Besondere Anerkennung gehen an Dr. Benjamin Motsch für seine Unterstützung in technischen Fragen. Die Autoren möchten sich auch Dr. Marcus Forschner und Birk Müller für ihre Multimedia-Unterstützung, Erica Magelky für ihre redaktionelle Kompetenz und Lisa Hornung, Dr. Roland Jurgons und Professor Stephan von Hörsten (alle aus dem Franz-Penzoldt-Center, Universität anerkennen Erlangen) für ihre Professionalität in der Tier Handhabung und Pflege. Wir danken Professor Michael Neumaier am Institut für Klinische Chemie, Medizinische Fakultät Mannheim der Universität Heidelberg, Deutschland für MC38 Tumorzellen bereitstellt. Die vorliegende Arbeit wurde für den Erhalt der Grad in Erfüllung der Anforderungen durchgeführt &quot;, so Dr. med.&quot; an der Friedrich-Alexander-Universität Erlangen-Nürnberg (FAU).

Die Regierung von Mittelfranken in Bayern, Deutschland, die Erlaubnis für die beschriebenen Verfahren. Etwaige ähnliche Experimente bedürfen der vorherigen Genehmigung durch die zuständigen Behörden. Hinweis: Die folgende Anleitung kann für die zuvor diskutierten Gruppen A bis C Schritte verwendet werden, die in den Gruppen A und B werden weggelassen haben, sind entsprechend gekennzeichnet. 1. Vorbereitungen <ol><li> Setzen Sie auf Handschuhe, legen Sie die Polystyrol-Pad unter dem Mikroskop, und konzentrieren sich die Linse auf dem Gebiet leicht über dem Pad. </li><li> Teilen Sie die sterile Folie und Stelle über die Hälfte der Polystyrol-Pad und die andere Hälfte nur daneben. </li><li> Sterilisieren der chirurgischen Instrumente und legen sie auf ein steriles Blatt neben dem Polystyrol-Pad. </li><li> Unbend eine große Büroklammer einen Bogen zu bilden. Drehen Sie sie auf den Kopf und drücken Sie sie in die Polystyrol-Pad am oberen Ende - direkt neben dem Kopf des Tieres liegen. </li><li> Platzieren Sie das Mundstück des Verdampfers zwischen den beiden Schenkels des Bogens. (Figur 7) </li><li> Legen Sie eine Wärmelampe ca. 40 cm von der Stelle, wo der Kopf des Tieres liegen. Achten Sie darauf, die Wärme auf der Ebene des Polystyrol Pad nicht über 40 ° C. </li><li> Bereiten Sie einen separaten Käfig für operierten Tieren. </li><li> Bereiten einer definierten Menge und Volumen (maximal 50 &amp; mgr; l) von Tumorzellen in einem Flexrohr und lagern es auf Eis. </li></ol> 2. Anesthesia <ol><li> Platzieren Sie die Maus in eine Plexiglas-Box und beginnen Narkoseeinleitung auf hohe Durchfluss Isofluran (5% Isofluran bei einem Durchfluss von 10 l / min). </li><li> Nachdem man durch die verschiedenen Phasen der Anästhesie, entfernen Sie die Maus aus dem Plexiglas-Box nur, nachdem sie die Bühne der agonal Atmung eingetreten ist, die leicht durch eine drastische Abnahme der Atemfrequenz erkannt werden können (&lt;20 / min) und tief Keuchen das Schütteln Tier am ganzen Körper. </li><li> Schnell Legen Sie das Tier dem Bauch nach oben auf dem sterilen Polystyrol-Pad Tuch bedeckt und weiterhinLüftung auf Low-Flow-Isofluran mit der Maus die Schnauze in das Mundstück Anästhesie aufrechtzuerhalten einlegen. Verwenden einen inspiratorischen Anteil von 1,8-2,2% bei einem Fluss von etwa 1 l / min. </li><li> Auswerten der Narkosetiefe während des Betriebs durch die Atemfrequenz berechnet wird, die zwischen 45 und 60 Atemzügen pro min ideal ist. Passen Sie die Inspirations Isofluran Fraktion entsprechend, wenn dies nicht der Fall ist. Hinweis: Änderungen in der Inspirations Isofluran Fraktion etwa 60 Sekunden dauern, bis sie wirksam werden. Vermeiden Sie schnell drastische Veränderungen durchzuführen. Stattdessen ändern die nach und nach der Narkose Anwendung. </li></ol> 3. Bedienung <ol><li> Desinfizieren Sie die Brust und Bauch mit einer ausreichenden Desinfektionsmittel und Handschuhe danach ändern. </li><li> Injizieren einer gewichts angepasst Volumen von Carprofen (5 mg / kg Körpergewicht) in den Oberschenkel des Tieres. </li><li> kneifen Sie vorsichtig die Bauchhaut mit einer Zange zu testen, ob die Narkosetiefe ausreichend ist. </li><li&gt; Führen Sie einen Schnitt entlang der Mittellinie von der xiphoid bis zur Mitte des Bauches Schere und Pinzette. </li><li> sezieren vorsichtig den Bereich um den xiphoid es aus dem umgebenden Gewebe zu belichten. </li><li> Platzieren Sie einen Aufenthalt Faden durch die xiphoid (von innen nach außen) und befestigen Sie beide Fäden an dem Halter über die Tiere die Klemmkopf verwenden. </li><li> Klemmen Sie die Glieder des Aufroller zusammen und langsam einzuführen, um die &quot;U&quot; -förmigen Aufroller Spitzen entlang der inneren Bauchdecke des Tieres. Anmerkung: Diese Maßnahmen die Leber freizulegen Zugang zu den verschiedenen Keulen zu erleichtern. Die Identifizierung der Leber des Median und linken Seitenlappen sollte nun möglich sein. </li><li> Verwenden Sie eine Kochsalzlösung getränkten Wattestäbchen und sanft den Mittellappen nach unten drücken. Präparieren der ventralen drei Viertel des falciform Band, die nun zwischen den Mittellappen Oberfläche und der Membran sichtbar. </li><li> Verwenden Sie nun zwei Kochsalzlösung getränkten Wattestäbchen den Median zu verschiebenLappen und Seitenlappen nach oben gegen die Membran nach links. </li><li> Visualisieren Sie die dünne Membran zwischen dem linken Seitenlappen und Lobus caudatus und sorgfältig sezieren. Hinweis: Wenn Sie dieses Protokoll Durchführung an Tieren aus der Gruppe A, springen diesem Punkt zu Schritt 3.18 an. </li><li> Legen Sie eine Größe 4-0 Ligatur diagonal entlang der linken Seiten Basis des Lappens. </li><li> Als nächstes wird das Wattestäbchen mit der linken Seitenlappen in seine ursprüngliche Position zurückzukehren. </li><li> binden Sie vorsichtig die Ligatur so nah an der Basis des Lappens wie möglich und zu bewerten, in dem Lappen für Farbwechsel für ausreichend unterbrochen Blutversorgung zu testen. </li><li> Resezieren den Seitenlappen links, indem Sie die Linie der Basis des Lappens und das Gewicht des resezierten Lappens. Hinweis: Wenn Sie dieses Protokoll Durchführung an Tieren aus der Gruppe B, springen diesem Punkt zu Schritt 3.18 an. </li><li> Legen Sie eine zweite Ligatur zwischen der linken Seiten Stumpf des Lappens und die Basis der Mittellappen. </li><li> Positionieren Sie die Mittellappen als well und die Ligatur binden. Auch hier beurteilen in der Lappen für Farbwechsel für ausreichend unterbrochen Blutversorgung zu testen. </li><li> Resezieren die Mittellappen und beachten Sie dessen Gewicht. </li><li> Schließen Sie die 1-ml-Spritze an die 30 G-Nadel und füllen Sie es mit den Tumorzellen aus dem Flexrohr ohne die Spritze jederzeit kippen. </li><li> Verwenden Sie die Wattestäbchen die Darmschlingen an den Tier links zu bewegen, um den unteren rechten Lappen zu belichten. </li><li> Legen Sie die Zelle belasteten Spritze in die &quot;dritte Hand&quot; Gerät bei einem Winkel von 30 ° zur Vertikalen. </li><li> Bewegen Sie das Gerät vorsichtig mit der Nadel knapp über der unteren rechten Lappen auf die Maus nächsten. </li><li> vorrücken langsam die Spritze in der dritten Handgerät, bis die Spitze der Nadel im unteren rechten Lappen der Mittelteil ist. </li><li> Spritzen Sie das gesamte Volumen in das Mittelteil über einen Zeitraum von 30 bis 45 sec des Lappens. </li><li> Komprimieren Sie die Injektionsstelle für mindestens drei Minuten, bis Blutung gestoppt hat. </li&gt; <li> Entfernen Sie den Aufenthalt Naht und die Aufrollvorrichtung. </li><li> Schließen Sie die Blende mit einem resorbierbaren Naht 5-0 einzigen Knopf Knoten erreicht werden. </li><li> Schließen Sie die Haut mit einem 4-0, nicht resorbierbaren Naht einzigen Knopf Knoten verwenden. </li><li> Beginnen Sie mit der Maus auf hoher Strömungs Sauerstoff für etwa 1 min beatmet wird. </li></ol> 4. Post-op Verfahren <ol><li> Legen Sie das Tier in eine warme Umgebung (ca. 40 ° C) für die nächste halbe Stunde, um eine ausreichende Erholung sicherzustellen. </li><li> Beizumischen das Trinkwasser des Tieres mit 5 mg / ml Metamizol für 72 Stunden postoperativ. </li><li> Prüfen, um die Integrität der Naht eng für mindestens drei Tage nach dem Eingriff. </li></ol> 5. Beobachtungsperiode und Euthanasie <ol><li> Messen Sie das Gewicht des Tieres täglich für insgesamt 14 Tage. Ergebnis sie in Bezug auf ihr Wohlbefinden und die Grenzen sind. </li><li> Nach 14 Tagen betäuben das Tier folgende 2.1 und 2.2 des operativen Protokoll ein Schrittend fahren Sie mit Institution Protokoll zur Einschläferung. </li><li> Führen Sie eine mittlere Laparotomie wie in Schritt 3.4 beschrieben. Um den Zugriff auf den Bauch zu erleichtern, erweitern den Einschnitt 1-1,5 cm kaudal. Setzen Sie den Aufroller wie in 3.7 aufgezeigt. </li><li> Sezieren entlang dem Rest des falciform Band und schneiden Sie die untere Hohlvene genauso wie es die Leber kranial austritt. </li><li> Trenne die Leber von der Membran durch die Membran mit der Zange greifen und stumpf Sezieren in den Raum zwischen der Leber und Muskelgewebe. </li><li> Heben Sie die mobilisierte Lebergewebe aus der retroperitoneum und sezieren sie die übrigen Strukturen aus es noch angebracht ist: retroperitonealen Fettgewebe, die untere Hohlvene und die Pfortader. </li><li> Überprüfen Sie die Leber nach der Extraktion für zusätzliche Gewebe, das auf seine tatsächliche Größe und Gewicht falsch beitragen würde. Eine extrahierte Leber und ihrer Tumor sind in Abbildung 6 dargestellt. </li><li> Präparieren Sie den Tumor aus der inferior rechten Lappen. </li><li> Messen Sie die Größe und das Gewicht sowohl des Tumors und Leberparenchym. </li><li> Konservieren zusätzliche Gewebeproben aus dem Peritoneum, Lymphknoten oder anderen Organen wie für Gewebeanalyse benötigten </li></ol>

