تحليل تخطيط كهربية القلب والسلوك في الفئران من الحمل إلى فترة الرضاعة

Kie Shimizu; Sayaka Kuze-Arata; Takefumi Kikusui; Kazutaka Mogi

doi:10.3791/66498

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

Summary

تم تحقيق تسجيل متزامن للنشاط اللاإرادي وسلوك الأم التفصيلي للفئران الأم من الحمل إلى الرضاعة باستخدام نظام القياس عن بعد. تساعد هذه الطريقة على فهم ديناميكيات الخصائص الفسيولوجية والسلوكية لدى الأمهات من الحمل إلى الفطام.

Abstract

من المفترض أن تكون التغييرات في العلاقة بين الأم والنسل مصحوبة بتغيرات ديناميكية في الجهاز العصبي اللاإرادي. على الرغم من إجراء قياسات زمنية للنشاط اللاإرادي في الأمهات والرضع من البشر ، إلا أن تحليل التغيرات طويلة المدى لا يزال غير مستكشف. يمكن لأمهات الفئران تكوين روابط اجتماعية مع صغارهن والحصول على فترة قصيرة من الحمل والرضاعة ، مما يجعلها مفيدة لفحص التغيرات الفسيولوجية من الحمل إلى تربية الجراء. لذلك ، تم استخدام نظام القياس عن بعد لعدة أسابيع لقياس التغيرات في الجهاز العصبي اللاإرادي وسلوك أمهات الفئران. أظهرت النتائج الحالية أنه يمكن تسجيل مخطط كهربية القلب (ECG) بثبات بغض النظر عن حركات الأمهات والولادة. أظهر تحليل تخطيط القلب أن معدل ضربات القلب انخفض تدريجيا من الحمل إلى الرضاعة ، وزاد النشاط الودي بشكل حاد مع تطور الجراء. علاوة على ذلك ، مكننا التسجيل المتزامن للسلوك وتخطيط القلب في قفص المنزل من فهم التأثيرات المعتمدة على السلوك على مخطط كهربية القلب ، وبالتالي الكشف عن خصائص النشاط العصبي اللاإرادي أثناء كل سلوك. وبالتالي ، تساعد الطريقة التجريبية الحالية على فهم كيفية تغير الخصائص الفسيولوجية للأمهات من الحمل من خلال تربية الجراء ، مما يدعم النمو الصحي للصغار.

Introduction

تعتبر العلاقة بين الأم والنسل فريدة من نوعها بين العلاقات التي أنشأتها أنواع المختلفة نظرا لتأثيرها الكبير على مستقبل النسل¹. في البشر ، يتأثر نمو الأطفال وسلوكياتهم الداخلية / الخارجية بأسلوب الأبوة والأمومة بالإضافة إلى مدى سوء المعاملة والإهمال²^،³. وبالمثل ، في القوارض ، يكون لجودة سلوك الأم تأثير كبير على نمو الجراء وسلوكه⁴^،⁵^،⁶. لذلك ، يمكن أن يوفر التتبع والفحص التفصيلي لسلوكيات رعاية الأمهات نظرة ثاقبة حول آليات الاختلافات الفردية في النمو والدعم الصحي لذريتهن.

أظهرت الدراسات السلوكية والفسيولوجية أن أمهات الثدييات يخضعن لتغيرات سلوكية وفسيولوجية ديناميكية من الحمل إلى الرضاعة. عندما تصبح إناث الثدييات حاملا ، يؤثر إفراز هرمون الاستروجين والهرمونات الأخرى على سلوك الأم⁷. مع نمو النسل وانخفاض وتيرة الرضاعة ، يتغير إفراز الهرمونات ديناميكيا نحو حالة ما قبل الحمل ، مما يضع حدا للتعبير عن سلوك الأم⁸^،⁹^،¹⁰. تشير هذه النتائج إلى أن التفاعل بين نظام الغدد الصماء وسلوك الأم ونمو النسل يلعب دورا مهما في التغييرات التي تمر بها أمهات الثدييات أثناء الحمل والرضاعة.

