خطوط الخلايا البروستاتا يتم توفير يرجى من قبل الدكتور لينغ يو وانغ والدكتور شينغ Jien الكونغ في مركز السرطان، وجامعة كاليفورنيا ديفيس. ويدعم هذا المشروع من قبل المعاهد الوطنية للصحة منحة انجذاب غلفاني 4R33AI080604.

1. خلايا التثقيف البروستاتا <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ثقافة pRNS-1-1 وPNT2 البروستاتا الخلايا على 100 ​​أطباق ثقافة ملم في المتوسط ​​1640 RPMI تستكمل مع 10٪ FBS والمضادات الحيوية-مضاد فطري عند 37 درجة مئوية مع 5٪ CO 2. تحديث مستنبت كل يوم حتى تصل إلى خلايا 80٪ confluency للتجارب انجذاب غلفاني. </li></ol> 2. تجميع انجذاب غلفاني الغرف <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تجميع الدوائر السفلى <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> القضاء على انجذاب غلفاني غرفة من البلاستيك مع 2-بروبانول. تطبيق السداده الصف السيليكون البحرية حول فتحات دائرية على الجانب السفلي من الغرفة مع حقنة وإرفاق ساترة كبيرة (الشكل 1). استخدام الجانب الخلفي للقضيب من القطن لدفع أسفل ساترة وتمحو الغراء الزائد مع مسحات القطن. فتحات دائرية تسمح على المديين المتوسط ​​والتيار الكهربائي لتتدفق على الخلايا تقع بين اثنين من الخزانات المتوسطة الداخلية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قطع صغيرة ساترة لجعل 6 مم × 25 مم الفواصل مع علامة نقطة الماس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الوجه الغرفة. تطبيق 2 المشارب من الغراء السيليكون مع حقنة و / أو ملعقة معدنية لإنشاء 10 مم × 25 مم سطح القناة لمرفق الخلية بين فتحات دائرية 2 على الزجاج السفلي. الغراء 2 قطعة من الزجاج الفاصل بين فتحات دائرية 2. استخدام الجانب الخلفي من تطبيقها القطن لدفع أسفل الفواصل وتمحو الغراء الزائد مع مسحات القطن و / أو المسواك. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تجف الغرفة لمدة 24 ساعة حتى يتم الشفاء الغراء السيليكون. نقع في غرفة المقطر بين عشية وضحاها بالماء لإزالة بقايا حمض الخليك من الغراء. تجفيف غرفة للاستخدام الفوري، أو تخزين غرفة لاستخدامها لاحقا في وعاء نظيف. <img alt="الشكل (1)" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51973/51973fig1highres.jpg" width="500" /> الشكل 1: جمعية الغرفة أسفل انجذاب غلفاني. A) ومرفق ساترة كبيرة إلى أسفل غرفة نظيفة. B) Tالتعليم الجامعي يتم لصقها قطعة من الزجاج الفواصل بين فتحات دائرية 2 لإنشاء 10 مم × 25 مم قناة للخلايا لإرفاق. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بذر الخلايا على غرف انجذاب غلفاني <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد تتطلب عدد من الغرف انجذاب غلفاني اللازمة للتجربة. كل سطر الخلية أو العلاج يتطلب غرفة انجذاب غلفاني واحدة. مسح غرف انجذاب غلفاني مع 2-بروبانول. غسل غرف مع العقيمة PBS 3 مرات والتحقق من تدفق السائل بين فتحات دائرية 2 في غرف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أرفق غرف في أطباق زراعة الخلايا العقيمة والسماح لهم لكي تتوازن في 37 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة. فصل الخلايا البروستاتا من طبق ثقافتهم باستخدام 5 مل 0.25٪ التربسين-EDTA عند 37 درجة مئوية لمدة 5 دقائق. تحييد التربسين-EDTA مع 5 مل 10٪ FBS في برنامج تلفزيوني. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نقل الخلايا إلى 15 مل أنابيب وأجهزة الطرد المركزي الخلايا لمدة 5 دقائق في 200 x ج، 37 ° C. نضح طاف واعادة تعليق الخلايا في 1 مل من مستنبت. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يستغرق 20 μلتر من حل الخلية لتحميل إلى غرفة الفرز وحساب عدد الخلايا. ضبط تركيز الخلية إلى 8 × 10 4 خلية / مل مع الثقافة المتوسطة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خذ غرف انجذاب غلفاني من C حاضنة 37 درجة. البذور 350 ميكرولتر من تعليق الخلية على كل من المجلسين. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> احتضان الخلايا في الدوائر بين عشية وضحاها في صحن الثقافة مع Kimwipe رطبة أو في غرفة الرطوبة في الحاضنة عند 37 درجة مئوية مع 5٪ CO 2. </li></ol></li></ol><img alt="الشكل 2" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51973/51973fig2highres.jpg" width="500" /> الشكل 2: البذر الخلايا إلى غرفة تجفف غرفة السفلى وتنظيفها وtrypsinized خلايا A) البروستاتا، عد ونقل إلى غرفة وحضنت بين عشية وضحاها B) ومرفق ساترة قصوى لختم الغرفة قبل التصوير... <ol start="3" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Assembling أعلى غرف <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تجميع الغرفة العليا قبل التصوير. يمكن المجهر تستوعب سوى التصوير غرفة انجذاب غلفاني واحدة في وقت واحد. الاحماء 10 مل من مستنبت في 37 ° C لكل غرفة انجذاب غلفاني. نقل غرفة انجذاب غلفاني من الحاضنات إلى 37 درجة مئوية في درجات الحرارة لوحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> شطف الخلايا مع مستنبت لإزالة الخلايا غير مرتبط. ترك 400 ميكرولتر من المتوسطة في الغرفة. استخدام حقنة لتطبيق عالية الشحوم فراغ على رأس كل من الفواصل الزجاجية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة ساترة صغيرة لختم الغرفة. اضغط بلطف إلى أسفل ساترة مع الجانب الخلفي للقضيب من القطن. تمحو المتوسطة الزائدة مع مسحات القطن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يجف سطح الزجاج وتطبيق عالية الشحوم فراغ لاغلاق الفجوة بين ساترة والغرفة. استخدام ملعقة معدنية لنشر الشحوم. إضافة 4 مل من مستنبت إلى الخزانات الداخلية والتحقق من تدفق السائل بين الخزانات. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل أجارالجسور <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قطع زوج من 2 بوصة أنابيب PVC طويلة (503/16 ID س 5/16 1/16 OD X ستريت)، والوجه وإدراجها في 100 مل دورق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قياس 200 ملغ Bacto آجار وإضافته في قارورة 50 مل مع 10 مل مستنبت لجعل 2٪ هلام أجار. الميكروويف لمدة 30 ثانية. تحميل هلام أجار إلى أنابيب بلاستيكية مع الماصة نقل. ترك الجسور أجار في درجة حرارة الغرفة لمدة 10 دقيقة لترسيخ آغار. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة 2 مل مستنبت إلى الخزانات الخارجية للغرفة انجذاب غلفاني. أدخل الجسور أجار إلى الخزانات المتوسطة الداخلية والخارجية لإجراء الحالية. </li></ol></li></ol><img alt="الشكل (3)" fo:content-width="3.5in" src="/files/ftp_upload/51973/51973fig3highres.jpg" width="350" /> الرقم 3: تصوير الخلايا على غرفة رسم تخطيطي للتدليل على التجميع النهائي للغرفة انجذاب غلفاني. وختم الغرفة تماما مع ارتفاع الشحوم فراغ. يضاف المتوسطة رس ملء الخزانات، ويتم إدراج اثنين من الجسور أجار في الغرفة. ثم يتم تحويل غرفة انجذاب غلفاني إلى مرحلة المجهر وتعلق الأقطاب الكهربائية لتطبيق الحقل الكهربائي. ويظهر الجانبية الرأي من الغرفة انجذاب غلفاني تجميعها لإثبات أن يتدفق التيار الكهربائي على الخلايا من خلال الجسور أجار والفضاء بين غطاء زجاجي. التصوير 3. الوقت الفاصل <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> التبديل على غرفة البيئية إلى 37 درجة مئوية مع 5٪ CO 2 في ساعة تعميم الهواء 2 قبل التصوير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> التبديل على المجهر والشروع في البرمجيات الحصول على الصورة. معايرة مرحلة المجهر وحدد الهدف 10X. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نقل غرف انجذاب غلفاني إلى مرحلة المجهر، وتأمين الغرفة مع الشريط والتركيز على الخلايا. إدراج الأقطاب انجذاب غلفاني إلى الخزانات الخارجي مع الكاثود على الجانب الأيمن. تأمين الأسلاك والأقطاب مع الشريط. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> التبديل على السلطة بوس لتطبيق حقل كهربائي الى قاعة المحكمة. قياس الجهد الناتج مع الفولتميتر عبر الغرفة لتصل إلى 2.5 فولت ل25 مم غرفة طويلة (100 فولت / مم). الحفاظ على قوة الميدان خلال التجربة عن طريق ضبط الانتاج الحالي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحديد 10 نقطة في جميع أنحاء الغرفة لتصوير فيلم في البرنامج لتوليد عشرة أفلام مرور الزمن. إعداد الشروط الاستحواذ على فترات 10 دقيقة لمدة 2 ساعة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بدء التصوير وضبط الانتاج الحالي حسب الحاجة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في نهاية التجربة، وإزالة غرفة من مرحلة وإصلاح الخلايا مع 95٪ كحول. كسر مفتوحة الغرفة بشفرة حلاقة لتنظيف وإعادة استخدامها. </li></ol> 4. الكمي لانجذاب غلفاني <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تدوير الأفلام الوقت الفاصل بين وإعادة توجيه-القطب السالب إلى الجزء العلوي من الصور. تصدير الأفلام إلى تتبع خلية البرمجيات. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تتبع (س، ص) موقف 10-20 خلايا في كل نقطة في الوقت من كل فيلم (الشكل 4 A، B) يدويا.، وهو نفس اتجاه المجال الكهربائي، وسيتم احتساب المسافات الهجرة والزوايا نسبة إلى اتجاه الشمال والجنوب في تتبع الخلايا البرمجيات (الشكل 4C). ملاحظة: يتم تحويل متوسط ​​سرعة الهجرة من المسافة إجمالي الهجرة ومجموع وقت التصوير. يتم تحويل اتجاهها من زوايا لقيمة جيب التمام. إذا تهاجر الخلايا مع الاتجاهية عشوائي، فإن متوسط ​​صافي جيب التمام تكون قريبة من الصفر. إذا كانت الخلايا تهاجر مباشرة نحو الكاثود، فإن قيمة جيب التمام يكون +1. إذا كانت الخلايا تهاجر مباشرة نحو القطب الموجب، فإن قيمة جيب التمام يكون -1. </li></ol><img alt="الشكل (4)" fo:content-width="4in" src="/files/ftp_upload/51973/51973fig4highres.jpg" width="400" /> الشكل 4: تتبع خلية لقياس الاتجاهية A) تراكب خطوط تتبع مع ​​الصور الخلية. و(س، ص) مواقف الخلايا مانواتتبع LLY في الأفلام مرور الزمن. . إذا كانت الخلايا تهاجر بشكل عشوائي، فإن متوسط ​​جيب التمام هي قريبة من الصفر ب) ومع ذلك، إذا كانت الخلايا تهاجر نحو القطب السالب أو الموجب، فإن قيمة متوسط ​​جيب التمام هي قريبة من + (الكاثود) أو - (الأنود) 1.0 C ) وتقدم الاتجاهية التي كتبها قيمة جيب التمام، والتي يتم تحويلها من زوايا الهجرة (θ). جيب التمام (θ) يساوي نسبة المسافة من (المسافة الهجرة) إلى المسافة ب (المسافة المتوقعة لاتجاه المجال الكهربائي). <ol start="3" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حفظ القياسات. استيراد البيانات إلى تطبيق قاعدة بيانات لحساب النتائج مجتمعة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تصدير البيانات المجمعة لمتوسط ​​سرعة الهجرة ومتوسط ​​قيمة جيب التمام إلى جدول بيانات لرسم الرسوم البيانية (الشكل 5). </li></ol>

