The authors would like to acknowledge funding support from the University of South Florida, Department of Surgery (Mack Wu, MD, PhD).

تم الحصول على الموافقة لجميع الإجراءات الحيوانية الواردة أدناه من جامعة جنة رعاية الحيوان جنوب ولاية فلوريدا (IACUC) والالتزام بجميع متطلبات قانون رعاية الحيوان ودليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية: ملاحظة. 1. إعداد ورقة سيليكون والأدوات الجراحية <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> شرائط قبل القطع (10.5 سم × 3.0 سم) من غير عززت 0.01 سمك، سيليكون الصف الطبية والأغطية وتعقيم باستخدام الأوتوكلاف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تنظيف وتعقيم الأدوات الجراحية المناسبة (مقص، ملقط وستائر أو المناشف لإنشاء حقل معقمة أثناء الجراحة). </li></ol> 2. حيوانات التجارب <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام الذكور البالغين أو إناث الفئران وزنها في نطاق 250-350 ز تم الحصول عليها من مربي التجاري. إذا تستخدم الفئران الذين تتراوح أعمارهم بين، ينبغي أن تكون ≥350 ز من أجل ضمان البقاء على قيد الحياة أفضل بعد الجراحة. قبل بداية أي تجارب تأقلم جميع الحيوانات على الأقل7 أيام في ظل ظروف قياسية من الضوء الظلام دورة 12 ساعة مع الغذاء والماء بالمال وبالشهرة أيضا الإعلانية. </li></ol> 3. التخدير، تسكين ما قبل الجراحة وإعداد المنطوق <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لحث التخدير العام باستخدام الأيزوفلورين في 3٪ -4٪ عن طريق غرفة الاستقراء والحفاظ على (عبر استخدام مخروط الأنف) بنسبة 1٪ -2٪ مع O 2 أثناء إعداد الجلد والجراحة. رصد عمق التخدير عن طريق الملاحظة من معدل وعمق التنفس، قرصة بين الأصابع أو الجفني المنعكس طرفة. ملاحظة: في هذا الوقت، يمكن وضع مرهم التعليم والتدريب المهني على العيون لمنع جفاف في حين أن الحيوان هو تحت التخدير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في منطقة نائية موقع من منطقة العمليات الجراحية المعقمة، ووضع الفئران في وضعية الانبطاح وحلق ظهر مع كليبرز من قاعدة الرقبة إلى أسفل حوالي 11 سم. مرسام مع علامة دائمة، الخطوط العريضة ل3.0 سم x 10.5 سم رفرف (انظر الشكل 1A). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نقل الفئران إلى surgica نظيفة، والمعينمنطقة لتر مجهزة سادة التدفئة المعتمدة والستائر الجراحية المعقمة أو المناشف. حقن 5 ملغ / كغ كيتوبروفين تحت الجلد قبل أول شقوق جراحية لإدارة الألم. سوائل إضافية (المالحة) يمكن أن يعطى (تصل إلى 5 سم مكعب) تحت الجلد حسب الحاجة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحضير البشرة مزيدا من ينظف أولا مع 70٪ ايزوبروبيل والثانية مع 0.2٪ الكلورهيكسيدين، ثم تطبيق الستائر العقيمة لإنشاء حقل العقيمة. ويمكن أيضا أن 10٪ بوفيدون اليود (بتدين) يمكن استخدامها. ملاحظة: مضاد حيوي (الأمبيسلين في 15 ملغ / كلغ) يمكن أن تدار تحت الجلد، ولكن إذا تم استخدام تقنيات العقيم جيدة ليس هو مطلوب منها. </li></ol> 4. إنشاء الجروح استئصالية وBipedicled رفرف <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام معقمة، يمكن التخلص منها 6 مم أداة خزعة لكمة، وإنشاء اثنين دائرية الجروح &quot;الدماغية&quot; في وسط منطقة رفرف المعينة (الشكل 1B). يجب أن يكون عمق الجرح أسفل إلى (ليس من خلال) اللفافة الكامنة وراء carno السبلةالعضلات سوس (الشكل 1B الشكل). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام ملقط رفع الجلد في منتصف مخطط الجرح التي أنشأتها خزعة لكمة ومن ثم استخدام مقص القزحية (مع نصائح المنحنية) لاستئصال قطعة دائرية من نسيج (بما في ذلك العضلات عضلية السبلة). سوف تكون النتيجة سمك الكامل الجرح مع لفافة كقاعدة للجرح. ملاحظة: الأنسجة استئصاله (المقابس الجرح) يمكن المفاجئة مجمدة في النيتروجين السائل أو ثابتة في 10٪ O-مخزنة الفورمالين / N للتجهيز لاحق عن السيطرة، والجلد العادي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إنشاء رفرف bipedicled بجعل شقوق مع مشرط معقم على كل جانب من الجروح الدماغية على طول الخطوط المرسومة مسبقا (الشكل 1C) التي هي 10.5 سم في الطول و 3.0 سم عن بعضها البعض. يجب أن يكون عمق الشقوق وصولا الى العضلات paraspinous. باستخدام مقص القزحية، فصل لفافة السبلة العضلية من العضلات paraspinous، والحرص للحفاظ على لفافة سليمة مثل &quot;القاعدة&quot; من ​​مم اللكمات 6 (Figure 1D). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خذ 1 معقمة ورقة سيليكون قبل قطع ووضعها في بين لفافة السبلة العضلية والعضلات paraspinous (الشكل 1E) التأكد من أن ورقة لا ربط حزام الأمان أو طيها. باستخدام السوداء، خيوط غير قابل للامتصاص (حجم 4.0) إغلاق كل من شقوق خلال ترسيخ ورقة سيليكون على الجلد مع لا يقل عن 8 توقف غرز على كل جانب، على طول رفرف (الشكل 1F و1G). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام العقيمة، خزعة يمكن التخلص منها أداة لكمة، وإنشاء اثنين من السيطرة الجروح الداخلية &quot;غير الدماغية&quot; (وصولا الى الواجهة الأمامية للعضلة عضلية السبلة) 1 سم الوحشي على الجروح الدماغية على جانبي رفرف (الشكل 1G). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع مسطرة أدناه الجروح والتقاط الصور الرقمية لأغراض قياس الجرح (انظر الشكل 3A). في هذا الوقت، وتدفق الدم (التروية) يمكن رصدها عن طريق استخدام الليزر دوبلر أو معالجات أخرى (التنسيب المخدرات الموضعية) التي يؤدونها.</li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطبيق لاصقة السائل وافق كل من الجمجمة والذيلية للالجروح وفيلم شفافة خلع الملابس للحفاظ على بيئة الجرح رطبة ونظيفة (عقيمة). ويمكن وضع لخلع الملابس إضافي في نهاية الذيلية للرفرف لمنع الحيوانات من إزالة الغرز الأكثر الذيلية. </li></ol> 5. إجراءات ما بعد المنطوق <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع الحيوانات في أقفاص (يضم منفردة) مجهزة مغذيات الضحلة وذلك لمنع موقع الجراحية من فرك ضد وحدة التغذية. لا ينبغي أن تترك الحيوانات غير المراقب أو إعادتها إلى الشركة من الحيوانات الأخرى حتى يستعيد وعيه كافية للحفاظ على الاستلقاء القصية وعرض حركة هادفة. يجب وضع الحصير التدفئة أقل من نصف القفص لمدة تصل إلى 2 أيام خلال الانتعاش. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لإدارة الألم بعد العملية وإدارة كيتوبروفين (5 ملغ / كلغ) تحت الجلد للحيوانات الصباح و1X في اليوم التالي لمدة تصل إلى 48 ساعة بعد الجراحة. وينبغي أيضا مراقبة الحيوانات يوميا لعلامات طويلة من الألم، وفقدان الوزن أو التهابات الموقع الجراحية. </li></ol> 6. القياسات الجرح اللاحقة والتغييرات خلع الملابس <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قياس الجروح الدماغية وغير الدماغية في كثير من الأحيان تحت التخدير العام باستخدام الأيزوفلورين في 3٪ -4٪ عن طريق غرفة الاستقراء وحافظت (عبر مخروط الأنف) بنسبة 1٪ -2٪ مع O 2 كما في الخطوة 3.1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة خلع الملابس بلطف حتى لا سحب لاصقة من الجلد. في هذا الوقت يتم أخذ الصور الرقمية إضافية لقياسات الجرح، والعلاجات الموضعية إعادة تطبيق، التصوير دوبلر الليزر (LDI) أو معالجات أخرى أجريت لتلائم الاحتياجات المحقق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطبيق لاصق وخلع الملابس نظيفة والسماح للحيوان لاسترداد كما في الخطوة 5.1. </li></ol> 7. الجرح جمع والقتل الرحيم <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الدماغية الحصاد والجروح غير الدماغية (في الأيام يرى المحقق المناسب) في حين أن الحيوان هو تحت التخدير العام باستخدام الأيزوفلورين بنسبة 3٪ -4٪ عن طريق دائرة الهجرة والجنسيةغرفة uction وحافظت (عبر مخروط الأنف) بنسبة 1٪ -2٪ مع O 2 كما في الخطوة 3.1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام مشرط، وجعل الختان على شكل مربع حول الجرح لتشمل بعض الأنسجة السليمة حول الجرح. وضع الختان إلى 1.5 مل المفاجئة أنبوب سقف والمفاجئة التجميد في النيتروجين السائل (مخزن في -80 ° C) للتحليل الجزيئي في المستقبل أو احتضان في 10٪ من الفورمالين مخزنة O / N في RT لمعالجة النسيجي. ملاحظة: يمكن أيضا قطع الختان الجرح في نصف لتوفير مزيد من العينات لتحليلها. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد إزالة الأنسجة الجروح، والموت ببطء الحيوان باستخدام أسلوب معتمد من CO 2 الاستنشاق. </li></ol>