<ol><li>Haggar, F. A., Boushey, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Colorectal+cancer+epidemiology%3A+incidence%2C+mortality%2C+survival%2C+and+risk+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Colon+Rectal+Surg%22%5BJournal%5D)">Colorectal cancer epidemiology: incidence, mortality, survival, and risk factors.</a> Clin. Colon Rectal Surg. 22, 191-197 (2009).</li>
<li>Fong, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liver+resection+for+colorectal+metastases%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Oncol%22%5BJournal%5D)">Liver resection for colorectal metastases.</a> J. Clin. Oncol. 15, 938-946 (1997).</li>
<li>Kato, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Therapeutic+results+for+hepatic+metastasis+of+colorectal+cancer+with+special+reference+to+effectiveness+of+hepatectomy%3A+analysis+of+prognostic+factors+for+763+cases+recorded+at+18+institutions%5BTitle%5D)+AND+%22Dis.+Colon+Rectum%22%5BJournal%5D)">Therapeutic results for hepatic metastasis of colorectal cancer with special reference to effectiveness of hepatectomy: analysis of prognostic factors for 763 cases recorded at 18 institutions.</a> Dis. Colon Rectum. 46, S22-S31 (2003).</li>
<li>Poston, G. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((OncoSurge%3A+a+strategy+for+improving+resectability+with+curative+intent+in+metastatic+colorectal+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Oncol%22%5BJournal%5D)">OncoSurge: a strategy for improving resectability with curative intent in metastatic colorectal cancer.</a> J. Clin. Oncol. 23, 7125-7134 (2005).</li>
<li>Neumann, U. P., Seehofer, D., Neuhaus, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+surgical+treatment+of+hepatic+metastases+in+colorectal+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Dtsch+Arztebl+Int%22%5BJournal%5D)">The surgical treatment of hepatic metastases in colorectal carcinoma.</a> Dtsch Arztebl Int. 107, 335-342 (2010).</li>
<li>Alwayn, I. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+critical+role+for+matrix+metalloproteinases+in+liver+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Surg.+Res%22%5BJournal%5D)">A critical role for matrix metalloproteinases in liver regeneration.</a> J. Surg. Res. 145, 192-198 (2008).</li>
<li>Fausto, N., Campbell, J. S., Riehle, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liver+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatology%22%5BJournal%5D)">Liver regeneration.</a> Hepatology. 43, S45-S53 (2006).</li>
<li>Fujiyoshi, M., Ozaki, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+of+liver+regeneration+and+protection+for+treatment+of+liver+dysfunction+and+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Hepatobiliary.+Pancreat.+Surg%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms of liver regeneration and protection for treatment of liver dysfunction and diseases.</a> J. Hepatobiliary. Pancreat. Surg. 18, 13-22 (2011).</li>
<li>Jin, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Paradoxical+effects+of+short-+and+long-term+interleukin-6+exposure+on+liver+injury+and+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatology%22%5BJournal%5D)">Paradoxical effects of short- and long-term interleukin-6 exposure on liver injury and repair.</a> Hepatology. 43, 474-484 (2006).</li>
<li>Nakamura, T., Sakai, K., Nakamura, T., Matsumoto, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hepatocyte+growth+factor+twenty+years+on%3A+Much+more+than+a+growth+factor%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gastroenterol.+Hepatol%22%5BJournal%5D)">Hepatocyte growth factor twenty years on: Much more than a growth factor.</a> J. Gastroenterol. Hepatol. 26, 188-202 (2011).</li>
<li>Van Sweringen, H. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CXC+chemokine+signaling+in+the+liver%3A+impact+on+repair+and+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatology%22%5BJournal%5D)">CXC chemokine signaling in the liver: impact on repair and regeneration.</a> Hepatology. 54, 1445-1453 (2011).</li>
<li>Heijboer, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sixteen+hours+of+fasting+differentially+affects+hepatic+and+muscle+insulin+sensitivity+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Lipid+Res%22%5BJournal%5D)">Sixteen hours of fasting differentially affects hepatic and muscle insulin sensitivity in mice.</a> J. Lipid Res. 46, 582-588 (2005).</li>
<li>Yang, S. Q., Lin, H. Z., Mandal, A. K., Huang, J., Diehl, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disrupted+signaling+and+inhibited+regeneration+in+obese+mice+with+fatty+livers%3A+implications+for+nonalcoholic+fatty+liver+disease+pathophysiology%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatology%22%5BJournal%5D)">Disrupted signaling and inhibited regeneration in obese mice with fatty livers: implications for nonalcoholic fatty liver disease pathophysiology.</a> Hepatology. 34, 694-706 (2001).</li>
<li>Selzner, M., Clavien, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Failure+of+regeneration+of+the+steatotic+rat+liver%3A+disruption+at+two+different+levels+in+the+regeneration+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatology%22%5BJournal%5D)">Failure of regeneration of the steatotic rat liver: disruption at two different levels in the regeneration pathway.</a> Hepatology. 31, 35-42 (2000).</li>
<li>Matsuo, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+mechanism+of+the+circadian+clock+for+timing+of+cell+division+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Control mechanism of the circadian clock for timing of cell division in vivo.</a> Science. 302, 255-259 (2003).</li>
<li>Iakova, P., Awad, S. S., Timchenko, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aging+reduces+proliferative+capacities+of+liver+by+switching+pathways+of+C%2FEBPalpha+growth+arrest%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Aging reduces proliferative capacities of liver by switching pathways of C/EBPalpha growth arrest.</a> Cell. 113, 495-506 (2003).</li>
<li>Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+rodent+surgery+for+the+new+surgeon%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Principles of rodent surgery for the new surgeon.</a> J Vis Exp. , (2011).</li>
<li>Skoulis, N. P., James, R. C., Harbison, R. D., Roberts, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Depression+of+hepatic+glutathione+by+opioid+analgesic+drugs+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol.+Appl.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Depression of hepatic glutathione by opioid analgesic drugs in mice.</a> Toxicol. Appl. Pharmacol. 99, 139-147 (1989).</li>
<li>Berson, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+for+experimental+buprenorphine+hepatotoxicity%3A+major+role+of+mitochondrial+dysfunction+versus+metabolic+activation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Hepatol%22%5BJournal%5D)">Mechanisms for experimental buprenorphine hepatotoxicity: major role of mitochondrial dysfunction versus metabolic activation.</a> J. Hepatol. 34, 261-269 (2001).</li>
<li>Baker, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+pathogens+of+laboratory+mice%2C+rats%2C+and+rabbits+and+their+effects+on+research%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Microbiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Natural pathogens of laboratory mice, rats, and rabbits and their effects on research.</a> Clin. Microbiol. Rev. 11, 231-266 (1998).</li>
<li>FELASA working group on revision of guidelines for health monitoring of rodents and rabbits. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FELASA+recommendations+for+the+health+monitoring+of+mouse%2C+rat%2C+hamster%2C+guinea+pig+and+rabbit+colonies+in+breeding+and+experimental+units%5BTitle%5D)+AND+%22Lab.+Anim%22%5BJournal%5D)">FELASA recommendations for the health monitoring of mouse, rat, hamster, guinea pig and rabbit colonies in breeding and experimental units.</a> Lab. Anim. 48, 178-192 (2014).</li>
<li>Nikfarjam, M., Malcontenti-Wilson, C., Fanartzis, M., Daruwalla, J., Christophi, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+model+of+partial+hepatectomy+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Invest.+Surg%22%5BJournal%5D)">A model of partial hepatectomy in mice.</a> J. Invest. Surg. 17, 291-294 (2004).</li>
<li>Hori, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+and+reproducible+hepatectomy+in+the+mouse+using+the+clip+technique%5BTitle%5D)+AND+%22World+J.+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">Simple and reproducible hepatectomy in the mouse using the clip technique.</a> World J. Gastroenterol. 18, 2767-2774 (2012).</li>
<li>Mitchell, C., Willenbring, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+reproducible+and+well-tolerated+method+for+2%2F3+partial+hepatectomy+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">A reproducible and well-tolerated method for 2/3 partial hepatectomy in mice.</a> Nat. Protoc. 3, 1167-1170 (2008).</li>
<li>Sowa, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extent+of+liver+resection+modulates+the+activation+of+transcription+factors+and+the+production+of+cytokines+involved+in+liver+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22World+J.+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">Extent of liver resection modulates the activation of transcription factors and the production of cytokines involved in liver regeneration.</a> World J. Gastroenterol. 14, 7093-7100 (2008).</li>
<li>Bonninghoff, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+different+liver+resection+methods+on+liver+damage+and+regeneration+factors+VEGF+and+FGF-2+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Can.+J.+Surg%22%5BJournal%5D)">Effect of different liver resection methods on liver damage and regeneration factors VEGF and FGF-2 in mice.</a> Can. J. Surg. 55, 389-393 (2012).</li>
</ol>

