A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Method Article
وتكريس التحريات المفصلة بشأن مراحل البعوض في طفيليات الملاريا أهمية حاسمة في تصميم استراتيجيات فعالة لمنع انتقال العدوى. يوضح هذا البروتوكول كيفية استزراع خلايا اللعب المعدية بشكل فعال ومن ثم تغذية هذه الخلايا اللعبة للبعوض لتوليد مراحل البعوض من P. falciparum.
ولا تزال الملاريا واحدة من أهم مشاكل الصحة العامة، مما يسبب معدلات كبيرة من الاعتلال والوفيات. الملاريا مرض ينتقل عن طريق البعوض ينتقل عن طريق لدغة معدية من أنثى بعوضة الأنوفيليس. وستعتمد مكافحة الملاريا في نهاية المطاف على العديد من النهج، التي تشمل سبل منع انتقال العدوى من البعوض وعبره ومنه. لدراسة مراحل البعوض من طفيليات الملاريا في المختبر ، قمنا بتحسين بروتوكول زراعة خلايا الخلايا المنجلية المنجلية عالية العدوى ، وهي مرحلة طفيلية مطلوبة للانتقال من المضيف البشري إلى ناقل البعوض. P. فالسيباروم gametocytes تنضج من خلال خمس خطوات متميزة شكليا، والذي يستغرق ما يقرب من 1-2 أسابيع. يتم الانتهاء من ثقافة الخلايا المغموسة الموصوفة في هذا البروتوكول في 15 يوما وهي معدية للبعوض من أيام 15-18. وقد وضعت هذه البروتوكولات للحفاظ على دورة مستمرة من الخلايا اللعبة المختصة العدوى والحفاظ على إمدادات دون انقطاع من مراحل البعوض من الطفيلي. هنا ، نصف منهجية زراعة الخلايا الغامقة وكيفية إصابة البعوض بهذه الطفيليات باستخدام مغذيات الأغشية الزجاجية.
تحدث الملاريا بسبب طفيليات البلازموديوم وتنتقل إلى مضيفيهم الفقاريين عن طريق لدغة معدية من بعوض الأنوفيليس الأنثوي. ووفقا لتقرير منظمة الصحة العالمية لعام 2019، كان هناك ما يقدر بنحو 405,000 حالة وفاة، من إجمالي 228 مليون حالة إصابة بالملاريا1. وتركزت معظم الوفيات المتصلة بالملاريا في المنطقة الأفريقية، ولا سيما بين الأطفال دون سن الخامسة. وفي حين انخفض المعدل العام للإصابة بالملاريا على الصعيد العالمي منذ عام 2010، فقد استقر الانخفاض في السنوات الأخيرة، وهناك حاجة ماسة إلى استراتيجيات إضافية لمكافحة المرض.
مراحل الدم اللاجنسية الدورية من طفيليات الملاريا تسبب مرض الإمراض وفئة فرعية صغيرة من هذه تفرق إلى خلايا اللعبة الإناث والذكور. Plasmodium falciparum gametocytes هي فريدة من نوعها في طبيعتها لأنها تأخذ 7-10 أيام لتطوير من خلال خمس مراحل متميزة شكليا. يتم عزل الخلايا غير الناضجة من المرحلة الأولى إلى الرابعة في نخاع العظم parenchyma وتظل غائبة إلى حد كبير من الدورة الدموية الطرفية2،3،4،5. يتم إطلاق كرات الدم الحمراء المصابة بخلايا اللعبة V الناضجة في مجرى الدم ويتم تداولها بحرية ليتم تناولها من قبل البعوض. مرة واحدة داخل midgut البعوض، يتم تنشيط gametocytes، من خلال تغيير في درجة الحرارة والتعرض لبيئة midgut، تتحول إلى الأمشاج الإناث والذكور والبدء في تطوير مراحل البعوض، والتي تبلغ ذروتها مع المراحل المعدية من sporozoites في الغدد اللعابية البعوض6،7.