<ol>
	<li>Ansell, D. M., Holden, K. A., Hardman, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+wound+repair:+Are+they+cutting+it.">Animal models of wound repair: Are they cutting it.</a> Experimental dermatology. 21 (8), 581-585 (2012).</li><li>Dorsett-Martin, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rat+models+of+skin+wound+healing:+a+review.">Rat models of skin wound healing: a review.</a> Wound repair and regeneration : official publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society. 12 (6), 591-599 (2003).</li><li>Davidson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+for+wound+repair.">Animal models for wound repair.</a> Arch Dermatol Res. 290 (S1-11), (1998).</li><li>Finn, G., Magnus, S. A., Tonny, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Models+for+use+in+wound+healing+research:+A+survey+focusing+on+in+vitro+and+in+vivo+adult+soft+tissue).">Models for use in wound healing research: A survey focusing on in vitro and in vivo adult soft tissue).</a> Wound Repair and Regeneration. 8, (2000).</li><li>Gould, L. J., Leong, M., Sonstein, J., Wilson, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimization+and+validation+of+an+ischemic+wound+model.">Optimization and validation of an ischemic wound model.</a> Wound repair and regeneration : official publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society. 13 (6), 576-582 (2004).</li><li>Loots, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differences+in+cellular+infiltrate+and+extracellular+matrix+of+chronic+diabetic+and+venous+ulcers+versus+acute+wounds.">Differences in cellular infiltrate and extracellular matrix of chronic diabetic and venous ulcers versus acute wounds.</a> The Journal of investigative dermatology. 111 (5), 850-857 (1998).</li><li>Schwartz, D. A., Lindblad, W. J., Rees, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Altered+collagen+metabolism+and+delayed+healing+in+a+novel+model+of+ischemic+wounds.">Altered collagen metabolism and delayed healing in a novel model of ischemic wounds.</a> Wound Repair Regen. 3 (2), 204-212 (1995).</li><li>Chen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+and+mechanistic+validation+of+delayed+healing+rat+wounds+as+a+model+for+human+chronic+wounds.">Molecular and mechanistic validation of delayed healing rat wounds as a model for human chronic wounds.</a> Wound Repair and Regeneration. 7, (1999).</li><li>Zhang, Q., Chang, Q., Cox, R. A., Gong, X., Gould, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hyperbaric+oxygen+attenuates+apoptosis+and+decreases+inflammation+in+an+ischemic+wound+model.">Hyperbaric oxygen attenuates apoptosis and decreases inflammation in an ischemic wound model.</a> The Journal of investigative dermatology. 128 (8), 2102-2112 (2008).</li><li>Zhang, Q., Gould, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hyperbaric+oxygen+reduces+matrix+metalloproteinases+in+ischemic+wounds+through+a+redox-dependent+mechanism.">Hyperbaric oxygen reduces matrix metalloproteinases in ischemic wounds through a redox-dependent mechanism.</a> The Journal of investigative dermatology. 134 (1), 237-246 (2013).</li><li>Moor, A. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Consequences+of+age+on+ischemic+wound+healing+in+rats:+altered+antioxidant+activity+and+delayed+wound+closure.">Consequences of age on ischemic wound healing in rats: altered antioxidant activity and delayed wound closure.</a> Age (Dordrecht, Netherlands). 36 (2), 733-748 (2014).</li><li>Roy, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+a+preclinical+model+of+chronic+ischemic+wound).">Characterization of a preclinical model of chronic ischemic wound).</a> Physiological genomics. 37 (3), 211-224 (2009).</li><li>Biswas, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypoxia+inducible+microRNA+210+attenuates+keratinocyte+proliferation+and+impairs+closure+in+a+murine+model+of+ischemic+wounds.">Hypoxia inducible microRNA 210 attenuates keratinocyte proliferation and impairs closure in a murine model of ischemic wounds.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (15), 6976-6981 (2010).</li><li>Winocour, S., Vorstenbosch, J., Trzeciak, A., Lessard, L., Philip, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD109,+a+novel+TGF-beta+antagonist,+decreases+fibrotic+responses+in+a+hypoxic+wound+model.">CD109, a novel TGF-beta antagonist, decreases fibrotic responses in a hypoxic wound model.</a> Exp Dermatol. 23 (7), 475-479 (2014).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