The authors have nothing to disclose.

Frühere Experimente an Nagetieren Durchführung von Operationen konnten bestimmte Variablen zu identifizieren, die als Quellen für Bias dienen könnte. Um eine zuverlässige und gültige Ergebnisse zu erhalten, sollten Sie die folgenden Vorsichtsmaßnahmen. Routine präoperativen Fasten kann zu Leber Steatose 12, führen die Leberregeneration 13,14 hemmen kann. Es wird deshalb nicht empfohlen. Die höchste mitotische Aktivität der Hepatozyten variiert im Laufe des Ta...

Das kolorektale Karzinom (CRC) einen Anteil von knapp 9% aller bösartigen Tumoren. Es ist die dritthäufigste Krebserkrankung, sowohl in den USA als auch weltweit. Globale Mortalitätsraten von CRC - Bereich von 300.000 bis über 500.000 pro Jahr 1. Zwanzig Prozent der Patienten leiden an Lebermetastasen nach Entdeckung ihrer kolorektalen Tumor. Resektablen Metastasen werden in der Regel durch eine Leberteilresektion 2,3 behandelt. Verbesserte chirurgische Techniken, neue Strategien multimodal und neue Definitionen von resectable Metastasen machen die Therapie einer partiellen Leberresektion möglich , für eine zunehmende Anzahl von Patienten 4. Wiederauftreten von sekundären Lebermalignomen, jedoch ist eine anspruchsvolle klinische Folgeerkrankungen in modernen gastrointestinalen Chirurgie. Patienten mit CRC , die Resektion von Lebermetastasen unterzogen haben eine 30 bis 50% ige Chance, einen neuen Tumor in ihrer Überbleibsel Leber 5 zu entwickeln. Daher besteht ein Bedarf für weitere Forschung über diein Wiederholung von Lebermetastasen Mechanismen. Eine Leberresektion von ca. 70% wird in der Regel innerhalb weniger Wochen durch die verbleibende Lebergewebe ausgeglichen. Diese Regeneration umfasst mehrere Mechanismen, einschließlich Zytokine wie Interleukin 6 (IL-6), Tumornekrosefaktor alpha (TNF-α), Hepatozyten-Wachstumsfaktor (HGF), transformierenden Wachstumsfaktor beta (TGF-β), den vaskulären endothelialen Wachstumsfaktor (VEGF ), Matrix - Metalloproteasen (MMP-2 und MMP-9) und CXC-Chemokine 6-11. Diese Substanzen unterstützen Leberregeneration und kann auch für die hohe Rezidivrate von primären und sekundären Leber Malignitäten durch Induzieren des Wachstums von kleinen Tumorzellablagerungen in den verbleibenden Leber verantwortlich sein, die durch routinemßige klinische Bildgebung nicht erkannt werden. Diese Kausalitäts wurde bisher nicht bewiesen. Die folgende Hypothese wurde gegründet. Nach Leberteilresektion sind die Proliferation Faktoren, die für Live verantwortlichr Hypertrophie kann auch das Wachstum von Tumorzellen zuvor unentdeckte in der Leber induzieren. Ein Maus-Modell wurde entwickelt, welche die Techniken der Leberresektion und Tumorinduktion kombiniert. Thirty athymischen Nackt-foxn1nu / nu-Mäuse wurden in drei Gruppen von zehn Tieren jeweils geteilt. Jeder von ihnen wurde behandelt mit entweder einer Laparotomie allein (Gruppe A), eine 30% Leberresektion (Gruppe B) oder einer 70% Leberresektion (Gruppe C). Tiere in allen Gruppen erhielten anschließend eine Injektion der Tumorzellen in einen definierten verbleibenden Teil der Leber, ruhenden Tumorzellen zu simulieren. Tiere, wo für zwei Wochen beobachtet und dann für das Tumorwachstum und Leberhypertrophie ausgewertet. Ziel war es, ein Modell zu erstellen, die verwendet werden könnten, für die molekulare und pathogenetische Faktoren zu suchen, die eine Rolle in der Post-Hepatektomie Tumorbildung spielen kann. Diese Methode kann hilfreich sein bei der Beurteilung: die Herkunft der endokrinen Faktoren bei der Leberregeneration beteiligt; die verantwortlichen Mechanismen für die intra-Tumoder das Wachstum nach Leberresektion; und die Leberresektion notwendige Volumen für intrahepatischen Tumorwachstum Induktion. Das folgende Verfahren wurde nur an Tieren durchgeführt worden, weil sie zum Verständnis der grundlegenden biologischen Prinzipien und zur Entwicklung von Wissen beizutragen versprechen, die erwartet werden kann, den Menschen durch eine verbesserte Behandlungsmöglichkeiten zu profitieren. Aufgrund der in diesen Angelegenheiten Mechanismen, hatte es in vivo untersucht werden, wie es in vitro Methoden nicht eine realistische Darstellung der menschlichen Pathologie liefern. Diese Untersuchungen können zur Verringerung der Tumorrezidiv zur Entdeckung der relevanten Ziele für die prophylaktische Behandlungsmöglichkeiten führen.

