基于发育毒性测定化学品安全筛选和系统生物学数据生成人类多能干细胞

摘要

该协议描述了基于人胚胎干细胞和转录研究2 在体外发育毒性试验系统（UKK和UKN1）。测试系统预测人类发育毒性危险，并可能有助于减少动物研究中，成本和所需的化学安全测试的时间。

摘要

高效的协议来区分人多能干细胞，以组合各种组织与组学技术开辟了新的视野为潜在药物的体外毒性测试。为了提供这种试验坚实的科学基础，这将是非常重要的获得发展的时间进程和底层的监管机制，系统生物学方法的定量信息。两个实验都因此被调整为在这里这些要求。在UKK测试系统中，人胚胎干细胞（hESC细胞）（或其它多能细胞）都留给自发分化为胚状体14天，以允许产生所有三个胚层的细胞。该系统概括的人类早期胚胎发育的关键步骤，并且它可以预测人特异性早期胚胎毒性/致畸性，如果细胞分化过程中暴露于化学品。所述UKN1测试系统是基于人类胚胎干细胞分化为一个populat神经外胚层祖离子（NEP）细胞6天。该系统概括早期神经发育，并预测早期发育神经毒性和化学品引发的表观遗传变化。两个系统，在与转录微阵列研究结合，适合于识别的毒性的生物标志物。此外，它们也可以组合使用以产生用于系统生物学分析的输入数据。这些测试系统具有比传统的毒理学研究需要大量的动物的优点。该测试系统可能有助于减少药物开发和化学安全性评价的费用。他们的组合揭示尤其是对可能影响具体化合物的神​​经发育光。

引言

人类胚胎干细胞（hESC细胞）的分化成各种细胞的能力打开了体外毒性试验^1中 ，疾病建模和再生医学²的新时代。干细胞被赋予的能力，自我复制，以保持其多能状态，并分化成特定细胞^3,4。的人类胚胎干细胞的特性（容量来区分所有主要的细胞类型），也发现在其它人多能干细胞，如人类诱导多能干细胞（hiPSC）或通过核移植⁵产生的细胞。例如，许多不同的hESC细胞系已分化为神经元^6，肾细胞^7，神经嵴细胞^8，心肌^9-12，或肝细胞样细胞^13,14。此外，人类胚胎干细胞可自发地分化成胚状体^{（EB）19,20}所有三种胚层^15-18的细胞。 Ë阿尔利胚胎发育是通过与已捕获在mRNA水平通过使用微阵列技术¹⁵转录的不同胚层的多种基因的差异表达调控。这些努力使建立基于人类胚胎干细胞/ hiPSC和转录组分析（综述见^21,22）器官特异性毒性模型。这些车型有优势的传统使用实验动物的毒理学研究，如使用实验动物并不总是预测人类安全的临床前研究。在患者中遇到的药物诱导的毒性往往与人类和实验动物之间是不同的代谢或信号传导过程。的物种差异防止了可靠的早期检测发育毒性在人类，例如药物如沙利度胺^23,24和己烯雌酚^25,26从市场上撤回由于致畸。塔利domide并没有表现出在大鼠或小鼠任何发育毒性。环境化学品如甲基汞²⁷导致相对于神经系统中的各种物种产前发育毒性，但人的表现已经很难在动物模型。为了解决种属特异性问题的问题，科学家们根据不同的项目工作的基础上的干细胞一样重新保护，ESNATS，侦探等所从事的不同型号的发展胚胎毒性，神经毒性，心脏毒性，肝毒性和肾毒性涉嫌使用对人体有毒物质影响人类。根据欧洲联盟项目的胚胎干细胞为基础的新型替代测试策略（ESNATS）"五个测试系统已经建立。一个测试系统的所谓UKK（UniversitätsķlinikumķOLN）测试系统部分捕捉人类早期胚胎发育。在这个System人类胚胎H9细胞分化中¹⁵和胚层特定的签名已被抓获转录使用Affymetrix芯片平台简介三个胚层（外胚层，内胚层和中胚层）。像沙利度胺^28，丙戊酸，甲基汞^16,17，或阿糖胞苷¹⁵各个发育毒物在该系统已经过测试，并且具体毒物基因签名已被获得。在第二测试系统，即所谓的UKN1（U。高校ķonsta N个Z的）测试系统1中，H9细胞分化到神经外胚层祖细胞（NEP）6天。这是通过高表达的神经基因标记如PAX6和OTX2证实。在分化6天，NEP细胞已经暴露于发育神经毒物如丙戊酸钠，甲基汞。毒物特异性解除管制的转录概况已obtai通过使用Affymetrix芯片平台定义^16,29以及。