<ol>
	<li>Reid, B., Nuccitelli, R., Zhao, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Non-invasive+measurement+of+bioelectric+currents+with+a+vibrating+probe.">Non-invasive measurement of bioelectric currents with a vibrating probe.</a> Nat Protoc. 2 (3), 661-669 (2007).</li><li>Cao, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endogenous+electric+currents+might+guide+rostral+migration+of+neuroblasts.">Endogenous electric currents might guide rostral migration of neuroblasts.</a> EMBO Rep. 14 (2), 184-190 (2013).</li><li>Hotary, K. B., Robinson, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endogenous+electrical+currents+and+voltage+gradients+in+Xenopus+embryos+and+the+consequences+of+their+disruption.">Endogenous electrical currents and voltage gradients in Xenopus embryos and the consequences of their disruption.</a> Dev Biol. 166 (2), 789-800 (1994).</li><li>Hotary, K. B., Robinson, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evidence+of+a+role+for+endogenous+electrical+fields+in+chick+embryo+development.">Evidence of a role for endogenous electrical fields in chick embryo development.</a> Development. 114 (4), 985-996 (1992).</li><li>Yamashita, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electric+axon+guidance+in+embryonic+retina:+galvanotropism+revisited.">Electric axon guidance in embryonic retina: galvanotropism revisited.</a> Biochem Biophys Res Commun. 431 (2), 280-283 (2013).</li><li>Wood, M. D., Willits, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Applied+electric+field+enhances+DRG+neurite+growth:+influence+of+stimulation+media,+surface+coating+and+growth+supplements.">Applied electric field enhances DRG neurite growth: influence of stimulation media, surface coating and growth supplements.</a> J Neural Eng. 6 (4), 046003 (2009).</li><li>Kucerova, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+electrical+signals+in+murine+corneal+wound+re-epithelialization.">The role of electrical signals in murine corneal wound re-epithelialization.</a> J Cell Physiol. 226 (6), 1544-1553 (2011).</li><li>Sillman, A. L., Quang, D. M., Farboud, B., Fang, K. S., Nuccitelli, R., Isseroff, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+Dermal+fibroblasts+do+not+exhibit+directional+migration+on+collagen+I+in+direct-current+electric+fields+of+physiological+strength.">Human Dermal fibroblasts do not exhibit directional migration on collagen I in direct-current electric fields of physiological strength.</a> Exp Dermatol. 12 (4), 396-402 (2003).</li><li>Allen, G. M., Mogilner, A., Theriot, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrophoresis+of+cellular+membrane+components+creates+the+directional+cue+guiding+keratocyte+galvanotaxis.">Electrophoresis of cellular membrane components creates the directional cue guiding keratocyte galvanotaxis.</a> Curr Biol. 23 (7), 560-568 (2013).</li><li>Nishimura, K. Y., Isseroff, R. R., Nuccitelli, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+keratinocytes+migrate+to+the+negative+pole+in+direct+current+electric+fields+comparable+to+those+measured+in+mammalian+wounds.">Human keratinocytes migrate to the negative pole in direct current electric fields comparable to those measured in mammalian wounds.</a> J Cell Sci. 109 (1), 199-207 (1996).</li><li>Farboud, B., Nuccitelli, R., Schwab, I. R., Isseroff, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=DC+electric+fields+induce+rapid+directional+migration+in+cultured+human+corneal+epithelial+cells.">DC electric fields induce rapid directional migration in cultured human corneal epithelial cells.</a> Exp Eye Res. 70 (5), 667-673 (2000).</li><li>Fang, K. S., Ionides, E., Oster, G., Nuccitelli, R., Isseroff, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epidermal+growth+factor+receptor+relocalization+and+kinase+activity+are+necessary+for+directional+migration+of+keratinocytes+in+DC+electric+fields.">Epidermal growth factor receptor relocalization and kinase activity are necessary for directional migration of keratinocytes in DC electric fields.</a> J Cell Sci. 112 (12), 1967-1978 (1999).</li><li>Li, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activated+T+lymphocytes+migrate+toward+the+cathode+of+DC+electric+fields+in+microfluidic+devices.">Activated T lymphocytes migrate toward the cathode of DC electric fields in microfluidic devices.</a> Lab Chip. 11 (7), 1298-1304 (2011).</li><li>Meng, X., Arocena, M., Penninger, J., Gage, F. H., Zhao, M., Song, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PI3K+mediated+electrotaxis+of+embryonic+and+adult+neural+progenitor+cells+in+the+presence+of+growth+factors.">PI3K mediated electrotaxis of embryonic and adult neural progenitor cells in the presence of growth factors.</a> Exp Neurol. 227 (1), 210-217 (2011).</li><li>Wu, D., Ma, X., Lin, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=DC+Electric+Fields+Direct+Breast+Cancer+Cell+Migration,+Induce+EGFR+Polarization,+and+Increase+the+Intracellular+Level+of+Calcium+Ions.+.">DC Electric Fields Direct Breast Cancer Cell Migration, Induce EGFR Polarization, and Increase the Intracellular Level of Calcium Ions. .</a> Cell Biochem Biophys. 67 (3), 1115-1125 (2013).</li><li>Martin-Granados, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+role+for+PP1/NIPP1+in+steering+migration+of+human+cancer+cells.">A role for PP1/NIPP1 in steering migration of human cancer cells.</a> PLoS One. 7 (7), 40769 (2012).</li><li>Yang, H. Y., Charles, R. P., Hummler, E., Baines, D. L., Isseroff, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+epithelial+sodium+channel+mediates+the+directionality+of+galvanotaxis+in+human+keratinocytes.">The epithelial sodium channel mediates the directionality of galvanotaxis in human keratinocytes.</a> J Cell Sci. 126 (9), 1942-1951 (2013).