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  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
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  • 参考文献
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摘要

本文介绍了东方果蝇背CRISPR/Cas9诱变的分步方案。该标准化协议提供的详细步骤将作为产生突变果蝇的有用指南,用于背双歧杆菌的功能基因研究。

摘要

东方果蝇 Bactrocera dorsalis 是一种高度侵入性和适应性的害虫物种,对柑橘和全球150多种其他水果作物造成损害。由于成年果蝇具有很强的飞行能力,雌性果蝇在果皮下产卵,因此需要直接接触害虫的杀虫剂通常在田间表现不佳。随着分子生物学工具和高通量测序技术的发展,许多科学家正在尝试制定环保的害虫管理策略。这些包括基于RNAi或基因编辑的杀虫剂,它们下调或沉默各种害虫中的基因(分子靶标),例如参与搜索行为的嗅觉基因。为了使这些策略适用于东方果蝇控制,需要有效的功能基因研究方法。在 背苜蓿 的存活和繁殖中具有关键功能的基因是基因敲低和/或沉默的良好分子靶标。CRISPR/Cas9系统是一种用于基因编辑的可靠技术,特别是在昆虫中。本文提出了一种系统 的方法,包括引导RNA的设计和合成、胚胎采集、胚胎注射、昆虫饲养和突变体筛选。这些协议将作为对背 侧双歧杆菌功能基因研究感兴趣的研究人员产生突变果蝇的有用指南。

引言

东方果蝇 Bactrocera dorsalis ,是一种世界性的害虫物种,对 150 多种水果作物造成损害,包括番石榴、芒果、尤金属、苏里南樱桃、柑橘、枇杷和木瓜1。仅在广东省(中国)造成的损失估计就超过2亿元人民币。成年雌性将卵插入成熟或成熟果实的皮下,导致果实腐烂和脱落,从而降低果实品质和作物总产量2。由于成年果蝇具有很强的飞行能力,它们的幼虫钻入果皮,因此需要直接接触害虫的杀虫剂在田间表现不佳。此外,杀虫剂的广泛使用增加了 背双歧杆菌 对各种农业化学品的抵抗力,使得控制这些有害害虫变得更加困难3。因此,迫切需要制定有效和环保的害虫管理策略。

最近,随着分子生物学工具和高通量测序技术的发展,科学家们正试图开发环境友好的害虫管理策略,例如RNAi,该策略针对各种害虫的重要基因(分子靶标)的功能。通过功能基因研究,可以鉴定出对害虫生存和繁殖至关重要的基因,并进一步作为改进专门针对性和环境友好型害虫管理工具的潜在分子靶标4。为了使这些策略适应东方果蝇控制,需要有效的功能基因研究方法。

CRISPR/Cas(成簇规则间隔短回文重复序列/CRISPR相关)核酸内切酶系统最初是在细菌和古细菌中发现的,并发现是一种参与识别和降解外来细胞内DNA的适应性机制,例如通过感染噬菌体引入的机制5。在II型CRISPR系统中,Cas9核酸内切酶在小相关RNA(crRNA和tracrRNA)的引导下切割侵入DNA678,并已成为迄今为止使用最广泛的基因编辑工具之一9,101112。由于CRISPR/Cas9系统具有基因沉默效率高、成本低等优点,因此已被应用于各种昆虫物种的基因编辑,包括埃及伊蚊1314蝗虫迁徙15森16。在B. dorsalis中,与体色,翅膀二态性和性别决定相关的基因已经使用CRISPR / Cas917,1819成功敲除。然而,CRISPR / Cas9在这种昆虫中应用的详细程序仍然不完整。此外,研究人员为背侧双歧杆菌基因编辑提供的一些步骤也各不相同,需要标准化。例如,Cas9的形式在已发表的参考文献171819中是不同的。

本文提供了利用CRISPR/Cas9系统诱变背 苜蓿 的系统方法,包括引导RNA的设计和合成、胚胎采集、胚胎注射、昆虫饲养和突变体筛选。该协议将作为对 背侧双歧杆菌功能基因研究感兴趣的研究人员产生突变苍蝇的有用指南。

研究方案

1. 靶标设计与sgRNA的 体外 合成

  1. 通过背侧双歧杆菌基因组的生物信息学分析,预测感兴趣的靶基因的结构并确定外显子和内含子之间的边界(此处使用的软件应用程序列在材料表中)。
    注意:BLAT20 用于搜索基因组中潜在的基因位点。使用Hisat221将高质量的RNA-seq读数(转录组)与获得的基因位点对齐。Samtools22 用于生成排序的bam文件。将排序后的 bam 文件输入到 Stringtie223 以提供汇编脚本。组装转录本和基因位点信息由Transdecoder24组合。从Transdecoder获得的结果在IGV工具25 中可视化,并且可以确定外显子和内含子之间的边界。
  2. 确定候选靶基因位点内的合适靶区。总长度必须小于750 bp,以便更方便地进行测序(图1B)。设计特异性引物以通过PCR扩增野生型基因组DNA的靶区(图1B)(引物:F引物:AACATTGAATCTGGAATCAGGTAAACT,R引物:CCTCATTGTTGATTAATTCCGACTTC)。将PCR产物克隆到钝端载体26中,并选择20 个单独的细菌菌落进行测序,以确定目标区域在实验室昆虫种群中的保守程度。
  3. 典型的靶位点包含一个三核苷酸序列基序(NGG 或 CCN)和一个与 NGG 或 CCN 基序相邻的 20 bp 序列(20 bp-NGG 或 CCN-20 bp)。针对 背侧双歧杆菌 基因组对候选靶位点进行爆破,并确保预测效率足够高且脱靶率低;一些开源软件程序可以自动预测这一点。在该协议中,sgRNAcas9 -AI27 用于选择和评估最佳靶标。使用细节可以在该软件的手册中找到。
    注意:可能的目标位点靠近靶基因的5' UTR和20 bp序列开始时的1-2 Gs。为了实现通过PCR和琼脂糖凝胶电泳鉴定的大缺失,建议设计两个相隔超过100 bp的靶标28图1C)。
  4. 使用市售的 gRNA 合成试剂盒生成设计的 sgRNA。按照用户指南执行每个步骤。将gRNA产物重悬于无核酸酶的水中,使用紫外-可见分光光度计定量浓度,并在使用前储存在-80°C(使用此处使用的试剂盒成功合成的单个gRNA [10μL]的浓度约为4000-6000ng / μL,甚至更高)。
    注意:虽然产生突变果蝇是每个研究人员的第一步,但下游实验/分析的适当阴性对照至关重要。与突变体一起生成这些对照可以节省研究人员的时间和精力。例如,将加扰的sgRNA设置为阴性对照。

2. 胚胎采集和准备

  1. 将B . dorsalis pupa放入塑料笼中。在成虫关闭后,提供糖和酵母(1:1)的混合物作为食物以及水源(图2A,B)。饲养条件为55%相对湿度(RH),26.5°C和14:10 L/D循环(早上六点开灯,晚上八点关灯)。
  2. 大多数成虫在出苗后10天达到性成熟。提供一个合适的环境,帮助成年苍蝇尽可能多地交配。理想情况下,使用30-50勒克斯的灯架。这可以提高雌性的繁殖力,从而提高胚胎收集的效率。
    注意:将成虫(出苗后5-6天)放在昏暗(<100勒克斯)的环境中可以促进交配。一般来说,产卵高峰发生在下午 03:00(14:10/L:D,早上 06:00 开灯,晚上 08:00 熄灯);为了获得足够的胚胎,建议在下午03:00之前30分钟将产卵室放入笼子中。
  3. 将一块200目纱布放在产卵室中,距离腔室盖1-2毫米。这将有助于获得尽可能多的胚胎。
    注意:避免让胚胎浸泡在橙汁中或用纱布擦拭,因为这会显着降低胚胎的存活率。
  4. 当显微注射装置准备就绪时,将新的产卵室放入笼中。用细湿刷每10分钟收集一次胚胎,然后将它们排列在自制的注射板上(长55毫米,宽13.75毫米,高5毫米的有机玻璃,中间开一个45毫米x 5毫米x 0.3毫米的浅槽,以方便放置卵子)。如果胚胎具有高内部压力,则可选择在<10%RH下轻微干燥10分钟。在注射过程中将胚胎浸入卤烃油中以避免进一步干燥(图2C)。

3.胚胎显微注射

  1. 使用微量移液器拉拔器准备玻璃注射针。
    注意:按照用户指南设置参数非常重要。在这些方案中,可以使用微量移液器拉拔器手册建议的参数制作不同的针头形状。玻璃毛细管必须尽可能清洁,以防止灰尘堵塞针头。
  2. 准备工作溶液。将Cas9蛋白和相应的sgRNA混合至以下工作浓度:sgRNA,300ng / μL;Cas9 蛋白,150 ng/μL.向混合物中加入 1 μL 酚红,作为标记注射胚胎的便捷方法。将制备好的混合物放在冰上以避免sgRNA降解。
    注意:使用无核酸酶移液器吸头和PCR管。Cas9蛋白的浓度需要小于或等于150ng/μL;较高的浓度是有毒的,会显着降低胚胎存活率。Cas9也可以以DNA或mRNA格式递送,以实现成功的基因编辑1719。在该协议中,推荐使用Cas9蛋白,因为mRNA易于降解,并且质粒DNA中Cas9蛋白的表达需要时间来转录和翻译。
  3. 设置喷油器的参数。初始程序是Pi-500 hPa,Ti-0.5 s和PC-200 hPa。在显微注射过程中根据需要进一步调整这些参数。
  4. 将 3 μL 混合物加入进样针中。避免引入可能堵塞针头的气泡。使用微型研磨机打开针头。
  5. 根据用户指南将针头连接到显微操纵器(图2E)。
  6. 将带有排列胚胎的盘子放在物镜桌上。在精细光学显微镜下调整微量移液器的位置,将微量移液器和胚胎设置在同一平面上。通过踩下踏板调节液滴体积;建议胚胎体积的1/10。
  7. 将针尖插入胚胎的后部(植物极)。通过从注射器踩下踏板将混合物输送到胚胎中。如果添加酚红,则会立即观察到略带红色的颜色。
    注意:来自针孔的少量细胞质回流不会降低胚胎的存活率。注射200个胚胎足以成功诱变一个基因。添加更多的卤烃油浸泡胚胎可以防止进一步干燥。注射需要在极细胞形成之前进行,这确保了每个突变都可以有效地遗传。

4. 注射后昆虫饲养

  1. 将装有注射胚胎的注射板放入保持在55%RH,26.5°C和14:10 L / D循环的人工气候室中(早上六点开灯,晚上八点熄灯)。
  2. 注射后,胚胎形成通常需要24小时才能完成,36小时才能孵化。使用细尖刷将幼虫转移到准备好的幼虫饮食中。每天收集幼虫三到四次,直到不再有幼虫孵化。一般来说,幼虫需要2-3天才能完成孵化,并在7天内化蛹。
    注意:使用以玉米为基础的饮食来喂养幼虫。该食谱包含 150 克玉米粉、150 克香蕉、0.6 克苯甲酸钠、30 克酵母、30 克蔗糖、30 克纸巾、1.2 毫升盐酸和 300 毫升水29.尽量减少幼虫留在油中的时间(<2小时)。尽可能在孵化后立即将幼虫移到饮食中。这可以显着提高存活率和化蛹率。不要提供过多的饮食(90毫米培养皿的2/3的饮食足以容纳30只幼虫);否则会发霉,降低幼虫存活率。
  3. 将成熟的幼虫放入湿沙中化蛹。化蛹阶段大约需要10天。在闭合开始之前将蛹移到塑料笼中。

5. 突变体筛选

  1. 突变体筛选的流程图如图 3A所示。通过显微注射获得的G0成虫与野生型成虫杂交以获得杂合系。通过基因分型验证后代(G1)携带的突变类型。
  2. 具有相同突变基因型的自交G1以获得G2中的纯合子系。如果G1中突变体的基因型完全不同,则将杂合子与野生型苍蝇杂交。纯合子系通常在G3中获得。保留两个或三个纯合子系,用于后续的表型实验。
  3. 使用来自新鲜蛹或单个成虫中腿的基因组DNA进行基因分型。设计特异性引物以扩增靶标区域;引物必须在靶位点的上游和下游设置至少50 bps。有关入门详细信息,请参阅步骤 1.2。
    注意:由于蛹中的DNA含量极低,因此建议使用市售的DNA提取试剂盒。
  4. 使用以下循环条件进行PCR:98°C3分钟,然后35个98°C循环10秒,15秒,退火温度适合设计的引物,72°C35秒,然后最终延伸72°C10分钟。
  5. 对纯化的PCR产物进行测序。当检测到与靶位点相邻的多个重叠峰时(图3B),发生了成功的诱变。将纯化的PCR产物亚克隆到平端载体中,并选择10个单独的细菌菌落进行测序,以验证突变体的基因型。保持具有移码突变和过早翻译终止的线条(图 3C)。
    注意:无需执行单克隆测序来验证G0个体的基因型。只需对PCR产物进行测序,并保持与靶位点相邻的明显多个重叠峰的个体。初始注射后,建议选择10个胚胎提取基因组DNA,并根据步骤5.3中的标准对PCR产物进行测序。这有助于提前预测突变率。在这项研究中,确定基因型的桑格测序是由一家测序公司完成的。

结果

该协议提供了使用CRISPR / Cas9技术开发背 侧双歧杆菌 突变体的详细步骤,包括gDNA选择,收集胚胎和显微注射,昆虫维持和突变体筛选的代表性结果。

所选基因的靶位点的示例位于第三个外显子中(图1C)。该位点高度保守,通过凝胶电泳检测合成gRNA的DNA模板(图1D)和体 转录获得的gRNA的单条带(?...

讨论

CRISPR/Cas9系统是使用最广泛的基因编辑工具,具有多种应用,如基因Threpy30,作物育种31和基因功能的基础研究32该系统已被应用于各种昆虫物种的基因编辑,并已成为害虫功能基因研究的有效工具。我们在这里介绍的方案标准化了引导RNA的设计和合成,收集胚胎,胚胎注射,昆虫饲养和突变体筛选的过程。此外,还增加了一个故障排除表来?...

披露声明

作者没有任何利益冲突。

致谢

这项工作得到了深圳市科技计划(批准号:KQTD20180411143628272)和深圳市大鹏新区科技创新与产业发展专项资金(批准号:PT202101-02)的支持。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
6x DNA Loading BufferTransGen BiotechGH101-01
Artificial climate chamberShangHai BluePardMGC-350P
AxyPrep Genomic DNA Mini-Extraction KitAxygenAP-MN-MS-GDNA-250G
BLATNANAFor searching potential gene loci in the genome
Capillary GlassWPI 1B100F-4
Eppendorf InjectMan 4 micromanipulatorEppendorfInjectMan 4
GeneArt Precision gRNA Synthesis KitThermo Fisher ScientificA29377
Hisat2NANAFor aligning the transcriptome to the acquired gene loci
IGVNANAFor visualizing the results from Transdecoder
MicrogrinderNARISHIGEEG-401
Olympus MicroscopeOlympus CorporationSZ2-ILST
pEASY-Blunt Cloning KitTransGen BiotechCB101-02https://www.transgenbiotech.com/data/upload/pdf/CB101_2022-07-14.pdf
Phenol red solutionSigma-AldrichP0290-100ML
Pipette cookbook 2018 P-97 & P-1000 Micropipette PullersInstrument Company https://www.sutter.com/PDFs/cookbook.pdf
PrimeSTAR HS (Premix)Takara Biomedical TechnologyR040A
SAMtoolsNANAFor generating the sorted bam files
sgRNAcas9-AINANAsgRNA design
http://123.57.239.141:8080/home
Sutter Micropipette Puller Sutter Instrument Company P-97
Trans2K DNA MarkerTransGen BiotechBM101-02
TransdecoderNANAFor combining the results of assemble transcripts and gene loci information
https://github.com/TransDecoder/TransDecoder/releases/tag/TransDecoder-v5.5.0
TrueCut Cas9 Protein v2Thermo Fisher ScientificA36498
Ultra-trace biological detectorThermo Fisher ScientificNanodrop 2000C