对于21 ^世纪的毒理学的新远景设想，测试系统不仅产生的表型的描述，如组织病理学体内 ，或转录变化在长期毒物孵化结束。它，而表明试验提供机械信息^3，而该信息可以被映射到所谓的不利后果的途径（AOP），提供了一个科学原理为危险影响^30。为了提供这种信息，应用的测试系统必须高度控制质量^31，作为例如通过稳健标准操作程序记载。此外，依赖于时间的变化需要被映射为高的分辨率。这就要求测试系统同步变化^32。这里所描述的UKN1和UKK测试系统进行了优化这些需求。

研究方案

使用人胚胎干细胞系（人类胚胎干细胞）H9进行以下协议。此细胞系常规地在有丝分裂失活的小鼠胚胎成纤维细胞（MEFs）在人类胚胎干细胞的培养基补充有bFGF和然后培养干细胞培养基上6厘米涂有基底膜基质如基质胶，培养皿除掉的MEF的培养。从> 80％汇合板的H9细胞用于进一步的通道。 H9细胞对基底膜基质平板上培养被用于EB的形成。在以下协议中提及的所有程序使用标准方法进行无菌和良好的细胞培养的做法已经完成。

第1部分UKK测试系统

1.人类胚胎干细胞培养

1. 分裂和维护H9的饲养细胞上
   1. 加入2毫升0.1N％明胶到每个6厘米板孵育在细胞培养incub 30分钟员（37℃和5％的CO _2）。吸明胶溶液用无菌巴斯德吸管。
   2. 加入2毫升含有0.1×10 ⁶ MEF细胞/ ml的MEF培养基成两个明胶包被的板并孵育它们在细胞培养孵育箱（37℃，5％CO _2）的O / N。
   3. 次日，取出从所述液氮贮罐的H9细胞小瓶使用镊子和使用长镊子解冻小瓶在37℃水浴中。
   4. 从水浴，浴用70％的乙醇，空气干燥除去小瓶中的生物安全柜15至30秒，将细胞转移至15ml falcon管。
   5. 添加9毫升H9培养基慢慢在内壁和离心将细胞在200×g离心5分钟。
   6. 吸出上清液并重新悬浮的细胞在含ROCK抑制剂6毫升培养基（10μM，Y27632），轻轻移液管混合。从6厘米板吸MEF中，加3毫升细胞悬液每块板。更改D中的培养基唉3，然后每隔一天。亚文化> 80％汇合板细胞分流比1:3。
      注意:通常在5至7天板变得汇合。用馈线是从小鼠CF1胚胎获得，并通过暴露灭活γ辐射。
2. 在基底膜基质涂层板H9细胞培养
   1. 解冻干细胞培养基（5次）补充在RT和生物安全柜加入100 ml分解成400 ml基础培养基。
   2. 在冰上解冻基底膜基质。添加基底膜基质的建议量（参照分析证书每批）24毫升冷冻的DMEM / F-12培养基十二6厘米板。吹打向上和向下混合。
   3. 加入2毫升每6厘米板。保持所述板在RT 1小时。除去培养基并加入2ml的干细胞培养基中培养。
   4. 就拿出来的MEF 4汇合H9板。取出1毫升枪头分化殖民地体视显微镜下，在保持生物安全柜。
   5. 吸气该介质和洗涤细胞用4ml PBS中并加入2ml干在各平板的细胞培养基。切＆G针头未分化的殖民地，以每6至9个。
   6. 轻轻收集细胞在50毫升猎鹰管。离心，在200×g离心5分钟。
   7. 吸出上清液并重新悬浮于12ml干细胞培养基。通过将在显微镜下对载玻片20微升计数的团块，并调整为每毫升150团块的体积。加入2毫升悬浮液中在每个6厘米板。
   8. 移动板背面的往复和侧到另一侧的运动为均匀丛分布和孵化在细胞培养孵育箱（37℃，5％CO _2）的板。
   9. 取出分化殖民地，并给换液每隔一天。

2.胚状体（EBS）的形成

执行以下按无菌操作和生物安全柜中提到的所有程序。

1. 0天＆＃8212; H9细胞的上的v底板镀
   1. 制备5％的嵌段共聚物，例如聚醚F 127在PBS中，并通过用0.22微米的无菌过滤器真空驱动过滤系统进行过滤。
   2. 外套V底96孔板用40微升每孔的5％的嵌段共聚物和在室温下孵育45分钟。
   3. 从孵化器中取出汇合基底膜基质板的H9细胞和生物安全柜中取出体视显微镜下，用1毫升枪头分化的殖民地。
   4. 吸出培养基，并用4毫升的PBS洗涤细胞。加入2ml随机分化培养基（H9培养基没有bFGF和RD介质）在每块板。使用通道工具并切成均匀大小和形状的团块的H9细胞集落通过在生物安全柜下立体显微镜观察，然后用细胞刮棒轻轻刮去。
   5. 收集在50ml falcon管中，并离心该团块在200×g离心5分钟。吸出上清液并重新悬浮大公l在RD中得到每毫升1000团块。
   6. 吸从V底板的嵌段共聚物。倒团块在无菌方形板和多道移液器的帮助下加入100微升悬浮到了V底板各孔。
   7. 为团块的力聚集，离心机在V底平板在4℃以400×g下4分钟。孵育板在细胞培养孵育箱（37℃，5％的CO _2）四天。
2. 4日 - 收集的EB
   1. 收集在无菌方形板使用多道移液器和大口径200微升技巧V底板EBS的。
   2. 用10ml无菌血清吸管收集无菌方形板胚在15毫升猎鹰管。允许胚沉降2分钟。吸出上清液并用5毫升的PBS洗涤的EB。
   3. 允许的EB沉降2分钟，吸出上清液。重悬在5毫升RD中胚。
   4. 于10cm吸取取10 ml RD媒体细菌学板。转移于10cm细菌学板EBS的。
   5. 孵育细菌板在水平摇动器（往复运动50 /分钟）保持在细胞培养孵育箱（37℃，5％的CO _2）所需的时间段。给换液（15毫升RD介质）每隔一天。
      注:温和的处理是必需的，而人类胚胎干细胞培养。 EBS的大小在4天通过不同体视显微镜下观察作进一步的实验选择大小均匀的EB（±20％）。用这种方法形成的约50％的EB大小均匀的。胚对振动筛的结果一致的形状转移。

3.细胞毒性测定的IC ₁₀测定

1. 胚的光学底板转移
   1. 解冻0.1％明胶在水浴中于37℃下进行15分钟，并涂覆光学底板用50μl0.1％明胶的每使用多道移液器良好。孵育所述板在室温45分钟。培养结束后吸光从底板明胶。
   2. 取出于10cm细菌学板含RD中收集的第4天胚。
   3. 请在生物安全柜倾斜位置光学底板。转让的EB在光学底96孔板每孔100μl的RD介质由下立体显微镜观察两台同类尺寸。保持12 ^个列空。
   4. 孵育板在细胞培养孵育箱（37℃，5％CO _2）24小时。
2. 从第5天的药物暴露14天
   1. 称量测试化合物，并最高浓度在已知的溶剂。
   2. 执行半对数稀释的测试化合物的连续直到8稀释在溶剂中含有编号与A至H falcon管，保持管没有。我作为车辆控制，管没有。 Ĵ为阴性对照（RD介质）和管没有。 K作为阳性（70％乙醇）的控制。
   3. 解冻在水浴在RD培养基中于37°下进行15分钟。取出标有从1到11月11日无菌猎鹰管各5毫升RD媒介。
   4. 将5微升的解决方案，从管A至管K的要管1到11分别与涡管。取出光盘底板的孵化器，并小心地使用多通道吸管取出介质。
   5. 从管1号加入200μl的媒体11到光底板的各列。给中/药物改变每隔一天。
      注意:对于半对数稀释采取6.48微升溶剂7管2标记，以8.从最高浓度管一号转移3微升至2号管，涡旋并连续3微升转移到下一个管。保持管9号车辆控制和管的10号阴性对照。管11号是70％的乙醇。
3. 第14天:刃天青曝光和荧光测定
   1. 在水浴解冻RD培养基中于37℃下进行15分钟。执行所有程序mentio下面ñ在生物安全柜没有光线。
   2. 取10毫升RD培养基在15ml管（A）中，并添加刃天青试剂的推荐量和通过移液混合。取出光盘底板从孵化器中，小心地取出用多道移液器的所有媒体。
   3. 加入100微升介质从A管，每孔。孵育板在细胞培养孵育箱（37℃，5％CO _2）90分钟。
   4. 衡量使用荧光分光光度计（560 _例 / 590 _EM）。
4. IC ₁₀值确定
   1. 减去空白值后，导入图形垫棱镜值。集X轴作为一个剂量和y轴作为荧光单位。
   2. 归一化值，以获得关于y轴的百分比和变换的值（x轴为对数标度）。通过使用S形剂量反应（可变斜率）参数计算的IC ₅₀值。计算使用以下日志IC ₁₀值公式:
      F = 10 logEC ₅₀ = logECF - （1 /坡面）*日志（F /（100-F））
      Y =底+（顶-底）/（1 + 10 ^（（LogEC ₅₀ -X）*坡面））
   3. 要采取确定IC ₁₀值继续深造。

基于微阵列生物标志物4.研究

1. 0天至第5天:
   1. 胚体形成和转移到10厘米细菌板 - 按照2点为胚状体形成中提到的步骤。
      注意:使用三次生物学重复每个研究。将每个生物复制到两部分组成-在IC ₁₀浓度和车辆控制药物治疗。准备药物浓度10,000倍以上的IC ₁₀浓度的车辆，并从该加10微升与H9的细胞团块100毫升RD培养基在50毫升离心管中拌匀种子它的v底板。按照同样的步骤进行车辆控制组。
<利>对于在第5天的药物暴露14，收集EB's和第4天他们转移于10cm细菌学板为每在点中提到的步骤2.将在水平摇动器（往复运动50 /分钟）中的板细胞培养孵育箱（37℃，5％CO _2）14天。给换液每隔一天。
2. 对于样品的采集，第14天，收集10 CM平板的胚在15毫升猎鹰管，用无菌血清吸管。允许胚沉降2分钟。吸出上清液并用5毫升的PBS洗涤的EB。允许的EB沉降2分钟，吸出上清液。在1ml的RNAlater溶液或TRIzol试剂，涡旋重悬的EB和样品储存在-80℃直到进一步处理。
   注:在生物安全柜执行所有程序按照优良实验室规范。旋转打圈板围绕中心，从以无菌玻璃pastu帮助周围的把所有的EB的中心，吸出培养基再吸，加15毫升RD中，然后加入15微升的药物/车辆的各组。

5. RNA分离和完整性测试

1. RNA分离:
   大部分下面提到的步骤将被用于使用RNeasy Mini试剂盒按照说明书RNA纯化进行。始终使用不含核酸酶的试管，枪头和水。虽然有工作的TRIzol开展化学安全罩的所有程序，并戴防护眼镜以及化学防护手套。
   1. 解冻样品在冰上。如果样本被存储在RNAlater中的溶液，离心管在12000×g离心5分钟，在4℃。弃上清，加入1 ml TRIzol试剂。
   2. 磨碎使用24克针和1ml注射器的样品。约15倍研磨足以胚，细胞壁和细胞膜的破坏。
   3. 加入200微升的氯仿每个样品中。涡旋均匀混合的内容。离心分离机在12000×g离心15分钟，在4℃。卸下RNeasy小型离心柱，1.5 mL管和正确标注它们。
   4. 收集在1.5ml管中的上清液（在收集上清液不打扰的中间或底层）。加冷冻的70％乙醇的等体积。通过轻轻摇动混合内容。
   5. 应用从管700μl到各自微型离心柱和离心它们在12000×g离心20秒，在室温。在完成所有RT的进一步措施。
   6. 弃去滤液，并应用剩余溶液到各自的列和离心它们在12000×g离心20秒。弃去滤液。
   7. 应用350微升RW1缓冲到列和离心它们在12000×g离心20秒。弃去滤液，并应用10微升DNA酶和70微升RDD缓冲到柱上。
   8. 在室温下孵育15分钟。应用350微升RW1缓冲到列和离心它们在12000×g离心20秒。弃去滤液。应用500微升RPE洗涤缓冲液对柱和离心机它们在12000×g离心20秒。弃去滤液。再次应用500微升的RPE洗涤缓冲液对柱和离心机它们在12000×g离心2分钟。弃去滤液。
   9. 转向列到新的2 ml收集管和离心它们在12000×g离心1分钟。转移列标记好的1.5 ml收集管，并应用22微升的核酸自由水。离心管在12000×g离心1分钟。
   10. 取下收集管，并把它们在冰上。使用自动电泳系统RNA定量。
2. RNA的浓度，纯度和完整性测试。
   对于RNA的纯度和完整性测试采用自动化电泳系统和相应的试剂盒^33。

6.芯片研究

1. 使用商业可用的人力阵列芯片进行转录谱。对于RNA目标的准备，破碎，杂交³⁴和阵列芯片染色，水洗³⁵使用市售的试剂盒。
2. 通过使用标准的流控站，阵列扫描仪和标准操作软件进行³⁶阵列芯片扫描和质量控制检查。用于基因表达分析导入从扫描仪产生的标准商业可用的软件³⁷中的文件，用稳健多阵列分析（RMA）进行背景校正，总结和正常化。
3. 用于获得的差异表达的基因的列表（DEG的）执行一个单向ANOVA分析。从该列表中过滤出基于倍数变化（±2）和FDR受控的p值（<0.05）的基因。获得使用该软件的主成分分析（PCA），热图等 。

第2部分。UKN 1测试系统

人类胚胎干细胞的维护1.

1. 的MEF播种
   1. 对于差异化使用NSCB＃8534（H9）细胞系。文化CELLS对小鼠胚胎成纤维细胞（MEFs）作为饲养细胞。涂层的T25烧瓶用4ml 0.1％的明胶和温育30分钟，在37℃。
   2. 在37℃水浴中解冻的MEF和转移细胞进入预温热的DMEM / 10％FBS中。
   3. 自旋3.5分钟用500×g离心，除去上清液并重新悬浮细胞，以获得1×10 ⁷个细胞/ ml。板的MEF 4×10 ⁴个/ cm ²的在明胶T25烧瓶。或者，使用该MEF在接下来的两天。 MEF批次的质量是人类胚胎干细胞维持一个非常关键的问题。因此，应阐明的最佳公司及其制备方法对H9细胞。我们使用PMEF P3。
2. 分裂和维护的H9
   1. 加入1毫升预热的分散酶每T25培养瓶中的H9和孵育在37℃下9分钟。
   2. 加入2ml洗涤介质来分散酶处理的细胞和吸管了5次，下用5毫升吸管和转移的细胞解决了猎鹰管。
   3. 洗烧瓶用9ml洗涤介质并添加细胞的其他人。旋转3.5分钟，500 XG，除去上清液，重新悬浮细胞在10毫升人类胚胎干细胞培养基。
   4. 旋转3.5分钟，500 XG，除去上清液，重新悬浮细胞在4毫升人类胚胎干细胞培养基。加入0.5 mL细胞悬液和4.5毫升人类胚胎干细胞中，板新（PBS洗涤）T25烧瓶的MEF。每天改变烧瓶的整个人类胚胎干细胞培养基（5ml）中。

人类胚胎干细胞的分化2.对神经外胚叶祖细胞（NEP）

1. 人类胚胎干细胞准备中，KCM中。涂布一层10cm皿，每T25烧瓶明胶（在PBS中0.1％）并孵育30分钟，在37℃。从人类胚胎干细胞中除去培养基，并添加足够的Accutase覆盖烧瓶的整个底部（每T25培养瓶中1ml）中并孵育25至30分钟，在37℃。
2. 在孵化的Accutase准备基底膜基质涂层板。加冷DMEM / F12冷冻基底膜基质颗粒和解决它1:20。过滤基底膜基质SOLU灰通过40微米的细胞滤网。添加过滤的溶液直接制版，整个底部有被覆盖（每6孔1ml是必需的），孵育2小时，在室温。
3. 后潜伏期除去基底膜基质的上清液和种子细胞对包被的孔。之后的Accutase步骤（2.1）停止加入为1.5ml HES媒体的反应。从烧瓶中刮去细胞，加8毫升人类胚胎干细胞中，产生吹打单细胞溶液10毫升吸管彻底。通过40微米的细胞滤网过滤细胞。
4. 自旋细胞3分钟，500×g离心，除去上清液，并在10毫升的hESC的重新悬浮细胞。再次3分钟，500×g离心自旋细胞，除去上清液并重新悬浮含有ROCK抑制剂Y-27632以10μM的终浓度的细胞在人类胚胎干细胞。
5. 删除明胶涂层盘的上清液。在明胶涂层盘板的细胞悬液，除去该MEF和孵化器留下了整整1小时。
   注意:在此步骤期间的MEF将settle到明胶涂层板，而胚胎干细胞无法连接到明胶。因此，这是至关重要的，以获得无饲养分化。这是一个关键的一步，因为过长孵化导致人类胚胎干细胞团块和过短的潜伏期去除效率低下的MEF。孵育45分钟后，板，要追究已经解决的MEF和胚胎干细胞团块。
6. 一旦该MEF附上，轻轻洗掉非贴壁细胞（hESC细胞）关闭孵育已经在板中的介质后。如果几个T25被用来得到更多的细胞，单细胞现在可以结合起来。人类胚胎干细胞有一次中等洗涤板。
7. 自旋细胞3分钟，500×g离心，除去上清液并重新悬浮含有10μM的ROCK抑制剂Y-27632和10ng / ml的FGF-2的细胞中约4毫升KCM。
8. 使用计数台盼蓝细胞血球。板18×10 ³细胞/ cm ²的基底膜基质中的KCM涂层板含有10μM的ROCK抑制剂Y-27632和10毫微克/毫升的FGF-2（6井使用每孔1.5毫升）。关键的是要培养板上的细胞中的权利密度成功分化成的NEP。
9. 24小时后，改变培养基含有10μM的ROCK抑制剂Y-27632和10ng / ml的FGF-2的新鲜KCM。后进一步24小时，改变培养基，以含有10纳克/ ml的FGF2新鲜KCM。
10. 在播种后的细胞72小时，分化开始迈向KSR中中的变化。这个时间点被称为分化0（DoD0）的一天。在加入测试物质，现在是可能的。
11. 上DOD1和DOD2将培养基更换完全相同上DoD0。下一介质的变化是在DoD4含有25％N 2 S和75％KSR。在DoD6分化停止，收集细胞进行分析。