<html> وكان التئام الجروح في الفئران غالبا ما تكون موضع نقاش نظرا لقدرتها على شفاء الجروح المصابة وارتفاع معدل تقلب interanimal 5. كان واحدا من الأهداف الأصلية للنموذج أثناء تطورها لتقليل هذا الاختلاف. تعديلات على عرض رفرف، والحد من عدد من الجروح مع وضع معين (تركزت على ر?...

تطوير العقاقير الفعالة وغيرها من التئام الجروح العلاجات تتطلب المناسبة في نماذج الجسم الحي، على الرغم من المشاكل المعروفة في ترجمة النتائج في نماذج حيوانية لعلاج الإنسان 1. ما يلي هو وصف لبروتوكول مفصلة لاستخدام نموذج الفئران من الجلد الدماغية التئام الجروح للتحقيق في الآليات التي تعزز فهم المرضية التئام الجروح. أنواع الفئران، وغالبا ما يعملون، نظرا لتوافر واسعة، وحجم ويستخدم طبيعة منصاع للدراسات التئام الجروح كما أنها كبيرة بما يكفي لتوفير مساحة الجلد مناسبة للجرح الجراحي واستئصالية، والتصوير وجمع الأنسجة 2. ومع ذلك فإنه ينبغي أن تؤخذ في الاعتبار حذرا أن الجلد من الفئران والإنسان تختلف تشريحيا، مع الفئران التي أشار إليها الحيوانات فضفاضة البشرة كما. هذه سمة مميزة تسمح الجرح الانكماش، بدلا من الاندمال بتشكل النسيج الظهاري للمساهمة بشكل كبير في إغلاق الجلد الفئران ثounds 2. بالإضافة إلى ذلك، فإن وجود تحت الجلد السبلة العضلات عضلية في الفئران، ويسهم في الشفاء من قبل كل من انكماش الكولاجين وتشكيل 3،4. واعتبرت هذه الفروق التشريحية مهمة جدا في تطوير الفئران الدماغية نموذج الجرح الجلد ونفذت تعديلات محددة لخفض الجرح انكماش وتقليص نفوذ السبلة العضلية في العضلات 5. في تقرحات القدم السكرية، وقرحة الساق الوريدية، وقرحة الضغط، تأخر الشفاء وتعتبر هذه الجروح المزمنة. وتتميز الجراح التي التهاب المفرط، والذي يمنع الجرح من التقدم إلى مراحل المقبلة من إصلاح الجرح 6. واحدة من العوامل الرئيسية في تطوير الجرح المزمن هو نقص التروية محلية الأنسجة (انخفاض تدفق الدم) 5 المساهمة في عدم القدرة على مسح الالتهاب. في الوقت الذي كان يجري تطوير هذا النموذج والتحقق من صحتها (في 2003-4)، لم تكن هناك نماذج حيوانية الموحدة التي يمكن أن توفر ما يكفي من الأنسجة لاختبار تحريض الأوعية الدموية في السرير الجرح، مرحلة أساسية خلال العادي التئام الجروح والدافع لتطوير هذا النموذج 5. ومع ذلك، فإن النموذج المقدم هنا هو تعديل للنموذج الجرح الدماغية ووصف في الأصل من قبل شوارتز وآخرون. (7) وبعد ذلك تستخدم في شكل معدل تشن وآخرون. 8 في النموذج الجرح الدماغية المعدلة، تم إجراء تغييرات للتحايل على الخصائص التشريحية المذكورة أعلاه من الفئران التي تؤدي إلى الشفاء من الانكماش بدلا من الاندمال بتشكل النسيج الظهاري: (1) يتم إنشاؤها اثنان بجروح استئصالية كاملة سمك ضمن bipedicled رفرف الجلد الظهرية و تتم إزالة العضلات عضلية السبلة من الجرح سرير من تشريح فقط فوق اللفافة العضلية. (2) رفرف نفسها له أبعاد أكثر ضيقة، وضمان أن إمدادات الدم هو عشوائي والجروح التي تقع في منتصف رانه لنقص تروية رفرف. تم إدراج (3) ورقة سيليكون تحت رفرف، ومنع readherence وضخه من رفرف من الأنسجة الكامنة وراءها. انكماش الجرح محدودة (لم يكن القضاء عليها) من خلال ترسيخ أو خياطة رفرف إلى ورقة سيليكون 5. وقد تم مؤخرا استخدام النموذج في الدراسات التي تتراوح بين الآثار بالأكسجين تحت الضغط على الجرح الدماغية الشفاء 9،10 إلى نقص تروية التئام الجروح في الشباب الذين تتراوح أعمارهم بين 11 مقابل الفئران وثبت أن تكون نموذجا يمكن الاعتماد عليها من نقص تروية الأنسجة لفترة طويلة. كما تم تكييفها أبعاد رفرف bipedicled لسلالات الفئران مختلفة، بما في ذلك سبراغ داولي (11 سم طولا و 2 سم واسعة) والجرذان F344 (10.5 سم طولا و 3.0-3.5 سم واسعة) وغيرها من الأنواع، بما في ذلك الخنازير 12 والفئران 13،14. هذا الفيديو ويستخدم F344 سلالة الفئران الفطرية في المظاهرة من نقص تروية نموذج الجرح الجلد. كان الموافقة على جميع الإجراءات الحيوانية الواردة أدناه حصول علىإد من جامعة جنة رعاية الحيوان جنوب ولاية فلوريدا (IACUC) والالتزام بجميع متطلبات قانون رعاية الحيوان ودليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="605">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Name of Reagent/ Equipment</td>
			<td style="width:103px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:216px;">Sil-Tec medical grade sheeting</td>
			<td style="width:103px;">Technical Products Inc.</td>
			<td style="width:119px;">500-3</td>
			<td>nonreinforced, 0.01 inches in thickness</td>
		</tr>
		<tr height="61">
			<td height="61" style="height:61px;width:216px;">Mini Iris scissors, 8cm, curved, SS</td>
			<td style="width:103px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:119px;">#503671</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Ethilon Nylon Sutures</td>
			<td style="width:103px;">Ethicon</td>
			<td style="width:119px;">1964G</td>
			<td>black, size 4.0, PC-3 16mm needles (3/8 circle)</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:216px;">Laser Doppler Imager</td>
			<td style="width:103px;">Moor Instruments</td>
			<td style="width:119px;">moorLDI2-IR</td>
			<td>Standard blood flow imager: http://us.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">ImageJ</td>
			<td style="width:103px;">NIH</td>
			<td style="width:119px;">free download</td>
			<td>http://rsb.info.nih.gov/ij/</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Mastisol</td>
			<td style="width:103px;">Henry Schein</td>
			<td style="width:119px;">Cat # 7289210</td>
			<td>Fisher Scientific NC9774929</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:216px;">Tegaderm</td>
			<td style="width:103px;">Medical Specialties&#160;</td>
			<td style="width:119px;">3M1624W</td>
			<td>Fisher Scientific NC9922128</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

