in a naturally occurring primate model: radiographic and biomechanical evidence. J Orthop Res. 26 (9), 1283-1288 (2008).
Wilke, H. J., Kettler, A., Claes, L. E. Are sheep spines a valid biomechanical model for human spines. Spine. 22 (20), 2365-2374 (1997).
Sheng, S. -. R., Wang, X. -. Y., Xu, H. -. Z., Zhu, G. -. Q., Zhou, Y. -. F. Anatomy of large animal spines and its comparison to the human spine: a systematic review. Eur Spine J. 19 (1), 46-56 (2010).
Oehme, D., Goldschlager, T., et al. Lateral surgical approach to lumbar intervertebral discs in an ovine model. Scientific World J. 2012 (8), 873726 (2012).
Youssef, J. A., McAfee, P. C., et al. Minimally invasive surgery: lateral approach interbody fusion: results and review. Spine. 35 (Suppl 26), S302-S311 (2010).
Zhang, Y., Drapeau, S., An, H. S., Markova, D., Lenart, B. A., Anderson, D. G. Histological features of the degenerating intervertebral disc in a goat disc-injury model. Spine. 36 (19), 1519-1527 (2011).
White, K., Taylor, P. Anaesthesia in sheep. In Practice. 22 (3), 126-135 (2000).
Kandziora, F., Pflugmacher, R., et al. Comparison between sheep and human cervical spines: an anatomic, radiographic, bone mineral density, and biomechanical study. Spine. 26 (9), 1028-1037 (2001).
Oehme, D., Ghosh, P., et al. Mesenchymal progenitor cells combined with pentosan polysulfate mediating disc regeneration at the time of microdiscectomy: a preliminary study in an ovine model. J Neurosurg Spine. 20 (6), 657-669 (2014).
Hunter, C. J., Matyas, J. R., Duncan, N. A. Cytomorphology of notochordal and chondrocytic cells from the nucleus pulposus: a species comparison. J Anat. 205 (5), 357-362 (2004).
Hoogendoorn, R. J., Helder, M. N., Smit, T. H., Wuisman, P. Notochordal cells in mature caprine intervertebral discs. Eur Cells Mater. 10 (Suppl 3), (2005).
Pohlmeyer, K. . Zur vergleichenden Anatomie von Damtier, Schaf und Ziege: Osteologie und postnatale Osteogenese. , (1985).
Pfirrmann, C. W., Metzdorf, A., Zanetti, M., Hodler, J., Boos, N. Magnetic resonance classification of lumbar intervertebral disc degeneration. Spine. 26 (17), 1873-1878 (2001).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

123

This article has been published

Video Coming Soon

Keep me updated: