JoVE Logo
发表
联系我们

登录

需要订阅 JoVE 才能查看此. 登录或开始免费试用。

本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

局部药物向颌下腺的传递对了解涎腺生物学和新疗法的发展有很浓厚的兴趣。我们提出了一个更新和详细的 retroductal 注射协议, 旨在提高交付准确性和实验再现性。本文提出的应用是高分子纳米粒子的传递。

摘要

涎腺治疗的两个共同目标是在自身免疫或辐射损伤后组织功能障碍的预防和治疗。通过局部向涎腺提供生物活性化合物, 可以安全地实现更大的组织浓度, 而不是系统性的管理。此外, 离体超腺堆积物的靶组织效应可以显著降低。在这方面, retroductal 注射液是一种广泛应用的方法, 以调查涎腺生物学和病理生理学。Retroductal 对生长因子、原代细胞、腺病毒载体和小分子药物的管理在损伤的设置中支持腺体功能。我们以前已经证明了 retroductally 注射纳米粒子-siRNA 策略在辐照后维持腺体功能的有效性。在这里, 一个高效和可重复的方法管理纳米材料的小鼠颌下腺通过沃顿的管道是详细 (图 1)。我们描述了进入口腔, 并概述了必要的步骤 cannulate 沃顿的管道, 并进一步的意见, 作为质量检查整个过程。

引言

涎腺功能障碍有许多病因, 包括 Sjögren 综合征, 自身免疫介导的功能性分泌组织丧失, 以及辐射诱发的 hyposalivation (RIH), 共同 sequella 头颈肿瘤放疗1。由于任一条件而导致的唾液功能丧失会诱发个人口腔和全身感染、蛀牙、消化和吞咽功能障碍、言语障碍和主要抑郁症1,2,3。因此, 生活质量显著受损, 干预措施仅限于缓解症状, 而不是治疗4。为了研究新的治疗方法在体内, 直接对涎腺进行生物活性化合物是有好处的。

Retroductal 注射液是一种很有价值的方法, 可以直接向唾液腺提供生物活性化合物, 并检测疾病、损伤或正常组织稳态下的疗效。三个主要唾液腺是腮腺 (PG), 颌下腺 (SMG) 和舌下 (SLG), 所有这些都空入口腔通过排泄导管。该小鼠的解剖允许通过插管的沃顿商学院的管道直接进入, 位于舌下的口底部5。插管后, 溶解药物可以直接管理到 SMG。在 retroductal 分娩后, 附加腺的扩散受周围组织胶囊的限制, 该囊调节与周围结构的材料交换6。smg 和它的导管是相似的结构在人, 并且经常被访问在 SMG 手术期间和 sialoendoscopy7。在人类和小鼠, PG 同样可以通过 Stensen 的导管在颊粘膜8。

在 RIH 的小鼠模型中, SMG retroductal 注射液用于提供治疗方法, 包括生长因子、原代细胞、腺病毒载体、细胞因子和抗氧化化合物, 以调节细胞对损伤的反应, 并减少由此产生的组织损伤5,9,10,11,12,13,14,15,16。retroductal 注射液的临床成功最显著的是对腺病毒载体的管理, 以直接表达的水道 (水通道蛋白 1;AQP1) 治疗头颈癌放疗后的患者17。

以前, 我们已经开发并显示了 retroductally 注射聚合物纳米 siRNA 系统的功效, 以保护唾液腺功能从 RIH11,18,19,20。作为我们过去工作的延伸, 在这里, 我们展示了我们的协议 retroductal SMG 注射使用一个荧光标记纳米粒子 (NP) 能够加载和交付否则不太可溶性药物21,22,23。

我们已经合成了 NP 从两嵌段共聚物组成的聚 (苯乙烯-alt-马来酸酐)-b 聚 (苯乙烯) (PSMA) 通过可逆添加链碎片 (筏) 聚合, 如前所述21。通过溶剂交换, 这些聚合物自发地自组装成胶束 NP 结构, 具有疏水性内部和亲水性外部的21。NPs 被标记与得克萨斯红色荧光允许验证 NP 交付入腺体, 不用牺牲动物。活体动物成像和 SMG 免疫组化显示在注射后1小时和1天。

此更新和可重现的插管协议应使其他人能够实现 retroductal 注射。我们预计, 这种精制技术将成为体内研究和治疗发展的关键24,25。

研究方案

下文概述的所有体内程序均由纽约罗切斯特大学动物资源大学委员会批准。

1. 准备

  1. 使用32G 颅内导管与线插入, 削减3厘米的油管形成一个斜角结束, 大约45°到长轴。确认导线的长度至少比油管长1厘米。
  2. 将50µL PSMA 纳米粒子溶液 (图 1) 或其他注射材料加载到哈密尔顿注射器中。为减少注射过程中气压伤的几率, 请将导管管、鞘移除、注射器和排出死容积。
  3. 检查注射液, 以确保纳米微粒完全溶解, 以防止导管梗阻后的管理。
  4. 用0.1 毫克/毫升的方法制备阿托品溶液。
    注: 由于阿托品是轻敏感和退化随着时间的推移, 这个解决方案应在注射日, 并保护从光, 直到管理。

2. 进入和可视化导管入口点

  1. 用分析天平称 C57/BL6 小鼠。
  2. 使用0.5 毫升注射器与 29G x ½ "针, 麻醉小鼠与腹腔注射无菌盐水溶液100毫克/千克氯胺酮和10毫克/千克甲苯噻嗪。当鼠标不再响应刺激时, 继续执行以下步骤, 通常在注入后5到10分钟内发生。
    注: 此过程也可在异氟醚下执行, 但需要一个自定义的鼻锥, 允许进入口腔。
  3. 为了防止在过程中的干燥, 应用润滑剂的眼睛, 并把鼠标放在一个容易的位置在一个自定义阶段。
    注意: 为了保持口腔内程序的适当条件, 应在每次使用前对工具进行消毒或消毒。
  4. 通过将上颌门牙固定在金属束上, 打开口腔, 并使用弹性带在下颌门牙后面施加下行张力 (图 2A)。
  5. 在解剖显微镜下对齐鼠标, 使下颚的底座可视化。
  6. 要扩大口腔, 使用一个定制的, 弯曲的钢牵引器, 以双边方式对颊粘膜施加张力。
  7. 为了可视化颌下腺乳突, 用钝钳抓住并轻轻地从口中的舌上抬起舌头。
    注: 乳突将出现在舌下的两个苍白突起 (图 2B)。
  8. 为了缓解口腔内的可视化和进一步的操作, 在舌头和颊粘膜之间放置棉花。

3. 导管插管和线路放置

  1. 采用细、弯钳, 用金属丝插入导管。为在插管过程中进行最佳手动控制, 请将油管与镊子的曲率对齐 (图 3A)。
  2. 使用解剖显微镜, 将钳和导线移动到视野中。
    注: 导线应从油管上凸出。
  3. 轻轻地将压力压入一个下颌下腺的底部, 使用金属丝插入, 产生一个小的, 表面的, 粘膜穿刺 (0.076 毫米直径), 将方便以后进入导管管 (0.25 毫米直径)。如果遇到阻力, 用锋利的解剖剪刀在油管和导线的插入上切开新的斜面尖。
  4. 进入后, 取出鞘, 并使用解剖显微镜, 确认穿刺部位是否存在唾液。避免对可能导致出血或损害导管完整性的鞘进行强力或突然的运动 (撤回或插入)。
  5. 收回油管内的鞘 (图 3B)。
  6. 为确保注射油管能适应沃顿商学院的管道开放, 插入含有鞘的油管作为先前穿刺的刚性指南 (图 2C)。
    注: 如果不快速执行, 局部肿胀可能会阻止重新插入。
  7. 为防止长期导管梗阻的背部压力, 请取出油管。检查, 以验证在显微镜下可见的开口, 可以看到在颌下腺的乳突。如果出现可见出血, 请将鞘和重试从3.2 步移到对立的颌下腺乳突上。
  8. 不移动鼠标, 管理腹腔注射1毫克/千克阿托品溶液, 减少流涎过程中。等待 5-10 分钟。
  9. 掌握注射器导管的末端, 并使用解剖显微镜 (图 3C) 插入孔内。如果遇到阻力, 切一个新的斜面端到油管和重试。
  10. 一旦导管在颌下腺内, 慢慢地向前推进 3-5 毫米进入导管。从镊子上松开油管。
  11. 为了改善导管与颌下腺之间的密封, 用纱布轻轻涂抹1分钟, 使界面干燥。
  12. 检查以确认油管的位置在干燥过程中没有转移。

4. 注塑

  1. 注射材料的速率为10µL/分. 检查以确认鼠标保持镇静, 并没有显示遇险迹象 (图 2D)。
    注:15-50 µL 注射液耐受性好。注入较大的体积会导致气压伤。
  2. 注射后, 保持注射器压力为5分钟, 以改善在沃顿商学院的管道和 SMG 的材料保留 (图 4)。定期检查下颌下腺, 以确保导管不出口导管口。
  3. 使用细钳, 抓住并轻轻地从颌下腺的乳突中取出油管。
    注意: 观察一些液体从乳突中出口是正常的。
  4. 在将鼠标从舞台上移开之前, 从口腔中取出牵引器和棉。
    注意: 动物不应被留在无人看管, 直到它恢复足够的意识, 以维持胸骨卧床。此外, 确保鼠标没有与其他老鼠住在一起, 直到完全恢复。

5. 核查和分析

注意:体内成像系统 (IVIS) 可用于评估注射后荧光标记的纳米粒子的保留 (如在图 5中注射后显示1小时和24小时)。

  1. 为了更好地在 SMG 内通过皮肤可视化荧光信号, 可以通过剃须或使用化学脱毛去除 SMGs 上的腹毛。
    注: 在安乐死后, SMG 组织也可以收获, 固定 (隔夜在4% 多聚甲醛), 并染色使用免疫组化, 以确认荧光的持久性标记 NP 一天后注射(图 6)。

结果

Retroductal 注射液可用于管理 NPs 到小鼠 SMG (图 1)。在这里, 我们提供了50µg PSMA NPs 标记与德州红荧光。

正确放置鼠标可以方便地访问和可视化口底 (图 2A-b)。颌下腺的乳突被确定为舌下的两个肉质突起。在插管 (图 2C) 和阿托品注射液之后, 注射器导...

讨论

Retroductal 注射液对涎腺的局部药物传递至关重要。该技术在筛选治疗剂的条件, 包括干燥综合征和 RIH9,10,28的应用。通过 retroductal 注射液直接向 SMG 提供药物, 在降低靶向效应 (包括免疫激活11) 的潜在效果方面比系统性管理具有重要优势。在不积累周围组织的情况下, 最大限度地提高当地药物的输送能力, 也能?...

披露声明

作者没有什么可透露的。

致谢

该出版物中报告的研究得到国家牙科和颅面研究研究所 (NIDCR) 和国立卫生研究院全国癌症研究所 (R56 DE025098、UG3 DE027695 和 F30 CA206296) 的支持。内容完全是作者的责任, 不一定代表国家卫生研究院的官方意见。这项工作也得到了 NSF DMR 1206219 和 IADR 口腔护理奖 (2016) 创新的支持。

我们要感谢詹 Gavrity 在 IVIS 实验中的帮助。我们要感谢凯伦. 宾利在执行 EM 方面的投入和协助。我们要感谢裴翁对 IHC 的协助。我们要感谢马修·格尔斯在图准备方面的协助。我们要感谢伊莲 Smolock 博士和艾米莉. 吴对这篇手稿的批判性阅读。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Pilocarpine hydrochlorideSigma AldrichP6503Pilocarpine
Student Vannas Spring ScissorsFine Science Tools91500-9Spring Scissors for Tracheostomy
Sterile Saline SolutionMedlineRDI30296HSaline
Dumont #7 ForcepsFine Science Tools11274-20Curved Forceps
Dumont #5 ForcepsFine Science Tools11251-10Straight Forceps
Standard Pattern ForcepsFine Science Tools11000-12Blunt Forceps
Fine Scissors- Tungsten CarbideFine Science Tools14568-09Dissection Scissors
Microhematocrit Heparinized Capillary TubesFisher Scientific22362566Capillary tubes
Lubricant Eye OintmentRefreshN/ARefresh Lacri-Lube
Goat polyclonal anti-Nkcc1Santa Cruz BiotechSC-21545Nkcc1 Antibody
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride)Thermo Fisher ScientificD1306DAPI
GraphPad PrismGraphPadver6.0Statistical Software
Cotton tipped applicatorMedlineMDS202000Applicator for eye ointment
0.5cc Insulin Syringe, 29G x 1/2"BD7629Syringe for intraperitoneal injection

参考文献

  1. Miranda-Rius, J., Brunet-Llobet, L., Lahor-Soler, E., Farre, M. Salivary Secretory Disorders, Inducing Drugs, and Clinical Management. International Journal Of Medical Sciences. 12 (10), 811-824 (2015).
  2. Acauan, M. D., Figueiredo, M. A. Z., Cherubini, K., Gomes, A. P. N., Salum, F. G. Radiotherapy-induced salivary dysfunction: Structural changes, pathogenetic mechanisms and therapies. Archives of Oral Biology. 60 (12), 1802-1810 (2015).
  3. Dirix, P., Nuyts, S., Vander Poorten, V., Delaere, P., Van den Bogaert, W. The influence of xerostomia after radiotherapy on quality of life. Supportive Care in Cancer. 16 (2), 171-179 (2008).
  4. Vissink, A., et al. Clinical management of salivary gland hypofunction and xerostomia in head-and-neck cancer patients: successes and barriers. International Journal of Radiation Oncology Biology Physics. 78 (4), 983-991 (2010).
  5. Delporte, C., et al. Increased fluid secretion after adenoviral-mediated transfer of the aquaporin-1 cDNA to irradiated rat salivary glands. Proceedings of the National Academy of Sciences. 94 (7), 3268-3273 (1997).
  6. Samuni, Y., Baum, B. J. Gene delivery in salivary glands: from the bench to the clinic. Biochimica et Biophysica Acta. 1812 (11), 1515-1521 (2011).
  7. Beahm, D. D., et al. Surgical approaches to the submandibular gland: A review of literature. International Journal of Surgery. 7 (6), 503-509 (2009).
  8. Zheng, C., Shinomiya, T., Goldsmith, C. M., Di Pasquale, G., Baum, B. J. Convenient and reproducible in vivo gene transfer to mouse parotid glands. Oral diseases. 17 (1), 77-82 (2011).
  9. Zheng, C., et al. Prevention of Radiation-Induced Salivary Hypofunction Following hKGF Gene Delivery to Murine Submandibular Glands. Clinical Cancer Research. 17 (9), 2842-2851 (2011).
  10. Okazaki, Y., et al. Acceleration of rat salivary gland tissue repair by basic fibroblast growth factor. Archives of Oral Biology. 45 (10), 911-919 (2000).
  11. Arany, S., Benoit, D. S., Dewhurst, S., Ovitt, C. E. Nanoparticle-mediated gene silencing confers radioprotection to salivary glands in vivo. Molecular Therapy. 21 (6), 1182-1194 (2013).
  12. Cotrim, A. P., Sowers, A., Mitchell, J. B., Baum, B. J. Prevention of irradiation-induced salivary hypofunction by microvessel protection in mouse salivary glands. Molecular Therapy. 15 (12), 2101-2106 (2007).
  13. Redman, R. S., Ball, W. D., Mezey, E., Key, S. Dispersed donor salivary gland cells are widely distributed in the recipient gland when infused up the ductal tree. Biotechnic & Histochemistry. 84 (6), 253-260 (2009).
  14. Grundmann, O., Fillinger, J. L., Victory, K. R., Burd, R., Limesand, K. H. Restoration of radiation therapy-induced salivary gland dysfunction in mice by post therapy IGF-1 administration. BMC Cancer. 10, 417-417 (2010).
  15. Limesand, K. H., et al. Insulin-Like Growth Factor-1 Preserves Salivary Gland Function After Fractionated Radiation. International Journal of Radiation Oncology Biology Physics. 78 (2), 579-586 (2010).
  16. Marmary, Y., et al. Radiation-induced loss of salivary gland function is driven by cellular senescence and prevented by IL-6 modulation. Cancer Research. , (2016).
  17. Baum, B. J., et al. Early responses to adenoviral-mediated transfer of the aquaporin-1 cDNA for radiation-induced salivary hypofunction. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (47), 19403-19407 (2012).
  18. Arany, S., et al. Pro-apoptotic gene knockdown mediated by nanocomplexed siRNA reduces radiation damage in primary salivary gland cultures. Journal of Cellular Biochemistry. 113 (6), 1955-1965 (2012).
  19. Benoit, D. S. W., Henry, S. M., Shubin, A. D., Hoffman, A. S., Stayton, P. S. pH-responsive polymeric siRNA carriers sensitize multidrug resistant ovarian cancer cells to doxorubicin via knockdown of polo-like kinase 1. Molecular pharmaceutics. 7 (2), 442-455 (2010).
  20. Malcolm, D. W., Varghese, J. J., Sorrells, J. E., Ovitt, C. E., Benoit, D. S. W. The Effects of Biological Fluids on Colloidal Stability and siRNA Delivery of a pH-Responsive Micellar Nanoparticle Delivery System. ACS Nano. , (2017).
  21. Baranello, M. P., Bauer, L., Benoit, D. S. Poly(styrene-alt-maleic anhydride)-based diblock copolymer micelles exhibit versatile hydrophobic drug loading, drug-dependent release, and internalization by multidrug resistant ovarian cancer cells. Biomacromolecules. 15 (7), 2629-2641 (2014).
  22. Wang, Y., et al. Fracture-Targeted Delivery of β-Catenin Agonists via Peptide-Functionalized Nanoparticles Augments Fracture Healing. ACS Nano. 11 (9), 9445-9458 (2017).
  23. Baranello, M. P., Bauer, L., Jordan, C. T., Benoit, D. S. W. Micelle Delivery of Parthenolide to Acute Myeloid Leukemia Cells. Cellular and Molecular Bioengineering. 8 (3), 455-470 (2015).
  24. Kuriki, Y., et al. Cannulation of the Mouse Submandibular Salivary Gland via the Wharton's Duct. Journal of Visualized Experiments. (51), e3074 (2011).
  25. Nair, R. P., Zheng, C., Sunavala-Dossabhoy, G. Retroductal Submandibular Gland Instillation and Localized Fractionated Irradiation in a Rat Model of Salivary Hypofunction. Journal of Visualized Experiments. (110), (2016).
  26. Wang, Y., Malcolm, D. W., Benoit, D. S. W. Controlled and sustained delivery of siRNA/NPs from hydrogels expedites bone fracture healing. Biomaterials. 139 (Supplement C), 127-138 (2017).
  27. Hoffman, M. D., Van Hove, A. H., Benoit, D. S. W. Degradable hydrogels for spatiotemporal control of mesenchymal stem cells localized at decellularized bone allografts. Acta Biomaterialia. 10 (8), 3431-3441 (2014).
  28. Nguyen, C. Q., Yin, H., Lee, B. H., Chiorini, J. A., Peck, A. B. IL17: potential therapeutic target in Sjogren's syndrome using adenovirus-mediated gene transfer. Laboratory Investigation. 91 (1), 54-62 (2011).

转载和许可

请求许可使用此 JoVE 文章的文本或图形

请求许可

探索更多文章

135retroductal

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

政策

使用条款

隐私

联系我们

向图书馆推荐

JoVE 新闻简报

科研

教育

发表

图书馆员

关于 JoVE

版权所属 © 2025 MyJoVE 公司版权所有，本公司不涉及任何医疗业务和医疗服务。