S.H.实验室的工作得到了DFG通过SFB1064（项目ID 213249687）、欧洲研究委员会（ERC启动资助852798冲突解决）和亥姆霍兹协会的支持。

有关本协议中使用的所有材料和仪器的详细信息，请参阅 材料表 。有关所用溶液、缓冲液和培养基的列表，请参见 表 1 。
1. 重组酵母菌株构建
<ol><li>为了构建具有重组能力的酵母菌株，将 SbfI 消化的质粒 K238 转化为在目标位点13,14 处集成了 LexA 结合位点和 RS 重组位点的酵母菌株。 注意：转化后的 SbfI 限制性片段包含用于组成型表达 LexA-TAP 融合蛋白和 R-重组酶的表达盒以及酵母染色体 I 的同源序列，用于通过同源重组对表达盒进行基因组整合（图 1）。</li>
	<li>为了构建对照菌株，取缺乏整合 RS 和 LexA 结合位点的同基因酵母菌株，并在与重组能力菌株相同的条件下用 SbfI 消化的 K238 质粒转化它。</li>
	<li>根据 SCD-LEU 琼脂平板14 上的 LEU2 选择标记物选择感受态酵母细胞。</li>
</ol>2. 将IgG抗体偶联到环氧活化的磁珠上
注：根据以下已发表的方案11，将 IgG 抗体偶联到环氧树脂活化的磁珠上。
<ol><li>将 300 mg 环氧活化珠悬浮在 50 mL 锥形管中的 10 mL 50% 丙酮（300 mg 对应于 ~5.1 ×10 10 个珠子）中。在涡旋混合器上用力摇晃。</li>
	<li>将含有珠子的试管在820× g 和4°C下离心2分钟。除去上清液。</li>
	<li>用 20 mL 0.1 M 磷酸钠缓冲液 （pH 7.4） 洗涤珠子 3 次。按照步骤2.2所述，在每个洗涤步骤后通过离心除去上清液。</li>
	<li>将珠子悬浮在 16 mL 0.1 M 磷酸钠缓冲液 （pH 7.4） 中，并在室温下在杂交炉中轻轻旋转 5 分钟。</li>
	<li>将兔IgGs（100mg）溶解在7mL dH2O（终浓度：14mg / mL）中。</li>
	<li>将IgG悬浮液在13,000× g 和4°C下离心10分钟以澄清悬浮液。</li>
	<li>将 3.5 mL 上清液（相当于 50 mg 兔 IgG）转移到新的 50 mL 锥形管中。</li>
	<li>用 9.85 mL 0.1 M 磷酸钠缓冲液 （pH 7.4） 稀释 IgG 溶液，然后在温和混合下滴加 6.65 mL 3 M 硫酸铵在 0.1 M 磷酸钠 （pH 7.4） 中。 注意：避免在溶液中快速添加硫酸铵，因为局部浓度高的盐会导致兔 IgG 沉淀。</li>
	<li>将IgG溶液在820× g 和4°C下离心3分钟，并将所得上清液加入磁珠悬浮液中。</li>
	<li>将试管孵育过夜或在30°C下至少孵育18小时，并在杂交烘箱中轻轻旋转。</li>
	<li>如步骤2.2所述除去上清液。</li>
	<li>用 20 mL 100 mM 甘氨酸-HCl （pH 2.5） 洗涤珠子。按照步骤2.2中的说明快速除去溶液，以避免IgG多肽变性。</li>
	<li>用 20 mL 10 mM Tris-HCl （pH 8.8） 洗涤珠子一次。如步骤2.2所述吸出上清液。</li>
	<li>加入 20 mL 0.1M 三乙胺溶液 5-10 分钟，轻轻旋转以灭活残留的反应性环氧基团。如步骤2.2所述除去上清液。</li>
	<li>用 20 mL PBS（pH 7.4）洗涤珠子 4 次，轻轻旋转 5 分钟。在每个洗涤步骤后，按照步骤2.2中的说明除去上清液。</li>
	<li>用 20 mL PBS（pH 7.4）和 0.5% Triton X-100 （w/v） 在杂交烘箱中轻轻旋转洗涤珠子 2 次，每次 5 分钟和 15 分钟。如步骤2.2所述除去上清液。</li>
	<li>将珠子悬浮在含有 0.02% 叠氮化钠 （w/v） 的最终体积为 16 mL 的 PBS （pH 7.4） 中。在4°C下以1mL等分试样储存直至使用。</li>
</ol>3. 酵母细胞培养和收获
<ol><li>将YPD板中的对照和重组感受态酵母菌株接种在5mL的YPR培养基中，并在30°C和200rpm下孵育过夜。</li>
	<li>将2mL该培养物接种到100mLYPR培养基中，并在30°C和200rpm下孵育过夜。</li>
	<li>对于每种菌株，将 1,800 mL 高压灭菌的 YP 培养基和 200 mL 高压灭菌的棉子糖溶液 （20% w/v） 分配到两个 5 L 锥形瓶中（每个菌株总共 4 L 培养基，分成两个烧瓶）。</li>
	<li>将生长的酵母细胞以OD600 0.2接种在其各自的培养基中，并按照步骤3.1中的描述孵育约6小时或直到细胞达到所需的OD600 1.0。为确保细胞的正常生长，不受任何污染，每隔2小时检查OD。</li>
	<li>加入 200 mL 半乳糖 （20% w/v） 以诱导位点特异性重组。</li>
	<li>加入 110 μL （50 ng/mL） 的 YMFA（与半乳糖同时，步骤 3.5）以阻止 G1 期的细胞，并孵育 2 小时。 注意：将YMFA添加到细胞中取决于要解决的实验条件和生物学问题。确切地说，对于该实验，细胞被阻滞在 G1 期以获得具有许可复制来源的同质细胞群;在此过程中，复制前复合物在 S 期开始 DNA 复制之前与 G1 期的起点结合。</li>
	<li>将细胞悬液转移到1L离心桶中，并在6,000× g 和4°C下离心10分钟。弃去上清液，并将细胞沉淀重悬于总体积为10-15mLdH 2O的溶液中。</li>
	<li>用鲁尔塞密封 25 mL 注射器，并将其放入装满水的 50 mL 锥形管中。将细胞悬浮液转移到注射器组件上，并在室温下以2,397× g 离心10分钟。弃去上清液。</li>
	<li>从注射器上取下鲁尔塞，将细胞挤出到液氮中以形成细胞“意大利面”。 注意：使用 4 L 培养基可提供 7-10 g 的最终细胞沉淀的湿重。</li>
	<li>将冷冻细胞意大利面转移到50mL锥形管中，并储存在-80°C直至进一步使用。</li>
</ol>4. 染色质位点纯化
注：有关此位点特异性染色质纯化方案中涉及的步骤的示意图概述，请参见 图 2 。
<ol><li>通过每次剧烈摇晃咖啡研磨机 2 次，每次 30 秒，研磨 30-50 克干冰来冷却商用咖啡研磨机。冷却后，丢弃干冰粉。</li>
	<li>在预冷的咖啡研磨机中将 3 克冷冻酵母细胞意大利面与 ~30-50 克干冰混合。</li>
	<li>用封口膜密封盖子和研磨机之间的连接处，以防止研磨过程中酵母细胞粉末的损失。</li>
	<li>将酵母细胞 - 干冰混合物研磨10次，每次30秒，每轮之间间隔30秒（总时间估计：~10分钟）。为避免干冰和细胞粉粘在咖啡研磨机壁上，请在研磨过程中不断敲击咖啡研磨机的侧面。</li>
	<li>使用干净干燥的刮刀将得到的酵母细胞干冰粉转移到塑料烧杯中。</li>
	<li>将烧杯保持在室温下以蒸发干冰。</li>
	<li>干冰蒸发后，向酵母细胞粉末中加入 2.25 mL 含有 1x 蛋白酶和磷酸酶抑制剂（750 μL/g 酵母细胞）的 MB 缓冲液。</li>
	<li>用力移液细胞-缓冲液混合物，以确保细胞与缓冲液完全悬浮，然后转移到 15 mL 锥形管中。</li>
	<li>从所得细胞悬液（粗细胞提取物 [CCE]）中取样品进行 DNA （0.1%） 和蛋白质 （0.05%） 分析。储存在-20°C直至进一步处理（如第7节所述）。</li>
	<li>将细胞悬液转移到低结合的2mL反应管中，并在4°C下以21,130× g 离心30分钟，以将细胞碎片与粗细胞裂解物分离。</li>
	<li>将所有试管中的上清液汇集到一个 15 mL 锥形管中。</li>
	<li>从上清液（起始量[IN]）中取样进行DNA（0.1%）和蛋白质分析（0.05%）。储存在-20°C直至进一步处理（如第7节所述）。</li>
	<li>通过用含有1x蛋白酶和磷酸酶抑制剂的500μL冷MB缓冲液在4°C下以20rpm旋转洗涤2次，以平衡500μL偶联磁珠浆液（对于每个酵母菌株）。在每个洗涤步骤后，使用磁性架从珠子中丢弃上清液。</li>
	<li>将IgG偶联的磁珠在500μL冷MB缓冲液中与1x蛋白酶和磷酸酶抑制剂在4°C下以20rpm旋转孵育1小时。使用磁架从珠子中丢弃上清液。</li>
	<li>将平衡的磁珠浆液与细胞裂解物混合，并在4°C下以20rpm旋转孵育2小时。</li>
	<li>将完全的磁珠-细胞裂解物悬浮液转移到低结合反应管中。</li>
	<li>使用磁架将现在携带目标染色质环的磁珠与细胞裂解物分离。</li>
	<li>将剩余的流通 （FT） 从每个试管转移到新鲜的 15 mL 锥形管中，并采集样品进行 DNA （0.1%） 和蛋白质 （0.05%） 分析。储存在-20°C直至进一步处理（如第7节所述）。</li>
	<li>将每个试管中的磁珠悬浮在 300 μL 冷 MB 缓冲液中，并将磁珠汇集到一个反应管中。用含有1x蛋白酶和磷酸酶抑制剂的750μL冷MB缓冲液在4°C下以20rpm旋转洗涤5次，每次10分钟。用不含蛋白酶和磷酸酶抑制剂的 750 μL 冷 MB 缓冲液进行最终洗涤。</li>
	<li>将微珠悬浮于不含蛋白酶和磷酸酶抑制剂的 40 μL 冷 MB 缓冲液中。 注：洗脱液的最终体积可根据其预期的下游应用进行调整。TEV 洗脱通常在 100-300 μL 范围内有效工作。</li>
</ol>5. TEV蛋白酶介导的洗脱
<ol><li>为了从珠子中释放LexA-CBP染色质环复合物，将珠子与2μL6x His标记的重组TEV蛋白酶在热混合器中4°C和450rpm孵育过夜。</li>
	<li>使用磁架将珠子与最终洗脱液分离。将含有裂解染色质环的洗脱液转移到新的 1.5 mL 反应管中。</li>
	<li>再次将试管放在磁架上，以将任何残留的珠子与最终洗脱液分离。</li>
	<li>将珠子 （TB） 重悬于 750 μL 冷 AC 缓冲液中，并取样品进行 DNA （0.1%） 和蛋白质 （0.05%） 分析。储存在-20°C直至进一步处理（如第7节所述）。</li>