</li><li>Zhao, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrical+signals+control+wound+healing+through+phosphatidylinositol-3-OH+kinase-gamma+and+PTEN.">Electrical signals control wound healing through phosphatidylinositol-3-OH kinase-gamma and PTEN.</a> Nature. 442 (7101), 457-460 (2006).</li><li>Shanley, L. J., Walczysko, P., Bain, M., MacEwan, D. J., Zhao, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influx+of+extracellular+Ca2++is+necessary+for+electrotaxis+in+Dictyostelium.">Influx of extracellular Ca2+ is necessary for electrotaxis in Dictyostelium.</a> J Cell Sci. 119 (22), 4741-4748 (2006).</li><li>Zhao, M., Agius-Fernandez, A., Forrester, J. V., McCaig, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Directed+migration+of+corneal+epithelial+sheets+in+physiological+electric+fields.">Directed migration of corneal epithelial sheets in physiological electric fields.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 37 (13), 2548-2558 (1996).</li><li>Peng, H. B., Jaffe, L. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Polarization+of+fucoid+eggs+by+steady+electrical+fields.">Polarization of fucoid eggs by steady electrical fields.</a> Dev Biol. 53 (2), 277-284 (1976).</li><li>Lee, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+adult+human+prostatic+epithelial-cells+immortalized+by+polybrene-induced+DNA+transfection+with+a+plasmid+containing+an+origin-defective+sv40-genome.">Characterization of adult human prostatic epithelial-cells immortalized by polybrene-induced DNA transfection with a plasmid containing an origin-defective sv40-genome.</a> Int J Oncol. 4 (4), 821-830 (1994).</li><li>Berthon, P., Cussenot, O., Hopwood, L., Leduc, A., Maitland, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+expression+of+sv40+in+normal+human+prostatic+epithelial+and+fibroblastic+cells+-+differentiation+pattern+of+non-tumorigenic+cell-lines.">Functional expression of sv40 in normal human prostatic epithelial and fibroblastic cells - differentiation pattern of non-tumorigenic cell-lines.</a> Int J Oncol. 6 (2), 333-343 (1995).</li><li>Aurich-Costa, J., Vannier, A., Gr&#233;goire, E., Nowak, F., Cherif, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=IPM-FISH,+a+new+M-FISH+approach+using+IRS-PCR+painting+probes:+application+to+the+analysis+of+seven+human+prostate+cell+lines.">IPM-FISH, a new M-FISH approach using IRS-PCR painting probes: application to the analysis of seven human prostate cell lines.</a> Genes Chromosomes Cancer. 30 (2), 143-160 (2001).</li><li>Tyson, D. R., Inokuchi, J., Tsunoda, T., Lau, A., Ornstein, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Culture+requirements+of+prostatic+epithelial+cell+lines+for+acinar+morphogenesis+and+lumen+formation+in+vitro:+role+of+extracellular+calcium.">Culture requirements of prostatic epithelial cell lines for acinar morphogenesis and lumen formation in vitro: role of extracellular calcium.</a> Prostate. 67 (15), 1601-1613 (2007).</li><li>Lang, S. H., Sharrard, R. M., Stark, M., Villette, J. M., Maitland, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prostate+epithelial+cell+lines+form+spheroids+with+evidence+of+glandular+differentiation+in+three-dimensional+Matrigel+cultures.">Prostate epithelial cell lines form spheroids with evidence of glandular differentiation in three-dimensional Matrigel cultures.</a> Br J Cancer. 85 (4), 590-599 (2001).</li><li>Babona-Pilipos, R., Popovic, M. R., Morshead, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+galvanotaxis+assay+for+analysis+of+neural+precursor+cell+migration+kinetics+in+an+externally+applied+direct+current+electric+field.">A galvanotaxis assay for analysis of neural precursor cell migration kinetics in an externally applied direct current electric field.</a> J Vis Exp. (68), (2012).</li><li>Meng, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electric+field-controlled+directed+migration+of+neural+progenitor+cells+in+2D+and+3D+environments.">Electric field-controlled directed migration of neural progenitor cells in 2D and 3D environments.</a> J Vis Exp. (60), (2012).</li><li>Pullar, C. E., Isseroff, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cyclic+AMP+mediates+keratinocyte+directional+migration+in+an+electric+field.">Cyclic AMP mediates keratinocyte directional migration in an electric field.</a> J Cell Sci. 118 (9), 2023-2034 (2005).</li><li>Sheridan, D. M., Isseroff, R. R., Nuccitelli, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Imposition+of+a+physiologic+DC+electric+field+alters+the+migratory+response+of+human+keratinocytes+on+extracellular+matrix+molecules.">Imposition of a physiologic DC electric field alters the migratory response of human keratinocytes on extracellular matrix molecules.</a> J Invest Dermatol. 106 (4), 642-646 (1996).</li><li>Feng, J. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Guided+migration+of+neural+stem+cells+derived+from+human+embryonic+stem+cells+by+an+electric+field.">Guided migration of neural stem cells derived from human embryonic stem cells by an electric field.</a> Stem Cells. 30 (2), 349-355 (2012).</li><li>Mukerjee, E. V., Isseroff, R. R., Nuccitelli, R., Collins, S. D., Smith, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microneedle+array+for+measuring+wound+generated+electric+fields.">Microneedle array for measuring wound generated electric fields.</a> Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 1, 4326-4328 (2006).</li><li>Nuccitelli, R., Nuccitelli, P., Li, C., Narsing, S., Pariser, D. M., Lui, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+electric+field+near+human+skin+wounds+declines+with+age+and+provides+a+noninvasive+indicator+of+wound+healing.">The electric field near human skin wounds declines with age and provides a noninvasive indicator of wound healing.</a> Wound Rep. and Reg. 19, 645-655 (2011).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

وقد تم تحليل استجابة انجذاب غلفاني الخلية مؤشرا وظيفي مهم لكثير من المهاجرة الخلوية أو نمو عمليات 27، 28، وهنا نستخدم غرفة مصنوعة خصيصا مع سطح الزجاج لتصوير اثنين من خطوط الخلايا البروستاتا. هذه خطوط الخلايا أظهرت درجات مختلفة من انجذاب غلفاني، ونحن التكهن بأن ت...

تم الكشف عن الحقول الكهربائية المحلية في الأنسجة المختلفة، مثل الجلد 1، 32، 33 و الدماغ 2. يخدم الحقل الكهربائي الفسيولوجية الوظائف البيولوجية محددة، بما في ذلك توجيه تطور الجنين 3، 4، توجيه ثمرة من العمليات العصبية 5 و 6 و تعزيز الظهارية والقرنية الجرح إغلاق 1 و 7. في المختبر، وتطبيق حقل كهربائي الحالي مباشرة إلى الخلايا المستزرعة يقلد الحقل الكهربائي الفسيولوجية ويستحث الهجرة الخلية الاتجاه، أو انجذاب غلفاني. وقد درست انجذاب غلفاني في الخلايا الليفية 8، 9 الكيراتينية الأسماك، الظهارية البشري والخلايا الكيراتينية القرنية 10-12، الخلايا اللمفية 13، neuroblasts 2، والخلايا العصبية السلف 14. عندما تتعرض لمجال التطبيقية، والغالبية العظمى من الخلايا درس تهاجر إتجاهي نحو المهبطي (-) قطب. ومع ذلك، وعدة خلايا السرطان، بما في ذلك درجة عالية من النقيليخلايا سرطان الثدي البشرية والبروستاتا البشرية خط الخلايا السرطانية PC-3M، الانتقال إلى مصعدي (+) قطب 15 و 16. واقترحت عدة آليات للتوسط انجذاب غلفاني أو لتفسير قدرة الخلايا على الإحساس الحقل الكهربائي، بما في ذلك تفعيل من EGF مستقبلات 12، قناة الصوديوم الظهارية 17، PI3K وPTEN 18، وإطلاق الكالسيوم أيونات 15 و 19. هذه الآلية ليست مفهومة تماما حتى الآن وأنه من الممكن أن تشارك مسارات إشارات متعددة في انجذاب غلفاني. طريقة انجذاب غلفاني 2-الأبعاد نظهر هنا هو مفيد لتوصيف الهجرة الاتجاه من تمسكا، وخلايا متحركة، إما لمراقبة الهجرة الفردية خلية 10، 12، 17 أو الهجرة من ورقة من خلايا متكدسة 18 و 20. يتم تعديل هذه التقنية من بنغ وجافي 21، ونيشيمورا وآخرون. 10 مع حسب الطلب، غرف PVC واضحة، مع coversl قابلة للإزالةIPS يسمح لسهولة استرجاعها الخلية بعد انجذاب غلفاني للتحليل الثانوي، مثل التصوير المناعية مضان. السطح الزجاجي للغرف انجذاب غلفاني هو بصري متوافق، مما يسمح للتصوير في تضخم عالية ومع الخلايا fluorescently المسمى. كما يسمح التصميم التجريبي مع تعديل سطح الزجاج، مثل تغيير طلاء السطح أو رسوم. وتستخدم الفواصل مصنوعة من رقم 1 ساترة في غرف للحد من تدفق التيار فوق الخلايا. وبالتالي فإن التدفئة الجول، التي تتناسب مع مربع تدفق التيار، وليس من شأنه أن ارتفاع درجة حرارة الخلايا أثناء التجربة. الجسور أجار ربط تمنع الاتصال المباشر من الأقطاب الكهربائية مع الخلايا وتمنع تغيير درجة الحموضة متوسطة أو تركيز أيون خلال انجذاب غلفاني. تم فحص اثنين من غير مكون للأورام البروستاتا خطوط الخلايا البشرية للاستجابة انجذاب غلفاني في هذه الدراسة. وpRNS-1-1 22 و 23 PNT2 كلاهما SV40 خلد، خطوط الخلايا التي تعتمد على عامل النمو معربا عن علامات الظهارية cytokeratin 5 و 8 و 18 و 19 مع التعبير منخفضة أو معدومة في البروستاتا محددة مستضد (PSA). كل من خطوط الخلايا تحافظ على مورفولوجيا المضلع من الخلايا الظهارية العادية، ولكن لوحظ اضطراب صبغي في تنميط نووي 22 و 24. وعلى الرغم من pRNS-1-1 وPNT2 مشاركة سلوكيات مماثلة في معظم التجارب، إلا أنها تظهر الاختلافات في تشكيل هيكل عنيبية و انجذاب غلفاني. على مصفوفة 3-D، Matrigel، وpRNS-1-1 الخلايا تشكل هياكل جوفاء عنيبية مع شمعة تشبه البروستاتا العادية الغدة الأنسجة 25. ومع ذلك، فإن الخلايا PNT2 تشكل الأجسام الشبه الكروية الصلبة دون التجويف أو ظهارة الاستقطاب 26. كما تظهر الخلايا pRNS-1-1 استجابة galvanotactic أعلى من PNT2 في الدراسة الحالية. العلاقة بين تشكيل هيكل عنيبية وانجذاب غلفاني في pRNS-1-1 تشير إلى أن إشارات galvanotactic قد تلعب دورا في تنظيم العلاقات العامةostate الحركات الأنسجة الغدة ردا على الحقول الكهربائية الذاتية، ويوفر المزيد من الخصائص للتمييز بين هذه خطوط الخلايا 2.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="774">
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:117px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:323px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Cells</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">pRNS-1-1 prostate cells</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Lee et. al., (1994)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">PNT2 prostate cells</td>
			<td style="width:117px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">95012613-1VL</td>
			<td>Berthon et al., (1995)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Medium and solutions</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">RPMI 1640 medium&#160;</td>
			<td style="width:117px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;">11875-093</td>
			<td>warm up to 37&#176;C before use</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Fetal Bovine Serum - Premium</td>
			<td style="width:117px;">Atlanta Biologicals</td>
			<td style="width:119px;">S11150</td>
			<td>10% in PBS, warm up to 37&#176;C before use</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Antibiotic-Antimycotic (100x)</td>
			<td style="width:117px;">Life Technologies</td>
			<td style="width:119px;">15240</td>
			<td>add 5mL to 500mL medium</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">2-propanol</td>
			<td style="width:117px;">VWR</td>
			<td>BDH1133-5GL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">PBS</td>
			<td style="width:117px;">-</td>
			<td style="width:119px;">-</td>
			<td>137mM NaCl, 2.7mM KCl, 4.3mM Na2HPO4 and 1.5mM KH2PO4 in 1000mL of H2O, pH to 7.4 and autoclaved, warm up to 37&#176;C before use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">0.25% Trypsin-EDTA&#160;</td>
			<td style="width:117px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;">25200-056</td>
			<td>warm up to 37&#176;C before use, treat cells for 3-5 min at 37&#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Galvanotaxis device</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Galvanotaxis chambers</td>
			<td style="width:117px;">Precision Plastics Inc, CA</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>custom-designed (1/4&#34; X 2&#34; X 3.5&#34;), non-toxic, clear PVC chambers</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Galvanotaxis electrodes</td>
			<td style="width:117px;">UCD electric shop</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>platinum coiled electrodes with flexable cords</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Galvanotaxis power box</td>
			<td style="width:117px;">Substrate Engineering, CA</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>custom-designed DC power output with voltmeter</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Microscope Cover Glass, Large, 45X50mm-No. 1.5</td>
			<td style="width:117px;">Fisher</td>
			<td style="width:119px;">12-544-F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Microscope Cover Glass, small, 25X25mm, No. 1</td>
			<td style="width:117px;">ThermoScientific</td>
			<td style="width:119px;">3307</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Diamond point marker</td>
			<td style="width:117px;">ThermoScientific</td>
			<td style="width:119px;">750</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Marine grade silicon sealer, clear</td>
			<td style="width:117px;">3M</td>
			<td style="width:119px;">051135-08019</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">High vacuum grease</td>
			<td style="width:117px;">Dow Corning</td>
			<td style="width:119px;">2021846-0807</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">6mL syringe</td>
			<td style="width:117px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">05-561-64</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Nichiryo Syringe, 1.5mL</td>
			<td style="width:117px;">Nichiryo</td>
			<td style="width:119px;">SG-M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Cotton applicators</td>
			<td style="width:117px;">Purtian Medical Products</td>
			<td style="width:119px;">806-WC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Qtips</td>
			<td style="width:117px;">Johnson &#38; Johnson</td>
			<td style="width:119px;">729389</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Nalgene 180 PVC tubing&#160;</td>
			<td style="width:117px;">Nalgene</td>
			<td style="width:119px;">8000-9030</td>
			<td>503/16 ID x 5/16 OD x 1/16 Wall</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Bacto-Agar</td>
			<td style="width:117px;">Difco</td>
			<td style="width:119px;">0140-01</td>
			<td>make 2% agar solution</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Razor Blade</td>
			<td style="width:117px;">Personna</td>
			<td style="width:119px;">74-0001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Equipments and Software</td>
			<td style="width:117px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Benchtop Centrifuge</td>
			<td style="width:117px;">Eppendorf</td>
			<td style="width:119px;">5810R</td>
			<td>operated with an A-4-62 rotor</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cellometer Auto T4</td>
			<td style="width:117px;">Nexcelom</td>
			<td style="width:119px;">Auto T4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Cellometer counting chambers</td>
			<td style="width:117px;">Nexcelom</td>
			<td style="width:119px;">CHT4-SD100-002</td>
			<td>load 20uL cell solutions to count</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Culture Temp Warming plate</td>
			<td style="width:117px;">Bel-Art Scienceware</td>
			<td style="width:119px;">370150000</td>
			<td>to keep the galvanotaxis chambers at 37&#176;C&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Eclipse TE-2000 microscope with motorized stage and environmental chamber</td>
			<td style="width:117px;">Nikon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Plan Fluor 10X/0.30 objective len</td>
			<td style="width:117px;">Nikon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Retiga EX CCD camera&#160;</td>
			<td style="width:117px;">Qimaging</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Cooled CCD camara, mono-color, 12-bit</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Compressed air with 5% CO2&#160;</td>
			<td style="width:117px;">Airgas</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>special order</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Volocity 6.3</td>
			<td style="width:117px;">PerkinElmer</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Image acquiring software</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Improvision OpenLab 5.5.2</td>
			<td style="width:117px;">PerkinElmer</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Cell tracking software and customized to measure migration angles</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">FileMaker Pro Advanced, 8.0</td>
			<td style="width:117px;">FileMaker</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Microsoft Excel 2008 for Mac</td>
			<td style="width:117px;">Microsoft</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