demonstration of the rat ischemic skin wound model

الميل للجروح المزمنة في البشر يزيد مع الشيخوخة، والحالات المرضية مثل مرض السكري ووظيفة القلب الوعائية ضعف، والضغط غير مرتاح بسبب الجمود. وقد تم تطوير نماذج حيوانية أن محاولة لتقليد هذه الظروف لغرض تعزيز فهمنا للتعقيد الجروح المزمنة. نموذج الموصوفة هنا هو فأر الجلد الدماغية نموذج رفرف الذي يسمح بتخفيض فترة طويلة من تدفق الدم مما أدى إلى الجروح التي تصبح الدماغية وتشبه النمط الظاهري المزمن الجرح (خفض الأوعية الدموية، وزيادة الالتهابات وتأخر إغلاق الجرح). وهو يتألف من رفرف الظهرية bipedicled مع 2 الجروح الدماغية وضعها مركزيا و2 الجروح غير الدماغية الوحشي للرفرف والضوابط. وثمة إضافة جديدة لهذا الدماغية نموذج رفرف الجلد هو وضع ورقة سيليكون تحت رفرف التي تعمل كحاجز وجبيرة لمنع إعادة التوعي والحد من انكماش مثل التئام الجروح. وعلى الرغم منمناقشة باستخدام الفئران لالتئام الجروح الدراسات بسبب الاختلافات التشريحية والفسيولوجية واضحة تماما وذلك مقارنة مع البشر (أي وجود العضلات السبلة العضلية، القصير العمر، وزيادة عدد بصيلات الشعر، وقدرتها على شفاء الجروح المصابة) التعديلات العاملين في هذا النموذج جعله بديلا قيما لنماذج رفرف الجلد الدماغية التي سبق وضعها.

بروتوكول الفئران الدماغية الجرح نموذج الشفاء يجب أن تأخذ حوالي 20 دقيقة لكل حيوان إذا أجريت بكفاءة. قبل تطبيق خلع الملابس نموذج يجب أن تظهر ممثلة في الشكل 1G. وسيكون من المهم للتحقق من أن رفرف والجروح bipedicled هم فيه الدماغية. وقد تم قياس تحت الجلد توتر الأكسجين (Ps...

Watch this Scientific Journal Video about Demonstration of the Rat Ischemic Skin Wound Model at JoVE.com

Demonstration of the Rat Ischemic Skin Wound Model

الفئران، نظرا لحجمها، وتوافر، وسلوكها سهلة الانقياد بدلا من ذلك، وقد استخدمت كنموذج البحث لسنوات عديدة. والهدف من هذا البروتوكول هو الاستفادة من الفئران باعتبارها الجلد الجرح نموذج الشفاء الدماغية لتوفير معلومات قيمة حول الفيزيولوجيا المرضية من الجروح المزمنة.

مظاهرة في الجرذان الدماغية الجلد الجرح نموذج

The propensity for chronic wounds in humans increases with ageing, disease conditions such as diabetes and impaired cardiovascular function, and ...

demonstration-of-the-rat-ischemic-skin-wound-model

Research

JoVE Journal

Medicine

21.1K Views.  University of South Florida.  الفئران، نظرا لحجمها، وتوافر، وسلوكها سهلة الانقياد بدلا من ذلك، وقد استخدمت كنموذج البحث لسنوات عديدة. والهدف من هذا البروتوكول هو الاستفادة من الفئران باعتبارها الجلد الجرح نموذج الشفاء الدماغية لتوفير معلومات قيمة حول الفيزيولوجيا ا?...

Video: Demonstration of the Rat Ischemic Skin Wound Model

Accurate and Simple Measurement of the Pro-inflammatory Cytokine IL-1&beta; using a Whole Blood Stimulation Assay

Inflammatory processes resulting from the secretion of soluble mediators by immune cells, lead to various manifestations in skin, joints and other tissues as well as altered cytokine homeostasis. The innate immune system plays a crucial role in recognizing pathogens and other endogenous danger stimuli. One of the major cytokines released by innate immune cells is Interleukin (IL)-1. Therefore, we utilize a whole blood stimulation assay in order to measure the secretion of inflammatory cytokines and specifically of the pro-inflammatory cytokine IL-1&beta; 1, 2, 3.
Patients with genetic dysfunctions of the innate immune system causing autoinflammatory syndromes show an exaggerated release of mature IL-1&beta; upon stimulation with LPS alone. In order to evaluate the innate immune component of patients who present with inflammatory-associated pathologies, we use a specific immunoassay to detect cellular immune responses to pathogen-associated molecular patterns (PAMPs), such as the gram-negative bacterial endotoxin, lipopolysaccharide (LPS). These PAMPs are recognized by pathogen recognition receptors (PRRs), which are found on the cells of the innate immune system 4, 5, 6, 7. A primary signal, LPS, in conjunction with a secondary signal, ATP, is necessary for the activation of the inflammasome, a multiprotein complex that processes pro-IL-1&beta; to its mature, bioactive form 4, 5, 6, 8, 9, 10.
The whole blood assay requires minimal sample manipulation to assess cytokine production when compared to other methods that require labor intensive isolation and culturing of specific cell populations. This method differs from other whole blood stimulation assays; rather than diluting samples with a ratio of RPMI media, we perform a white blood cell count directly from diluted whole blood and therefore, stimulate a known number of white blood cells in culture 2. The results of this particular whole blood assay demonstrate a novel technique useful in elucidating patient cohorts presenting with autoinflammatory pathophysiologies.

Accurate and Simple Measurement of the Pro-inflammatory Cytokine IL-1&amp;#946; using a Whole Blood Stimulation Assay

We describe a simple immunoassay to measure the production of pro-inflammatory cytokines, such as IL-1 beta production, in patients presenting with autoinflammatory phenotypes. By activating cells in whole blood cultures with pathogen-associated molecular patterns, specifically with lipopolysaccharide, cytokine secretion can be conveniently evaluated in whole blood supernatants.

