Timothy Daniels, MLS(ASCP), MB, QLS, und Helmut Weigelin, MLS(ASCP) waren maßgeblich an der Etablierung dieser Extraktionsmethode in unserem Labor beteiligt.

Das vorliegende Protokoll folgt den Richtlinien für die menschliche Pflege und wurde vom Institutional Review Board (IRB) der University of Michigan genehmigt. Hierfür wurde vom IRB eine Befreiung von der Einwilligungserklärung eingeholt. Es gibt keine relevanten Ein- oder Ausschlusskriterien für die betroffenen Patienten.
1. Trennung von zellulären und zellfreien Bestandteilen
HINWEIS: Für die VRL-Diagnostik können drei Arten von Proben entnommen werden: Glaskörper (unverdünnt; Flüssigkeit aus der Vitrektomie, die vor Beginn der Infusion entnommen wird), verdünnter Glaskörper in einem Kassettenbeutel (Abbildung 1) und Kammerwasser (Flüssigkeit aus der vorderen Augenkammer).
<ol><li>Bei unverdünnter Glaskörperflüssigkeit, die sehr viskos ist, mit 3-5 ml PBS verdünnen, um das Pipettieren zu erleichtern.</li>
	<li>Bei verdünntem Glaskörper im Kassettenbeutel (ergänzende Abbildung 1) Flüssigkeit in konische 50-ml-Röhrchen (eines pro 45 ml Flüssigkeit) ablassen.</li>
	<li>Das Kammerwasser hat ein sehr geringes Volumen (<200 μl). Um eine maximale Rückgewinnung der Zellen zu gewährleisten, überführen Sie die Probe in ein 1,5-ml-Röhrchen, spülen Sie das ursprüngliche 500-μl-Mikrozentrifugenröhrchen, in dem die Probe gesammelt wurde, mit einem gleichen Volumen PBS und geben Sie es in das 1,5-ml-Röhrchen.</li>
	<li>Glaskörper oder wässrige Flüssigkeit bei 3.000 x g 15 min bei Raumtemperatur zentrifugieren.</li>
	<li>Entfernen Sie den Überstand vorsichtig mit einer Pipette und achten Sie darauf, die pelletierten Zellen nicht zu stören.</li>
</ol>2. DNA-Extraktion aus der zellulären Komponente
<ol><li>Fügen Sie eine angemessene Menge der Zelllyselösung hinzu (300 μl für kleine Pellets, 1 ml oder mehr für größere Pellets) (siehe Materialtabelle). Mischen Sie durch Pipettieren nach oben und unten.</li>
	<li>Nach vollständiger Lysierung wird 1/3 des Gesamtvolumens der Proteinpräzipitatlösung (100 μl für 300 μl Lysat) zugegeben (siehe Materialtabelle).</li>
	<li>20-30 s kräftig wirbeln. 3 min bei 3.000 x g bei Raumtemperatur schleudern.</li>
	<li>300 μl Isopropanol in ein sauberes Mikrozentrifugenröhrchen pipettieren. Pipettieren Sie den Überstand aus dem vorherigen Schritt vorsichtig in das Isopropanolröhrchen.</li>
	<li>Fügen Sie 1,5 μl 20 mg/ml Glykogen (für 300 μl Lyse) hinzu (siehe Materialtabelle).</li>
	<li>Mischen Sie gut durch Inversion und legen Sie die Probe dann für 1 h bis über Nacht in einen Gefrierschrank bei -20 °C, um die DNA-Ausfällung zu unterstützen.</li>
	<li>Zentrifugieren Sie das 1,5-ml-Röhrchen 5 Minuten lang bei 3.000 x g bei Raumtemperatur. Pipettieren Sie das Isopropanol ab.</li>
	<li>Fügen Sie 0,5 ml 70%iges Ethanol hinzu und drehen Sie das Röhrchen um, um das Pellet zu waschen.</li>
	<li>1 min bei 3.000 x g bei Raumtemperatur schleudern und das Ethanol umfüllen. Wiederholen Sie die Ethanolwäsche einmal.</li>
