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In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Repräsentative Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

Dieses Protokoll beschreibt eine effiziente Methode zum quantitativen Nachweis oxidativer DNA-Schäden in MCF-7-Zellen mittels ELISA-Technologie.

Zusammenfassung

Die 8-Oxo-7,8-dihydro-2'-desoxyguanosin-Base (8-oxo-dG) ist die vorherrschende Form der häufig beobachteten oxidativen DNA-Schädigung. DNA-Beeinträchtigungen wirken sich tiefgreifend auf die Genexpression aus und sind ein entscheidender Faktor bei der Stimulierung neurodegenerativer Erkrankungen, Krebs und Alterung. Daher ist die präzise Quantifizierung von 8-OxoG von klinischer Bedeutung bei der Untersuchung von Methoden zum Nachweis von DNA-Schäden. Gegenwärtig stellen die bestehenden Ansätze zum 8-OxoG-Nachweis jedoch Herausforderungen in Bezug auf Komfort, Zweckmäßigkeit, Erschwinglichkeit und erhöhte Empfindlichkeit dar. Wir verwendeten die ELISA-Technik (Sandwich Enzyme-linked Immunosorbent Assay), eine hocheffiziente und schnelle kolorimetrische Methode, um Variationen des 8-Oxo-dG-Gehalts in MCF-7-Zellproben zu erkennen, die mit unterschiedlichen Konzentrationen von Wasserstoffperoxid (H2O2) stimuliert wurden. Wir bestimmten die Konzentration von H2O2 , die oxidative Schäden in MCF-7-Zellen induzierte, indem wir ihren IC50-Wert in MCF-7-Zellen detektierten. Anschließend behandelten wir MCF-7-Zellen 12 h lang mit 0, 0,25 und 0,75 mM H2O2 und extrahierten 8-Oxo-dG aus den Zellen. Abschließend wurden die Proben einem ELISA unterzogen. Nach einer Reihe von Schritten, einschließlich Plattenspreizung, Waschen, Inkubation, Farbentwicklung, Beendigung der Reaktion und Datenerfassung, konnten wir erfolgreich Veränderungen des 8-Oxo-dG-Gehalts in MCF-7-Zellen nachweisen, die durch H2O2 induziert wurden. Durch diese Bestrebungen wollen wir eine Methode zur Bewertung des Ausmaßes oxidativer DNA-Schäden in Zellproben etablieren und damit die Entwicklung von zweckmäßigeren und bequemeren Ansätzen zur Detektion von DNA-Schäden vorantreiben. Dieses Unterfangen ist bereit, einen bedeutenden Beitrag zur Erforschung assoziativer Analysen zwischen oxidativen DNA-Schäden und verschiedenen Bereichen zu leisten, einschließlich der klinischen Forschung zu Krankheiten und dem Nachweis toxischer Substanzen.

Einleitung

Die oxidative Schädigung der DNA ist die Folge eines Ungleichgewichts zwischen der Bildung reaktiver Sauerstoffspezies (ROS) und dem zellulären antioxidativen Abwehrsystem1. Es handelt sich hauptsächlich um die Oxidation von DNA, Purin und Pyrimidinbasen, 2,3. Diese oxidative Modifikation der DNA-Basen beeinträchtigt nicht nur die Integrität des Genoms, sondern umfasst auch ein breites Spektrum pathologischer Probleme, darunter Krebs, neurodegenerative Erkrankungen und Herz-Kreislauf-Erkrankungen 4,5. Die Guaninbase in der DNA h....

