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Die zellfreie Rekonstitution war ein Schlüsselwerkzeug, um die Zytoskelett-Montage zu verstehen, und die Arbeit in den letzten zehn Jahren hat Ansätze zur Untersuchung der Septindynamik in minimalen Systemen etabliert. Hier werden drei komplementäre Methoden zur Beobachtung der Septinmontage in verschiedenen Membrankontexten vorgestellt: planare Doppelschichten, sphärische Stützen und Stabstützen.
Die meisten Zellen können ihre Form wahrnehmen und verändern, um grundlegende Zellprozesse durchzuführen. Bei vielen Eukaryoten ist das Septin-Zytoskelett ein integraler Bestandteil bei der Koordination von Formveränderungen wie Zytokinese, polarisiertem Wachstum und Migration. Septine sind filamentbildende Proteine, die sich zu verschiedenen Strukturen höherer Ordnung zusammensetzen und in vielen Fällen in verschiedenen Bereichen der Plasmamembran vorkommen, insbesondere in Regionen mit positiver Krümmung im Mikrometerbereich. Die Überwachung des Prozesses der Septinmontage in vivo wird durch die Einschränkungen der Lichtmikroskopie in Zellen sowie durch die Komplexität der Wechselwirkungen mit Membranen und Zytoskelettelementen behindert, was es schwierig macht, die Septindynamik in lebenden Systemen zu quantifizieren. Glücklicherweise gab es in den letzten zehn Jahren erhebliche Fortschritte bei der Rekonstitution des Septin-Zytoskeletts in einem zellfreien System, um die Mechanismen zu sezieren, die die Septin-Assemblierung bei hohen räumlichen und zeitlichen Auflösungen steuern. Die Kernschritte der Septin-Assemblierung umfassen die Septin-Heterooligomer-Assoziation und Dissoziation mit der Membran, die Polymerisation in Filamente und die Bildung von Strukturen höherer Ordnung durch Wechselwirkungen zwischen Filamenten. Hier stellen wir drei Methoden vor, um die Septinmontage in verschiedenen Kontexten zu beobachten: planare Doppelschichten, sphärische Stützen und Stabstützen. Diese Methoden können verwendet werden, um die biophysikalischen Parameter von Septinen in verschiedenen Stadien der Montage zu bestimmen: als einzelne Oktamere, die die Membran binden, als Filamente und als Anordnungen von Filamenten. Wir verwenden diese Parameter gepaart mit Messungen der Krümmungsprobenahme und der bevorzugten Adsorption, um zu verstehen, wie die Krümmungsmessung auf einer Vielzahl von Längen- und Zeitskalen funktioniert.
Die Formen der Zellen und viele ihrer inneren Kompartimente hängen von den Lipidmembranen ab, die sie umgeben. Membranen sind viskoelastische Strukturen, die durch Wechselwirkungen mit Proteinen, Lipidsortierung und wirkende innere und äußere Kräfte verformt werden können, um eine Vielzahl von Formenzu erzeugen 1,2,3,4. Diese Formen werden oft in Form von Membrankrümmung beschrieben. Zellen verwenden eine Vielzahl von Proteinen, die in der Lage sind, sich bevorzugt auf bestimmte Membrankrümmungen zu setzen oder diese zu "erfassen", um eine d....
HINWEIS: Die Bildung von unterstützten Lipiddoppelschichten erfordert die Herstellung von monodispersen kleinen unilamellären Vesikeln (SUVs). Bitte beachten Sie ein bereits veröffentlichtes Protokoll24 zur SUV-Formation. Kurz gesagt, alle SUVs werden durch Sondenbeschallung für insgesamt 12 min bei 70% Amplitude über 4 min Beschallungsperioden gebildet, gefolgt von 2 min Ruhezeiten in Eiswasser. SUV-Lösungen müssen gut geklärt und monodispers sein. Größenverteilungen von SUVs können beispielsweise durch dynamische Lichtstreuung25 gemessen werden.