	<li>从最终洗脱液 （TE） 中取样进行 DNA （0.5%） 和蛋白质 （0.25%） 分析。储存在-20°C直至进一步处理（如第7节所述）。 注：由于最终洗脱液的体积较小，因此增加了用于 DNA 和蛋白质分析的样品的百分比，以便在分析过程中更好地表示其蛋白质和 DNA 含量。</li>
</ol>6. 变性洗脱
<ol><li>在750μL冷AC缓冲液中洗涤珠子2x，每次在4°C下以20rpm旋转20分钟。</li>
	<li>为了提取剩余的结合的LexA染色质复合物，通过向珠子中加入500μL的0.5M NH4OH进行变性洗脱，并在室温下孵育30分钟。</li>
	<li>使用磁架将珠子从悬浮液中分离出来，并将洗脱液转移到低结合反应管中。</li>
	<li>如步骤6.2所示再次孵育珠子，以恢复洗脱液中的最大染色质位点。</li>
	<li>使用磁架将珠子从悬浮液中分离出来，并将所得洗脱液汇集到包含步骤6.3中的洗脱液的同一管中。</li>
	<li>将珠子 （DB） 重悬于 750 μL dH2O 中，并取样进行 DNA （0.1%） 和蛋白质 （0.05%） 分析。</li>
	<li>从最终洗脱液 （DE） 中取样进行 DNA （0.5%） 和蛋白质 （0.25%） 分析。</li>
</ol>7. DNA和蛋白质分析
<ol><li>DNA分析<ol><li>样品制备<ol><li>向 DNA 样品中加入 100 μL IRN 缓冲液，并用 dH2O 增加体积至最终体积为 200 μL。</li>
			<li>加入 1 ng K071 加标质粒 DNA。</li>
			<li>加入1μLRNAse A（10mg / mL），并在37°C下孵育1小时。</li>
			<li>加入5μL蛋白酶K（10mg / mL）和10μLSDS（20%），并在56°C下孵育1小时。</li>
			<li>加入 200 μL 苯酚/氯仿/异丙醇 （25：24：1），每次彻底涡旋 2 次，持续 10 秒。</li>
			<li>将样品以 21,130 × g 离心 7 分钟以分离有机相和水相。</li>
			<li>将上清液转移到含有 1.5 μL 糖原 （5 mg/mL） 和 2.5x 100% 乙醇的新 1.5 mL 管中。</li>
			<li>将试管在-20°C孵育至少2小时，最多过夜以沉淀DNA。</li>
			<li>以21,130× g，4°C离心45分钟。弃去上清液。</li>
			<li>加入150μL的70%乙醇，不重悬DNA沉淀，并在4°C下以21,130× g 再次离心10分钟。</li>
			<li>将DNA沉淀在室温下干燥10-15分钟，并重悬于40μL dH2O中。</li>
			<li>进行限制性内切酶消化，用HpaI限制性核酸内切酶线性化步骤7.1.1.11中分离的DNA。对于50μL反应混合物，将40μL分离的DNA + 2μLHpaI酶+ 5μL限制性内切酶缓冲液+ 3μL dH2O在37°C下孵育过夜。</li>
		</ol></li>
		<li>qPCR分析<ol><li>以 1：5 的比例稀释限制性酶切的 DNA（10 μL 从步骤 7.1.1.12 获得的限制性酶切 DNA 在 40 μL dH2O 中）。</li>
			<li>使用专为 ARS316 区域、PDC1 和刺突质粒 DNA 设计的引物对。</li>
			<li>使用 表2中给出的程序运行qPCR。</li>
			<li>使用 ARS316 区域和加标质粒 DNA 作为靶标，以 PDC1（或任何其他基因或基因组区域）为参考位点，通过相对定量分析 qPCR 结果。</li>
			<li>通过将 ARS316 和 PDC1 引物相对定量值归一化为每个样品所取馏分体积的百分比来评估 PDC1 上的 ARS316 位点回收百分比。例如，将流通液的 0.1% 乘以 1,000 倍，将 TEV 洗脱液的 0.5% 乘以 200 倍。</li>
			<li>使用加标质粒 DNA 相对定量值对 ARS316 和 PDC1 回收率百分比进行归一化。</li>
			<li>通过使用公式（1）评估获得的相对定量靶标/参考值，评估ARS316位点在总染色质上的富集。 <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/65460/65460eq01v2.jpg" style="margin: auto;">（1）</li>
		</ol></li>
		<li>Southern印迹分析<ol><li>向 20 μL 限制性内切酶消化的 DNA 样品中加入 5 μL 凝胶上样染料。</li>
			<li>在110V的1%琼脂糖凝胶中运行样品~3小时。</li>
			<li>将凝胶转移到托盘中，并将其浸泡在脱嘌呤溶液中，轻轻摇晃20分钟。</li>
			<li>用dH2O冲洗凝胶，并在变性溶液中摇动浸泡15分钟。丢弃变性溶液。</li>
			<li>将凝胶浸泡在变性溶液中15分钟，轻轻摇晃。</li>
			<li>用dH2O冲洗凝胶，并用转印缓冲液轻轻摇动，每次洗涤2次，每次15分钟。</li>
			<li>用 1-1.5 L 转印缓冲液填充托盘，并将其放在稳定的平台上。</li>
			<li>剪下一张长 Whatman 纸，并将其放在平台上，使纸的两端浸泡在转印缓冲液中。</li>
			<li>切下一条正性尼龙膜和四条与凝胶大小相等的 Whatman 纸条。</li>
			<li>将两张浸泡在平台上转印缓冲液中的 Whatman 纸。</li>
			<li>将凝胶面朝下放在 Whatman 纸片的顶部。</li>
			<li>在凝胶的顶部，放置正性尼龙膜，然后将剩余的两片 Whatman 纸浸泡在转印缓冲液中。确保使用转印缓冲液保持烟囱湿润。</li>
			<li>使用玻璃棒将任何滞留的气泡滚落，以去除它们。</li>
			<li>将一叠纸巾放在组装好的纸巾上，然后放一个 0.5 公斤的物体（例如玻璃瓶）。</li>
			<li>将组件在室温下放置过夜转移。</li>
			<li>转移后，紫外线交联膜，总能量输出为 1,200 J/cm2。</li>
			<li>为了检测 ARS316 位点，使用使用参考 DNA 标记系统合成的放射性探针进行 Southern 印迹杂交。 注意：在冰上执行以下所有步骤，直到另有说明。</li>
			<li>在低结合反应管中，在19μL dH2O中稀释25-40ngPCR片段（探针），并在95°C下孵育5分钟。立即在冰上冷却。</li>
			<li>向试管中加入 500 μM dCTP、500 μM dGTP 和 500 μM dTTP 各 1 μL。</li>
			<li>加入 20 μL 含有试剂盒随附的随机核苷酸六聚体的缓冲液。</li>
			<li>向试管中加入 5 μL 放射性标记的核苷酸 [α-32P] dATP。在放射性批准的保护环境中执行涉及放射性标记材料的所有步骤。</li>
			<li>加入1μL的Klenow片段，并在37°C下在热混合器上孵育15分钟，用于单链DNA合成。</li>
			<li>加入 5 μL 终止缓冲液以停止反应。</li>
			<li>将尺寸排阻柱以 1,500 × g 离心 2 分钟以除去储存缓冲液。弃去流过的液体，并将色谱柱放入新管中。</li>
			<li>将探针混合物通过色谱柱以去除未掺入的放射性核苷酸。以 1,500 × g 离心 30 秒以收集探针。</li>
			<li>加入 150 μL 鲑鱼精子 DNA （1：100） 以阻断探针与膜的非特异性结合。</li>
			<li>将探针混合物在95°C孵育5分钟，使双链DNA变性。</li>
			<li>在冰上快速冷冻几秒钟，然后以 500 × g 离心几秒钟，以降低凝结在盖子上的水滴。</li>
			<li>用杂交缓冲液短暂洗涤南部印迹膜5-10分钟，旋转。</li>
			<li>将膜与杂交缓冲液在55°C下预杂交1小时，并旋转。丢弃杂交缓冲液。</li>
			<li>将15mL新鲜杂交缓冲液（在55°C预热）与制备的探针一起加入膜中。将膜在55°C下旋转孵育过夜。</li>
			<li>在55°C下用0.3x SSC，0.1%SDS进行杂交后洗涤2次，每次15分钟，并旋转。</li>
			<li>在55°C下用0.1x SSC，0.1%SDS进行杂交后洗涤2次，每次15分钟，旋转。</li>
			<li>在55°C下用0.1x SSC，1.5%SDS进行杂交后洗涤2次，每次15分钟，旋转。</li>
			<li>从杂交管中取出膜，并将膜暴露在磷化成像仪屏幕中长达 3 天，以获得薄膜上的放射性印记。</li>
			<li>使用磷光成像激光扫描系统获取胶片图像。</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
	<li>蛋白质分析<ol><li>样品制备<ol><li>通过加入 1 μL β-巯基乙醇、PAGE LDS 样品缓冲液 （1x） 和 dH2O，将所有蛋白质样品调整至其最终体积（粗细胞提取物、输入、流通、珠子和洗脱液样品分别为 200 μL、100 μL、100 μL、20 μL 和 20 μL）。</li>
			<li>样品在95°C下变性5分钟。</li>
		</ol></li>
		<li>蛋白质印迹分析 注：使用标准方案15,16 进行 SDS-PAGE 和蛋白质印迹。<ol><li>将每个样品的 15 μL 上样到 1.5 mm SDS-PAGE 凝胶的每个孔中。</li>
			<li>使用PAP（1：2,000）和LexA（1：1,000）抗体对印迹进行免疫染色，并在4°C下孵育过夜。 用5%奶粉/PBST溶液稀释。 注：在 PAP 分析后，在使用第二种 LexA 抗体进行免疫染色之前，可以使用温和的剥离方案17 剥离印迹。</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol>

从酵母细胞中分离基因座特异性染色质

<ol>
	<li>Kornberg, R. D., Lorch, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Twenty-five+years+of+the+nucleosome,+fundamental+particle+of+the+eukaryote+chromosome.">Twenty-five years of the nucleosome, fundamental particle of the eukaryote chromosome.</a> Cell. 98 (3), 285-294 (1999).</li><li>Gauchier, M., van Mierlo, G., Vermeulen, M., D&#233;jardin, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Purification+and+enrichment+of+specific+chromatin+loci.">Purification and enrichment of specific chromatin loci.</a> Nature Methods. 17 (4), 380-389 (2020).</li><li>Korthout, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Decoding+the+chromatin+proteome+of+a+single+genomic+locus+by+DNA+sequencing.">Decoding the chromatin proteome of a single genomic locus by DNA sequencing.</a> PLoS Biology. 16 (7), e2005542 (2018).</li><li>Ant&#227;o, J. M., Mason, J. M., D&#233;jardin, J., Kingston, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protein+landscape+at+Drosophila+melanogaster+telomere-associated+sequence+repeats.">Protein landscape at Drosophila melanogaster telomere-associated sequence repeats.</a> Molecular and Cellular Biology. 32 (12), 2170-2182 (2012).</li><li>D&#233;jardin, J., Kingston, R. 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R., Tsukiyama, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+changes+in+histone+acetylation+regulate+origins+of+DNA+replication.">Dynamic changes in histone acetylation regulate origins of DNA replication.</a> Nature Structural &amp;amp; Molecular Biology. 17 (4), 430 (2010).</li><li>Buxton, K. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Elucidating+protein-DNA+interactions+in+human+alphoid+chromatin+via+hybridization+capture+and+mass+spectrometry.">Elucidating protein-DNA interactions in human alphoid chromatin via hybridization capture and mass spectrometry.</a> Journal of Proteome Research. 16 (9), 3433-3442 (2017).</li><li>Kennedy-Darling, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Discovery+of+chromatin-associated+proteins+via+sequence-specific+capture+and+mass+spectrometric+protein+identification+in+Saccharomyces+cerevisiae.">Discovery of chromatin-associated proteins via sequence-specific capture and mass spectrometric protein identification in Saccharomyces cerevisiae.</a> Journal of Proteome Research. 13 (8), 3810-3825 (2014).</li><li>Liu, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CRISPRi-based+genome-scale+identification+of+functional+long+noncoding+RNA+loci+in+human+cells.">CRISPRi-based genome-scale identification of functional long noncoding RNA loci in human cells.</a> Science. 355, 7111 (2017).</li><li>Hamperl, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Purification+of+specific+chromatin+domains+from+single-copy+gene+loci+in+Saccharomyces+cerevisiae.">Purification of specific chromatin domains from single-copy gene loci in Saccharomyces cerevisiae.</a> Functional Analysis of DNA and Chromatin. 1094, 329-341 (2014).</li><li>Hamperl, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Compositional+and+structural+analysis+of+selected+chromosomal+domains+from+Saccharomyces+cerevisiae.">Compositional and structural analysis of selected chromosomal domains from Saccharomyces cerevisiae.</a> Nucleic Acids Research. 42 (1), 2 (2014).</li><li>Wei&#946;, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-copy+locus+proteomics+of+early-+and+late-firing+DNA+replication+origins+identifies+a+role+of+Ask1/DASH+complex+in+replication+timing+control.">Single-copy locus proteomics of early- and late-firing DNA replication origins identifies a role of Ask1/DASH complex in replication timing control.</a> Cell Reports. 42 (2), 112045 (2023).</li><li>Gietz, R. D., Schiestl, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-efficiency+yeast+transformation+using+the+LiAc/SS+carrier+DNA/PEG+method.">High-efficiency yeast transformation using the LiAc/SS carrier DNA/PEG method.</a> Nature Protocols. 2 (1), 31-34 (2007).</li><li>Laemmli, U. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cleavage+of+structural+proteins+during+the+assembly+of+the+head+of+bacteriophage+T4.">Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4.</a> Nature. 227 (5259), 680-685 (1970).</li><li>Towbin, H., Staehelin, T., Gordon, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrophoretic+transfer+of+proteins+from+polyacrylamide+gels+to+nitrocellulose+sheets:+procedure+and+some+applications.">Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: procedure and some applications.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 76 (9), 4350-4354 (1979).</li><li>Western blot membrane stripping for restaining protocol. Abcam Available from: <a target="_blank" href="https://www.abcam.com/protocols/western-blot-membrane-stripping-for-restaining-protocol">https://www.abcam.com/protocols/western-blot-membrane-stripping-for-restaining-protocol</a> (2023)</li><li>Vermeulen, M., D&#233;jardin, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Locus-specific+chromatin+isolation.">Locus-specific chromatin isolation.</a> Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 21 (5), 249-250 (2020).</li></ol>

作者没有利益冲突需要披露。

鉴定特定靶基因组区域的因子和染色质景观仍然是染色质研究的主要挑战18。该协议描述了一种有效的系统，用于从酵母染色体中特异性切除和纯化不同的染色质结构域。据我们所知，这种单步纯化的纯度和产量克服了位点特异性染色质纯化方法的许多局限性，因此与其他不相关的基因组区域相比，可以实现目标位点的非常高富集。
由于使用位点特异性R-重?...

真核生物基因组的动态组织成染色质，使DNA紧凑，使其适应细胞核的范围，同时确保基因表达的足够动态和调节因子的可及性。在某种程度上，这种多功能性是由核小体介导的，核小体是染色质的基本单位，它包括一个核心颗粒，其 147 bp 的 DNA 包裹在组蛋白八聚体1 周围 ~1.7 倍。核小体的组成是一种高度动态的结构，在 N 端和 C 端组蛋白尾部有许多组蛋白变体和翻译后修饰 （PTM）。此外，真核染色质与许多其他基本成分相互作用，例如转录因子、DNA 和 RNA 加工机制、结构蛋白、参与染色质重塑和修饰的酶以及与染色质相关的 RNA 分子。这些参与转录、复制和修复的关键机制都需要获得染色质，染色质是这些过程的天然底物。因此，理解这些DNA交易背后的分子机制需要精确定义这些机制汇聚并促进生物反应的特定基因组区域染色质结构的集体改变。
尽管通过遗传学和蛋白质-蛋白质相互作用研究鉴定了许多染色质因子，但对特定基因组位点的染色质相互作用进行直接、无偏倚和全面的分析仍然是一个重大障碍 2,3。最初，只能分离出足够数量和纯度的基因组高丰度区域（即重复位点）或多拷贝质粒，以质谱鉴定相关蛋白质4,5,6,7。一系列基于捕获探针与染色质化 DNA 的直接杂交、使用 CRISPR-dCas9 系统进行邻近生物素化或序列特异性衔接蛋白与目标位点结合的新方法已开始揭示酵母和哺乳动物基因组中单拷贝位点的蛋白质组 8,9,10.然而，所有这些方法都需要甲醛交联来稳定蛋白质-DNA的相互作用，并需要超声处理来溶解染色质以进行后续纯化。总之，这两种操作都排除了对纯化的染色质进行后续结构和功能研究的可能性。
为了克服这些局限性，我们之前设计了一种采用位点特异性重组从酵母中提取靶向染色体结构域的方法11,12。从本质上讲，感兴趣的基因组区域被来自接合酵母的位点特异性 R-重组酶的识别位点 （RS） 包围，同时在同一区域内掺入一组原核转录阻遏蛋白 LexA 蛋白 （LexA） 的三个 DNA 结合位点。酵母细胞包含一个用于同时表达 R-重组酶的表达盒和一个融合到串联亲和纯化 （TAP） 标签的 LexA 蛋白。在诱导R-重组酶后，该酶以环状染色质结构域的形式有效地从染色体上切除目标区域。该结构域可通过 LexA-TAP 接头蛋白纯化，该接头蛋白与 LexA DNA 结合位点以及亲和力支持结合。该方法最近被用于分离包含酵母 III13 号染色体选定复制来源的不同染色质结构域。
这种 离体 方法的一个主要优点是它允许对分离的材料进行功能分析。例如，可以对用该方法纯化的复制原点结构域进行 体外 复制测定，以评估在试管中从天然 体内 组装的染色质模板进行原点烧制的效率。最终，分离材料的生化和功能表征可能允许使用纯化的蛋白质和天然染色质模板重建核过程。总之，这种方法为染色质研究开辟了一条令人兴奋的途径，因为可以跟踪经历特定染色体交易的特定基因组区域的集体组成和结构染色质变化。

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Yeast strains</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Control Strain: MATa; ura3&#916;0; leu2&#916;0; his3&#916;1; met15&#916;0; bar1::kanMX4; Chr I 212kb::LEU2 pTEF2-LEXA-TAP pGAL1-10 RecR</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Section 1, see references 13 and 14</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recombination Strain: MATa; ura3&#916;0; leu2&#916;0; his3&#916;1; met15&#916;0; bar1::kanMX4; RS_LEXA_NS-3_ARS316_NS+3_RS; Chr I 212kb::LEU2 pTEF2-LEXA-TAP pGAL1-10 RecR</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Section 1, see reference 13 and 14</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plasmid</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>K238 plasmid</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Section 1, see reference 13 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>K071 Spike-in plasmid DNA</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Section 7.1, see reference 13 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reagents</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetone</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>5025.1</td>
			<td>Section 2 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ammonium acetate (NH4Ac)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>A7262</td>
			<td>Section 6 and 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ammonium solution (NH4OH) 25%</td>
			<td>Merck Millipore</td>
			<td>533003</td>
			<td>Section 6 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ammonium sulfate</td>
			<td>Santa Cruz</td>
			<td>Sc-29085</td>
			<td>Section 2 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bacto agar</td>
			<td>BD (VWR)</td>
			<td>90000-760</td>
			<td>Section 3 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bacto peptone</td>
			<td>BD (VWR)</td>
			<td>211820</td>
			<td>Section 3 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#946;-Mercaptoethanol</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>07604</td>
			<td>Section 7.2 
			Storage: Store at 4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chemiluminescent substrate kit</td>
			<td>ThermoFisher</td>
			<td>34580</td>
			<td>Section 7.2 
			Storage: Store at 4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Di-Sodium Hydrogen phosphate dodecahydrate</td>
			<td>Merck</td>
			<td>1.06579.1000</td>
			<td>Section 2 and 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dithiothreitol (DTT)</td>
			<td>ThermoFisher</td>
			<td>15508013</td>
			<td>Section 4 
			Storage: Store at 4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>Merck</td>
			<td>100983</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>ED</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Galactose (20% (w/v) stock)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>G0625-1KG&#160; /&#160; 5KG</td>
			<td>Section 3 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gel loading dye (6x)</td>
			<td>BioLabs</td>
			<td>B7024A</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glusose</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G8270</td>
			<td>Section 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycine</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>.0079.4</td>
			<td>Section 2 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycogen (5 mg/mL)</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>AM9510</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrochloric acid (HCl)</td>
			<td>PanReac AppliChem</td>
			<td>182109.1211</td>
			<td>Section 2, 4 and 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnesium Acetate (MgAc)</td>
			<td>Bernd Kraft</td>
			<td>15274.2600/C035</td>
			<td>Section 4 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnesium chloride (MgCl2)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>M8266</td>
			<td>Section 6 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nu PAGE LDS sample buffer (4x)</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>2399549</td>
			<td>Section 7.2 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phenol/Chloroform/Isoamyl alcohol (25:24:1 v/v)</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>15593-031</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at 4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium chloride (KCl)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P9541</td>
			<td>Section 4 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Radioactively labeled &#945;-32P dATP (3,000 Ci/mmol, 10 mCi/mL)</td>
			<td>Hartmann Analytic</td>
			<td>SRP-203</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at 4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RadPrime labeling system</td>
			<td>ThermoFisher</td>
			<td>18428-011</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Raffinose (20% (w/v) stock)</td>
			<td>SERVA</td>
			<td>34140.03</td>
			<td>Section 3 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium chloride (NaCl)</td>
			<td>Merck</td>
			<td>K53710504142</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium citrate (Na3C6H5O7)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>71402</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium hydroxide (NaOH)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>S5881</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium n-dodecyl sulfate (SDS) (5% stock (w/v) )</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>A11183</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium phosphate monobasic</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>71496</td>
			<td>Section 2 and 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium&#160;azide</td>
			<td>Santa Cruz&#160;Biotechnology</td>
			<td>sc-208393</td>
			<td>Section 2 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#160;Triethylamine</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>90340</td>
			<td>Section 2 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris base</td>
