يتيح هذا البروتوكول تجارب الطحالب الدقيقة المكررة مع القليل من مدخلات المستخدم. وهي مصممة للباحثين الذين يتطلعون إلى الترقية من قوارير مراقبة يدويا إلى قوارير أعلى مقاعد البدلاء دون شراء مفاعلات حيوية للصور التجارية التقنية والمكلفة. يتيح هذا المفاعل الحيوي للصور نسبة الضوء ومرونته ومراقبة النمو المستمر والنسخ المتماثل الثلاثي.
للبدء، افتح برنامج الحصول على البيانات. املأ صفحة التكوين وقم بتعيين ملفات المعايرة إلى أجهزة الاستشعار الخاصة بها. ضمن اسم ملف الدليل، حدد مجلد رقم منفذ وحدة الإدخال الرقمية المقابلة.
انقر فوق المجلد الحالي وكرر لجميع المنافذ. ثم انقر فوق موافق للانتقال إلى صفحة التسجيل. بعد ذلك ، املأ الزجاجات بالحجم المطلوب بوسط الزراعة وقم بالطرد المركزي لثقافة المخزون في ثلاثة أنابيب متوازنة سعة 50 ملليلتر لإنتاج ثلاث كريات.
أضف حبيبة واحدة إلى كل زجاجة باستخدام ماصة مصلية ووسط طازج. ثم قم بإسقاط محرك مغناطيسي 25 × 8 ملم في كل زجاجة قبل إغلاق فتحة الزجاجة بسدادة مطاطية وغطاء لولبي ذو فتحة خيطية. إذا تم تركيب أي منافذ اختيارية لأخذ العينات، فأغلق الصمامات.
بعد تحديد موقع نهاية كل خط غاز داخل أنبوب PVC ، قم بتوصيل إبرة بمنفذ إغراء البريد الخاص بالصمام. قم بتوصيل كل زجاجة بمستشعر الغاز الخاص بها عن طريق ثقب كل سدادة مطاطية بالإبرة المقابلة. بعد ذلك ، قم بتشغيل كل مستشعر غاز على حدة عن طريق تحديد مربع الاختيار على الجانب الأيسر من الشاشة ، والنقر فوق ابدأ ، وإدخال اسم ملف.
انقر فوق موافق وكرر لجميع المستشعرات. بعد ذلك ، قم بتشغيل مفاعل الصور الحيوي وتأكد من توصيل وحدة التحكم الرقمية في الإضاءة متعددة الإرسال بمصدر طاقة. باستخدام الزر الموجود على وحدة التحكم الرقمية متعددة الإرسال ، قم بالتبديل بين مشهد المساعد ومشهد الضوء المخصص لضمان عمل الجهاز بشكل صحيح.
لأخذ عينات من الزجاجات، قم بإعداد 500 ملليلتر إضافية من الوسط الطازج قبل البدء في التجربة. لجمع العينة، أغلق الصمام الموجود على خط الغاز وقم بتوصيل حقنة سعة 10 ملليلتر بصمام منفذ أخذ العينات. بعد توصيل المحقنة ، افتح صمام منفذ أخذ العينات واسحب ثمانية ملليلترات من الثقافة.
ثم أغلق صمام منفذ أخذ العينات وافصل المحقنة. بعد ذلك ، قم بالتوصيل بحقنة تحتوي على ثمانية ملليلترات من الوسط الطازج بصمام منفذ أخذ العينات. ثم افتح الصمام وحقن الوسط الطازج.
وأخيرا، أغلق صمام منفذ أخذ العينات وافصل المحقنة. لتصدير البيانات، حدد بيانات الملف والبيانات غير المتصلة بالإنترنت. بعد تحديد جميع ملفات السجل ذات الصلة ، قم بتصدير البيانات إلى برنامج جدول البيانات وحفظها.
تتميز التجربة الناجحة بنمط نهاري مكرر بشكل وثيق لإنتاج الأكسجين. يعمل معدل تدفق الأكسجين كوكيل لمعدل نمو الثقافة. خلال الساعات المضاءة ، يزداد إنتاج الغاز بشكل مطرد وخلال الساعات غير المضاءة ، يتوقف إنتاج الغاز.
تراوح الحجم الإجمالي للأكسجين المنتج على مدى أربعة أيام من 316 ملليلتر في العلاج A إلى 902 ملليلتر في العلاج C.In 300 مول صغير لكل متر مربع في الثانية الخفيفة ، زادت درجة الحرارة بحد أقصى 1.4 درجة مئوية خلال اليوم. عادت درجات حرارة الثقافة إلى خط الأساس بين عشية وضحاها. على الرغم من الاختلاف في تركيزات الكتلة الحيوية الأولية ، فإن العلاجات B و C ولدت نفس الكمية من الكتلة الحيوية الكلية مما تسبب في تحولات متطابقة في درجة الحموضة المتوسطة.
كشفت بيانات معدل تدفق الأكسجين عبر الإنترنت أن كل علاج كان له معدلات نمو يومية متفاوتة ، والتي انعكست أيضا في قياسات الأس الهيدروجيني مرتين يوميا. في اليوم الأول، كان معدل نمو العلاج B أقل من معدل نمو العلاج C.بينما بحلول اليوم الثالث، تجاوزت معدلات نمو العلاج B معدلات نمو العلاج C.أشارت بيانات معدل تدفق الأكسجين إلى أن أعلى نمو حدث في اليوم الثالث في العلاج B.ومن المتوقع أن تقلل تقديرات النمو القائمة على إجمالي الأكسجين المقاس قليلا من نمو الكتلة الحيوية الذي كان صالحا لخمسة من أصل سبعة أمثلة. وهناك مثالان بالغا في تقدير النمو.
ربما تأثر هذا بالتجارب التي يتم تحديدها في نهاية الليل. التنفس الليلي الكبير يعزز استهلاك الأكسجين ، ويولد فراغا في مساحة رأس الزجاجة ، ويمتص في عبوة مع السائل من أجهزة استشعار الغاز. إذا كان التنفس مرتفعا ، فإننا نفتح مساحة الرأس بين عشية وضحاها.