ترتبط التغيرات السلوكية والفسيولوجية في أمهات الثدييات من الحمل إلى الرضاعة ارتباطا وثيقا ليس فقط بنظام الغدد الصماء ولكن أيضا بالجهاز العصبي اللاإرادي¹¹^،¹². تشير الدراسات البشرية إلى أن الاتصال بين الأم والرضيع يؤدي إلى تغييرات في الجهاز العصبي اللاإرادي لكل من الأمهات والرضع¹³. قامت العديد من الدراسات بقياس مخطط كهربية القلب (ECG) وتقلب معدل ضربات القلب لدى الأمهات والرضع من البشر ، مما يدل على أن كل سلوك يغير معدل ضربات القلب والفاصل الزمني RR للآخرين¹⁴^،¹⁵^،¹⁶. ومع ذلك ، ليس من الواضح كيف تتفاعل العوامل الثلاثة - الجهاز العصبي اللاإرادي وسلوك الأم ونمو النسل - مع بعضها البعض من الحمل إلى الرضاعة. علاوة على ذلك ، من الصعب مراقبة هذه التفاعلات لدى البشر على مدى فترة طويلة من الزمن لأن فترة الرضاعة البشرية تبلغ حوالي عامين.

غالبا ما تستخدم القوارض بدلا من البشر في مثل هذه الدراسات. تم قياس الجهاز العصبي اللاإرادي للقوارض تحت التخدير أو عند عزله عن الجراء لمنع التسجيل غير المستقر وتلف جهاز القياس. ومن ثم ، يكون القياس زمنيا في ظل المواقف المقيدة^{سلوكيا 17}^،¹⁸^،¹⁹. من الضروري مراقبة الجهاز العصبي اللاإرادي في بيئة يمكن للقوارض فيها التحرك بحرية والتواصل مع الآخرين لأن التفاعلات بين الأم والجرو يمكن أن تغير سلوك وفسيولوجيا الأمهات⁸^،⁹^،¹⁰^،¹⁵.

تم تطوير هذه الطريقة التجريبية للسماح بحرية حركة الأم. في هذه الطريقة ، تم توصيل مقياس تخطيط القلب تحت الجلد بالأم الحامل لمنع تلف الجهاز والسماح بتسجيل تخطيط القلب على المدى الطويل من الحمل إلى الرضاعة. يمكن أن تظهر أمهات الفئران سلوكيات عامة (الاستمالة الذاتية ، وتناول الطعام ، وما إلى ذلك) وسلوك الأم المعتاد في قفص منزلي. وبالتالي ، يمكن ملاحظة كل سلوك وتخطيط القلب ومقارنتها بسهولة في نفس الماوس. سجل مسجل محرك الأقراص سلوك الماوس لمدة 24 ساعة على مدى أربعة أسابيع. سمح لنا هذا البروتوكول التجريبي بتتبع التغيرات الديناميكية في النشاط والسلوك اللاإرادي من الحمل إلى فترة الأمومة.

Protocol

تمت الموافقة على جميع الإجراءات من قبل لجنة الأخلاقيات بجامعة أزابو (# 210319-30). تم استخدام الفئران C57B / 6J في يوم الحمل (GD) 14 تزن أكثر من 22 جراما في هذه الدراسة. تم الحصول على من مصدر تجاري (انظر جدول المواد). الكواشف والمعدات اللازمة للدراسة مدرجة في جدول المواد.

1. التحضير التجريبي

قم بتشغيل سخان اللوحة وقم بتغطيته بورق الألمنيوم. امسح جميع الأسطح بنسبة 70٪ من الإيثانول.
تم تعقيم جميع الأدوات الجراحية (المقص والملقط والملاقط الدقيقة والملاقط) مسبقا.
تحضير الغرز المعقمة إلى الطول المطلوب واحتفظ بها جاهزة.
قم بتغطية أقنعة التخدير بأقنعة مطاطية لضمان العقم وراحة المريض.
افحص مقياس الجهد الحيوي للماوس (الشكل 1 أ) بحثا عن أي تشوهات أو تلف باستخدام تطبيقات tBase و LabChart (برنامج تحليل البيانات الفسيولوجية) المثبتة على جهاز كمبيوتر قادر على التسجيل.

2. زرع مقياس عن بعد

ضع الماوس في صندوق تخدير تحريضي يحتوي على 4٪ أيزوفلوران.
بعد تحقيق المستوى الجراحي للتخدير ، ضع الماوس في وضع الانبطاح على سخان اللوحة. ضع قناع التخدير على الماوس ، مع الحفاظ على مستوى الأيزوفلوران من 1٪ -2.0٪ وتدفق الأكسجين عند 0.5-2 لتر / دقيقة.
ملاحظة: في هذا البروتوكول ، لم يتم استخدام أي مسكنات ، مع مراعاة آثارها على الجنين والملاحظات السلوكية.
استخدم مقص لإزالة الفراء بين الأذنين وتطهير الجلد ثلاث مرات باستخدام مطهرات متناوبة تحتوي على اليود و 70٪ كحول.
لتأكيد المستوى الجراحي للتخدير ، اضغط على أصابع أقدام الكفوف الخلفية للفأر باستخدام ملقط. قم بعمل شق (2-3 سم) في الجلد بين الأذنين باستخدام المقص. أدخل ملقطا في الشق لفصل الجلد والعضلات حول الرقبة والجانب البطني ، مما يوفر مساحة على الجانب البطني خصيصا لوضع القياس عن بعد.
أدخل جهاز التقريب من خلال الشق بين الأذنين وضعه في المساحة الجانبية البطنية.
استخدم الملقط لدحرجة وتجميع الخيوط الموجبة والسالبة. ضع الخيوط في مساحة العنق (الشكل 1 ب).
خياطة الشق باستخدام إبرة 13 مم وخياطة 20 سم ، مع الحرص على تجنب تلف الخيوط
ضع الفأر في وضع ضعيف ونتف الفراء حول الترقوة باستخدام مقص. تطهير الجلد ثلاث مرات بالتناوب مع المطهرات القائمة على اليود و 70٪ كحول.
قم بعمل قطع صغير حول جلد الترقوة بالمقص وافصل العضلات عن جلد الرقبة. استخرج الخيوط الموجبة والسالبة من مؤخرة الرقبة باستخدام الملقط.
استخدم الملقط لفصل الغدد اللعابية وفضح المظهر "على شكل حرف V" للعضلة القصية الترقوية الخشائية (SCM) ، والتي تنشأ من الترقوة وتنتقل بشكل غير مباشر عبر كل جانب من جوانب الرقبة (الشكل 1 ج ، د).
اضبط طول السلك السالب للوصول إلى SCM بالقرب من الترقوة. قم بإزالة أنبوب الرصاص بعناية من السلك السالب ، مع التأكد من شد القطب الكهربائي الملفوف المصنوع من الفولاذ المقاوم للصدأ بالداخل باستخدام ملاقط دقيقة.
مرر إبرة الخياطة (7 مم) بخياطة 10 سم من خلال الانحناء على شكل حرف V من SCM لإنشاء حلقة. مرر القطب الكهربائي المصنوع من الفولاذ المقاوم للصدأ من السلك السالب عبر هذه الحلقة وضعه أسفل SCM بالقرب من الترقوة.
1. اربط الحلقة برفق لتجنب إتلاف SCM وكرر العملية ثلاث مرات لتأمين القطب الكهربائي المصنوع من الفولاذ المقاوم للصدأ. قم بتأمين الرصاص السالب بشكل أكبر عن طريق وضع الخيط الثاني على الجانب الجمجمي من SCM وربطه حول أنبوب الرصاص السالب (الشكل 1E).
قم بإجراء التقسيم حول عملية الخنجري وافصل الجلد بعناية عن العضلات من عملية الخنجري إلى الترقوة.
قم بتمديد الرصاص الموجب للوصول إلى عملية الخنجري. على غرار الرصاص السالب ، قم بإزالة أنبوب الرصاص من الرصاص الموجب ، مع ضمان شد القطب الكهربائي الملفوف المصنوع من الفولاذ المقاوم للصدأ بالداخل باستخدام ملاقط دقيقة.
استخدم إبرة 18 جم لإنشاء نفق تحت العضلة حول عملية الخنجري ، ثم ضع القطب الكهربائي المصنوع من الفولاذ المقاوم للصدأ في إبرة وقم بتمريره عبر العضلة حول عملية الخنجري.
بعد إزالة الإبرة ، قم بخياطة القطب الكهربائي الملفوف المصنوع من الفولاذ المقاوم للصدأ برفق على العضلات حول عملية الخنجري باستخدام إبرة خياطة (7 مم) بخيط 10 سم (الشكل 1 د). لمزيد من تأمين الرصاص الموجب ، ضع الخيط الثاني على الجانب الجمجفي من عملية الخنجري واربطه حول أنبوب الرصاص الموجب.
أغلق جميع الشقوق باستخدام إبرة خياطة (13 مم) بطول خياطة 20 سم (الشكل 1E ، F).
بعد الزرع ، ضع الماوس في قفص نظيف وضع القفص على tBase ، والذي يعمل كجهاز استقبال للقياس عن بعد للماوس (الشكل 1G). قم بتشغيل الكمبيوتر القابل للتسجيل واستخدم تطبيق برنامج تحليل البيانات المثبت لجمع بيانات تخطيط القلب. تأكد من أن بيانات تخطيط القلب تعرض أشكال الموجة العادية (الشكل 2 أ ، ب).
ملاحظة: في حالة وجود أشكال موجية أو ضوضاء غير طبيعية (كما هو موضح في الشكل 2 ج) ، أعد توصيل الخيوط السلبية والإيجابية تحت التخدير.
خلال فترة التعافي التي تستغرق يومين ، تأكد من معالجة الفأر بشكل مناسب عن طريق وضع جل الماء والطعام في قاع القفص. سجل سلوك القفص المنزلي فقط باستخدام مسجل محرك الأقراص خلال فترة الاسترداد هذه.

3. تسجيل تخطيط القلب وسلوك القفص المنزلي من الحمل إلى الفطام

قم بتشغيل الأضواء الحمراء أثناء المرحلة المظلمة لأن مسجل محرك الأقراص لا يمكنه العمل بدون ضوء. ضع مسجل محرك الأقراص بجوار قفص المنزل لتسجيل السلوك. سجل تخطيط القلب باستخدام تطبيق LabChart على الكمبيوتر القابل للتسجيل. قبل جمع بيانات تخطيط القلب، تحقق من معدل أخذ عينات مخطط كهربية القلب في LabChart.
ملاحظة: في هذا البروتوكول ، تم اختيار مسجل محرك الأقراص لأنه يمكن وضعه في أي مكان. بالإضافة إلى ذلك ، بالمقارنة مع كاميرا الفيديو ، يمكن لمسجلات محرك الأقراص التسجيل بزاوية واسعة واستخدام سعة تخزين بيانات أقل (على سبيل المثال ، يستخدم التسجيل لمدة 24 ساعة باستخدام مسجل محرك الأقراص حوالي 70 جيجابايت). في هذا العرض التوضيحي ، تم تعيين معدل أخذ عينات مخطط كهربية القلب في برنامج تحليل البيانات عند 1 كيلو / ثانية.
بعد تشغيل مسجل محرك الأقراص ، قم بتشغيل LabChart على الكمبيوتر لتسجيل السلوك وتخطيط القلب.
ملاحظة: في هذا العرض التوضيحي، تم استخدام ماكرو لتسجيل تخطيط القلب باستمرار وحفظ الملفات تلقائيا كل ساعتين. تم تنفيذ هذه العملية المتكررة طوال التجربة. بالإضافة إلى ذلك ، تم اختيار بطاقة SD بسعة 256 جيجابايت لأغراض التسجيل ، مما يسمح بجمع البيانات لمدة 24 ساعة تقريبا يوميا.
افحص الماوس بحثا عن الولادة وتشوهات الجسم وقم بأخذ عينات من البيانات من مسجل محرك الأقراص والكمبيوتر القابل للتسجيل. يعتبر اليوم الذي أنجبت فيه الفأر صغارها هو يوم ما بعد الولادة (PD) 0. قم بقياس وزن الجراء كل يوم بعد الولادة.
ملاحظة: في هذه الدراسة ، تم جمع تسجيل الفيديو من مسجل محرك الأقراص وملف بيانات تخطيط القلب من الكمبيوتر القابل للتسجيل كل صباح من الساعة 7:30 إلى 8:30. بالإضافة إلى ذلك ، لمنع ضوضاء تخطيط القلب من الاهتزازات الناتجة عن لمس العديد من الجراء للأم ، تم إعدام القمامة إلى أربعة صغار (نصفهم من الذكور والنصف الآخر من الإناث).
بعد التحقق من الماوس وجمع البيانات ، أعد كل شيء إلى موضعه الأصلي. قم بتشغيل مسجل محرك الأقراص والكمبيوتر القابل للتسجيل. ابدأ تشغيل تطبيق LabChart.
ملاحظة: إذا تم استخدام ماكرو لتسجيل تخطيط القلب، فانقر فوق زر الماكرو وقم بتهيئة الماكرو عن طريق تحديد زر التشغيل من خيار الإدارة .
مرة واحدة في الأسبوع ، استبدل القفص بآخر جديد. خلال هذه العملية ، قم بتضمين الفراش ، نصفها مستخدم سابقا ، والنصف الآخر جديد.
ملاحظة: تكررت هذه العملية ، بما في ذلك أخذ عينات البيانات وفحوصات الفئران ، من GD 17 إلى يوم ما بعد الولادة (PD) 21.

4. تحليل مخطط كهربية القلب

لتحليل بيانات تخطيط القلب، استخدم برنامج تحليل البيانات. ابدأ تشغيل LabChart وافتح ملف البيانات لفترة التسجيل. لتحليل تقلب معدل ضربات القلب (HRV) ، انقر فوق الزر HRV واضبط إعدادات اكتشاف النبض.
ملاحظة: في هذا العرض التوضيحي، حدد الإعداد المخصص وقم بتغيير الحد الأدنى لارتفاع الذروة إلى 1.2 لضبط الكشف.
بعد ضبط الإعدادات ، راجع جميع الإيقاعات واحذف أي بيانات ضوضاء (كما هو موضح في الشكل 2C).
ملاحظة: إذا لم يتم اكتشاف موجة R، فقم بإضافتها أو تعديلها باستخدام الزر HRV .
انقر فوق الزر HRV وحدد عرض مصنف الإيقاع. اختر جميع الإيقاعات في عرض مصنف الإيقاعات، ثم حدد عرض التقرير من زر HRV . انسخ البيانات من طريقة عرض التقرير والصقها في Excel.
ملاحظة: تعرض نتائج HRV ، كما هو مبين في الجدول 1 ، كلا من مجالي الوقت والطيف من خلال برنامج تحليل البيانات ، مما يتيح المراقبة.

5. تصنيف ethogram لسلوك القفص المنزلي

راجع جميع مقاطع الفيديو المسجلة للتحقق من وجود تشوهات ، مثل عدم تشغيل الضوء الأحمر أثناء المرحلة المظلمة ومسجل محرك الأقراص لا يعمل.
ملاحظة: يتم تسجيل الفيديو بنفس طريقة تسجيل مخطط كهربية القلب، مع التقاط مقاطع الفيديو كل ساعتين.
قم بتصنيف الرسم البياني بناء على معلمات مثل وضع الأم أثناء السلوك ، والوقت الذي تقضيه في السلوك ، والموقع الذي حدث فيه السلوك (الجدول 2) ، ثم راقب الفيديو من مسجل محرك الأقراص.

النتائج

بعد زرع جهاز القياس عن بعد في الفأرة الحامل ، قمنا بتسجيل مخطط كهربية القلب من الحمل إلى الرضاعة في قفص منزلي. تم ضبط معدل أخذ العينات على 1 كيلو / ثانية. لمقارنة مخطط كهربية القلب لكل حالة فسيولوجية للفأر الأم مع تجنب تأثير إيقاع الساعة البيولوجية ، تم تحليل بيانات 10 دقائق...

Discussion

في هذه الطريقة ، حيث تم زرع جهاز القياس عن بعد في الفئران الحامل ، يمكن تتبع مخطط كهربية القلب باستمرار في نفس الفأر من الحمل إلى الرضاعة. أظهر الفأر مخططات متضمنة الحركة ، مما يشير إلى اليقظة خلال جميع فترات التحليل (23: 32-23: 42) من GD 17 إلى PD 21. بالإضافة إلى ذلك ، أظهرت النتائج ...

Disclosures

ويعلن أصحاب البلاغ عدم وجود تضارب في المصالح.

Acknowledgements

تم دعم هذه الدراسة من قبل JSPS KAKENHI (أرقام المنح JP 21H04981 و 30974521) ومركز التنوع والإنصاف والشمول ، جامعة أزابو.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
24-h repeating timer	Panasonic	WH3311BP
5-0 Nylon suture	Natsume Seisakusho Co	-23s-N2
Anesthesia box	Natsume Seisakusho Co	KN-1010	W110×D110×H110mm
Anesthesia mask	Natsume Seisakusho Co	KN-1019-1
Anesthesic machine	Natsume Seisakusho Co	KN-1071-E
C57BL6/J mice	Clea Japan, Inc		Pregnancy mouse at 14 day
Clip light	Yazawa corporation	CLX60X02WH
Configurator System	Adinstuments	TR190
drive recorder	Transcend	TS-DP250A-32G
Food holder	Clea Japan, Inc	CL-2802
Isoflurane	FujiFilM	099-06571
LabChart Pro V8	Adinstuments	MLU260/8
LabChart8	Adinstuments	MLS060/8
Mouse Biopotential Telemeter	Adinstuments	MT10B
Needle 18 G 1 1/2	Terumo	NN-1838R
Panel heater	SANKO	4976285145407
PowerLab 4/26	Adinstuments	PL2604
Recordable computer	Mouse computer	mouse K7-H
red light bulb	ELPA	LDG1R-G-GWP254
Rubber mask	Natsume Seisakusho Co	KN-1019-M
SD card (256GB)	Transcend	TS256GUSD350V	It can record approximately 24 h
Suture needle 13 mm	Natsume Seisakusho Co	C-24-540-NO.0
Suture needle 7 mm	Natsume Seisakusho Co	C-24-540-NO.0000
tBase	Adinstuments	MT110

References

Bowlby, J. . Attachment and loss. Vol. 1. 1, (1969).
Teicher, M. H., Samson, J. A. Childhood maltreatment and psychopathology: A case for ecophenotypic variants as clinically and neurobiologically distinct subtypes. Am J Psychiatry. 170 (10), 1114-1133 (2013).
Hoskins, D. H. Consequences of parenting on adolescent outcomes. Societies. 4 (3), 506-531 (2014).
Caldji, C., et al. Maternal care during infancy regulates the development of neural systems mediating the expression of fearfulness in the rat. Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (9), 5335-5340 (1998).
Sakamoto, T., Ishio, Y., Ishida, Y., Mogi, K., Kikusui, T. Low maternal licking/grooming stimulation increases pain sensitivity in male offspring. Exp Anim. 70 (1), 13-21 (2021).
Champagne, F., Meaney, M. J. Like mother, like daughter: Evidence for non-genomic transmission of parental behavior and stress responsivity. Prog Brain Res. 133, 287-302 (2001).
Terkel, J., Rosenblatt, J. S. Maternal behavior induced by maternal blood plasma injected into virgin rats. J Comp Physiol Psychol. 65 (3), 479-482 (1968).
Amenomori, Y., Chen, C. L., Meites, J. Serum prolactin levels in rats during different reproductive states. Endocrinology. 86 (3), 506-510 (1970).
Yaguchi, K., et al. Dynamic modulation of pulsatile activities of oxytocin neurons in lactating wild-type mice. PloS One. 18 (5), e0285589 (2023).
Kikusui, T., Isaka, Y., Mori, Y. Early weaning deprives mouse pups of maternal care and decreases their maternal behavior in adulthood. Behav Brain Res. 162 (2), 200-206 (2005).
Kodogo, V., Azibani, F., Sliwa, K. Role of pregnancy hormones and hormonal interaction on the maternal cardiovascular system: a literature review. Clin Res Cardiol. 108 (8), 831-846 (2019).
Burke, S. D., et al. Circulatory and renal consequences of pregnancy in diabetic NOD mice. Placenta. 32 (12), 949-955 (2011).
Feldman, R., Magori-Cohen, R., Galili, G., Singer, M., Louzoun, Y. Mother and infant coordinate heart rhythms through episodes of interaction synchrony. Infant Behav Dev. 34 (4), 569-577 (2011).
Yoshida, S., et al. Infants show physiological responses specific to parental hugs. iScience. 23 (4), 100996 (2020).
Wass, S. V., et al. Parents mimic and influence their infant's autonomic state through dynamic affective state matching. Curr Biol. 29 (14), 2415-2422 (2019).
Esposito, G., et al. Infant calming responses during maternal carrying in humans and mice. Curr Biol. 23 (9), 739-745 (2013).
Khandoker, A. H., et al. Investigating the effect of cholinergic and adrenergic blocking agents on maternal-fetal heart rates and their interactions in mice fetuses. Biol Open. 11 (4), (2022).
Widatalla, N., et al. Correlation between maternal and fetal heart rate increases with fetal mouse age in typical development and is disturbed in autism mouse model treated with valproic acid. Front Psychiatry. 13, 998695 (2022).
Mezzacappa, E. S., Tu, A. Y., Myers, M. M. Lactation and weaning effects on physiological and behavioral responses to stressors. Physiol Behav. 78 (1), 1-9 (2003).
Slangen, B. F., Out, I. C., Janssen, B. J., Peeters, L. L. Blood pressure and heart rate variability in early pregnancy in rats. Am J Physiol. 273 (4), 1794-1799 (1997).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

This article has been published

Video Coming Soon

Keep me updated: