Этот протокол позволяет проводить реплицированные эксперименты с микроводорослями с минимальным пользовательским вводом. Он предназначен для исследователей, которые хотят перейти с ручного мониторинга на настольные колбы без покупки технических и дорогих коммерческих фотобиореакторов. Этот фотобиореактор обеспечивает соотношение освещенности и гибкость, непрерывный мониторинг роста и тройную репликацию.
Для начала откройте программное обеспечение для сбора данных. Заполните страницу конфигурации и назначьте файлы калибровки соответствующим датчикам. Под именем файла каталога выберите соответствующую папку с номером порта модуля цифрового ввода.
Нажмите на текущую папку и повторите для всех портов. Затем нажмите ok, чтобы перейти на страницу ведения журнала. Затем заполните стеклянные бутылки до нужного объема средой для выращивания и центрифугируйте бульонную культуру в трех сбалансированных 50-миллилитровых трубках, чтобы получить три гранулы.
Добавьте по одной грануле в каждую бутылку, используя серологическую пипетку и свежую среду. Затем опустите магнитную мешалку размером 25 на восемь миллиметров в каждую бутылку, прежде чем запечатать отверстие бутылки резиновой пробкой и резьбовым винтовым колпачком. Если установлены какие-либо дополнительные отверстия для отбора проб, закройте клапаны.
После обнаружения конца каждой газовой магистрали внутри трубы из ПВХ прикрепите иглу к отверстию для приманки клапана. Подключите каждый баллон к датчику газа, проткнув каждую резиновую пробку соответствующей иглой. Затем запустите каждый датчик газа по отдельности, установив флажок в левой части экрана, нажав «Пуск» и введя имя файла.
Нажмите кнопку «ОК» и повторите для всех датчиков. Затем включите фотобиоректор и убедитесь, что цифровой мультиплексный контроллер освещения подключен к источнику питания. Используя кнопку на цифровом мультиплексном контроллере, переключайтесь между вспомогательной сценой и настроенной световой сценой, чтобы убедиться, что устройство работает правильно.
Для отбора проб в бутылках подготовьте дополнительные 500 миллилитров свежей среды перед началом эксперимента. Для сбора пробы закройте клапан на газопроводе и подключите шприц объемом 10 миллилитров к клапану пробоотборника. После подключения шприца откройте клапан пробоотборника и извлеките восемь миллилитров культуры.
Затем закройте клапан пробоотборника и отсоедините шприц. Затем подключите шприц, содержащий восемь миллилитров свежей среды, к клапану пробоотборника. Затем откройте клапан и введите свежую среду.
Наконец, закройте клапан пробоотборника и отсоедините шприц. Чтобы экспортировать данные, выберите файл и автономные данные. После выбора всех соответствующих файлов журнала экспортируйте данные в программы для работы с электронными таблицами и сохраните.
Успешный эксперимент характеризуется близко воспроизводимой суточной картиной производства кислорода. Скорость потока кислорода действует как показатель скорости роста культуры. В освещенные часы добыча газа неуклонно увеличивается, а в неосвещенные часы добыча газа прекращается.
Общий объем кислорода, произведенного в течение четырех дней, варьировался от 316 миллилитров при обработке А до 902 миллилитров при обработке C.In режиме света 300 микромолей на метр в квадрате в секунду температура увеличивалась максимум на 1,4 градуса Цельсия в течение дня. Температура культуры вернулась к исходному уровню в одночасье. Несмотря на различия в своих первоначальных концентрациях биомассы, обработки B и C генерировали одинаковое количество общей биомассы, вызывая идентичные сдвиги в среднем рН.
Онлайн-данные о скорости потока кислорода показали, что каждое лечение имело различные суточные темпы роста, что также отражалось в измерениях рН два раза в день. В первый день темпы роста лечения B были ниже, чем при лечении C.В то время как к третьему дню темпы роста лечения B превзошли темпы роста лечения C.Данные о скорости потока кислорода показали, что наибольший рост произошел на третий день в лечении B.Оценки роста, основанные на общем измеренном кислороде, как ожидалось, немного недооценивали рост биомассы, что было справедливо для пяти из семи примеров. Два примера завышенного роста.
Возможно, на это повлияли эксперименты, определяемые в конце ночи. Значительное ночное дыхание повышает расход кислорода, создает вакуум в головке бутылки, всасывая в пакет с жидкостью из газовых датчиков. Если дыхание может быть высоким, мы открываем пространство головы на ночь.