utilizing custom-designed galvanotaxis chambers to study directional migration of prostate cells

يخدم الحقل الكهربائي الفسيولوجية الوظائف البيولوجية محددة، مثل توجيه الهجرة خلية في تطور الجنين، ثمرة العصبية الظهارية والتئام الجروح. تطبيق حقل كهربائي الحالي مباشرة إلى الخلايا المستزرعة في المختبر يدفع الهجرة الخلية الاتجاه، أو انجذاب غلفاني. طريقة انجذاب غلفاني 2-الأبعاد نظهر هنا يتم تعديل مع العرف بولي (كلوريد الفينيل) (PVC) الكاميرات، سطح الزجاج، وأقطاب البلاتين واستخدام مرحلة الآلية التي يتم تصوير الخلايا. غرف PVC وأقطاب البلاتين يحمل منخفضة السمية الخلوية وبأسعار معقولة وقابل لاعادة الاستخدام. سطح الزجاج والمسرح المجهر الآلية تحسين جودة الصور وتسمح التعديلات المحتملة على سطح الزجاج والعلاجات للخلايا. نحن بتصوير انجذاب غلفاني اثنين من غير مكون للأورام، خطوط خلد SV40 خلية البروستاتا، pRNS-1-1 وPNT2. هذه خطوط الخلايا اثنين تظهر بسرعة هجرة مماثلة وكلا تهاجر نحوالكاثود، لكنها تظهر درجة مختلفة من اتجاهها في انجذاب غلفاني. النتائج التي تم الحصول عليها عن طريق هذا البروتوكول تشير إلى أن pRNS-1-1 وخطوط الخلايا PNT2 قد يكون لها سمات مختلفة الجوهرية التي تحكم ردود المهاجرة الاتجاه بهم.

وقد تم التحقيق سطرين من خلايا البروستاتا (pRNS-1-1 وPNT2) مع هذا الأسلوب. خلايا في كل خطوط تهاجر بسرعة مماثلة من 1.0 +/- 0.3 ميكرون / دقيقة على مدار 2 ساعة (الشكل 5A). ومع ذلك، يكون الاتجاه إلى المجال الكهربائي هو 0.7 +/- 0.3 لpRNS-1-1 الخط، و 0.2 +/- 0.8 للخط PNT2 (الشكل 5B). تظهر ال?...

Watch this Scientific Journal Video about Utilizing Custom-designed Galvanotaxis Chambers to Study Directional Migration of Prostate Cells at JoVE.com

Utilizing Custom-designed Galvanotaxis Chambers to Study Directional Migration of Prostate Cells

We present a method to apply a physiological electric field to migrating, immortalized prostate cells in a custom-made galvanotaxis chamber. Using this method, we demonstrate that 2 lines of non-tumorigenic prostate cells demonstrate different degrees of migration directionality in the field.

الاستفادة من تصميم مخصص انجذاب غلفاني غرف لدراسة الاتجاه الهجرة من خلايا البروستاتا

The physiological electric field serves specific biological functions, such as directing cell migration in embryo development, neuronal outgrowth and ...

utilizing-custom-designed-galvanotaxis-chambers-to-study-directional

Research

JoVE Journal

Biology

9.1K Views.  University of California, Davis. We present a method to apply a physiological electric field to migrating, immortalized prostate cells in a custom-made galvanotaxis chamber. Using this method, we demonstrate that 2 lines of non-tumorigenic prostate cells demonstrate different degrees of migration directionality in the field.

Video: Utilizing Custom-designed Galvanotaxis Chambers to Study Directional Migration of Prostate Cells

Testing Visual Sensitivity to the Speed and Direction of Motion in Lizards

Testing visual sensitivity in any species provides basic information regarding behaviour, evolution, and ecology. However, testing specific features of the visual system provide more empirical evidence for functional applications. Investigation into the sensory system provides information about the sensory capacity, learning and memory ability, and establishes known baseline behaviour in which to gauge deviations (Burghardt, 1977). However, unlike mammalian or avian systems, testing for learning and memory in a reptile species is difficult. Furthermore, using an operant paradigm as a psychophysical measure of sensory ability is likewise as difficult. Historically, reptilian species have responded poorly to conditioning trials because of issues related to motivation, physiology, metabolism, and basic biological characteristics. Here, I demonstrate an operant paradigm used a novel model lizard species, the Jacky dragon (Amphibolurus muricatus) and describe how to test peripheral sensitivity to salient speed and motion characteristics. This method uses an innovative approach to assessing learning and sensory capacity in lizards. I employ the use of random-dot kinematograms (RDKs) to measure sensitivity to speed, and manipulate the level of signal strength by changing the proportion of dots moving in a coherent direction. RDKs do not represent a biologically meaningful stimulus, engages the visual system, and is a classic psychophysical tool used to measure sensitivity in humans and other animals. Here, RDKs are displayed to lizards using three video playback systems. Lizards are to select the direction (left or right) in which they perceive dots to be moving. Selection of the appropriate direction is reinforced by biologically important prey stimuli, simulated by computer-animated invertebrates.

Testing visual sensitivity in lizards using an operant conditioning paradigm that employs video playback of random-dot kinematograms and computer-generated invertebrates.

اختبار الحساسية البصرية للسرعة واتجاه الحركة في السحالي

Testing visual sensitivity in any species provides basic information regarding behaviour, evolution, and ecology. However, testing specific features of ...

Computer-Generated Animal Model Stimuli

Communication between animals is diverse and complex. Animals may communicate using auditory, seismic, chemosensory, electrical, or visual signals. In particular, understanding the constraints on visual signal design for communication has been of great interest. Traditional methods for investigating animal interactions have used basic observational techniques, staged encounters, or physical manipulation of morphology. Less intrusive methods have tried to simulate conspecifics using crude playback tools, such as mirrors, still images, or models. As technology has become more advanced, video playback has emerged as another tool in which to examine visual communication (Rosenthal, 2000). However, to move one step further, the application of computer-animation now allows researchers to specifically isolate critical components necessary to elicit social responses from conspecifics, and manipulate these features to control interactions. Here, I provide detail on how to create an animation using the Jacky dragon as a model, but this process may be adaptable for other species. In building the animation, I elected to use Lightwave  3D to alter object morphology, add texture, install bones, and provide comparable weight shading that prevents exaggerated movement. The animation is then matched to select motor patterns to replicate critical movement features. Finally, the sequence must rendered into an individual clip for presentation. Although there are other adaptable techniques, this particular method had been demonstrated to be effective in eliciting both conspicuous and social responses in staged interactions.

