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El cinetocoro es donde el SAC inicia su señal de control de la segregación mitótica de las cromátidas hermanas. Se describe un método para visualizar la contratación y la rotación de una de las kinetochore proteínas y su coordinación con el movimiento de los cromosomas en Drosophila Embriones utilizando un sistema láser de Leica confocal de barrido.
El conjunto del eje puesto de control (SAC) el mecanismo es una señal activa, que controla la interacción entre los cinetocoros de los cromosomas y los microtúbulos del huso para prevenir la aparición de la anafase hasta que los cromosomas están correctamente conectados. Las células utilizan este mecanismo para evitar la inestabilidad genómica o la aneuploidía, y por lo tanto, los cánceres y otras enfermedades humanas tales como defectos de nacimiento y la enfermedad de Alzheimer 1. Varios de los componentes del SAC como Mad1, Mad2, Bub1, BubR1, Bub3, Mps1, ZW10, Rod y Aurora quinasa B han sido identificados y que son todas las proteínas dinámicas kinetochore 2. La evidencia sugiere que el cinetocoro es donde la señal de SAC se inicia. El objetivo del SAC es el primer regulador Cdc20. Cdc20 es uno de los esenciales de APC / C (A naphase P romoción C omplejo o yclosome C) activadores 3 y es también una proteína cinetocoro dinámico 4-6. Cuando se activa, el SAC inhibe la actividad de la UnPC / C para evitar la destrucción de dos sustratos clave, la ciclina B y securin, evitando así la metafase a anafase transición de 7,8. Exactamente cómo la señal de SAC se inicia y montados en los cinetocoros y se informará sobre el APC / C para inhibir su función sigue siendo difícil de alcanzar.
Drosophila es un sistema experimental extremadamente tratable; un organismo mucho más simple y mejor entendida en comparación con la humana, pero una que comparte procesos fundamentales en común. Es, quizás, uno de los mejores organismos a utilizar para los estudios de bio-imágenes de células vivas, especialmente para la visualización de los eventos mitóticos en el espacio y el tiempo, ya que el embrión temprano va a través de 13 ciclos rápidos de la división nuclear de forma sincrónica (8-10 minutos para cada ciclo a 25 ° C) y gradualmente organiza los núcleos en una sola monocapa justo debajo de la corteza 9.
Aquí, presentamos un método bio-imágenes con expresión transgénica de Drosophilacantan las buenas prácticas agrarias (Green Fluorescent Protein) o de sus dirigidos variante de las proteínas de interés y una Leica TCS SP2 confocal de barrido láser sistema de microscopio para estudiar la función del SAC en las moscas, mostrando imágenes de las proteínas de fusión GFP de algunos de los componentes SAC, Cdc20 y Mad2 , como el ejemplo.
1. Las moscas transgénicas y Mantenimiento
2. Fly Preparación de Alimentos (escala de laboratorio)
3. En pequeña escala de recolección de huevos
4. Preparación Cubreobjetos y diapositivas
5. Los embriones Dechorionate
6. Los embriones de imagen
7. Provocar el SAC por microinyección de los embriones con los reactivos adecuados
8. Los resultados representativos
Figura 1. Materiales necesarios: a. cepillo de pluma fina, b. plazoleta de contenedores rotos los vidrios, c. 22 x 50 mm cubreobjetos, d. portaobjetos de microscopio, e. cinta de doble cara adhesiva, f. levadura en polvo seco en tubo de ensayo con los orificios en la tapa, g. levaduragránulos utilizados para el mantenimiento de la mosca, h. volar vial alimentos, i. un medio de unas pinzas utilizadas para los embriones dechorionate, j. unas pinzas par, k. heptano pegamento recipiente de líquido (matraz aforado).
Figura 2. Los diagramas muestran la preparación de los cubreobjetos y diapositivas en el paso 4, dechorionation embrión en el paso 5 y los preparativos para la microinyección de agujas en el paso 7. Una. La imagen superior muestra un cubre con una tira de pegamento heptano a través de su centro y un pequeño cuadrado de un cubreobjetos roto pegado a un extremo. La imagen inferior muestra un portaobjetos de microscopio con una delgada capa de agua en sus cuatro esquinas para sostener un cubreobjetos. La razón para usar una diapositiva para mantener el cubreobjetos es mantener aproximadamente la misma distancia focal que la que se encuentra cuando se tiene cinta de doble cara en las diapositivas y así evitar la reorientación del microscopio mientras are disección y la transferencia de los embriones entre la cinta y el cubreobjetos. B. Una diapositiva con una longitud corta de cinta adhesiva de doble cara aplicarse antes de despegar el papel de la cubierta utilizada para dechorionating el embrión. C. La imagen de la izquierda muestra los embriones con conchas de corion intactos marcados con extremos anterior y posterior, la imagen de la derecha muestra los embriones en las conchas rotas corion antes de que fueran transferidos en el cubreobjetos con la tira de cola de D & E diagramas que muestran dos.. maneras de transferir, la colocación y la alineación de los embriones dechorionated en tiras de pegamento. Los embriones fueron cubiertos por aceite 10S después de un período de desecación adecuada. Diagramas F y G. que muestran cómo se abre la punta de la aguja y la posición de modo como para inyectar.
Las imágenes individuales o lapso de tiempo obtenidos de los experimentos descritos anteriormente pueden ser directamente analizados mediante el software Leica o se guardan en los archivos TIF como un proceso abierto fodisponibles para la cuantificación más o análisis con otros programas de edición comunes de análisis de imagen como la imagen J, Photoshop y MetaMorph etc Dos ejemplos para ilustrar este rmat se discuten a continuación:
Ejemplo 1: Una película de lapso de tiempo (Figura 3) muestra la dinámica de contratación cinetocoro GFP-Cdc20 y el movimiento de los cromosomas en los embriones vivos Drosophila sincicial. La región de interés por parte de las imágenes originales de la secuencia de time-lapse se determinó / editar y convertir por lotes automatizado utilizando el software Photoshop. La película fue ensamblada utilizando el software QuickTime.
Figura 3. Una película de lapso de tiempo muestra la dinámica de contratación cinetocoro GFP-Cdc20 y el movimiento de los cromosomas en los embriones vivos Drosophila sincicial. (A) Time-lapse imágenes fueron tomadas de un embrión transgénico sincitial co-expresión de GFP-Cdc20 (en verde)y el PP-2B histona (en rojo) las proteínas de fusión y se registraron con una Leica TCS SP2 confocal sistema a 18 ° C durante los ciclos de la división nuclear 8.7. Los marcos fueron tomadas cada 10 segundos. El marco con las células que ya están en la profase se trata como el punto cero del tiempo 10. Haga clic aquí para ver la película de la figura 3A . (B) las buenas prácticas agrarias-Cdc20 se puede observar fácilmente en la profase y prometafase cinetocoros (B3 y 4, flechas blancas) y persiste en la metafase y anafase cinetocoros (B5 y 6, flechas blancas). GFP-Cdc20 se excluye de la interfase núcleo (punta de flecha blanca), en el núcleo por la profase temprana. Morfologías cromatina se determinaron utilizando co-expresó His2BmRFP como marcadores (B8-14). Barras = 5 mm.
Ejemplo 2: Las funciones del SAC puede ser estudiado mediante la manipulación de los embriones por los anticuerpos, proteínas microinyección de la etiqueta fluorescente o Chemical compuestos de interés que potencialmente dar lugar a la SAC. Por ejemplo colchicina inyección para despolimerizar los microtúbulos así provocar la SAC como se indica en la Figura 4 10.
Figura 4. Mad2 es esencial para la colchicina invocada por la función SAC 10. GFP-Cdc20, MAD2 + / +, GFP-Cdc20, MAD2 EY (MAD2 - / - mutante nulo) y las buenas prácticas agrarias MAD2; MAD2 EY embriones fueron tratados con colchicina por microinyección. Time-lapse confocal de imágenes fueron tomadas antes (01, 07 y 13) o después de la inyección (02-06, 08-12, paneles superiores, los paneles centrales, 14-18, paneles inferiores). GFP-Cdc20 (paneles superiores y medios) o GFP-Mad2 (panel inferior) señales kinetochore fueron utilizados como marcadores de progresión del ciclo celular. El panel superior, las flechas indican los cinetocoros detenidos en 02-06. El área marcada por una flecha en 01 indica que antes del tratamiento con colchicina, GFP-CDC20 está excluido del núcleo en interfase tarde. Panel central, en ausencia de endógeno Mad2, GFP-Cdc20 señales siguen a oscilar dentro y fuera del núcleo, y dentro y fuera de los cinetocoros, aunque citocinesis parece ser defectuoso, como se esperaría en embriones que carecen de los microtúbulos, en presencia de colchicina (indicado por flechas en 07-12) que sugiere una función SAC fallado en la detención de las células en respuesta al tratamiento colchicina. La separación de núcleo hijo no en la foto 10. Panel inferior, puntas de flecha en 14-18 indican cinetocoros arrestados junto con las buenas prácticas agrarias MAD2 acumulada proteínas de fusión para sugerir la GFP-funcional Mad2 en el rescate del fenotipo defecto de SAC en Mad2 embrión mutante. Punta de flecha en el 13 indica las buenas prácticas agrarias Mad2 acumulación en un núcleo en interfase tarde. Bar = 5 mm. Los embriones se microinyectaron con ~ volumen del huevo 1% de una solución stock de colchicina 100mg/ml en 1 x PBS.
El protocolo se describe aquí es un método genérico para obtener imágenes de volar embriones sincitiales utilizando una Leica TCS SP2 microscopio confocal de barrido láser y puede ser modificado para adaptarse a otros sistemas de microscopio y también se puede adaptar para estudiar otras funciones de genes utilizando embriones de Drosophila sincitiales. Hemos utilizado este protocolo para estudiar muchos aspectos del puesto de control conjunto del eje, la dinámica de proteínas y la proteólisis de proteínas utilizando moscas transgénicas o anticuerpos policlonales para visualizar la localización de la proteína en muestras de vida o fijo 4,6,12-14.
Lo más simple es mantener a las moscas en los alimentos frescos viales mosca en la recogida de pequeñas cantidades (~ 10 - 100) de los huevos. Esto reduce la molestia de hacer y la preparación de manzanas adicionales placas de agar jugo y las cámaras de recolección de huevos como se ha descrito en otras publicaciones 15,16. La adición de un pequeño cuadrado de vidrio cubreobjetos rota en un extremo de la tira de pegamento sobre el cubreobjetos hace mucho más fácilpara abrir la aguja y determinar el volumen de inyección mediante el ajuste de la configuración del sistema de microinyección, mientras que la aguja se sumerge en el aceite de 10S. El grado de desecación del embrión es importante para el éxito de la inyección para evitar fugas y mantener la viabilidad embriones especialmente para aquellos experimentos que requieren un largo período de tiempo o cuando elevar transformantes después de la inyección. Sin embargo, no existe una regla de oro para exactamente el tiempo desecación se requiere. Esto varía de experimento a experimento y depende de la cantidad de la solución inyectada y la humedad del ambiente de trabajo.
Las funciones de una proteína específica de interés pueden ser manipulados por microinyección de inhibidores específicos de la proteína, mono o poli-clonales anticuerpos contra una proteína específica, el ARN mensajero o péptidos marcados con fluorescencia en fondos de tipo salvaje o de mutación genética. Muchas de estas líneas mutantes o GFP-etiquetados líneas transgénicas son públicamente avhay una disponible de Drosophila centros de población y la mayoría de ellos están listados en Flybase ( http://flybase.org/~~V ) y se pueden buscar en línea.
No tenemos nada que revelar.
Este protocolo fue desarrollado gracias a una subvención del Wellcome Trust. Agradecemos a la Sra. Maureen Sinclair para el mantenimiento de las poblaciones de moscas y preparar la comida con mosca en los últimos años. También nos gustaría dar las gracias al Sr. Michael Aitchison por su ayuda y apoyo técnico en el desarrollo de este protocolo.
Equipo esencial y reactivos:
Sistema de imagen confocal: El sistema de imagen se describe en este protocolo es una Leica TCS SP2 de escaneo láser confocal sistema de microscopio invertido. El método descrito es también adecuado tal vez con algunas modificaciones menores para otros sistemas de imagen.
Microscopio de disección: Utilizamos un SZX7 Olympus con DF PLAPO 1X-4 de la lente.
Aguja extractor: Flaming / marrón micropipeta extractor (Instrumento de Sutter, Modelo: P-97).
Sistema de microinyección: Un sistema de microinyección Eppendorf se describe pero cualquier otro sistema apropiado puede ser utilizado.
Fly distribuidor de alimentos: Jencons Scientific Ltd bomba peristáltica.
Reactivos:
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Ingredientes | Pesos | Recursos | Lote N º |
La harina de maíz | 100,0 g | SUMA, el Reino Unido | |
El azúcar moreno | 50,0 g | Billington, Reino Unido | |
La levadura seca | 25,0 g | DCL LEVADURA Ltd. del Reino Unido | |
Agar | 12,5 g | Fisher Scientific | 106556 |
El ácido sórbico | 0,4 g | BDH, VWR International Ltd. del Reino Unido | 8829310 |
El ácido benzoico | 2,9 g | Fisher Scientific | 1019599 |
Nipagin (Metil-4-Hydro xybenzoate) | 0,9 g | BDH, VWR International Ltd. del Reino Unido | K35969015 |
H 2 O hasta 1 litro |
Holocarbon 700 y 27 aceites comprados en Sigma.
De levadura seca: Allison Thomas, del Reino Unido.
Preparación de la cola de heptano: Tomar alrededor de 1,5 metros de cinta adhesiva de doble cara, lo puso en un tubo de 15 ml Falcon con 5 ml de heptano y gire durante 3-5 horas o toda la noche. Después de ese tiempo se dividió en 4 partes alícuotas iguales en tubos de 1,5 ml de centrífuga eppendorf y centrifugar durante 5 minutos a una velocidad rápida en una centrífuga de mesa para eliminar los residuos. Guarde la solución del pegamento heptano en un matraz aforado de 10 ml y guardar para su uso. La fuerza pegamento variará de acuerdo con la concentración y las cantidades de la cola utilizada. Normalmente, la cola más fina produce menos fondo ruidoso cuando se escanea con un microscopio confocal.
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