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;Equipment&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Operation Microscope</td><td>Zeiss</td><td>OPMI-1 FC S21</td><td></td></tr><tr><td>Induction Cage (Plexiglas Box)</td><td>UNO BV, Netherlands</td><td>180000132</td><td></td></tr><tr><td>Flowmeter + Connection Kit</td><td>UNO BV, Netherlands</td><td>180000008</td><td></td></tr><tr><td>UNO Vaporizer Sigma Delta</td><td>UNO BV, Netherlands</td><td>180000002</td><td></td></tr><tr><td>Key Filler for Anesthetic</td><td>UNO BV, Netherlands</td><td>180000010</td><td></td></tr><tr><td>Activated Charcoal Filter Adsorber</td><td>UNO BV, Netherlands</td><td>180000140</td><td></td></tr><tr><td>Gas Exhaust Unit</td><td>UNO BV, Netherlands</td><td>180000118</td><td></td></tr><tr><td>Face Mask for mouse</td><td>UNO BV, Netherlands</td><td>180000065</td><td></td></tr><tr><td>Vaporizer Stand</td><td>UNO BV, Netherlands</td><td>180000006</td><td></td></tr><tr><td>Heat lamp</td><td>Physitemp Instruments</td><td>HL-1</td><td></td></tr><tr><td>Styrofoam Pad</td><td>RAYHER</td><td>30074000&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Third Hand Tool</td><td>TOOLCRAFT&amp;nbsp;</td><td>ZD-10F</td><td></td></tr><tr><td>Precision Scales</td><td>Kern</td><td>EW 220-3NM</td><td></td></tr><tr><td>Scales&amp;nbsp;</td><td>Kern</td><td>EMB 500-1</td><td></td></tr><tr><td>Sliding Caliper</td><td>MIB</td><td>MIB 82026100</td><td></td></tr><tr><td>Microdissection forceps</td><td>Braun/Aesculap</td><td>BD195R</td><td></td></tr><tr><td>Microdissection scissors</td><td>Braun/Aesculap</td><td>FD100R</td><td></td></tr><tr><td>Microdissection needle holder</td><td>Braun/Aesculap</td><td>BM563R</td><td></td></tr><tr><td>Retractor</td><td>Fine Science Tools (F.S.T.)</td><td>No. 17001-0</td><td>Type: Bowmann</td></tr><tr><td>Clamp</td><td>Braun/Aesculap</td><td>BJ002R</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Name&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog Number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Expendable Items&lt;/strong&gt;&lt;br/&gt;(NOTE: Quantities are per animal and procedure)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Foliodrape sterile cover (45 cm x 75 cm)</td><td>Hartmann</td><td>2775001</td><td></td></tr><tr><td>Sterile Cotton Swabs (2x)</td><td>Hartmann</td><td>4700151</td><td>Peha</td></tr><tr><td>Sterile fluid (0.9% NaCl)</td><td>Braun</td><td>3570310</td><td>PZN=04454809</td></tr><tr><td>Disinfectant (Softasept - 250 ml)</td><td>Braun</td><td>3887138</td><td>PZN=0762008808505018</td></tr><tr><td>2 x 1 ml syringe (Injekt-F )</td><td>Braun</td><td>9166017V</td><td></td></tr><tr><td>26 G canula (Sterican) - for Carprofen injection</td><td>Braun</td><td>4665457</td><td></td></tr><tr><td>30 G canula (Sterican)&amp;nbsp; - for Tumor injection</td><td>Braun</td><td>4656300</td><td></td></tr><tr><td>Caprofen (=Rimadyl)</td><td>Pfizer</td><td>QM01AE91</td><td></td></tr><tr><td>Metamizole (= Novaminsulfon)</td><td>Ratiopharm</td><td>16543.00.00</td><td></td></tr><tr><td>4-0 Vicryl suture</td><td>Ethicon</td><td>J835G</td><td></td></tr><tr><td>5-0 Prolene suture</td><td>Ethicon</td><td>8618G</td><td></td></tr><tr><td>SafeLock Flex-Tube 1.5 ml</td><td>Eppendorf&amp;nbsp;</td><td>22363778</td><td></td></tr><tr><td>4 x 4 Gauze Sponge</td><td>Kendall/Covidien&amp;nbsp;</td><td>UPC: 728795135355&amp;nbsp;</td><td>ASIN: B005BFQTWM&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Large paperclip</td><td>ACCO</td><td>A7072510G</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Name&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog Number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Animals&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Female athymic nude-foxn1nu/nu</td><td>Harlan Laboratories B.V.</td><td>Code 069</td><td></td></tr></tbody></table>

the influence of liver resection on intrahepatic tumor growth

Die hohe Inzidenz von Rezidiven nach Resektion des metastasierten Leberläsionen bleibt ein ungelöstes Problem. Kleine Tumorzellablagerungen, die durch Routine der klinischen Bildgebung nicht nachweisbar sind, können durch eine Leberregenerationsfaktoren nach Leberresektion stimuliert werden. Es ist nicht ganz klar, aber welche Faktoren für ein Tumorrezidiv entscheidend sind. Die dargestellte Maus-Modell kann nützlich sein, um die Mechanismen zu erforschen, die eine Rolle bei der Entwicklung von rezidivierenden malignen Läsionen nach Leberresektion spielen. Das Modell kombiniert die einfach zu führen und reproduzierbare Techniken von definierten Mengen von Lebergewebeentfernung und Tumorinduktion (durch Injektion) bei Mäusen. Die Tiere wurden entweder mit einer einzelnen Laparotomie, einer 30% Leberresektion oder einer 70% igen Leberresektion behandelt. Alle Tiere erhielten anschließend eine Injektion der Tumorzellen in die verbleibende Lebergewebe. Nach zwei Wochen der Beobachtung wurden die Lebern und Tumoren für die Größe und das Gewicht bewertet unddurch Immunhistochemie untersucht. Nach einer 70% igen Leberresektion wurden das Tumorvolumen und Gewicht deutlich erhöht im Vergleich zu einer Laparotomie allein (p &lt;0,05). Zusätzlich Immunhistochemie (Ki67) zeigten eine erhöhte Tumorproliferationsrate in der Resektion-Gruppe (p &lt;0,05). Diese Ergebnisse zeigen den Einfluss von Leberregenerationsmechanismen auf intrahepatischen Tumorwachstum. In Kombination mit Methoden wie histologische Aufarbeitung oder RNA-Analyse konnte das beschriebene Mausmodell für eine genaue Untersuchung verschiedener Faktoren als Grundlage dienen bei Tumorwachstum und Metastasierung Rezidiv innerhalb der Leber beteiligt. Eine beträchtliche Anzahl von Variablen wie die Länge der postoperativen Beobachtung, die Zelllinie für die Injektion oder der Zeitpunkt der Einspritzung und Leberresektion bieten mehrere Winkel verwendet wird, wenn eine bestimmte Frage im Rahmen der Post-Hepatektomie Metastasen zu entdecken. Die Grenzen dieses Verfahrens sind die aumächtigung das Verfahren an Tieren, den Zugang zu einem geeigneten Tierversuchsanlage und Erwerb bestimmter Ausrüstung durchzuführen.