دقيقة وبسيطة قياس الموالية للالتهابات سايتوكاين 1β ايل باستخدام تحفيز الدم الجامعة الفحص

Inflammatory processes resulting from the secretion of soluble mediators by immune cells, lead to various manifestations in skin, joints and other tissues ...

A Simplified Technique for Producing an Ischemic Wound Model

One major obstacle in current diabetic wound research is a lack of an ischemic wound model that can be safely used in diabetic animals. Drugs that work well in non-ischemic wounds may not work in human diabetic wounds because vasculopathy is one major factor that hinders healing of these wounds. We published an article in 2007 describing a rabbit ear ischemic wound model created by a minimally invasive surgical technique. Since then, we have further simplified the procedure for easier operation. On one ear, three small skin incisions were made on the vascular pedicles, 1-2 cm from the ear base. The central artery was ligated and cut along with the nerve. The whole cranial bundle was cut and ligated, leaving only the caudal branch intact. A circumferential subcutaneous tunnel was made through the incisions, to cut subcutaneous tissues, muscles, nerves, and small vessels. The other ear was used as a non-ischemic control. Four wounds were made on the ventral side of each ear. This technique produces 4 ischemic wounds and 4 non-ischemic wounds in one animal for paired comparisons. After surgery, the ischemic ear was cool and cyanotic, and showed reduced movement and a lack of pulse in the ear artery. Skin temperature of the ischemic ear was 1-10 &deg;C lower than that on the normal ear and this difference was maintained for more than one month. Ear tissue high-energy phosphate contents were lower in the ischemic ear than the control ear. Wound healing times were longer in the ischemic ear than in the non-ischemic ear when the same treatment was used. The technique has now been used on more than 80 rabbits in which 23 were diabetic (diabetes time ranging from 2 weeks to 2 years). No single rabbit has developed any surgical complications such as bleeding, infection, or rupture in the skin incisions. The model has many advantages, such as little skin disruption, longer ischemic time, and higher success rate, when compared to many other models. It can be safely used in animals with reduced resistance, and can also be modified to meet different testing requirements.

We have developed a minimally invasive technique to create a rabbit ischemic ear wound model by dividing the central artery and nerve and the cranial neurovascular bundle. A subcutaneous tunnel then cuts all subcutaneous tissues. This procedure causes minimal skin disruption and can be safely used in diabetic animals.

أسلوب مبسط لإنتاج نموذج الجرح الدماغية

One major obstacle in current diabetic wound research is a lack of an ischemic wound model that can be safely used in diabetic animals. Drugs that work ...

Endothelin-1 Induced Middle Cerebral Artery Occlusion Model for Ischemic Stroke with Laser Doppler Flowmetry Guidance in Rat

Stroke is the number one cause of disability and third leading cause of death in the world, costing an estimated $70 billion in the United States in 20091, 2. Several models of cerebral ischemia have been developed to mimic the human condition of stroke. It has been suggested that up to 80% of all strokes result from ischemic damage in the middle cerebral artery (MCA) area3. In the early 1990s, endothelin-1 (ET-1) 4 was used to induce ischemia by applying it directly adjacent to the surface of the MCA after craniotomy. Later, this model was modified 5 by using a stereotaxic injection of ET-1 adjacent to the MCA to produce focal cerebral ischemia. The main advantages of this model include the ability to perform the procedure quickly, the ability to control artery constriction by altering the dose of ET-1 delivered, no need to manipulate the extracranial vessels supplying blood to the brain as well as gradual reperfusion rates that more closely mimics the reperfusion in humans5-7. On the other hand, the ET-1 model has disadvantages that include the need for a craniotomy, as well as higher variability in stroke volume8. This variability can be reduced with the use of laser Doppler flowmetry (LDF) to verify cerebral ischemia during ET-1 infusion. Factors that affect stroke variability include precision of infusion and the batch of the ET-1 used6. Another important consideration is that although reperfusion is a common occurrence in human stroke, the duration of occlusion for ET-1 induced MCAO may not closely mimic that of human stroke where many patients have partial reperfusion over a period of hours to days following occlusion9, 10. This protocol will describe in detail the ET-1 induced MCAO model for ischemic stroke in rats. It will also draw attention to special considerations and potential drawbacks throughout the procedure.

Several animal models of cerebral ischemia have been developed to simulate the human condition of stroke. This protocol describes the endothelin-1 (ET-1) induced middle cerebral artery occlusion (MCAO) model for ischemic stroke in rats. In addition, important considerations, advantages, and shortcomings of this model are discussed.

Endothelin-1 المستحثة انسداد الشريان الدماغي الأوسط نموذج للالسكتة الدماغية مع التوجيه بالليزر Flowmetry دوبلر في الجرذ

Stroke is the number one cause of disability and third leading cause of death in the world, costing an estimated $70 billion in the United States in ...

Angiogenesis in the Ischemic Rat Lung

The adult lung is perfused by both the systemic bronchial artery and the entire venous return flowing through the pulmonary arteries. In most lung pathologies, it is the smaller systemic vasculature that responds to a need for enhanced lung perfusion and shows robust neovascularization. Pulmonary vascular ischemia induced by pulmonary artery obstruction has been shown to result in rapid systemic arterial angiogenesis in man as well as in several animal models. Although the histologic assessment of the time course of bronchial artery proliferation in rats was carefully described by Weibel 1, mechanisms responsible for this organized growth of new vessels are not clear. We provide surgical details of inducing left pulmonary artery ischemia in the rat that leads to bronchial neovascularization. Quantification of the extent of angiogenesis presents an additional challenge due to the presence of the two vascular beds within the lung. Methods to determine functional angiogenesis based on labeled microsphere injections are provided.