人类胚胎干细胞和NEP 3.染色质免疫沉淀（ChIP）

1. 核的制备
   1. 加入500μl的Accutase到每个6孔应进行分析，并孵育25至30分钟。腠NT细胞在纽鲍尔室使用台盼蓝。
   2. 悬浮细胞在DMEM / F12中用于交联的1％甲醛。添加的Tris pH为7.5至125毫摩尔的最终浓度10分钟后停止交联。
   3. 自旋细胞3分钟，500×g离心在4℃下，除去上清液，并在冷的PBS重悬细胞。
   4. 自旋细胞3分钟，500×g离心在4℃下，除去上清液并重新悬浮细胞在1ml L1-缓冲/ 1×10 ⁶个细胞。
   5. 孵育5分钟在冰上。自旋5分钟，800×g离心在4℃下，除去上清液并重新悬浮晶核在1ml L2-缓冲/ 2×10 ⁶个细胞。
2. 超声和​​质量控制
   1. 超声处理使产生300-700 bp的长度的DNA片段。自旋1分钟10,000 XG在4℃。上清转移到新管中。片段需要有正确的大小，否则免疫沉淀将是低效率的，以及随后的qPCR。
   2. 删除50微升的ð混合物用50μl的L2缓冲器通过运行在琼脂糖凝胶来检查超声处理的效率。
   3. 反向在65℃下交联温育4小时，500转。负载样品1:5与在1.5％琼脂糖凝胶橙G样染料和在1×TBE缓冲液中运行在110伏45分钟。控制碎片大小（应该是300-700之间BP）。
3. 染色质免疫沉淀
   1. 稀释试样1:5的稀释缓冲液和等分每个IP1毫升在硅化试管中。
   2. 在4℃去除染色质稀释样品（步骤3.3.1）和存储5％（体积）为"输入"。
   3. 样品孵育与您所选择的IgG非特异性O / N，并与旋转器上的抗体在4℃。
   4. 免疫沉淀后添加50μl的蛋白A / G琼脂糖珠到各样品中。孵育样品3小时，在4℃下在旋转器上。自旋1分钟，1500 XG在4°C和上清。
   5. 用1毫升洗涤珠洗。自旋1分钟，1500 XG在4°C和上清。重复步骤g到h。用1毫升最终洗涤液清洗。在洗涤步骤，你应该不会丢失任何的珠子，因为这直接改变洗脱液的量。
   6. 离心机1分钟，1500 XG在4°C和上清。加入125微升洗脱缓冲液和孵化15分钟，65℃，1000转的摇床。
   7. 自旋1分钟，1500×g离心并转移上清液至新的试管中，重复步骤k和l。加入200μl洗脱缓冲输入（3.3.2）。添加蛋白酶K和RNase向每个样品孵育30分钟，37℃以500rpm摇动器上，之后4小时与65℃在500rpm的摇床上。
      注:对于DNA提取使用市售的ChIP DNA和清洁套装选矿厂^38。

结果

在UKK测试系统甲基汞暴露

与H9的EB进行的细胞毒性测定，得到的IC ₁₀值（10％减少活力的）甲基汞的细胞毒性（ 图1）。我们还进行了微阵列基础（Affymetrix公司的平台）的生物标志物研究。的H9的EB已暴露于甲基汞（0.25和1μM）14天。在第14天，将样品已收集使用Trizol和分离RNA。使用人类基因组U133加2.0阵列芯片进行转录谱。的数据进行了分析以将Partek基因组套?...

讨论

传统方法毒理试验涉及广泛的动物研究中从而使测试昂贵和费时。此外，由于种间差异的临床前动物安全性研究并不总是有效的预测与人类有关的潜在药物毒性作用。虽然非人类灵长类动物是最可预测的，还是强烈的伦理和socioeconomical需求正在迅速被现代社会提高发展中国家在体外试验敏感和强大 有关人类的安全系统。

人类胚胎干细胞的独特能力分化成所有的?...