			<td>Chem Cruz</td>
			<td>SC-3715B</td>
			<td>Section 2 and 4 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton X-100</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>X100</td>
			<td>Section 2 and 4 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tween-20</td>
			<td>Bernd Kraft</td>
			<td>18014332</td>
			<td>Section 4 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Yeast extract</td>
			<td>BD (VWR)</td>
			<td>212720</td>
			<td>Section 3 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Yeast mating factor alpha (1 &#181;g/mL stock )</td>
			<td>&#160;Biomol</td>
			<td>Y2016.5</td>
			<td>Section 3 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Yeast Synthetic Drop-out medium Supplements without LEUCINE</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>Y1376</td>
			<td>Section 1, see reference 14</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Enzymes</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HpaI restriction enzyme (5,000 U/mL)</td>
			<td>NEB</td>
			<td>R0105S</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Protease and Phosphatase Inhibitor Cocktail (100x)</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>78446</td>
			<td>Section 4 
			Storage: Store at4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Proteinase K (10 mg/mL)</td>
			<td>SERVA</td>
			<td>33756</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RNase A (10 mg/mL)</td>
			<td>&#160;ThermoFisher</td>
			<td>EN0531</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TEV protease (10000 U/&#181;L)</td>
			<td>NEB</td>
			<td>P8112S</td>
			<td>Section 5 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Materials</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BcMag Epoxy-Activated Magnetic Beads</td>
			<td>Bioclone Inc.</td>
			<td>FC-102</td>
			<td>Section 2 
			Storage: Store at 4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dry ice</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Section 4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Low-binding centrifuge tubes 2.0 mL</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>22431102</td>
			<td>Section 4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microspin&#160;G-25 Columns</td>
			<td>Cytiva</td>
			<td>27-5325-01</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td>Merck</td>
			<td>P7793</td>
			<td>Section 4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Positive nylon membrane</td>
			<td>Biozol</td>
			<td>11MEMP0001</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVDF transfer membrane</td>
			<td>Immobilon-Merck Millipore</td>
			<td>IPVH00010</td>
			<td>Section 7.2 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SDS-PAGE gel 4-12% bis-tris (15 well, 1.5 mm)</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>&#160;NP0336BOX</td>
			<td>Section 7.2 
			Storage: Store at 4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe (25 mL) with luer fitting</td>
			<td>Henke Sass Wolf</td>
			<td>4200-000V0</td>
			<td>Section 3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Whatman paper (Grade 3MM CHR Cellulose Western Blotting Paper Sheet)</td>
			<td>Cytiva</td>
			<td>3030-917</td>
			<td>Section 7.1 
			Storage: Store at room temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Antibodies</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-LexA, rabbit polyclonal IgG, DNA binding region antibody</td>
			<td>Merck Millipore</td>
			<td>06-719</td>
			<td>Section 7.2 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Goat Anti-Rabbit IgG (H+L), Horseradish peroxidase conjugate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>G21234</td>
			<td>Section 7.2 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peroxidase Anti-Peroxidase (PAP) antibody produced in rabbit for the detection of TAP-tagged proteins</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>P1291-500UL</td>
			<td>Section 7.2 
			Storage: Store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rabbit IgG antibodies</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>I5006-100MG</td>
			<td>Section 2 
			Storage: Store at 4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primers (10 &#181;M)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ARS316: fwd 5&#39;- CGGCATTATCGTACACAACCT, rev 5&#39;- GTTCTTCGTTGCCTACATTTTCT</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Section 7.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>K071 Spike-in plasmid DNA: fwd: 5&#39;-TTTTCGCTGCTTGTCCTTTT, rev 5&#39;- CATTTTCGTCCTCCCAACAT</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Section 7.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PCR fragment from yeast genomic DNA as a template &#160;for ARS316 amplification (for southern blot): fwd 5&#8217;- AAATTCTGCCCTTGATTCGT&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; rev 5&#8217;- TTTGTTTATCTCATCACTAAT</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Section 7.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PDC1: fwd 5&#39;- CATGATCAGATGGGGCTTCA, rev 5&#39;-ACCGGTGGTAGCGACTCTGT</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Section 7.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coffee grinder</td>
			<td>Gastroback</td>
			<td>42601</td>
			<td>Section 4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dewar flask</td>
			<td>NAL GENE</td>
			<td>4150-2000</td>
			<td>Section 3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DynaMag TM-2 magnetic rack</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>12321D</td>
			<td>Section 4, 5 and 6</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hybridization oven</td>
			<td>Hybaid Mini10</td>
			<td>Ri418</td>
			<td>Section 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microcentrifuge</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5424R</td>
			<td>Section 4 and 7.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UV-crosslinker</td>
			<td>Analytikjena</td>
			<td>95-0174-02</td>
			<td>Section 7.1</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

single-copy gene locus chromatin purification in saccharomyces cerevisiae

真核染色质的基本组织单位是核小体核心颗粒 （NCP），它包括包裹在组蛋白八聚体周围 ~1.7 倍的 DNA。染色质被定义为 NCP 和许多其他蛋白质复合物的实体，包括转录因子、染色质重塑和修饰酶。目前尚不清楚在细胞周期的不同阶段，这些蛋白质-DNA相互作用是如何在特定基因组位点的水平上协调的。这主要是由于当前的技术限制，这使得获得这种动态相互作用的精确测量具有挑战性。在这里，我们描述了一种改进的方法，将位点特异性重组与高效的单步亲和纯化方案相结合，以分离处于天然染色质状态的单拷贝目标基因位点。该方法允许在基因组染色质上稳健地富集靶位点，使该技术成为以无偏倚和系统的方式（例如通过质谱法）识别和量化蛋白质相互作用的有效策略。除了这种成分分析之外，通过这种方法纯化的天然染色质可能反映了有关核小体定位和组蛋白修饰的 体内 情况，因此，可以对来自酵母中几乎任何基因组位点的染色质进行进一步的结构和生化分析。

The dynamic organization of eukaryotic genomes into chromatin compacts the DNA to fit within the confines of the nucleus while ensuring sufficient dynamics for gene expression and accessibility for regulatory factors. In part, this versatility is mediated by the nucleosome, the basic unit of chromatin, which comprises a core particle with 147 bp of DNA wrapped ~1.7 times around the histone octamer1. The nucleosome is a highly dynamic structure with respect to its composition, with numerous histone variants and posttranslational modifications (PTMs) on the N- and C-terminal histone tails. Furthermore, eukaryotic chromatin interacts with a multitude of other essential components, such as transcription factors, DNA and RNA processing machinery, architectural proteins, enzymes involved in chromatin remodeling and modification, and RNA molecules associated with chromatin. These crucial machineries involved in transcription, replication, and repair all require access to chromatin, which serves as the natural substrate for these processes. Consequently, comprehending the molecular mechanisms underlying these DNA transactions necessitates a precise definition of the collective alterations in chromatin structure at the specific genomic regions where these machineries converge and facilitate biological reactions.
Despite the identification of numerous chromatin factors through genetics and protein-protein interaction studies, performing direct, unbiased, and comprehensive analyses of chromatin interactions at particular genomic sites has remained a significant obstacle2,3. Initially, only highly abundant regions of the genome (i.e., repetitive loci) or multi-copy plasmids could be isolated in sufficient amounts and purity for mass spectrometric identification of the associated proteins4,5,6,7. A series of new approaches based on the direct hybridization of capture probes to chromatinized DNA, proximity biotinylation using the CRISPR-dCas9 system, or the binding of sequence-specific adapter proteins to the locus of interest have started to unravel the proteome of single-copy loci from yeast and mammalian genomes8,9,10. However, all these methods require formaldehyde crosslinking to stabilize the protein-DNA interactions and sonication to solubilize the chromatin for subsequent purification. Together, both manipulations exclude the possibility of subsequent structural and functional studies of the purified chromatin.
To overcome these limitations, we previously devised a methodology that employs site-specific recombination to extract targeted chromosomal domains from yeast11,12. In essence, the genomic region of interest is surrounded by recognition sites (RS) for the site-specific R-recombinase from Zygosaccharomyces rouxi while simultaneously incorporating a group of three DNA binding sites for the prokaryotic transcriptional repressor LexA protein (LexA) within the same region. The yeast cells contain an expression cassette for the simultaneous expression of R-recombinase and a LexA protein fused to a tandem affinity purification (TAP) tag. After the induction of R-recombinase, the enzyme efficiently excises the targeted region from the chromosome in the form of a circular chromatin domain. This domain can be purified via the LexA-TAP adapter protein, which binds to the LexA DNA binding sites, as well as to an affinity support. This method has been recently used to isolate distinct chromatin domains containing selected replication origins of yeast chromosome III13.
One major advantage of this ex vivo approach is that it allows for functional analyses of the isolated material. For example, replication origin domains purified with this method can be subjected to in vitro replication assays to assess the efficiency of origin firing in a test tube from native in vivo assembled chromatin templates. Ultimately, the biochemical and functional characterization of the isolated material may allow the reconstitution of nuclear processes using purified proteins together with the native chromatin template. In summary, this methodology opens an exciting avenue in chromatin research, as it will be possible to follow the collective compositional and structural chromatin changes of a specific genomic region undergoing a certain chromosomal transaction.

作者聚焦：使用高富集位点特异性染色质分离方案推进染色质研究并克服限制 

酿酒酵母的单拷贝基因位点染色质纯化

~1.4 kb ARS316 染色质结构域的纯化由组成型表达的 LexA-TAP 接头蛋白介导。作为阴性对照，我们使用表达LexA-TAP但不含整合RS和LexA结合位点的同基因菌株进行纯化。 图 3 显示了对对照和靶向 ARS316 位点的重组能力菌株进行的标准纯化实验的 DNA 分析结果。在DNA分离和限制性内切酶消化以线性化环状DNA分子后，进行qPCR分析以评估ARS316靶位点对不相关的基因组对照位点PDC1的纯化效率...

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该方案提出了一种基于位点特异性重组的位点特异性染色质分离方法，以从出芽酵母酿酒酵母中纯化其天然染色质环境中感兴趣的单拷贝基因位点 。

The basic organizational unit of eukaryotic chromatin is the nucleosome core particle (NCP), which comprises DNA wrapped ~1.7 times around a histone ...

真核生物核非常拥挤，许多生物过程同时发生。我们的研究范围是了解所有这些过程如何在我们的基因组上协调，而不会发生重大事故，否则会导致基因组不稳定和人类疾病。该协议允许我们纯化处于天然状态的基因组的特定位点，从而允许对分离材料进行组成和功能表征，例如蛋白质DNA相互作用的测量。该协议能够对靶向位点进行高水平的富集，从而克服了目前位点特异性染色质分离的许多局限性。该材料尚未交联。这也允许许多下游功能分析，例如体外转录或体外复制。该协议使我们能够从酵母染色体中切除和纯化不同的复制来源，使我们能够进行蛋白质组学分析并确定新的起源相互作用染色质因子，从而推进DNA复制的研究领域。该协议能够使用纯化的原始材料进行体外复制研究，以检查染色质状态，组蛋白修饰，并对来自内源性染色体的天然核小体模板进行结构分析，从而推进染色质研究。

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Single-Copy Gene Locus Chromatin Purification in Saccharomyces cerevisiae

604 次观看.  Helmholtz Zentrum München. 真核生物核非常拥挤，许多生物过程同时发生。我们的研究范围是了解所有这些过程如何在我们的基因组上协调，而不会发生重大事故，否则会导致基因组不稳定和人类疾病。该协议允许我们纯化处于天然状态的基因组的特定位点，从而允许对分离材料进行组成和功能表征，例如蛋白质DNA相互作用的测量。该协议能够对靶向位点进行高水平的富集，从而克服了目前位点?...

视频: 作者聚焦：使用高富集位点特异性染色质分离方案推进染色质研究并克服限制 

The basic organizational unit of eukaryotic chromatin is the nucleosome core particle (NCP), which comprises DNA wrapped ~1.7 times around a histone octamer. Chromatin is defined as the entity of NCPs and numerous other protein complexes, including transcription factors, chromatin remodeling and modifying enzymes. It is still unclear how these protein-DNA interactions are orchestrated at the level of specific genomic loci during different stages of the cell cycle. This is mainly due to the current technical limitations, which make it challenging to obtain precise measurements of such dynamic interactions. Here, we describe an improved method combining site-specific recombination with an efficient single-step affinity purification protocol to isolate a single-copy gene locus of interest in its native chromatin state. The method allows for the robust enrichment of the target locus over genomic chromatin, making this technique an effective strategy for identifying and quantifying protein interactions in an unbiased and systematic manner, for example by mass spectrometry. Further to such compositional analyses, native chromatin purified by this method likely reflects the in vivo situation regarding nucleosome positioning and histone modifications and is, therefore, amenable to further structural and biochemical analyses of chromatin derived from virtually any genomic locus in yeast.

This protocol presents a locus-specific chromatin isolation method based on site-specific recombination to purify a single-copy gene locus of interest in its native chromatin context from budding yeast, Saccharomyces cerevisiae.