The lung is perfused by both the systemic bronchial artery and pulmonary arteries. In most lung pathologies, it is the smaller systemic vasculature that shows robust neovascularization. Cessation of pulmonary blood flow promotes brisk bronchial angiogenesis. We provide surgical details of inducing left pulmonary artery ischemia that promotes bronchial neovascularization.

الأوعية الدموية في الرئة الجرذ الدماغية

The  adult lung is perfused by both the systemic bronchial artery and the entire  venous return flowing through the pulmonary arteries. In most lung ...

Murine Model of Wound Healing

Wound healing and repair are the most complex biological processes that occur in human life. After injury, multiple biological pathways become activated. Impaired wound healing, which occurs in diabetic patients for example, can lead to severe unfavorable outcomes such as amputation. There is, therefore, an increasing impetus to develop novel agents that promote wound repair. The testing of these has been limited to large animal models such as swine, which are often impractical. Mice represent the ideal preclinical model, as they are economical and amenable to genetic manipulation, which allows for mechanistic investigation. However, wound healing in a mouse is fundamentally different to that of humans as it primarily occurs via contraction. Our murine model overcomes this by incorporating a splint around the wound. By splinting the wound, the repair process is then dependent on epithelialization, cellular proliferation and angiogenesis, which closely mirror the biological processes of human wound healing. Whilst requiring consistency and care, this murine model does not involve complicated surgical techniques and allows for the robust testing of promising agents that may, for example, promote angiogenesis or inhibit inflammation. Furthermore, each mouse acts as its own control as two wounds are prepared, enabling the application of both the test compound and the vehicle control on the same animal. In conclusion, we demonstrate a practical, easy-to-learn, and robust model of wound healing, which is comparable to that of humans.

A murine model of cutaneous wound healing that can be used to assess therapeutic compounds in physiological and pathophysiological settings.

نموذج الفئران من التئام الجروح

Wound healing and repair are the most complex biological processes that occur in human life. After injury, multiple biological pathways become activated. ...

Ischemic Tissue Injury in the Dorsal Skinfold Chamber of the Mouse: A Skin Flap Model to Investigate Acute Persistent Ischemia

Despite profound expertise and advanced surgical techniques, ischemia-induced complications ranging from wound breakdown to extensive tissue necrosis are still occurring, particularly in reconstructive flap surgery. Multiple experimental flap models have been developed to analyze underlying causes and mechanisms and to investigate treatment strategies to prevent ischemic complications. The limiting factor of most models is the lacking possibility to directly and repetitively visualize microvascular architecture and hemodynamics. The goal of the protocol was to present a well-established mouse model affiliating these before mentioned lacking elements. Harder et al. have developed a model of a musculocutaneous flap with a random perfusion pattern that undergoes acute persistent ischemia and results in ~50% necrosis after 10 days if kept untreated. With the aid of intravital epi-fluorescence microscopy, this chamber model allows repetitive visualization of morphology and hemodynamics in different regions of interest over time. Associated processes such as apoptosis, inflammation, microvascular leakage and angiogenesis can be investigated and correlated to immunohistochemical and molecular protein assays. To date, the model has proven feasibility and reproducibility in several published experimental studies investigating the effect of pre-, peri- and postconditioning of ischemically challenged tissue.

The window of the murine dorsal skinfold chamber presented visualizes a zone of acute persistent ischemia of a musculocutaneous flap. Intravital epi-fluorescence microscopy permits for direct and repetitive assessment of the microvasculature and quantification of hemodynamics. Morphologic and hemodynamic results can further be correlated with histological and molecular analyses.

إصابة الأنسجة الدماغية في دائرة ثنية الجلد الظهري للماوس: A الجلد رفرف نموذج المعنية بالتحقيق في نقص التروية الحاد الثابتة

Despite profound expertise and advanced surgical techniques, ischemia-induced complications ranging from wound breakdown to extensive tissue necrosis are ...

A Mouse Fetal Skin Model of Scarless Wound Repair

Early in utero, but not in postnatal life, cutaneous wounds undergo regeneration and heal without formation of a scar. Scarless fetal wound healing occurs across species but is age dependent. The transition from a scarless to scarring phenotype occurs in the third trimester of pregnancy in humans and around embryonic day 18 (E18) in mice. However, this varies with the size of the wound with larger defects generating a scar at an earlier gestational age. The emergence of lineage tracing and other genetic tools in the mouse has opened promising new avenues for investigation of fetal scarless wound healing. However, given the inherently high rates of morbidity and premature uterine contraction associated with fetal surgery, investigations of fetal scarless wound healing in vivo require a precise and reproducible surgical model. Here we detail a reliable model of fetal scarless wound healing in the dorsum of E16.5 (scarless) and E18.5 (scarring) mouse embryos.

During mammalian development, early gestational skin wounds heal without a scar. Here we detail a reliable and reproducible model of fetal scarless wound healing in the cutaneous dorsum of E16.5 (scarless) and E18.5 (scarring) mouse embryos.