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
DMEM/F-12	Life Technologies	11320082	Dulbecco's Modified Eagle Medium:Nutrient Mixture F-12
KOSR	Life Technologies	10828028	Knockout Serum Replacement
GlutaMAX	Life Technologies	35050061	GlutaMAX supplement
NEAA	Life Technologies	11140050	MEM Nonessential Amino Acids Solution
DPBS	Life Technologies	14190-0144	Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline, without calcium, without magnesium
mTeSR medium	Stemcell Technologies	5850
Pluronic F-127	Sigma	P2443-250G
V bottom plate	VWR	734-0483	Plate,Microwell,V BTTM,96 Well,Sterile 1 * 50 ST
V bottom plate lid	VWR	634-0011	Lid, Microtitre plates, Cond. Ring 1 * 50 ST
Pen/Strep	Life Technologies	15140-122	Penicillin-Streptomycin, Liquid
Distilled Water	Life Technologies	15230-089.	Sterile Distilled Water
Human FGF-2 (bFGF)	Millipore	GF003AF-100UG	Fibroblast Growth Factor basic, human recombinant, animal-free
Filter 0.22 μm	Millipore	SCGPU02RE	Stericup-GP, 0.22 μm, polyethersulfone, 250 ml, radio-sterilized
StemPro EZPassageTM Disposablte	Invitrogen	23181010
BD MatrigelTM, hESC qualified Matrix	Stemcell Technologies	354277	5 ml vial
DMSO	Sigma	D-2650
RNAlater Stabilization Solution	Life Technologies	AM7020	It stabilizes and protect the RNA integrity in unfrozen samples.
70 μm Cell Strainer	Becton Dickinson	352350	Cell strainer with 70 μm Nylon mesh
35 μm Lid cell strainer, 5 ml tube	Becton Dickinson	352235	5 ml polystyrene round bottom test tube, with a cell strainer cap (35 μm)
50 ml sterile Polypropylene tube	Greiner Bio-One	227261	50 ml Polypropylene tube with conical bottom, Sterile
T75 flask	Greiner Bio-One	658175	CELLSTAR Filter Cap Cell Culture 75 cm2 Flasks
TRIzol	Life Technologies	10296010
96 well optical bottom plates	Thermo Scientific	165305
CellTiter-Blue	Promega	G8081
Accutase	PAA	L11-007
Apotransferin	Sigma-Aldrich	T-2036
Dispase	Worthington Biochemicals	LS002104
Dorsomorphin	Tocris Bioscience	3093
EDTA	Roth	8043.2
FBS	PAA	A15-101
FGF-2	R&D Systems	233-FB
Gelatine	Sigma-Aldrich	G1890-100G
Glucose	Sigma-Aldrich	G7021-100G
GlutaMAX	Gibco Invitrogen	35050-038
HEPES	Gibco Invitrogen	15630-056
Insulin	Sigma-Aldrich	I-6634
Knockout DMEM	Gibco Invitrogen	10829-018
Matrigel	BD Biosciences	354234
Noggin	R&D Systems	719-NG
PBS	Biochrom AG	L1825
Progesteron	Sigma-Aldrich	P7556
Putrescine	Sigma-Aldrich	P-5780
ROCK inhibitor Y-27632	Tocris Biosciences	1254
SB431542	Tocris Biosciences	1614
SDS	Bio-Rad	161-0416
Selenium	Sigma-Aldrich	S-5261
β-Mercaptoethanol	Gibco Invitrogen	31350-010
[header]
List of Kits
RNeasy Mini Kit (250)	QIAGEN	74106
GeneChip Hybridization, Wash, and Stain Kit	Affymetrix	900721, 22, 23	This kit provides all reagents required for hybridization wash and staining of microarrays.
Rnase-Free DNase Set	QIAGEN	79254
[header]
List of equipment
Inverted microscope	Olympus		IX71
Genechip Hybridisation Oven - 645	Affymetrix
Genechip Fluidics Station-450	Affymetrix
Affymetrix Gene-Chip Scanner-3000-7 G	Affymetrix
Spectramax M5	Molecular Devices
[header]
List of softwares
Prism 4
Affymetrix GCOS
Partek Genomic Suite 6.25
Online tools for Functional annotation DAVID Onto-tools Intelligent Systems and Bioinformatics Laboratory