Computer-generated stimuli using the Jacky dragon as a model.

الحاسوب خلق المحفزات الحيوان النموذجي

Communication between animals is diverse and complex. Animals may communicate using auditory, seismic, chemosensory, electrical, or visual signals. In ...

A Cell-to-cell Macromolecular Transport Assay in Planta Utilizing Biolistic Bombardment

Here, we present a simple and rapid protocol to detect and assess the extent of cell-to-cell macromolecular transport in planta. In this protocol, a fluorescently tagged-protein of interest is transiently expressed in plant tissue following biolistic delivery of its encoding DNA construct. The intra- and intercellular distribution of the tagged protein is then analyzed by confocal microscopy. We describe this technology in detail, providing step-by-step protocols to assay and evaluate the extent of symplastic protein transport in three plant species, Arabidopsis thaliana, Nicotiana benthamiana and N. tabacum (tobacco).

A Cell-to-cell Macromolecular Transport Assay in Planta Utilizing Biolistic Bombardment

Macromolecular trafficking between plant cells can be assessed by transiently expressing a fluorescently-tagged protein of interest and analyzing its intra- and intercellular distribution by confocal microscopy.

خلية الى خلية ضخم الجزيئات النقل الفحص في بلانتا الاستفادة من قصف Biolistic

Here, we present a simple and rapid protocol to detect and assess the extent of cell-to-cell macromolecular transport in planta. In this protocol, a ...

Quantitative Analysis of Random Migration of Cells Using Time-lapse Video Microscopy

Cell migration is a dynamic process, which is important for embryonic development, tissue repair, immune system function, and tumor invasion 1, 2. During directional migration, cells move rapidly in response to an extracellular chemotactic signal, or in response to intrinsic cues 3 provided by the basic motility machinery. Random migration occurs when a cell possesses low intrinsic directionality, allowing the cells to explore their local environment.
Cell migration is a complex process, in the initial response cell undergoes polarization and extends protrusions in the direction of migration 2. Traditional methods to measure migration such as the Boyden chamber migration assay is an easy method to measure chemotaxis in vitro, which allows measuring migration as an end point result. However, this approach neither allows measurement of individual migration parameters, nor does it allow to visualization of morphological changes that cell undergoes during migration.
Here, we present a method that allows us to monitor migrating cells in real time using video - time lapse microscopy. Since cell migration and invasion are hallmarks of cancer, this method will be applicable in studying cancer cell migration and invasion in vitro. Random migration of platelets has been considered as one of the parameters of platelet function 4, hence this method could also be helpful in studying platelet functions. This assay has the advantage of being rapid, reliable, reproducible, and does not require optimization of cell numbers. In order to maintain physiologically suitable conditions for cells, the microscope is equipped with CO2 supply and temperature thermostat. Cell movement is monitored by taking pictures using a camera fitted to the microscope at regular intervals. Cell migration can be calculated by measuring average speed and average displacement, which is calculated by Slidebook software.

This method allows monitoring of cells in real time and quantitative measurements of different cell migration parameters such as speed, displacement, and velocity. Unlike the traditional methods, this real time approach is not based on endpoint quantitative migration measurements; instead it allows monitoring and calculating different parameters continuously.

التحليل الكمي للهجرة عشوائية من الخلايا باستخدام الوقت الفاصل بين الميكروسكوب فيديو

Cell migration is a dynamic process, which is important for embryonic development, tissue repair, immune system function, and tumor invasion 1, 2. During ...

Preparing Individual Drosophila Egg Chambers for Live Imaging

Live cell imaging is an important technique applied to a number of Drosophila tissues used as models to investigate topics such as axis specification, cell differentiation and organogenesis 1. Correct preparation of the experimental samples is a crucial, often neglected, step. The goal of preparation is to ensure physiological relevance and to establish optimal imaging conditions. To maintain tissue viability, it is critical to avoid dehydration, hypoxia, overheating or medium deterioration 2. 
 The Drosophila egg chamber is a well established system for examining questions relating, but not limited, to body patterning, mRNA localization and cytoskeletal organization 3,4. For early- and mid-stage egg chambers, mounting in halocarbon oil is good for survival in that it allows free diffusion of oxygen, prevents dehydration and hypoxia and has superb optical properties for microscopy. Imaging of fluorescent proteins is possible through the introduction of transgenes into the egg chamber or physical injection of labeled RNA, protein or antibodies 5-7. For example, addition of MS2 constructs to the genome of animals enables real time observation of mRNAs in the oocyte 8. These constructs allow for in vivo labeling of mRNA through utilization of the MS2 bacteriophage RNA stem loop interaction with its coat protein 9. 
 Here, we present a protocol for the extraction of ovaries as well as isolating individual ovarioles and egg chambers from the female Drosophila. For a detailed description of Drosophila oogenesis see Allan C. Spradling (1993, reprinted 2009) 10.

Preparing Individual Drosophila Egg Chambers for Live Imaging

The Drosophila egg chamber is an excellent model for studying the mechanisms of mRNA localization. In order to capture the dynamic events that underpin the processes of localization, rapid high resolution imaging of live tissue is required. Here, we present a protocol for dissection and imaging of live samples with minimal disruption.

إعداد فردية ذبابة الفاكهة البيض غرف للتصوير لايف

Live cell imaging is an important technique applied to a number of Drosophila tissues used as models to investigate topics such as axis specification, ...

Induction and Analysis of Epithelial to Mesenchymal Transition

Epithelial to mesenchymal transition (EMT) is essential for proper morphogenesis during development. Misregulation of this process has been implicated as a key event in fibrosis and the progression of carcinomas to a metastatic state. Understanding the processes that underlie EMT is imperative for the early diagnosis and clinical control of these disease states. Reliable induction of EMT in vitro is a useful tool for drug discovery as well as to identify common gene expression signatures for diagnostic purposes. Here we demonstrate a straightforward method for the induction of EMT in a variety of cell types. Methods for the analysis of cells pre- and post-EMT induction by immunocytochemistry are also included. Additionally, we demonstrate the effectiveness of this method through antibody-based array analysis and migration/invasion assays.

A straightforward method is described for the induction of epithelial to mesenchymal transition (EMT) in a variety of cell types. Methods for the analysis of cells in EMT states by immunocytochemistry are included.

الاستقراء وتحليل الظهارية الوسيطة الانتقالية ل

Epithelial  to mesenchymal transition (EMT) is essential for proper morphogenesis during  development. Misregulation of this  process has been implicated ...