نموذج الجلد ماوس الجنين من إصلاح الجرح Scarless

Early in utero, but not in postnatal life, cutaneous wounds undergo regeneration and heal without formation of a scar. Scarless fetal wound healing occurs ...

Rat Model of Photochemically-Induced Posterior Ischemic Optic Neuropathy

Posterior Ischemic optic neuropathy (PION) is a sight-devastating disease in clinical practice. However, its pathogenesis and natural history have&#160;remained poorly understood. Recently, we developed a reliable, reproducible animal model of PION and tested the treatment effect of some neurotrophic factors in this model1. The purpose of this video is to demonstrate our photochemically induced model of posterior ischemic optic neuropathy, and to evaluate its effects with retrograde labeling of retinal ganglion cells. Following surgical exposure of the posterior optic nerve, a photosensitizing dye, erythrosin B, is intravenously injected and a laser beam is focused onto the optic nerve surface. Photochemical interaction of erythrosin B and the laser during irradiation damages the vascular endothelium, prompting microvascular occlusion mediated by platelet thrombosis and edematous compression. The resulting ischemic injury yields a gradual but pronounced retinal ganglion cell dieback, owing to a loss of axonal input - a remote, injury-induced and clinically relevant outcome. Thus, this model provides a novel platform to study the pathophysiologic course of PION,&#160;and can be further optimized for testing therapeutic approaches for optic neuropathies as well as other CNS ischemic diseases.

The goal of this protocol is to photochemically induce ischemic injury to the posterior optic nerve in rat. This model is critical to studies of the pathophysiology of posterior ischemic optic neuropathy, and therapeutic approaches for this and other optic neuropathies, as well as of other CNS ischemic diseases.

الفئران نموذج الضوئية التي يسببها الخلفي الإقفارية العصبي البصري

Posterior Ischemic optic neuropathy (PION) is a sight-devastating disease in clinical practice. However, its pathogenesis and natural history ...

A Piglet Model of Neonatal Hypoxic-Ischemic Encephalopathy

Birth asphyxia, which causes hypoxic-ischemic encephalopathy (HIE), accounts for 0.66 million deaths worldwide each year, about a quarter of the world&#8217;s 2.9 million neonatal deaths. Animal models of HIE have contributed to the understanding of the pathophysiology in HIE, and have highlighted the dynamic process that occur in brain injury due to perinatal asphyxia. Thus, animal studies have suggested a time-window for post-insult treatment strategies. Hypothermia has been tested as a treatment for HIE in pdiglet models and subsequently proven effective in clinical trials. Variations of the model have been applied in the study of adjunctive neuroprotective methods and piglet studies of xenon and melatonin have led to clinical phase I and II trials1,2. The piglet HIE model is further used for neonatal resuscitation- and hemodynamic studies as well as in investigations of cerebral hypoxia on a cellular level. However, it is a technically challenging model and variations in the protocol may result in either too mild or too severe brain injury. In this article, we demonstrate the technical procedures necessary for establishing a stable piglet model of neonatal HIE. First, the newborn piglet (&#60; 24 hr old, median weight 1500 g) is anesthetized, intubated, and monitored in a setup comparable to that found in a neonatal intensive care unit. Global hypoxia-ischemia is induced by lowering the inspiratory oxygen fraction to achieve global hypoxia, ischemia through hypotension and a flat trace amplitude integrated EEG (aEEG) indicative of cerebral hypoxia. Survival is promoted by adjusting oxygenation according to the aEEG response and blood pressure. Brain injury is quantified by histopathology and magnetic resonance imaging after 72 hr.

Hypoxic-ischemic encephalopathy following perinatal asphyxia can be studied using animal models. We demonstrate the procedures necessary for establishing a piglet model of neonatal hypoxic-ischemic encephalopathy.

A الخنزير الصغير نموذج من الأطفال حديثي الولادة نقص الأوكسجين، اعتلال الدماغ الإقفاري

Birth asphyxia, which causes hypoxic-ischemic encephalopathy (HIE), accounts for 0.66 million deaths worldwide each year, about a quarter of the ...

The Rodent Model of Nonarteritic Anterior Ischemic Optic Neuropathy (rNAION)

Nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy (NAION) is a focal ischemic lesion of the optic nerve that affects 1/700 individuals throughout their lifetime. NAION results in optic nerve edema, selective loss of the retinal ganglion cell neurons (RGCs) and atrophy of the optic nerve. A rodent model of NAION that expresses most NAION features and sequelae has been developed, which is applicable to both rats and mice. This model utilizes a focal laser application of 532 nm wavelength to illuminate a photoactive dye, Rose Bengal (RB), to cause capillary damage and leakage at the targeted anterior optic nerve (the laminar region). After rNAION induction, there is an early optic nerve ischemia, optic nerve edema, and intraneural inflammation, followed by selective RGC and axonal loss. Since the optic nerve is a CNS white matter tract, the rNAION model is applicable to mechanistic studies of selective white matter ischemia, as well as neuroprotective analyses and short and long-term mechanisms of glial and neuronal response to ischemia.

The Rodent Model of Nonarteritic Anterior Ischemic Optic Neuropathy rNAION

The following report describes how to replicate the rodent model of nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy (rNAION), using the appropriate dye, contact lens and laser parameters. We also reveal the appropriate steps for evaluating the rNAION lesion in vivo.

نموذج القوارض من Nonarteritic الإقفارية العصبي البصري الأمامي (rNAION)

Nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy (NAION) is a focal ischemic lesion of the optic nerve that affects 1/700 individuals throughout their ...