In unserem speziellen Experiment, enthalten wir 30 athymischen Nackt-foxn1nu / nu Mäusen. Sie erhielten eine mittlere Laparotomie, Tumorzellinjektionen von 500.000 MC38 Tumorzellen (gelöst in 50 ul Kochsalzlösung), und wurden anschließend entweder mit einer 70% igen Leberresektion, einer 30% igen Leberresektion oder ohne weiteren Eingriff behandelt. Nach 14 Tagen fast vollständige Regeneration der verbleibenden Leber nach...

Watch this Scientific Journal Video about The Influence of Liver Resection on Intrahepatic Tumor Growth at JoVE.com

The Influence of Liver Resection on Intrahepatic Tumor Growth

A high incidence of tumor recurrence after resection of liver metastases remains an unsolved problem. The illustrated mouse model may be useful to investigate the reasons for such recurrences. It combines a liver resection model with intrahepatic tumor cell injection for the first time.

Der Einfluss von Leberresektion auf Intrahepatische Tumorwachstum

The high incidence of tumor recurrence after resection of metastatic liver lesions remains an unsolved problem. Small tumor cell deposits, which are not ...

the-influence-of-liver-resection-on-intrahepatic-tumor-growth

Research

JoVE Journal

Medicine

9.4K Aufrufe.  Friedrich-Alexander-University Erlangen-Nürnberg (FAU). A high incidence of tumor recurrence after resection of liver metastases remains an unsolved problem. The illustrated mouse model may be useful to investigate the reasons for such recurrences. It combines a liver resection model with intrahepatic tumor cell injection for the first time. 

Serie: The Influence of Liver Resection on Intrahepatic Tumor Growth

Murine Model of Metastatic Liver Tumors in the Setting of Ischemia Reperfusion Injury

Liver ischemia and reperfusion (I/R) injury, a common clinical challenge, remains an inevitable pathophysiological process that has been shown to induce multiple tissue and organ damage. Despite recent advances and therapeutic approaches, the overall morbidity has remained unsatisfactory especially in patients with underlying parenchymal abnormalities. In the context of aggressive cancer growth and metastasis, surgical I/R is suspected to be the promoter regulating tumor recurrence. This article aims to describe a clinically relevant murine model of liver I/R and colorectal liver metastasis. In doing so, we aim to assist other investigators in establishing and perfecting this model for their routine research practice to better understand the effects of liver I/R on promoting liver metastases.

We describe in detail a clinically relevant colorectal cancer liver metastases (CRLM) tumor model and the influence of liver ischemia reperfusion (I/R) in tumor growth and metastasis. This model can help to better understand the mechanisms underlying surgery-induced promotion of liver metastatic growth.

Murine Modell der metastasierenden Lebertumoren in der Einstellung der Ischämie Reperfusionsverletzung

Liver ischemia and reperfusion (I/R) injury, a common clinical challenge, remains an inevitable pathophysiological process that has been shown to induce ...

Forschung

Krebsforschung

Application of Hemostatic Devices in Laparoscopic Hepatectomy

Laparoscopic hepatectomy is considered a conventional method for treating benign and malignant liver diseases because it is a minimally invasive method. Despite its non-invasive aspect, bleeding and bile leakage occur in liver parenchyma tissue resection during the operation or in the post-operation period, indicating the requirement for high-grade hemostatic devices, such as ultrasonic surgical aspiration, bipolar electrocoagulation, etc. The lack of availability of these high-grade hemostatic devices prevents laparoscopic hepatectomy from becoming a generalized procedure in basic medical organizations. In view of the situation mentioned above, a suite of simple and easy hemostatic devices is developed in this protocol, which includes a harmonic scalpel, monopole electrocoagulation, and a single lumen catheter, to innovatively perform liver parenchyma tissue resection. First of all, the porta hepatis or hepatic pedicle is occluded intermittently by a single lumen catheter, followed by clamping for 15 min and releasing for 5 min. Subsequently, using the harmonic scalpel, clamping and crushing of the liver are done to cut off the hepatic parenchyma tissue and to reveal the intrahepatic arteries, veins, and bile ducts. Lastly, the bleeding spots are coagulated by using monopole electrocoagulation at each spot. Intrahepatic pipeline structures are then visible by using these methods, which could stop bleeding easily, reduce the incidence rate of bile leakage, and improve the safety and feasibility of laparoscopic hepatectomy. Therefore, the simple and easy hemostatic devices shown here are suitable for conducting procedures in primary medical institutions.

High-grade hemostatic devices are essential for laparoscopic hepatectomy. However, these devices are not generalized in basic medical organizations. Therefore, a suite of simple and easy hemostatic devices is shown in this article, which can make the laparoscopic hepatectomy easier to perform.

Anwendung hämostatischer Geräte in der laparoskopischen Hepatektomie

Laparoscopic hepatectomy is considered a conventional method for treating benign and malignant liver diseases because it is a minimally invasive method. ...