参考文献

  1. Christenson, L. D., Foote, R. H. Biology of fruit flies. Annual Review of Entomology. 5 (1), 171-192 (1960).
  2. Ma, X., et al. The assessment of the economic losses caused by Bactrocera dorsalis, B. cucurbitae and B. tau to Guangdong province. Plant Quarantine. 27 (3), 50-56 (2013).
  3. Jin, M., et al. Chemical control measures and drug resistance management of Bactrocera dorsalis. Agrochemicals. 60 (1), 1-5 (2021).
  4. Yang, B., Liu, Y., Wang, B., Wang, G. Olfaction-based behaviorally manipulated technology of pest insects: research progress, opportunities and challenges. Bulletin of National Natural Science Foundation of China. 34 (4), 441-446 (2020).
  5. Jinek, M., et al. A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity. Science. 337 (6096), 816-821 (2012).
  6. Garneau, J. E., et al. The CRISPR/Cas bacterial immune system cleaves bacteriophage and plasmid DNA. Nature. 468 (7320), 67-71 (2010).
  7. Pyzocha, N. K., et al. RNA-guided genome editing of mammalian cells. Gene Correction. , 269-277 (2014).
  8. Weiss, D., et al. CRISPR-Cas systems: new players in gene regulation and bacterial physiology. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 4, 37 (2014).
  9. Doudna, J. A., Charpentier, E. The new frontier of genome engineering with CRISPR-Cas9. Science. 346 (6213), 1258096 (2014).
  10. Cong, L., et al. Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems. Science. 339 (6121), 819-823 (2013).
  11. Li, D., et al. Heritable gene targeting in the mouse and rat using a CRISPR-Cas system. Nature Biotechnology. 31 (8), 681-683 (2013).
  12. Wang, H., et al. One-step generation of mice carrying mutations in multiple genes by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Cell. 153 (4), 910-918 (2013).
  13. Li, H., et al. Generating mutant Aedes aegypti mosquitoes using the CRISPR/Cas9 system. STAR protocols. 2 (2), 100432 (2021).
  14. Zhu, G. -. H., et al. Expanding the toolkit for genome editing in a disease vector, Aedes aegypti: transgenic lines expressing Cas9 and single guide RNA induce efficient mutagenesis. The CRISPR Journal. 4 (6), 846-853 (2021).
  15. Li, Y., et al. CRISPR/Cas9 in locusts: Successful establishment of an olfactory deficiency line by targeting the mutagenesis of an odorant receptor co-receptor (Orco). Insect Biochemistry and Molecular Biology. 79, 27-35 (2016).
  16. Liu, Q., et al. Deletion of the Bombyx mori odorant receptor co-receptor (BmOrco) impairs olfactory sensitivity in silkworms. Insect Biochemistry & Molecular Biology. 86, 58-67 (2017).
  17. Zhao, S., et al. Efficient somatic and germline genome engineering of Bactrocera dorsalis by the CRISPR/Cas9 system. Pest Management Science. 75 (7), 1921-1932 (2019).
  18. Bai, X., et al. CRISPR/Cas9-mediated knockout of the eye pigmentation gene white leads to alterations in colour of head spots in the oriental fruit fly, Bactrocera dorsalis. Insect Molecular Biology. 28 (6), 837-849 (2019).
  19. Zheng, W., et al. Clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR)/CRISPR-associated 9-mediated mutagenesis of the multiple edematous wings gene induces muscle weakness and flightlessness in Bactrocera dorsalis (Diptera: Tephritidae). Insect Molecular Biology. 28 (2), 222-234 (2019).
  20. Kent, W. J. BLAT-the BLAST-like alignment tool. Genome Research. 12 (4), 656-664 (2002).
  21. Kim, D., Langmead, B., Salzberg, S. L. HISAT: A fast spliced aligner with low memory requirements. Nature Methods. 12 (4), 357-360 (2015).
  22. Danecek, P., et al. Twelve years of SAMtools and BCFtools. Gigascience. 10 (2), (2021).
  23. Kovaka, S., et al. Transcriptome assembly from long-read RNA-seq alignments with StringTie2. Genome Biology. 20 (1), 278 (2019).
  24. . TransDecoder Available from: https://github.com/TransDecoder/TransDecoder/releases/tag/TransDecoder-v5.5.0 (2018)
  25. Robinson, J. T., et al. Integrative genomics viewer. Nature Biotechnology. 29 (1), 24-26 (2011).
  26. Chang, H., et al. A pheromone antagonist regulates optimal mating time in the moth Helicoverpa armigera. Current Biology. 27 (11), 1610-1615 (2017).
  27. Xie, S., et al. sgRNAcas9: a software package for designing CRISPR sgRNA and evaluating potential off-target cleavage sites. PloS One. 9 (6), 100448 (2014).
  28. Zheng, Q. P., et al. Precise gene deletion and replacement using the CRISPR/Cas9 system in human cells. Biotechniques. 57 (3), 115-124 (2014).
  29. Ren, L., et al. Rectal bacteria produce sex pheromones in the male oriental fruit fly. Current Biology. 31 (10), 2220-2226 (2021).
  30. Xiao, Q., et al. Application of CRISPR/Cas9-based gene editing in HIV-1/AIDS therapy. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 9, 69 (2019).
  31. El-Mounadi, K., et al. Principles, applications, and biosafety of plant genome editing using CRISPR-Cas9. Frontiers in Plant Science. 11, 56 (2020).
  32. Hsu, P. D., et al. Development and applications of CRISPR-Cas9 for genome engineering. Cell. 157 (6), 1262-1278 (2014).
  33. Labun, K., et al. CHOPCHOP v3: expanding the CRISPR web toolbox beyond genome editing. Nucleic Acids Research. 47, 171-174 (2019).
  34. Ai, D., et al. Embryo microinjection and knockout mutant identification of CRISPR/Cas9 genome-edited Helicoverpa armigera (Hübner). Journal of Visualized Experiments. (173), e62068 (2021).
  35. Xie, S., et al. sgRNAcas9: a software package for designing CRISPR sgRNA and evaluating potential off-target cleavage sites. PloS One. 9 (6), 100448 (2014).
  36. Gratz, S. J., et al. Genome engineering of Drosophila with the CRISPR RNA-guided Cas9 nuclease. Genetics. 194 (4), 1029-1035 (2013).
  37. Zhu, G. H., et al. Knockout of juvenile hormone receptor, Methoprene-tolerant, induces black larval phenotype in the yellow fever mosquito, Aedes aegypti. Proceedings of the National Academy of Sciences. 116 (43), 21501-21507 (2019).
  38. Laohakieat, K., Isasawin, S., Thanaphum, S. The transformer-2 and fruitless characterisation with developmental expression profiles of sex-determining genes in Bactrocera dorsalis and B. correcta. Scientific Reports. 10 (1), 1-13 (2020).
  39. Gabrieli, P., et al. Sperm-less males modulate female behaviour in Ceratitis capitata (Diptera: Tephritidae). Insect Biochemistry and Molecular Biology. 79, 13-26 (2016).

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