Using Caco-2 Cells to Study Lipid Transport by the Intestine

Studies of dietary fat absorption are generally conducted by using an animal model equipped with a lymph cannula. Although this animal model is widely accepted as the in vivo model of dietary fat absorption, the surgical techniques involved are challenging and expensive. Genetic manipulation of the animal model is also costly and time consuming. The alternative in vitro model is arguably more affordable, timesaving, and less challenging. Importantly, the in vitro model allows investigators to examine the enterocytes as an isolated system, reducing the complexity inherent in the whole organism model. This paper describes how human colon carcinoma cells (Caco-2) can serve as an in vitro model to study the enterocyte transport of lipids, and lipid-soluble drugs and vitamins. It explains the proper maintenance of Caco-2 cells and the preparation of their lipid mixture; and it further discusses the valuable option of using the permeable membrane system. Since differentiated Caco-2 cells are polarized, the main advantage of using the permeable membrane system is that it separates the apical from the basolateral compartment. Consequently, the lipid mixture can be added to the apical compartment while the lipoproteins can be collected from the basolateral compartment. In addition, the effectiveness of the lentivirus expression system in upregulating gene expression in Caco-2 cells is discussed. Lastly, this paper describes how to confirm the successful isolation of intestinal lipoproteins by transmission electron microscopy (TEM).

Caco-2 cells can serve as an in vitro model to study the enterocyte transport of lipids, and lipid-soluble drugs/vitamins. The permeable membrane system separates the apical from the basolateral compartment, while the lentivirus expression system offers an effective gene overexpression method. The isolation of lipoproteins is confirmed by TEM.

باستخدام كاتشو-2 خلايا لدراسة نقل الدهون من الأمعاء

Studies of dietary fat absorption are generally conducted by using an animal model equipped with a lymph cannula. Although this animal model is widely ...

Nephrotoxin Microinjection in Zebrafish to Model Acute Kidney Injury

The kidneys are susceptible to harm from exposure to chemicals they filter from the bloodstream. This can lead to organ injury associated with a rapid decline in renal function and development of the clinical syndrome known as acute kidney injury (AKI). Pharmacological agents used to treat medical circumstances ranging from bacterial infection to cancer, when administered individually or in combination with other drugs, can initiate AKI. Zebrafish are a useful animal model to study the chemical effects on renal function in vivo, as they form an embryonic kidney comprised of nephron functional units that are conserved with higher vertebrates, including humans. Further, zebrafish can be utilized to perform genetic and chemical screens, which provide opportunities to elucidate the cellular and molecular facets of AKI and develop therapeutic strategies such as the identification of nephroprotective molecules. Here, we demonstrate how microinjection into the zebrafish embryo can be utilized as a paradigm for nephrotoxin studies.

Renal injuries incurred from nephrotoxins, which include drugs ranging from antibiotics to chemotherapeutics, can result in complex disorders whose pathogenesis remains incompletely understood. This protocol demonstrates how zebrafish can be used for disease modeling of these conditions, which can be applied to the identification of renoprotective measures.

سم كلوي حقن مكروي في الزرد لنموذج قصور كلوي حاد

The kidneys are susceptible to harm from exposure to chemicals they filter from the bloodstream. This can lead to organ injury associated with a rapid ...

Utilizing pHluorin-tagged Receptors to Monitor Subcellular Localization and Trafficking

Understanding membrane protein trafficking, assembly, and expression requires an approach that differentiates between those residing in intracellular organelles and those localized on the plasma membrane. Traditional fluorescence-based measurements lack the capability to distinguish membrane proteins residing in different organelles. Cutting edge methodologies transcend traditional methods by coupling pH-sensitive fluorophores with total internal reflection fluorescence microscopy (TIRFM). TIRF illumination excites the sample up to approximately 150 nm from the glass-sample interface, thus decreasing background, increasing the signal to noise ratio, and enhancing resolution. The excitation volume in TIRFM encompasses the plasma membrane and nearby organelles such as the peripheral ER. Superecliptic pHluorin (SEP) is a pH sensitive version of GFP. Genetically encoding SEP into the extracellular domain of a membrane protein of interest positions the fluorophore on the luminal side of the ER and in the extracellular region of the cell. SEP is fluorescent when the pH is greater than 6, but remains in an off state at lower pH values. Therefore, receptors tagged with SEP fluoresce when residing in the endoplasmic reticulum (ER) or upon insertion in the plasma membrane (PM) but not when confined to a trafficking vesicle or other organelles such as the Golgi. The extracellular pH can be adjusted to dictate the fluorescence of receptors on the plasma membrane. The difference in fluorescence between TIRF images at neutral and acidic extracellular pH for the same cell corresponds to a relative number of receptors on the plasma membrane. This allows a simultaneous measurement of intracellular and plasma membrane resident receptors. Single vesicle insertion events can also be measured when the extracellular pH is neutral, corresponding to a low pH trafficking vesicle fusing with the plasma membrane and transitioning into a fluorescent state. This versatile technique can be exploited to study localization, expression, and trafficking of membrane proteins.

Labeling the extracellular domain of a membrane protein with a pH sensitive fluorophore, superecliptic pHluorin (SEP), allows subcellular localization, expression, and trafficking to be determined. Imaging SEP-labeled proteins with total internal reflection fluorescence microscopy (TIRFM) enables the quantification of protein levels in the peripheral ER and plasma membrane.

باستخدام مستقبلات الموسومة pHluorin لمراقبة التحت خلوية التعريب والاتجار

Understanding membrane protein trafficking, assembly, and expression requires an approach that differentiates between those residing in intracellular ...

Imaging Intermediate Filaments and Microtubules with 2-dimensional Direct Stochastic Optical Reconstruction Microscopy

The cytoskeleton, composed of actin microfilaments, microtubules, and intermediate filaments (IF), plays a key role in the control of cell shape, polarity, and motility. The organization of the actin and microtubule networks has been extensively studied but that of IFs is not yet fully characterized. IFs have an average diameter of 10 nm and form a network extending throughout the cell cytoplasm. They are physically associated with actin and microtubules through molecular motors and cytoskeletal linkers. This tight association is at the heart of the regulatory mechanisms that ensure the coordinated regulation of the three cytoskeletal networks required for most cell functions. It is therefore crucial to visualize IFs alone and also together with each of the other cytoskeletal networks. However, IF networks are extremely dense in most cell types, especially in glial cells, which makes its resolution very difficult to achieve with standard fluorescence microscopy (lateral resolution of ~250 nm). Direct STochastic Optical Reconstruction Microscopy (dSTORM) is a technique allowing a gain in lateral resolution of one order of magnitude. Here, we show that lateral dSTORM resolution is sufficient to resolve the dense organization of the IF networks and, in particular, of IF bundles surrounding microtubules. Such tight association is likely to participate in the coordinated regulation of these two networks and may, explain how vimentin IFs template and stabilize microtubule organization as well as could influence microtubule dependent vesicular trafficking. More generally, we show how the observation of two cytoskeletal components with dual-color dSTORM technique brings new insight into their mutual interaction.

The overall goal of this methodology is to give the optimal experimental conditions from sample preparation to image acquisition and reconstruction in order to perform 2D dual color dSTORM images of microtubules and intermediate filaments in fixed cells