Application of the En Bloc Concept Combined with Anatomic Resection in Laparoscopic Hepatectomy

Laparoscopic hepatectomy has been reported in many studies, and it is the mainstream method of liver resection. In some particular cases, such as when there are tumors adjacent to the cystic bed, surgeons cannot palpate the surgical margins through the laparoscopic approach, which leads to uncertainty about R0 resection. Conventionally, the gallbladder is resected first, and the hepatic lobes or segments are resected second. However, tumor tissues can be disseminated in the above cases. To address this issue, based on the recognition of the porta hepatis and intrahepatic anatomy, we propose a unique approach to hepatectomy combined with gallbladder resection by en bloc anatomic resection in situ. Firstly, after dissecting the cystic duct, without cutting the gallbladder primarily, the porta hepatis is pre-occluded by the single lumen ureter; secondly, the left hepatic pedicle is made free by the gap of the Laennec membrane and Hilar plate; thirdly, the assistant is asked to drag the fundus of the gallbladder, and the liver parenchyma tissue is resected using a harmonic scalpel along the ischemia line on the liver surface and intraoperative ultrasound. The whole middle hepatic vein (MHV) and its tributaries appear completely; lastly, the left hepatic vein (LHV) is disconnected, and the specimen is taken out from the abdominal cavity. The tumor, gallbladder, and other surrounding tissues are resected en bloc, which meets the tumor-free criterion, and a wide incisal margin and R0 resection are achieved. Therefore, the laparoscopic hepatectomy with the combination of the en bloc concept and anatomic resection is a safe, effective, and radical method with low postoperative recurrence and metastasis.

Numerous studies have demonstrated the advantages of anatomic resection. Nonetheless, whether anatomic resection can increase R0 resection rates remains controversial. Consequently, the present study describes an innovative procedure involving the en bloc concept combined with anatomic resection in laparoscopic hepatectomy, which can reduce postoperative recurrence and metastasis.

Anwendung des En-Bloc-Konzepts in Kombination mit anatomischer Resektion in der laparoskopischen Hepatektomie

Laparoscopic hepatectomy has been reported in many studies, and it is the mainstream method of liver resection. In some particular cases, such as when ...

<meta charset="utf8"></head><body>Patienteneigene Hepatokarzinom-Zell-Organoide für die Leberregenerationsstudie

A Hepatocellular Cancer Patient&#45;Derived Organoid Xenograft Model to Investigate Impact of Liver Regeneration on Tumor Growth

Recurrence poses a notable challenge after hepatocellular carcinoma (HCC) treatment, impacting more than 70% of patients who undergo surgical resection. Recurrence stems from undetected micro-metastasis or de novo cancer, potentially triggered by postsurgical liver regeneration. Prior research employed HCC cell lines in orthotopic models to study the impact of liver regeneration, but their limited validity prompted the need for a more representative model. Here, we introduce a novel approach utilizing patient-derived HCC organoids to investigate the influence of liver regeneration on HCC.
Patient tumor tissues are processed to create tumor organoids, embedded in a three-dimensional basement membrane matrix, and cultured in a liver-specific medium. One million organoids are injected into the right superior lobe (RSL) of immunodeficient mice, confirming macroscopic tumor growth through sonography. The intervention group undergoes resection of the left lateral lobe (LLL) (30% of total liver volume) or additionally, the middle lobe (ML) (65% of total liver volume) to induce liver regeneration within the tumor site. The control group experiences re-laparotomy without liver tissue resection. After 2 weeks, both groups undergo tumor and normal tissue explantation.
In conclusion, this patient-derived HCC organoid model offers a robust platform to investigate the impact of liver regeneration post-cancer resection. Its multi-cellular composition, genetic diversity, and prolonged culture capabilities make it an invaluable tool for studying HCC recurrence mechanisms and potential interventions.

<meta charset="utf8"></head><body>Ein von Patienten mit hepatozellulärem Krebs abgeleitetes Organoid-Xenotransplantat-Modell zur Untersuchung des Einflusses der Leberregeneration auf das Tumorwachs

Organoids generated from patient tumors are orthotopically injected into the mouse liver. The resection of non-tumorous liver tissue leads to a regenerative environment in the liver tissue where the tumor is located.

Ein von Patienten mit hepatozellulärem Krebs abgeleitetes Organoid-Xenotransplantat-Modell zur Untersuchung des Einflusses der Leberregeneration auf das Tumorwachstum

Recurrence poses a notable challenge after hepatocellular carcinoma (HCC) treatment, impacting more than 70% of patients who undergo surgical resection. ...

Laparoscopic Anterior Right Hepatectomy: A Single-Center Experience

Laparoscopic anterior right hepatectomy (LARH) has been used in some hospitals. However, data on the feasibility and safety of this procedure are still limited, due to the demanding technical requirements. The primary objective of this study was to compare the clinical outcomes of LARH with those of laparoscopic conventional right hepatectomy (LCRH) in patients with large right hepatocellular carcinoma, as well as to confirm the safety and feasibility of LARH. Furthermore, the article presents a step-by-step description of the surgical procedures for LARH to help perform this surgery in the clinic. The principle of LARH is to first prioritize the hepatic inlet duct separation while separating the right hepatic perihepatic ligament after transecting the liver. From December 2015 to June 2022, 82 patients with large right hepatocellular carcinoma (maximum tumor diameter &#8805; 5 cm), were recruited for the study. In this cohort, 54 and 28 patients underwent LARH and LCRH, respectively. The perioperative clinical data and survival outcomes of the two groups were compared. Compared with LCRH, LARH exhibited the advantages of less contact and extrusion, thereby leading to the achievement of superior results. Thus, we propose that LARH is the optimal choice for patients with large right hepatocellular carcinoma.

Here we present a step-by-step protocol for conducting laparoscopic anterior right hepatectomy and compare its clinical effects and postoperative outcomes with those of conventional hepatectomies. Analysis of the data of 82 patients with hepatocellular carcinoma revealed that laparoscopic anterior right hepatectomy had better clinical outcomes and survival rates than the conventional hepatectomy.

Laparoskopische vordere rechte Hepatektomie: eine einzentrische Erfahrung

Laparoscopic anterior right hepatectomy (LARH) has been used in some hospitals. However, data on the feasibility and safety of this procedure are still ...

Verhalten

Rat Model of the Associating Liver Partition and Portal Vein Ligation for Staged Hepatectomy (ALPPS) Procedure

Recent clinical data support an aggressive surgical approach to both primary and metastatic liver tumors. For some indications, like colorectal liver metastases, the amount of liver tissue left behind after liver resection has become the main limiting factor of resectability of large or multiple liver tumors. A minimal amount of functional tissue is required to avoid the severe complication of post-hepatectomy liver failure, which has high morbidity and mortality. Inducing liver growth of the prospective remnant prior to resection has become more established in liver surgery, either in the form of portal vein embolization by interventional radiologists or in the form of portal vein ligation several weeks prior to resection. Recently, it was shown that liver regeneration is more extensive and rapid, when the parenchymal transection is added to portal vein ligation in a first stage and then, after only one week of waiting, resection performed in a second stage (Associating Liver Partition and Portal vein ligation for Staged hepatectomy = ALPPS). ALPPS has rapidly become popular across the world, but has been criticized for its high perioperative mortality. The mechanism of accelerated and extensive growth induced by this procedure has not been well understood. Animal models have been developed to explore both the physiological and molecular mechanisms of accelerated liver regeneration in ALPPS. This protocol presents a rat model that allows mechanistic exploration of accelerated regeneration.

Rat Model of the Associating Liver Partition and Portal Vein Ligation for Staged Hepatectomy ALPPS Procedure

Inducing rapid liver hypertrophy using Associating Liver Partition and Portal vein ligation for a Staged hepatectomy (ALPPS) has been proposed for resection of borderline resectable liver tumors. This model may elucidate mechanisms involved in rapid hypertrophy and allows testing of drugs that promote or block the acceleration of regeneration.

Rattenmodell der Leber Partition zuordnen und Pfortader Ligation inszenierten Hepatektomie (ALPPS) Verfahren

Recent clinical data support an aggressive surgical approach to both primary and metastatic liver tumors. For some indications, like colorectal liver ...

Medizin

Application of Laparoscopic Hepatectomy Combined with Intraoperative Microwave Ablation in Colorectal Cancer Liver Metastasis

Laparoscopic hepatectomy is a common treatment for colorectal cancer liver metastasis. Previously, a sufficient number of functional liver masses had to be maintained during laparoscopic hepatectomy, with a residual liver volume of &gt;40% in cirrhotic patients and &gt;30% in non-cirrhotic patients. The high incidence of complications such as bleeding, bile leakage, or liver failure due to the exposure and difficulty of the resection of specific liver segments such as S2 and S7 reduces the success rate of liver resection. At present, microwave ablation is mainly applied in the treatment of liver metastasis using a percutaneous approach, which makes it difficult to identify hidden parts or small lesions. For some liver segments, the percutaneous puncture of liver segment 7 (S7) is likely to pass through the thoracic cavity, and the percutaneous puncture of liver segment 2 (S2) adjacent to the diaphragm is likely to injure the diaphragm and heart; these issues restrict the application of percutaneous ablation in colorectal cancer liver metastasis. Considering multiple lesions, laparoscopic microwave ablation combined with hepatectomy was performed in this study. The location of the lesions was determined by contrast-enhanced ultrasound under laparoscopy, and small lesions that were difficult to detect before the operation were identified. For the scattered lesions, which had diameters less than 3 cm and were difficult to resect, ablation was adopted to substitute hepatectomy. This technique helped to more explicitly locate the tumors, simplified the operation procedures, reduced the risk of complications such as bleeding and bile leakage, shortened the operation time, accelerated the postoperative recovery, significantly improved the success rate of operation, and enhanced the clinical prognosis of colorectal cancer liver metastasis by surgical resection.

This protocol describes the laparoscopic resection of colorectal cancer liver metastases combined with ultrasound-guided microwave ablation. This technique can safely, effectively, and accurately treat refractory liver metastases &lt;3 cm, reduce postoperative complications, and accelerate the postoperative rehabilitation of patients.

Anwendung der laparoskopischen Hepatektomie in Kombination mit intraoperativer Mikrowellenablation bei Lebermetastasen bei Darmkrebs

Laparoscopic hepatectomy is a common treatment for colorectal cancer liver metastasis. Previously, a sufficient number of functional liver masses had to ...

Laparoscopic Left Approach Resection of the Caudate Lobe

Laparoscopic caudate lobectomy (LCL) is one of the most challenging types of laparoscopic liver resections. The main difficulty lies in the deep anatomical position of the caudate lobe, which is closely adjacent to the first and second hepatic ports and the inferior vena cava, increasing the risk of major bleeding during surgery. In addition to a thorough understanding of the anatomy of the caudate lobe tumor, comprehensive imaging assessment, and three-dimensional reconstruction, the flexible choice of surgical approach is also key to reducing surgical difficulty and improving safety. We perform laparoscopic caudate lobectomy using a left-sided approach, especially when the tumor is located in the area of the caudate lobe close to the inferior vena cava. This method avoids the step of splitting the liver substance to expose the field of view required by the traditional anterior approach, with the advantages of larger operating space and shorter operation time. At the same time, combined with preoperative three-dimensional reconstruction technology, we have significantly reduced the risk of damaging important blood vessels and increased the success rate of resection of tumors in the caudate lobe.

Here, we present a surgical protocol describing the laparoscopic resection of a tumor situated near the paracaval portion within the caudate lobe, utilizing a left-sided approach.

Der Einfluss von Leberresektion auf Intrahepatische Tumorwachstum

Zusammenfassung

Weitere Videos entdecken

Murine Modell der metastasierenden Lebertumoren in der Einstellung der Ischämie Reperfusionsverletzung

Anwendung hämostatischer Geräte in der laparoskopischen Hepatektomie

Anwendung des En-Bloc-Konzepts in Kombination mit anatomischer Resektion in der laparoskopischen Hepatektomie

Ein von Patienten mit hepatozellulärem Krebs abgeleitetes Organoid-Xenotransplantat-Modell zur Untersuchung des Einflusses der Leberregeneration auf das Tumorwachstum

Ein von Patienten mit hepatozellulärem Krebs abgeleitetes Organoid-Xenotransplantat-Modell zur Untersuchung des Einflusses der Leberregeneration auf das Tumorwachstum

Ein von Patienten mit hepatozellulärem Krebs abgeleitetes Organoid-Xenotransplantat-Modell zur Untersuchung des Einflusses der Leberregeneration auf das Tumorwachstum

Laparoskopische vordere rechte Hepatektomie: eine einzentrische Erfahrung

Rattenmodell der Leber Partition zuordnen und Pfortader Ligation inszenierten Hepatektomie (ALPPS) Verfahren

Anwendung der laparoskopischen Hepatektomie in Kombination mit intraoperativer Mikrowellenablation bei Lebermetastasen bei Darmkrebs

Laparoskopische Resektion des Kaudarmappens mit linksem Zugang