	<li>Drehen Sie das Röhrchen auf saubere Gaze, um die Lösung abzutropfen und das Pellet oder die Karaffe zu trocknen. Schleudern Sie die DNA schnell in einer Mikrozentrifuge und pipettieren Sie den verbleibenden Tropfen Ethanol mit einer feinen Einwegpipettenspitze (sobald kein Restethanol mehr im Röhrchen ist, sollte die DNA in 5-10 Minuten trocken und bereit sein, zu hydratisieren).</li>
	<li>Geben Sie 45 μl DNA-Hydratationslösung (siehe Materialtabelle) in das getrocknete DNA-Pellet.</li>
	<li>Legen Sie das Röhrchen in einen Heizblock bei 50 °C und lassen Sie es 1-2 h lang auflösen. Pipetieren Sie die DNA nach oben und unten, um den Hydratationsprozess zu beschleunigen. HINWEIS: Fügen Sie mehr DNA-Hydratationslösung hinzu, wenn die Probe zu viskos erscheint.</li>
</ol>3. Zellfreie DNA-Extraktion
<ol><li>Die Menge des Überstandes aus Schritt 1.5 ist variabel. Fügen Sie 70 μl Konditionierungspuffer (siehe Materialtabelle) für jeden Milliliter des Überstandes hinzu.</li>
	<li>Mischen Sie die Reinigungsperlen gut, indem Sie sie vortexieren. Fügen Sie 10 μl Reinigungsperlen hinzu, wenn Sie <14 ml zellfreien Überstand, 20 μl bei der Verarbeitung von 14-40 ml verarbeiten.</li>
	<li>Mischen Sie die Mischung aus Probe und Kügelchen gut, indem Sie sie vortexieren. Bei 3.000 x g 15 min bei Raumtemperatur zentrifugieren.</li>
	<li>Ohne das Pellet zu stören, pipettieren Sie den Überstand heraus und lassen 100 μl zurück, wenn 10 μl Reinigungsperlen verwendet werden, und 200 μl, wenn 20 μl Reinigungsperlen verwendet werden.</li>
	<li>Geben Sie ein gleiches Volumen Urinpellet-Aufschlusspuffer (siehe Materialtabelle) in das Pellet und resuspendieren Sie das Pellet durch Wirbeln oder Pipettieren.</li>
	<li>Proteinase K (5% (v/v)) zum resuspendierten Pellet geben (z. B. 10 μl Proteinase K zu 200 μl Gemisch hinzufügen) und durch sanftes Vortexen gut mischen.</li>
	<li>Die Pelletmischung bei 55 °C 30 min inkubieren.</li>
	<li>Geben Sie ein Volumen genomischen Lysepuffer (siehe Materialtabelle) zu der Aufschlussmischung (z. B. 210 μl genomischer Lysepuffer auf 210 μl Aufschlussmischung) und mischen Sie durch Vortexing.</li>
	<li>Die handelsübliche Schleudersäule (siehe Materialtabelle) in ein neues Sammelröhrchen überführen.</li>
	<li>200 μl Urin-DNA-Prep-Puffer in die Spin-Säule geben, bei ≥16.000 x g für 1 Minute bei Raumtemperatur zentrifugieren und den Durchfluss verwerfen.</li>
	<li>700 μl Urin-DNA-Waschpuffer in die Säule geben, bei ≥16.000 x g 1 min bei Raumtemperatur zentrifugieren und den Durchfluss verwerfen.</li>
	<li>Wiederholen Sie den Schritt mit 200 μl Urin-DNA-Waschpuffer.</li>
	<li>Die Spin-Säule wird in ein DNase/RNase-freies Mikrozentrifugenröhrchen überführt.</li>
	<li>Geben Sie das entsprechende Volumen des DNA-Elutionspuffers (basierend auf den durchzuführenden molekularen Tests) direkt auf die Säulenmatrix und lassen Sie sie 3-5 Minuten bei Raumtemperatur stehen. HINWEIS: In den Beispielfällen wurden 30 μl Elutionspuffer verwendet. Es wird mehr Elutionspuffer verwendet, wenn zusätzliche Tests erforderlich sind.</li>
	<li>Bei ≥16.000 x g bei Raumtemperatur 1 min zentrifugieren, um die zellfreie DNA zu erhalten.</li>
</ol>