Protokoll

1. Aufbau eines H2O2 -induzierten DNA-oxidativen Schadensmodells in MCF-7-Zellen

  1. Rückgewinnung von MCF-7-Zellen
    1. Das Kryoröhrchen für die Zellkultur, das 3,5 x 106 MCF-7-Zellen enthält und in einem -80 °C-Kühlschrank gelagert wird, wird schnell in eine Schaumstoffbox mit flüssigem Stickstoff umgefüllt. Nehmen Sie den Schlauch mit einer Pinzette heraus und legen Sie ihn für ca. 1 min in ein Wasserbad mit konstanter Temperatur bei 37 °C, um die konservierten Zellen aufzutauen.
      HINWEIS: Schütteln Sie die Zellen während des Auftauvorgangs in einem Wasserbad intermittierend, um eine gleic....

Repräsentative Ergebnisse

Wie in Abbildung 3 dargestellt, zeigt die X-Achse die Konzentration von H2O2 an, die auf MCF-7-Zellen aufgebracht wird, während die Y-Achse die Lebensfähigkeit der Zellen anzeigt. Die Behandlung mit 0,75 mM für 12 h reduzierte die Lebensfähigkeit der MCF-7-Zellen auf 67%. Gleichzeitig mit dem Konzentrationsanstieg kam es zu einer signifikanten Abnahme der Lebensfähigkeit von MCF-7-Zellen, insbesondere bei einer Konzentration von 1,5 mM, wo die Lebensfähigkeit auf .......

Diskussion

Die Entwicklung von ELISA-Methoden ist sowohl für bestehende als auch für neue Methoden zum Nachweis von DNA-Schäden von großer Bedeutung. Im Vergleich zu herkömmlichen HPLC- und Massenspektrometrie-Techniken ist dieser Ansatz nicht nur benutzerfreundlich, sondern weist auch eine hohe Sensitivität auf und erfüllt die Anforderungen des Hochdurchsatz-Screenings30. Dies ermöglicht das Monitoring von 8-Oxo-dG in groß angelegten Krankheitsscreening-Studien und ermöglicht ein tieferes Verstän.......

Offenlegungen

Die Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde unterstützt durch das innovative Forschungsteam für Wissenschaft und Technologie der Jiangsu Higher Education Institution (2021), das Programm des Jiangsu Vocational College Engineering Technology Research Center (2023), das Schlüsseltechnologieprogramm der Suzhou People's Livelihood Technology Projects (SKY2021029), das offene Projekt der Jiangsu Biobank of Clinical Resources (TC2021B009), das Projekt des State Key Laboratory of Radiation Medicine and Protection, Soochow University (GZK12023013), Programme des Suzhou Vocational Health College (SZWZYTD202201) und Qing-Lan Project der Provinz Jiangsu in China (2021, 2022).

....

Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
0.25% Trypsin-EDTA(1x)Gibco25200-072
Cell Counting Kit-8DojindoCK04
Cell Counting PlateQiuJingXB-K-25
CO2 incubatorThermo51032872
DMEM basic(1X)GibcoC11995500BT
FBSPANST30-3302
GraphPad Prism X9GraphPad Softwarestatistical analysis software
H2O2(3%)Jiangxi Caoshanhu Disinfection Co.,Ltd.1028348
high-speed centrifugeThermo 9AQ2861
Human 8-oxo-dG ELISA KitZcibioZC-55410
L-1000XLS+ PipettesRainin17014382
L-20XLS+ PipettesRainin17014392
liquid nitrogen tankMvecryogeYDS-175-216
MCF-7 CELLBNCCBNCC100137
Multiskan FC microplate photometerThermo1410101
PBSSolarbioP1020
Penicillin-Streptomycin Solution, 100XBeyotimeC0222
Trinocular live cell microscopeMotic1.1001E+12
Ultra-low temperature freezerHaireV118574

Referenzen

  1. Cooke, M. S., Evans, M. D., Dizdaroglu, M., Lunec, J. Oxidative DNA damage: Mechanisms, mutation, and disease. Faseb J. 17 (10), 1195-1214 (2003).
  2. Dizdaroglu, M., Jaruga, P. Mechanisms of free radical-induced damage to DNA.

Nachdrucke und Genehmigungen

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