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我们已经开发出一种慢病毒载体,拥有,除了达反应的LTR,冯应答元件(RRE)报告基因的表达在HIV - 1达和冯依赖的方式,可以调节。向量允许通过活细胞GFP表达的复制艾滋病毒的特异性检测。
大部分的艾滋病毒抗体反应表达载体的基础上艾滋病毒的推动者,长末端重复序列(LTR)的。 LTR的响应早期艾滋病毒的蛋白质,达,也反应细胞活化状态,并整合发生的地方染色活动。这可能会导致艾滋病毒高独立的活动,并已成为制约LTR的记者有用标志艾滋病毒1,2,3阳性细胞。在这里,我们构建了一个表达的慢病毒载体,具有,除了达LTR的响应,许多艾滋病毒的DNA序列,包括冯响应元素和艾滋病毒剪接位点4,5,6。纳入一种慢病毒记者病毒载体,允许艾滋病毒的复制非常具体的检测活细胞群。测定绿色荧光蛋白(GFP)的表达载体的活动。这个向量的应用,这里提供了一个新颖的现有方法的替代方法,如原位PCR或HIV抗原染色,以确定HIV阳性细胞。载体也可以为基础或临床试验,针对艾滋病毒抗体阳性的细胞表达的基因治疗。
1。冯依赖的慢病毒颗粒的生产质粒转染
设置:依赖REV - GFP慢病毒载体,PNL - GFP - RRE - SA,描述以前4,5,6。要组装成病毒颗粒,质粒是contransfected到HEK293 T细胞的HIV - 1包装构造,pCMVΔ8.2(请Dider Trono博士提供),质粒携带的VSV - G糖蛋白(pHCMV - G) 。使用磷酸钙法转染进行了。
缓冲区的制备:10 ×哈佛商学院(HEPES缓冲液)溶解5克HEPES,8克氯化钠0.37克氯化钾,1克葡萄糖,0.103克的Na 2 HPO 4(无水)在100毫升H 2 O。分装the10 X哈佛商学院的缓冲区为1毫升分装和储存在-20 ° C在转的时间,转换成10 ×哈佛商学院2个哈佛商学院与H 2 O(1:5稀释),并调整pH值至7.05 - 7.12 。 (10毫升2 ×哈佛商学院,它通常需要大约50μL1M氢氧化钠)。通过传递通过0.22μm的微孔过滤器,过滤消毒2X哈佛商学院的缓冲区。 氯化钙缓冲液是由溶解在10 mM的HEPES 氯化钙2至终浓度为2M 。调节pH值至5.8,过滤消毒的缓冲区,并储存于4 ° C。
程序:
2。浓缩病毒颗粒,并确定病毒滴度
3。标记HIV - 1阳性细胞的慢病毒颗粒,VNL - GFP - RRE - SA
设置:一个人的CD4 T细胞系,CEM - SS的,是先用HIV - 1感染。在感染后48小时,细胞的慢病毒颗粒,VNL - GFP - RRE - SA superinfected。另外两天的二重感染,GFP阳性细胞流式细胞仪分析。作为对照,HIV - 1未受感染的CEM - SS的细胞是相同的感染VNL - GFP - RRE - SA。 HIV - 1感染的CEM - SS的细胞,只有产生了GFP阳性细胞,但不是HIV - 1的未受感染的CEM - SS的细胞。
程序:
4。代表性的成果
如果实验成功地进行,一个庞大的GFP人口将流式细胞仪检测出HIV - 1感染细胞CEM - SS的,在控制,而GFP阳性细胞不会被检测到HIV - 1的未受感染的CEM - SS细胞。
如果实验成功执行,冯依赖的慢病毒载体,VNL - GFP - RRE - SA,将允许在活细胞数量的艾滋病毒复制非常具体的检测,测量通过绿色荧光蛋白(GFP)的表达。在这个例子中,收获CEM - SS的细胞染色的PE标记的大鼠单克隆抗体对CD24的鼠标,HSA的,然后在HSA和绿色荧光蛋白表达的流式细胞仪分析。
图1。如下所示,一个庞大的GFP人口VNL - GFP - RRE - SA(图1c)superinfected的HIV - 1感染细胞中检测到。与此相反,没有检测到GFP阳性细胞为HIV - 1的未受感染的CEM - SS的细胞中没有慢病毒重叠(图1a)或HIV - 1慢病毒重叠(图1b)未受感染的细胞。
至于与早期开发的达依赖性表达载体,这里描述的是冯系统利用一个演变艾滋病毒过程。列入冯依赖呈现的LTR表达载体的高度依赖复制艾滋病毒的存在。这个向量的应用报道中,一个艾滋病毒相关的记者病毒,提供了全新的方式来确定艾滋病毒呈阳性的细胞。向量允许活细胞检查,可以表达任何基础或临床试验的基因,并作为一个伪类型的慢病毒已获得大多数细胞类型和组织。
这项工作是支持部分由公共卫生服务授予1R01AI081568从NIAID的YW M.罗森和第2天公司举办的2009年NYCDC艾滋病骑的捐助者和骑手的慷慨捐赠
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Biosafety Cabinet | |||
37°C 5%CO2 incubator | |||
Flow cytometer | FACSCalibur | ||
Centrifuge | Beckman Coulter Inc. | Allega®6KR | |
4°C regrigerator | |||
-20°C refrigerator | |||
-80°C refrigerator | |||
Cell counter | Nexcelom Bioscience | Cellometer® AutoT4 | |
HEK293T cell line | National Institutes of Health | ||
CEM-SS cell line | National Institutes of Health | ||
Jurkat cell line J1.1 | National Institutes of Health | ||
DMEM | Invitrogen | 11965-118 | |
RPMI 1640 | Invitrogen | 21870 | |
HI FBS | Invitrogen | 10438-018 | |
HIV-1NL4-3 | prepared by tranfsection of HeLa cells with cloned proviral DNA | ||
pNL-GFP-RRE | copmlete deletion of all HIV ORFs of pNL4-3 | ||
pNL-GFP-RRE-SA | Insert HIV-1 A5 and D4 into pNL-GFP-RRE | ||
pCMVΔ8.2 | provided by Dr. Dider Trono | ||
pHCMV-G | |||
10 x HBS (Hepes Buffered Saline) | Invitrogen | 11344-041 | |
2M CaCl2 buffer | Invitrogen | S-013-154-10 | |
1% paraformaldehy | Sigma-Aldrich | 158127 | |
Bleach | |||
50ml Falcon tubes | BD Biosciences | 358206 | |
5ml round bottom tubes | BD Biosciences | 352063 | |
0.45μM Millipore filter | EMD Millipore | SLHA033SS | |
0.20μM Millipore filter | EMD Millipore | SLFG85000 | |
100mm Petri-dish | Sigma-Aldrich | CLS430588 | |
Size-exclusion column (100,000MW cut off) | Sartorius AG | VS2041 | |
2ml frozen tube | Axygen Scientific | SCT-200 | |
96-well plate | BD Biosciences | 353227 | |
1.7mL Microcentrifuge Tube | Axygen Scientific | MCT- 175-C |
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