Diagnose des vitreoretinalen Lymphoms mit zellfreier DNA

<ol>
	<li>Chan, C. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primary+vitreoretinal+lymphoma:+a+report+from+an+International+Primary+Central+Nervous+System+Lymphoma+Collaborative+Group+symposium.">Primary vitreoretinal lymphoma: a report from an International Primary Central Nervous System Lymphoma Collaborative Group symposium.</a> Oncologist. 16 (11), 1589-1599 (2011).</li><li>Sagoo, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primary+intraocular+lymphomas.">Primary intraocular lymphomas.</a> Clinical &amp; Experimental Ophthalmology. 59 (5), 503-516 (2014).</li><li>Coupland, S. 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C., Check, I. J., Milano, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunophenotyping+large+B-cell+lymphomas.+Flow+cytometric+pitfalls+and+pathologic+correlation.">Immunophenotyping large B-cell lymphomas. Flow cytometric pitfalls and pathologic correlation.</a> American Journal of Clinical Pathology. 116 (2), 191-203 (2001).</li><li>Bonzheim, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+molecular+hallmarks+of+primary+and+secondary+vitreoretinal+lymphoma.">The molecular hallmarks of primary and secondary vitreoretinal lymphoma.</a> Blood Advances. 6 (5), 1598-1607 (2022).</li><li>Shi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical+relevance+of+the+high+prevalence+of+MYD88+L265P+mutated+vitreoretinal+lymphoma+identified+by+droplet+digital+polymerase+chain+reaction.">Clinical relevance of the high prevalence of MYD88 L265P mutated vitreoretinal lymphoma identified by droplet digital polymerase chain reaction.</a> Ocular Immunology and Inflammation. 29 (3), 448-455 (2021).</li><li>Bustamante, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circulating+tumor+DNA+tracking+through+driver+mutations+as+a+liquid+biopsy-based+marker+for+uveal+melanoma.">Circulating tumor DNA tracking through driver mutations as a liquid biopsy-based marker for uveal melanoma.</a> Journal of Experimental and Clinical Cancer Research. 40 (1), 196 (2021).</li></ol>

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Das vitreoretinale Lymphom (VRL) ist ein aggressives großzelliges B-Zell-Lymphom 1,2,3, dessen Symptome andere vitreoretinale Erkrankungen nachahmen können 4,5. Die molekulare Untersuchung von Glaskörper und in jüngster Zeit auch von Kammerwasser ist zu einer entscheidenden Methode geworden, um die Diagnose einer VRL zu stellen oder auszuschließen. Diese Flüssigkei...