1. Planare Lipiddoppelschichten....
Nach der Herstellung jedes SLB können Septine oder das interessierende Protein mit der gewünschten Unterstützung inkubiert und mittels TIRFM, konfokaler Mikroskopie oder REM abgebildet werden. Die hier gezeigten Ergebnisse verwenden Septine, die rekombinant exprimiert und gereinigt aus E. coli17 hergestellt werden. Mit TIRFM auf planaren SLBs ist es möglich, die Länge von Filamenten und ihre Flexibilität zu bestimmen, die Diffusionskoeffizienten zu messen und die Montage über die Z.......
Zellmembranen nehmen viele verschiedene Formen, Krümmungen und physikalisch-chemische Eigenschaften an. Um die nanometergroße Maschinerie zu untersuchen, durch die Zellen mikrometergroße Baugruppen aufbauen, ist es notwendig, minimale Rekonstitutionssysteme der Membranmimetik zu entwerfen. Dieses Protokoll stellt Techniken vor, die sowohl die Membrankrümmung als auch die Zusammensetzung präzise steuern und es dem Benutzer ermöglichen, quantitative Fluoreszenzmessungen mit weit verbreiteten Mikroskopietechniken durc.......
Die Autoren haben keine Interessenkonflikte.
Diese Arbeit wurde durch den National Institutes of Health (NIH) Grant Nr. R01 GM-130934 und National Science Foundation (NSF) Grant MCB-2016022. B.N.C., E.J.D.V. und K.S.C. wurden zum Teil durch einen Zuschuss des National Institute of General Medical Sciences im Rahmen der Auszeichnung T32 GM119999 unterstützt.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.2 mL PCR Tubes with flat cap, Natural | Watson | 137-211C(EX) | |
0.5 mL low adhesion tubes | USA Scientific | 1405-2600 | |
Beta mercaptoethanol (BME) | Sigma-Aldrich | M6250-100ML | |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma-Aldrich | A4612-25G | |
Coverglass for making PEGylated coverslips | Thermo Scientific | 152450 | Richard-Allan Scientific SLIP-RITE Cover Glass 24x50 #1.5 |
DOPC | Avanti Polar Lipids | 850375 | |
Egg Liss Rhodamine PE | Avanti Polar Lipids | 810146 | |
EMS Glutaraldehyde Aqueous 25%, EM Grade | VWR | 16220 | |
EMS Sodium Cacodylate Buffer | VWR | 11652 | |
Ethanol, 200 proof | Fisher Scientific | 04-355-223EA | |
HEPES | Sigma Aldrich | H3375-1KG | |
Hexamethyldisilazane | Sigma-Aldrich | 440191 | |
Magnesium chloride | VWR | 7791-18-6 | |
Methyl cellulose 4000cp | Sigma-Aldrich | M052-100G | |
Microglass coverslips for planar bilayers | Matsunami | Discontinued | 22x22 |
Mini centrifuge | |||
Non-Functionalized Silica Microspheres | Bangs Laboratories, Inc. | Depends on size: SS0200*-SS0500* | Silica in aqueous suspension |
Optical Adhesive | Norland Thorlabs | NOA 68 | Flexible adhesive for glass or plastics |
Osmium tetroxide | Millipore Sigma | 20816-12-0 | |
Parafilm | VWR | 52858-000 | |
Plasma Cleaner | Plasma Etch | PE-25 | Voltage: 120V, 60Hz. Current: 15 AMPS |
Potassium chloride | VWR | 0395-1kg | |
Round coverglass, #1.5 12mm | VWR | 64-0712 | |
Sonicator bath | Branson | 1510R-MT | Bransonic Ultrasonic cleaner. 50-60 Hz. Output: 70W |
Soy PI | Avanti Polar Lipids | 840044 | |
Tabletop centrifuge | Eppendorf | 22331 | |
UV Lamp | Spectroline | ENF-260C | 115 Volts, 60 Hz, 0.20 AMPS |
WhatmanGlass Microfiber Filter Paper | VWR | 28455-030 | 42.5 mm diameter, Grade GF/C |
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