منذ تراجر وجنسون8 وصف طريقة موحدة لثقافة P. falciparum, وقد تقدمت الدراسات على مراحل الدم اللاجنسي إلى حد كبير. ومع ذلك ، فإن عدم وجود نظام ثقافة موثوق بها للمراحل الجنسية جعلت من الصعب دراسة P. falciparum gametocytes ، وبيولوجيا انتقال العدوى ومراحل البعوض. في السنوات الأخيرة، وقد نشرت عدة أساليب التي ساعدت المختبرات في إنشاء ثقافات gametocyte9،10،11،12. تصف هذه المخطوطة بروتوكولا موحدا وموثوقا به لخلايا P. falciparum التي يمكن أن تمثل موردا قيما لمجتمع أبحاث الملاريا. تمكن هذه الطريقة من الإنتاج القوي لخلايا اللعب الناضجة والمعدية التي تؤدي إلى جانب بروتوكول موحد لتغذية البعوض إلى إصابة البعوض موثوقة للغاية. تم إنشاء هذه الطرق للحفاظ على إمدادات غير منقطعة من خلايا اللعبة ، وطفيليات مرحلة البعوض. في هذه المخطوطة، نقوم بوصف بروتوكول شامل لثقافة الخلايا الشاغة(الشكل 1)،وإعداد مغذيات الأغشية الزجاجية، والعدوى بالبعوض باستخدام مغذيات الأغشية هذه (الشكل 2)،وتشريح البراغيث(الشكل 3)والغدة اللعابية للبعوض(الشكل 4)،وتحديد كمي للعدوى في البعوض بعد تشريح الغدد الوسطى واللعابية.
تمت الموافقة على مجموعات الدم الموضحة أدناه من قبل مجلس المراجعة المؤسسية لجامعة جونز هوبكنز. يتم استزراع P. falciparum في ال RBCs الطازجة في ظروف معقمة في منشأة مستوى السلامة البيولوجية 2 (BSL2) ويستخدم الحذر للتعامل مع المواد البيولوجية. بعد كل خطوة تنطوي على الدم أو منتجات الدم، يتم شطف كل الأواني البلاستيكية أو الأواني الزجاجية مع تبييض 10٪ داخل غطاء محرك السيارة قبل التخلص السليم.
1. الكواشف وإعداد
2. P. falciparum ثقافة المرحلة اللاجنسية
3. P. falciparum ثقافة الخلايا اللعبة
ملاحظة: تستغرق ثقافات Gametocyte أسبوعين لإنتاج خلايا اللعب الناضجة المعدية للبعوض. وترد الخطوات من ثقافة gametocyte في الشكل 1. P. falciparum يعزل عادة ما تفقد القدرة على إنتاج gametocyte بعد فترة طويلة في الثقافة المختبر13. لضمان جودة الخلايا اللعبة، ينبغي أن تبدأ الثقافة من ثقافة التغذية مرور منخفضة، وليس أكثر من 2 أشهر من العمر منذ ذوبان الجليد. وسائط دافئة مسبقا إلى 37 درجة مئوية، وتنفيذ جميع الإجراءات على مجموعة أكثر دفئا الشريحة في 38 درجة مئوية. تأكد من أن ثقافات الخلايا الغامية ليست خارج الحاضنة لفترة طويلة لتقليل تقلبات درجة الحرارة.
4. عدوى البعوض باستخدام معيار فحص تغذية الأغشية (SMFA)
ملاحظة: يمكن تغذية الخلايا المغموسة المزروعة في المختبر للبعوض باستخدام مغذيات الأغشية الزجاجية. يظهر إعداد جهاز تغذية الدم في الشكل 2. كما هو موضح أعلاه ، حافظ دائما على خلايا اللعب عند 37 درجة مئوية لتجنب التنشيط قبل تناولها بواسطة البعوض. قبل الحرب من البلاستيك، والكواشف والمعدات المستخدمة مع ثقافة gametocyte إلى 37 درجة مئوية.