Das vitreoretinale Lymphom (VRL) ist ein aggressives Lymphom, das mit einem diffusen großzelligen B-Zell-Lymphom des primären Zentralnervensystems assoziiertist 1,2,3. VRL verläuft aufgrund ihrer Beteiligung am zentralen Nervensystem in der Regel tödlich 1,2. Obwohl selten1,4, zeigt sich VRL häufig mit Symptomen, die der posterioren Uveitis und anderen vitreoretinalen Erkrankungen ähneln 4,5. Folglich benötigen Patienten mit Uveitis-Symptomen eine Diagnose, um eine VRL entweder zu bestätigen oder auszuschließen.
Kürzlich wurden Konsenskriterien für die Diagnose von VRL veröffentlicht, die eine Kombination aus klinischer Untersuchung und Laborbefunden beinhalten6. Zu den Proben, die häufig zur Diagnose von VRL verwendet werden, gehören Glaskörper und in jüngerer Zeit Kammerwasser7. Der Glaskörper wird durch ein chirurgisches Verfahren namens Pars-plana-Vitrektomie gewonnen, das den Zugang zum hinteren Augenabschnitt ermöglicht8.
In dem vorgestellten Protokoll wurden sowohl Kammerwasser- als auch Glaskörperproben für die zelluläre und cfDNA-Extraktion gesammelt. Nach der Anästhesie der Patienten und der Platzierung von Trokaren ca. 4 mm vom Hornhautlimbus entfernt wurde eine Kammerwasserprobe von ca. 100-200 μl mit einer 1-ml-Tuberkulinspritze am Hornhautlimbus entnommen. Bei pseudophaken Patienten wurde unverdünnter Glaskörper durch Zuführen steriler Luft in die Infusion erhalten, wodurch eine größere Menge unverdünnten Glaskörpers (bis zu 3,5 ml) entnommen werden konnte. Bei phaken Patienten wurden etwa 500 bis 1000 μl unverdünnter Glaskörper entfernt, bevor eine Infusion mit ausgewogener Salzlösung eingeschaltet wurde. In einigen Fällen wurde sekundär verdünnter Glaskörper (500 bis 2.000 μl) gesammelt, indem die Infusion auf Flüssigkeit umgestellt und der Vitrektor in den Glaskörperrand gelegt wurde, um diese Probe zu erhalten. Die am stärksten verdünnte Glaskörperfraktion wurde gesammelt, indem der Kassettenbeutel (ergänzende Abbildung 1) am Ende der Operation aufbewahrt wurde. Sobald dieser Beutel die Pathologieabteilung erreichte, wurde verdünnter Glaskörper gewonnen, indem Flüssigkeit aus diesem Beutel in konische Röhrchen für die anschließende DNA-Extraktion abgelassen wurde.
Die Zytopathologie der Glaskörperflüssigkeit wird oft als Goldstandard angesehen9. Mehrere Studien haben jedoch gezeigt, dass die Sensitivität aufgrund der Verarbeitung und der minimalen Zellularität begrenzt ist10,11,12. Die Durchflusszytometrie kann bei der Identifizierung klonaler B-Zellen helfen, kann aber auch durch eine geringe Zellularität und die Fragilität großer Lymphomzellen eingeschränkt sein13,14,15. Sowohl für die Zytopathologie als auch für die Durchflusszytometrie werden intakte ganze Zellen benötigt. Viele dieser Zellen werden bei der Sammlung, Lagerung und Verarbeitung zerstört. Wenn molekulare Tests mit DNA durchgeführt werden, die aus intakten Zellen extrahiert wurde (zelluläre DNA), leiden sie unter derselben Einschränkung. Darüber hinaus reduziert die Teilung der begrenzten Glasprobe für alle diese Tests die Menge an Material, die für jeden Test zur Verfügung steht.
Zellfreie DNA (cfDNA) stellt eine weitere DNA-Quelle dar, die keine intakten Zellen benötigt. cfDNA aus Glaskörperproben wurde für den Nachweis von VRL 16,17 sowie Aderhautmelanom18 verwendet. In diesem Protokoll wird zelluläre und zellfreie DNA aus Glaskörper und wässriger Flüssigkeit extrahiert, um VRL nachzuweisen.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>2-Propanol (Isopropanol)</td>
			<td>Fischer</td>
			<td>A415-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNA Clean &#38; Concentrator-10</td>
			<td>Zymo Research</td>
			<td>D4011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNA Clean &#38; Concentrator-5</td>
			<td>Zymo Research</td>
			<td>D4003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gentra Puregene Cell Lysis Solution</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>158906</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gentra Puregene DNA Hydration Solution</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>158916</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gentra Puregene Protein Precipitation Solution</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>158912</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffered Saline (PBS)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P-4417</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Quick-DNA Urine Kit</td>
			<td>Zymo Research</td>
			<td>D3061</td>
			<td>Conditioning buffer; also includes clearing beads, Proteinase K and spin columns</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrapure Glycogen, 20 &#181;g/&#181;L (20 mg/mL)</td>
			<td>Thermo Fisher/Invitrogen</td>
			<td>10814010</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

cell-free dna extraction of vitreous and aqueous humor specimens for diagnosis and monitoring of vitreoretinal lymphoma

Das vitreoretinale Lymphom (VRL) ist ein aggressives Lymphom, das oft als primäres diffuses großzelliges B-Zell-Lymphom des Zentralnervensystems kategorisiert wird. Um VRL zu diagnostizieren, werden Proben wie Glaskörper und neuerdings auch Kammerwasser gesammelt. Diagnostische Tests auf VRL an diesen Proben umfassen Zytologie, Durchflusszytometrie und molekulare Tests. Sowohl die Zytopathologie als auch die Durchflusszytometrie sowie molekulare Tests mit zellulärer DNA erfordern jedoch intakte ganze Zellen. Die Herausforderung liegt in der Tatsache, dass Glaskörper und Kammerwasser typischerweise eine geringe Zellularität aufweisen und viele Zellen während der Sammlung, Lagerung und Verarbeitung zerstört werden. Darüber hinaus stellen diese Proben aufgrund der hohen Viskosität des Glaskörpers und des geringen Volumens sowohl des Glaskörpers als auch des Kammerwassers zusätzliche Schwierigkeiten für die molekulare Untersuchung dar. In dieser Studie wird eine Methode zur Extraktion zellfreier DNA aus glasartigen und wässrigen Proben vorgeschlagen. Dieser Ansatz ergänzt die Extraktion zellulärer DNA oder ermöglicht es, die zelluläre Komponente dieser Proben für andere diagnostische Methoden, einschließlich Zytologie und Durchflusszytometrie, zu nutzen.

Vitreoretinal lymphoma (VRL) is an aggressive lymphoma associated with primary central nervous system diffuse large B-cell lymphoma1,2,3. VRL is typically fatal due to its involvement in the central nervous system1,2. Although rare1,4, VRL often presents with symptoms similar to posterior uveitis and other vitreoretinal diseases4,5. Consequently, patients exhibiting uveitis symptoms require a diagnosis to either confirm or rule out VRL.
Recently, consensus criteria for diagnosing VRL were published, which involve a combination of clinical examination and laboratory findings6. Specimens commonly used to diagnose VRL include vitreous humor and, more recently, aqueous humor7. Vitreous humor is obtained through a surgical procedure called pars plana vitrectomy, which allows access to the posterior segment of the eye8.
In the presented protocol, both aqueous humor and vitreous humor specimens were collected for cellular and cfDNA extraction. After anesthetizing the patients and placing trocars approximately 4 mm from the corneal limbus, an aqueous humor sample of approximately 100-200 &#181;L was obtained using a 1 mL tuberculin syringe at the corneal limbus. For pseudophakic patients, undiluted vitreous was obtained by introducing sterile air into the infusion, enabling the collection of a larger amount of undiluted vitreous (up to 3.5 mL). In phakic patients, approximately 500 to 1000 &#181;L of undiluted vitreous was removed before turning on an infusion of balanced salt solution. In some cases, secondarily diluted vitreous (500 to 2,000 &#181;L) was collected by switching the infusion to fluid and placing the vitrector within the vitreous skirt to obtain this sample. The most dilute vitreous fraction was collected by preserving the cassette bag (Supplemental Figure 1) at the end of the surgery. Once this bag reached the pathology department, dilute vitreous was obtained from draining fluid out of this bag into conical tubes for subsequent DNA extraction.
Cytopathology of vitreous fluid is often considered the gold standard9. However, several studies have demonstrated limited sensitivity due to processing and minimal cellularity10,11,12. Flow cytometry can aid in identifying clonal B-cells but can also be limited by low cellularity and the fragility of large lymphoma cells13,14,15. Both cytopathology and flow cytometry requires intact whole cells. Many of these cells are destroyed during collection, storage, and processing. When molecular testing is performed using DNA extracted from intact cells (cellular DNA), it suffers from this same limitation. In addition, dividing the limited vitreous specimen for all of these tests reduces the amount of material available for each test.
Cell-free DNA (cfDNA) represents another source of DNA that does not require intact cells. cfDNA from vitreous specimens has been used for the detection of VRL16,17 as well as uveal melanoma18. In this protocol, cellular and cell-free DNA are extracted from vitreous and aqueous fluid to detect VRL.

Autor im Rampenlicht: Weiterentwicklung der VRL-Diagnose durch zellfreie DNA-Extraktion aus Glaskörper 

Zellfreie DNA-Extraktion von Glaskörper- und Kammerwasserproben zur Diagnose und Überwachung des vitreoretinalen Lymphoms

Diese Extraktionsmethoden wurden an einer begrenzten Anzahl von Fällen durchgeführt, um eine ausreichende Ausbeute und Amplifizierbarkeit der zellfreien DNA im Vergleich zur zellulären DNA aus den glasigen (vier) und wässrigen (vier) Proben zu gewährleisten. Aus diesen Proben sind die DNA-Ausbeuten der zellfreien Komponente dieser Flüssigkeiten ähnlich wie die der zellulären Komponente (Tabelle 1). Zelluläre und cfDNA aus diesen Proben wurden ebenfalls mit molekularen Tests untersucht, z. B. auf...

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Hier wird ein Verfahren zur Extraktion zellfreier DNA aus Glaskörper und Kammerwasser etabliert, um molekulare Studien zur Diagnose des vitreoretinalen Lymphoms durchzuführen. Die Methode bietet die Möglichkeit, gleichzeitig DNA aus der zellulären Komponente der Probe zu extrahieren oder für zusätzliche Tests zu reservieren.

Vitreoretinal lymphoma (VRL) represents an aggressive lymphoma, often categorized as primary central nervous system diffuse large B-cell lymphoma. To ...

Mit dieser Forschung versuchen wir, molekulare Tests des Glaskörpers, der durch Vitrektomie aus dem Auge gewonnen wird, zu verwenden, um das vitreoretinale Lymphom oder VRL zu diagnostizieren, eine aggressive Erkrankung, deren Symptome sich mit denen häufiger entzündlicher Augenerkrankungen überschneiden. Zytopathologie, Durchflusszytometrie und molekulare Tests sind aktuelle Methoden zur Diagnose von VRL. Die publizierte Sensitivität nicht-molekularer Methoden beträgt 44 bis 90 % für die Zytopathologie und 50 bis 60 % für die Durchflusszytometrie, Zytopathologie, Durchflusszytometrie und molekulare Tests mit zellulärer DNA, die intakte neoplastische Zellen erfordern.Dies stellt bei Glaskörperproben ein Problem dar, da das Volumen und die Zellularität dieser Proben gering sind und die Zellen durch Apoptose sowie durch Probenentnahme, -verarbeitung und -lagerung abgebaut werden können. Wir fanden heraus, dass zellfreie DNA, die aus Glaskörperproben extrahiert wurde, eine weitere DNA-Quelle aus molekularen Tests darstellt, die keine intakten Zellen erfordert, und die ebenfalls Hinweise auf VRL zeigt und zur Diagnose dieses Lymphoms verwendet werden kann. Die zellfreie DNA-Extraktion bietet molekulare Tests ohne intakte neoplastische Zellen.Dies ermöglicht die Maximierung des Nutzens von glasartigen Proben, da intakte Zellen für die Zytopathologie und Durchflusszytometrie reserviert werden können, während die verbleibende überstehende Flüssigkeit verwendet wird, die sonst für molekulare Tests verworfen würde.

cell-free-dna-extraction-vitreous-aqueous-humor-specimens-for

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Cell-Free DNA Extraction of Vitreous and Aqueous Humor Specimens for Diagnosis and Monitoring of Vitreoretinal Lymphoma

1.2K Aufrufe.  University of Michigan, Ann Arbor. Mit dieser Forschung versuchen wir, molekulare Tests des Glaskörpers, der durch Vitrektomie aus dem Auge gewonnen wird, zu verwenden, um das vitreoretinale Lymphom oder VRL zu diagnostizieren, eine aggressive Erkrankung, deren Symptome sich mit denen häufiger entzündlicher Augenerkrankungen überschneiden. Zytopathologie, Durchflusszytometrie und molekulare Tests sind aktuelle Methoden zur Diagnose von VRL. Die publizierte Sensitivität nicht-molekularer Methoden beträgt 44 bis 90 % für ...

Serie: Autor im Rampenlicht: Weiterentwicklung der VRL-Diagnose durch zellfreie DNA-Extraktion aus Glaskörper 

Vitreoretinal lymphoma (VRL) represents an aggressive lymphoma, often categorized as primary central nervous system diffuse large B-cell lymphoma. To diagnose VRL, specimens such as vitreous humor and, more recently, aqueous humor are collected. Diagnostic testing for VRL on these specimens includes cytology, flow cytometry, and molecular testing. However, both cytopathology and flow cytometry, along with molecular testing using cellular DNA, necessitate intact whole cells. The challenge lies in the fact that vitreous and aqueous humor typically have low cellularity, and many cells get destroyed during collection, storage, and processing. Moreover, these specimens pose additional difficulties for molecular testing due to the high viscosity of vitreous humor and the low volume of both vitreous and aqueous humor. This study proposes a method for extracting cell-free DNA from vitreous and aqueous specimens. This approach complements the extraction of cellular DNA or allows the cellular component of these specimens to be utilized for other diagnostic methods, including cytology and flow cytometry.

A procedure to extract cell-free DNA from vitreous and aqueous humor to perform molecular studies for diagnosing vitreoretinal lymphoma is established here. The method offers the ability to concurrently extract DNA from the cellular component of the sample or to reserve it for ancillary testing.