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A reconstituição livre de células tem sido uma ferramenta fundamental para entender a montagem do citoesqueleto, e o trabalho na última década estabeleceu abordagens para estudar a dinâmica dos septins em sistemas mínimos. Aqui apresentados estão três métodos complementares para observar a montagem de septina em diferentes contextos de membrana: bicamadas planares, suportes esféricos e suportes de hastes.
A maioria das células pode sentir e mudar sua forma para realizar processos celulares fundamentais. Em muitos eucariotes, o citoesqueleto de septina é um componente integral na coordenação de mudanças de forma como citocinese, crescimento polarizado e migração. Os septinas são proteínas formadoras de filamentos que se reúnem para formar diversas estruturas de alta ordem e, em muitos casos, são encontradas em diferentes áreas da membrana plasmática, mais notavelmente em regiões de curvatura positiva em escala de mícon. O monitoramento do processo de montagem de septina in vivo é dificultado pelas limitações da microscopia de luz nas células, bem como pela complexidade das interações com membranas e elementos citoesqueléticos, dificultando a quantificação da dinâmica do septino nos sistemas vivos. Felizmente, houve progressos substanciais na última década na reconstituição do citoesqueleto de septina em um sistema livre de células para dissecar os mecanismos que controlam a montagem de septinas em altas resoluções espaciais e temporais. Os passos centrais da montagem de septina incluem associação de heterooligomeres de septina e dissociação com a membrana, polimerização em filamentos, e a formação de estruturas de alta ordem através de interações entre filamentos. Aqui, apresentamos três métodos para observar a montagem de septina em diferentes contextos: bicamadas de planar, suportes esféricos e suportes de hastes. Esses métodos podem ser usados para determinar os parâmetros biofísicos dos septinos em diferentes estágios de montagem: como octamers únicos que ligam a membrana, como filamentos, e como conjuntos de filamentos. Utilizamos esses parâmetros emparelhados com medidas de amostragem de curvatura e adsorção preferencial para entender como o sensor de curvatura opera em uma variedade de escalas de comprimento e tempo.
As formas das células e muitos de seus compartimentos internos dependem das membranas lipídicas que as cercam. As membranas são estruturas viscoelásticas que podem ser deformadas através de interações com proteínas, triagem lipídica e atuação de forças internas e externas para gerar uma variedade de formas 1,2,3,4. Essas formas são frequentemente descritas em termos de curvatura de membrana. As células utilizam um conjunto diversificado de proteínas capazes de se reunir preferencialmente, ou "sensoriamento", curvaturas de membrana específica....
NOTA: Formar bicamadas lipídicas suportadas requer a preparação de pequenas vesículas unilamellar monodisperadas (SUVs). Consulte um protocolo24 publicado anteriormente na formação de SUV. Resumidamente, todos os SUVs são formados por sônica de sonda por 12 min no total a 70% de amplitude através de períodos de sônica de 4 min seguidos por períodos de descanso de 2 min em água gelada. As soluções de SUV devem ser bem esclarecidas e monodisperadas em tamanho. As distribuições de tamanho dos SUVs podem ser medidas, por exemplo, por dispersão dinâmica de luz25.
1. Bicamas lipídicas de Plana....
Após a preparação de cada SLB, os septinos ou a proteína de interesse podem ser incubados com o suporte desejado e imageados via TIRFM, microscopia confocal ou SEM. Os resultados aqui apresentados utilizam septinas recombinantemente expressas e purificadas de E. coli17. Utilizando o TIRFM em SLBs planar, é possível determinar o comprimento dos filamentos e sua flexibilidade, medir os coeficientes de difusão e observar a montagem ao longo do tempo 28,29<.......
As membranas celulares assumem muitas formas diferentes, curvaturas e propriedades físico-químicas. Para estudar o maquinário em escala de nanômetros através do qual as células constroem conjuntos em escala de micrômetros, é necessário projetar sistemas mínimos de reconstituição de mimetéticas de membrana. Este protocolo apresenta técnicas que controlam precisamente a curvatura e a composição da membrana, permitindo ao usuário facilmente tomar medidas quantitativas de fluorescência usando técnicas de m.......
Os autores não têm conflitos de interesse.
Este trabalho foi apoiado pelo Instituto Nacional de Saúde (NIH) Grant no. R01 GM-130934 e Fundação Nacional de Ciência (NSF) Grant MCB- 2016022. B.N.C, E.J.D.V., e K.S.C. foram apoiados em parte por uma bolsa do Instituto Nacional de Ciências Médicas Gerais sob o prêmio T32 GM1199999.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.2 mL PCR Tubes with flat cap, Natural | Watson | 137-211C(EX) | |
0.5 mL low adhesion tubes | USA Scientific | 1405-2600 | |
Beta mercaptoethanol (BME) | Sigma-Aldrich | M6250-100ML | |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma-Aldrich | A4612-25G | |
Coverglass for making PEGylated coverslips | Thermo Scientific | 152450 | Richard-Allan Scientific SLIP-RITE Cover Glass 24x50 #1.5 |
DOPC | Avanti Polar Lipids | 850375 | |
Egg Liss Rhodamine PE | Avanti Polar Lipids | 810146 | |
EMS Glutaraldehyde Aqueous 25%, EM Grade | VWR | 16220 | |
EMS Sodium Cacodylate Buffer | VWR | 11652 | |
Ethanol, 200 proof | Fisher Scientific | 04-355-223EA | |
HEPES | Sigma Aldrich | H3375-1KG | |
Hexamethyldisilazane | Sigma-Aldrich | 440191 | |
Magnesium chloride | VWR | 7791-18-6 | |
Methyl cellulose 4000cp | Sigma-Aldrich | M052-100G | |
Microglass coverslips for planar bilayers | Matsunami | Discontinued | 22x22 |
Mini centrifuge | |||
Non-Functionalized Silica Microspheres | Bangs Laboratories, Inc. | Depends on size: SS0200*-SS0500* | Silica in aqueous suspension |
Optical Adhesive | Norland Thorlabs | NOA 68 | Flexible adhesive for glass or plastics |
Osmium tetroxide | Millipore Sigma | 20816-12-0 | |
Parafilm | VWR | 52858-000 | |
Plasma Cleaner | Plasma Etch | PE-25 | Voltage: 120V, 60Hz. Current: 15 AMPS |
Potassium chloride | VWR | 0395-1kg | |
Round coverglass, #1.5 12mm | VWR | 64-0712 | |
Sonicator bath | Branson | 1510R-MT | Bransonic Ultrasonic cleaner. 50-60 Hz. Output: 70W |
Soy PI | Avanti Polar Lipids | 840044 | |
Tabletop centrifuge | Eppendorf | 22331 | |
UV Lamp | Spectroline | ENF-260C | 115 Volts, 60 Hz, 0.20 AMPS |
WhatmanGlass Microfiber Filter Paper | VWR | 28455-030 | 42.5 mm diameter, Grade GF/C |
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