5. البعوض تشريح منتصف القناة الهضمية وoocyst تحميل quantification
ملاحظة: يظهر تخطيطي لتشريح منتصف الغوت في الشكل 3.
6. تشريح الغدة اللعابية البعوض وsporozoite تحميل quantification
ملاحظة: يظهر تخطيطي لتشريح الغدة اللعابية في الشكل 4.
هنا نقدم نتائج من سلسلة من يغذي الأغشية باستخدام P. falciparum NF54 ثقافات gametocyte ولدت باستخدام البروتوكول أعلاه (انظر (الشكل 5). بدأت ثقافة Gametocyte مع ما يقرب من 0.5٪ ثقافة المرحلة المختلطة اللاجنسية في اليوم 0 ، والتي نمت إلى ذروة parasitemia من حوالي 15٪ بحلول اليوم 4 واليوم 5. كما هو موضح...
وقد استخدمت الأساليب الموصوفة هنا بنجاح في معهد جونز هوبكنز لأبحاث الملاريا لأكثر من 10 سنوات15،16،17،18،19،20،21،22. وقد استخدمت Gametocytes المنتجة باس?...
ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.
المؤلفون يشكرون مؤسسة بلومبرغ الخيرية على الدعم المالي لمعهد جونز هوبكنز لأبحاث الملاريا(JHMRI). وما كان هذا العمل ممكنا لولا الخبرة التي وفرتها المرافق الأساسية للحشرات والطفيليات في JHMRI.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
10% Sugar solution | |||
10ml serological pipet | Falcon | 357551 | |
15 ml conical tube | Falcon | 352096 | |
1ml serological pipet | Falcon | 357521 | |
25 ml serological pipet | Falcon | 357535 | |
37°C Incubator | |||
50 ml conical tube | Falcon | 352070 | |
5ml serological pipet | Falcon | 357543 | |
6 well tissue culture plates | Falcon | 353046 | |
70% Ethanol | |||
9" glass pipet | Fisherbrand | 13-678-6B | |
Anopheles Mosquitoes | JHMRI, Insectary core | We use A. stephensi or A. gambiae (keele) | |
cell counter | |||
Circulating water bath | |||
fine tip forceps | Fisherbrand | 12-000-122 | |
Geimsa stain | Sigma | GS1L | |
Glass desiccator | |||
Glass membrane feeder | Chemglass Life Sciences | CG183570 | |
Glass slides | Fisherbrand | 12-552-3 | |
HBSS | Sigma | H6648 | |
Human Blood O+ | JHU | Wash RBCs three times with RPMI and refrigerate at 50% heamatocrit | |
Human Serum O+ | Interstate blood bank | Pool at-least 6 units of serum from different donors and freeze down aliquots at -20°C. | |
Hypoxanthine | Sigma | H9337 | Make 500x stock in 1M NaOH |
Mercurochrome | Sigma | M7011 | Prepare 1% stock solution in PBS that can be diluted to 0.1% when needed |
Micro Pipette | |||
Microscope | Olympus | Any microscope with 10x, 40x and 100x objective will work. | |
Mosquito cups | Neptune cups | ||
N-acetylglucosamine | Sigma | A3286 | Optional and needed only when pure gametocytes are required. |
Netting | Make sure it can contain mosquitoes and allow blood feeding | ||
Parafilm | |||
PBS | |||
Petri dish | Thermo Scientific | 249964 | |
Pipet tips | |||
Pipetman | |||
Plasmodium falciparum NF54 | BEI Resources | MRA-1000 | Freeze down large numbers of early passage culture to make sure you have a constant supply |
RPMI 1640 | Corning | CV-041-CV | Media contains glutamine and HEPES |
Slide warmer | |||
Sodium bicarbonate | Sigma | S6297 | Optional for media, add only when using malaria gas mix during culture incubation |
water bath | |||
Xanthurenic Acid | Sigma | D120804 | For flagellation media |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved