Modificación de vectores de expresión de Baculovirus para producir secretado proteínas vegetales en células de los insectos

Resumen

Aquí, presentamos los protocolos para la utilización de la célula y baculovirus proteína expresión sistema insecto para producir grandes cantidades de proteínas vegetales segregada para la cristalización de proteínas. Un vector de expresión de baculovirus se ha modificado con GP67 o insectos hemolin péptido señal para la expresión de la secreción de la proteína de planta en células de los insectos.

Resumen

Ha sido un reto para los científicos expresar proteínas recombinantes de eucariotas secretores para estudios estructurales y bioquímicos. El sistema de expresión celular de insecto baculovirus-mediada es uno de los sistemas utilizados para expresar proteínas secretoras eucarióticas recombinantes con algunas modificaciones poste-de translación. Las proteínas secretoras que deba canalizarse a través de las vías secretoras de glycosylation de la proteína, formación de enlaces disulfuro y otras modificaciones poste-de translación. Para mejorar la expresión de células de insectos existentes de proteínas secretoras de vegetales, un vector de expresión de baculovirus se modifica por la adición de un GP67 o una secuencia de péptido señal hemolin entre el promotor y la clonación de múltiples sitios. Este sistema de nuevo diseño vector modificado había producido con éxito un alto rendimiento de proteínas de receptor soluble recombinante planta secretada de Arabidopsis thaliana. Dos de las proteínas de la planta expresada, los dominios extracelulares de los receptores de membrana plasmática de Arabidopsis TDR y PRK3, se cristalizaron para estudios cristalográficos de rayos x. El sistema vector modificado es una herramienta mejorada que potencialmente puede ser utilizada para la expresión de proteínas recombinantes secretores en el reino animal también.

Introducción

Es imprescindible para un laboratorio de investigación ser capaces de producir grandes cantidades de proteínas recombinantes homogéneas para caracterizaciones bioquímicas y biofísicas, especialmente para estudios cristalográficos de rayos x. Existen muchos sistemas de expresión heteróloga bien establecido como Escherichia coli, levaduras, células de los insectos, células de mamíferos, células de la planta, etc. entre ellos, el sistema de expresión celular de insecto baculovirus-mediada es uno de los más usan técnicas para producir grandes cantidades de proteínas eucarióticas recombinantes gran tamaño estructural plegadas para la cristalización de proteínas¹.

Los vectores de expresión del sistema de expresión de baculovirus se han diseñado para contener una fuerte polyhedrin o promotor de P10 para producir un alto rendimiento de proteínas recombinantes intracelular^2,3. Para hacer un baculovirus recombinante, se clona el gen de interés en un insecto vector que contiene el locus polyhedrin (polh) del genoma de nucleopolyhedroviral múltiple de Autographa californica . La construcción resultante luego se ordena y se verifica su marco correcto de lectura abierta (ORF). La construcción correcta es entonces introducida en la célula de insecto huésped a través del proceso de transfección. El gen de interés se inserta en el genoma viral por recombinación homóloga. Este evento resulta en la producción del genoma viral recombinante, que luego se replica en producir recombinantes reverdeció de partículas de virus¹.

Las células de los insectos que comúnmente se utilizan en el sistema de expresión son Sf9 y cinco celdas (Hi5). Las células SF9 son un aislamiento clonal de Sf21, derivado de las células ováricas pupas de Spodoptera frugiperda, y células de Hi5 un aislamiento clonal derivado de la parental Trichoplusia ni ovárico de la célula línea TN-368^4,5. Transfecciones Co, amplificación virus y ensayos de placa se llevan a cabo en las células Sf9, mientras que las células Hi5 típicamente se seleccionan para producir mayores cantidades de proteínas recombinantes⁶. Cabe destacar que las células de Hi5 no son adecuadas para la generación y amplificación de progenie del virus debido a su tendencia a producir virus mutantes. Tradicionalmente, un rango de temperatura de 25-30 ° C se considera buena para el cultivo de células de los insectos. Sin embargo, se ha reportado que 27-28 ° C es la temperatura óptima para el insecto célula crecimiento e infección^7,8.

La introducción de una secuencia de señal fuerte precede el gene es necesario para la alta expresión de las proteínas secretadas. La secuencia de la señal guía eficientemente la proteína recombinante traducida en el retículo endoplásmico para la secreción de proteínas y modificaciones postraduccionales necesarias para el plegamiento correcto y estabilización³. Secuencias de péptidos de señal, tales como el baculovirus envuelven proteína GP64/67, abeja melitina y otros, han sido elegidas para facilitar la expresión de proteínas recombinantes secretores en los sistemas de expresión de baculovirus-mediada³. La introducción del péptido señal de GP67 ha demostrado para mejorar el rendimiento de la expresión de una proteína recombinante secretada, en comparación con usando el péptido señal intrínseca del objetivo gen⁹. Hemolin es una proteína de la hemolinfa de la polilla de seda gigante Hyalophora cecropia, inducida por bacterias infección¹⁰. Debido al relativamente alto nivel de expresión inducida, puede utilizarse la secuencia del péptido de señal del gen para mediar en la expresión de la secreción de proteínas recombinantes en el sistema de células de insecto baculovirus.

La a. thaliana Tracheary elementos diferenciación inhibidor Factor Receptor (TDR) y el polen del Receptor quinasa 3 (PRK3), ambos pertenecen a la Leucine-rich Repeat Receptor-como Kinase (LRR-RLK) familia de proteínas^11,12 . Para estudiar la estructura y la función de esta familia de receptores proteínas vegetales, así como para facilitar la caracterización bioquímica y estructural de otras proteínas vegetales secretada, se ha modificado el sistema de expresión de baculovirus-insecto célula a mejorar el rendimiento de producción y calidad de proteína. Los dominios extracelulares de TDR y PRK3 se han expresado con éxito mediante dos vectores de expresión modificada en el sistema de expresión de células de insecto baculovirus. Tanto los dominios extracelulares de proteínas TDR y PRK3 han se ha cristalizado. Este artículo divulga la expresión y purificación de grandes cantidades de proteínas recombinantes secretadas planta con vectores de expresión de baculovirus modificados dos incorporando un GP67 o una secuencia de señal hemolin entre el promotor y múltiples sitios.

Protocolo

Nota: Se utiliza un sistema de células de insecto/baculovirus con vectores de expresión modificada de expresión de la proteína secretora de la planta y la cristalización.

1. modificación de un Vector de expresión de Baculovirus con el péptido de señal GP67 para la expresión de la secreción de la proteína de planta

1. Sintetizar un fragmento de ADN que contiene una 5' BglII corte sitio¹³, la secuencia de señal GP67 secreción y un sitio de clonación múltiple con NotI, BamHI, EcoRI, StuI, SalI, SpeI, XbaI, PstI y XhoI (figura 1A).
   Nota: Puesto que BglII y BamHI digestión DNA dio lugar a los mismos fines de adhesivo, el vector linearizado puede ligar al fragmento de ADN digerido mientras la BglII y BamHI sitios en la secuencia de ligadura recocido se mutó a una secuencia que no es divisible por BglII o BamHI¹⁴.
2. Resumen 4 μg del ADN con BglII y XhoI y 4 μg de un vector de expresión ADN con BamHI y XhoI¹⁴. Mezclar 10 unidades de cada enzima de restricción con el ADN en un 1 x de tampón de reacción concentración (acetato de potasio de 50 mM, 20 mM Tris acetato, acetato de magnesio de 10 m m y 100 μg/mL de BSA, pH 7.9 a 25 ° C) e incubar la mezcla a 37 ° C durante 4 horas.
   1. Purificar el fragmento de ADN suprimido y el vector linearizado ADN por un kit de la extracción del gel de ADN¹⁵.
3. Mezcla 100 ng lineal del vector de la DNA con 400 ng de ADN digerido del fragmento en una mezcla de reacción de la ligadura de 10 μl que contiene 1 x buffer de reacción T4 ADN ligasa (50 mM Tris HCl, 10 mM MgCl₂, ATP de 1 mM y 10 mM DTT, pH 7.5 a 25 ° C) y 5 unidades de la DNA de T4 ligasa. Incubar la mezcla de reacción a 16 ° C por 16 h.
4. Transformar 5 μl de la mezcla de ligadura en 100 μl de células competentes DH5α siguiendo un protocolo de transformación estándar y seleccione las colonias resultantes en una ampicilina-LB agar placa¹⁶. Recoger 5-10 colonias y crecimiento de cada colonia en 2 mL de medio LB con ampicilina de μg/mL 100 a 220 rpm y 37 ° C en un incubador de agitación por 16 h.
5. Extraer cada ADN plásmido con una DNA miniprep kit¹⁷ y confirmar los clones por la secuencia de la DNA con una cartilla de AGTATTTTACTGTTTTCGTAACAG.
6. Amplificar por PCR el gen de a. thaliana TDR fragmento codificación residuos 30-642 de un gen sintético de TDR construir (hacia delante la cartilla: CATG GCGGCCGC CTCAAGTTTTCACCTCAACTCTTGTC, primer revés: GC GGATCC CTA GTG GTG ATG GTG GTG GTG ACCGTCTATATCTGCATTTCCGGC). Amplificar el ADN de 30 ciclos en un tampón de reacción de polimerasa de la DNA que contiene una mezcla de dNTP de 0,5 mM, cebadores de μm 0,2, 0,1 μg de plantilla de ADN, 0,4 mM MgCl₂y 1 unidad de reacción de polimerasa de la DNA.
   1. Para los pasos del ciclo de PCR, establecer la desnaturalización inicial a 95 ° C por 30 s y luego de 30 ciclos de desnaturalización a 95 ° C por 30 s, recocido a 55 ° C para 30 s y extensión a 72 ° C por 1 min, con una extensión final a 72 ° C durante 5 minutos.
7. Digerir el fragmento de la polimerización en cadena y el vector modificado con enzimas de restricción endonucleasa NotI y BamHI. Ligar el fragmento del gen con el vector linearizado. Mezcla 100 ng lineal del vector de la DNA con 400 ng de ADN digerido del fragmento en una mezcla de reacción de la ligadura de 10 μl con T4 ADN ligasa reacción tampón y 5 unidades de ligase de la DNA de T4. Incubar la mezcla de reacción a 16 ° C por 16 h.
8. Transformar 5 μl de la mezcla de ligadura en 100 μl de células competentes DH5α siguiendo un protocolo de transformación estándar y seleccione las colonias resultantes en una ampicilina-LB agar placa¹⁶. Para confirmar los clones correcta secuencia de la DNA.

2. modificación de un Vector de expresión de Baculovirus con el péptido de señal Hemolin insectos para la expresión de la secreción de la proteína de planta

1. Sintetizar un fragmento de ADN que contiene una 5' BglII corte sitio¹³, la secuencia de la señal de secreción de insectos hemolin y un sitio de clonación múltiple con NotI, BamHI, EcoRI, StuI, SalI, SpeI, XbaI, PstI y XhoI (figura 1B).
2. Resumen 4 μg del ADN con BglII y XhoI y 4 μg de un vector de expresión ADN con BamHI y XhoI¹⁴. Mezclar 10 unidades de cada enzima de restricción con el ADN en un 1 x de tampón de reacción concentración (acetato de potasio de 50 mM, 20 mM Tris acetato, acetato de magnesio de 10 m m y 100 μg/mL de BSA, pH 7.9 a 25 ° C) e incubar la mezcla a 37 ° C durante 4 horas.
   1. Purificar el fragmento de ADN suprimido y el vector linearizado ADN por un kit de la extracción del gel de ADN¹⁵.
3. Mezcla 100 ng lineal del vector de la DNA con 400 ng de ADN digerido del fragmento en una mezcla de reacción de la ligadura de 10 μl que contiene 1 x buffer de reacción T4 ADN ligasa (50 mM Tris HCl, 10 mM MgCl₂, ATP de 1 mM y 10 mM DTT, pH 7.5 a 25 ° C) y 5 unidades de la DNA de T4 ligasa. Incubar la mezcla de reacción a 16 ° C por 16 h.
4. Transformar 5 μl de la mezcla de ligadura en 100 μl de células competentes DH5α y seleccione las colonias en una placa de agar LB ampicilina. Recoger 5-10 colonias y crecimiento de cada colonia en un medio LB de 2 mL conteniendo 100 μg/mL de ampicilina a 37 ° C en un incubador de agitación por 16 h y 220 rpm.
5. Extraer ADN de plásmido con una DNA miniprep kit¹⁷ y confirmar los clones por la secuencia de la DNA con una cartilla de AGTATTTTACTGTTTTCGTAACAG.
6. Amplificar por PCR a. thaliana polen del Receptor quinasa 3 (PRK3) fragmento genético codificación de residuos 20-237 de una construcción de genes sintética PRK3 (hacia delante la cartilla: CATG GCGGCCGC CTACAAAACGTTAGTGAATCGGAACC, primer revés: CGC GGATCC CTA GTG GTG ATG GTG GTG GTG TGAAGGTTTCTCATCGCATTCTATATTC). Amplificar el ADN de 30 ciclos en un tampón de reacción de polimerasa de la DNA que contiene una mezcla de dNTP de 0,5 mM, cebadores de μm 0,2, 0,1 μg de plantilla de ADN, 0,4 mM MgCl₂y 1 unidad de reacción de polimerasa de la DNA.
   1. Para los pasos del ciclo de PCR, establecer la desnaturalización inicial a 95 ° C por 30 s y luego de 30 ciclos de desnaturalización a 95 ° C por 30 s, recocido a 55 ° C para 30 s y extensión a 72 ° C por 30 s cada ciclo y la extensión final a 72 ° C durante 5 minutos.
7. Digerir el fragmento de la polimerización en cadena y el vector modificado con enzimas de restricción endonucleasa NotI y BamHI. Ligar el fragmento del gen con el vector linearizado. Mezcla 100 ng lineal del vector de la DNA con 400 ng de ADN digerido del fragmento en una mezcla de reacción de la ligadura de 10 μl con T4 ADN ligasa reacción tampón y 5 unidades de ligase de la DNA de T4. Incubar la mezcla de reacción a 16 ° C por 16 h.
8. Transformar 5 μl de la mezcla de ligadura en 100 μl de células competentes DH5α siguiendo un protocolo de transformación estándar y seleccione las colonias resultantes en una ampicilina-LB agar placa¹⁶. Para confirmar los clones correcta secuencia de la DNA.

3. producción y amplificación de Baculovirus construye albergando el casete de expresión de proteínas recombinantes

1. Uso 100 ng de plásmido construir transformar 40 μl de células competentes DH10Bac siguiendo el protocolo del sistema de expresión de baculovirus¹. Incubar las placas a 37 ° C durante 48 h de transformación.
2. Recoger dos colonias blancas de cada placa de transformación, inocular cada colonia en 2 mL de medio LB con kanamicina 50 de μg/mL, 7 gentamicina μg/mL y 10 μg/mL tetraciclina. Seguir el protocolo de los baculovirus expression sistema¹ para extraer y verificar la bacmid de ADN. Alícuota cada DNA en dos tubos con 20 μl cada una y almacenar los tubos a-20 ° C.
   Nota: Los pasos siguientes requieren una operación aséptica.
3. Crecer una monocapa de células Sf9 en los antibióticos de penicilina-estreptomicina de medios de cultivo con 10% suero bovino fetal (FBS) y 100 μg/mL (o 100 I.U./mL) a 27 ° C a 80% de confluencia en una placa de 6 pozos. Estimar el porcentaje de confluencia basado en el porcentaje de área cubierta en la placa de cultivo de tejidos.
4. Preparar las siguientes soluciones en dos tubos de centrífuga de 1,5 mL estéril.
   1. Tubo 1: Para cada transfección, diluir 20 μl de ADN bacmid en 100 μl de medio sin suplemento de cultivo de celular Sf9 sin antibióticos. Mezclar suavemente la dilución por sacudiendo el lado del tubo.
   2. Tubo 2: Para cada transfección, diluir 8 μl de reactivo de transfección de lípidos en 100 μl de medio sin suplemento de cultivo de celular Sf9 sin antibióticos. Homogeneizar la dilución transfiriendo hacia arriba y hacia abajo para x 6.
5. Combinar las dos soluciones, mezclar suavemente transfiriendo lentamente hacia arriba y hacia abajo para x 3 e incubar por 20-40 min a temperatura ambiente.
6. Lave cada pocillo de la monocapa Sf9 células x 2 con 3 mL de medio sin suplemento de cultivo de celular Sf9 sin antibióticos. Para cada transfección, agregar 0,8 mL de medio sin suplemento de cultivo de celular Sf9 sin antibióticos a cada tubo que contiene la mezcla de lípidos-DNA. Mezclar suavemente el contenido de los tubos mediante pipeteo lentamente hacia arriba y hacia abajo para x 3. Aspire los medios de lavado de las placas y las muestras con la mezcla de la transfección del recubrimiento.
7. Después de la adición de la mezcla de transfección, Incube la placa transfected de 5 horas a 27 ° C. Sustituir los medios de comunicación de la transfección con el completo Sf9 medio de cultivo celular que contenga 10% FBS y 100 μg/mL (o 100 I.U./mL) antibióticos de penicilina-estreptomicina. Incube la placa transfected a 27 ° C por 4 d.
8. Cosecha y amplificar el baculovirus recombinante.
   1. Recoger el sobrenadante de la placa infectada en un tubo cónico de 15 mL estéril después de 4 d de incubación. Girar el sobrenadante a 1010 x g durante 5 min eliminar los restos celulares. Descarte el precipitado y decantar el sobrenadante a un tubo limpio y almacenar a 4 ° C hasta por 1 año.
      Nota: Este es el virus de P0. Puede ser alícuotas y almacenados a-80 ° C durante un tiempo.
   2. Para amplificar cada virus recombinante, crecer una monocapa de células Sf9 en una placa de 150 mm a 80% de confluencia. Aspire los medios de comunicación de la placa, añadir 2 mL del virus P0 el adherente de las células a la placa e Incube la placa durante 1 hora en un incubador de 27 ° C. Roca de la placa cada 15 minutos para mezclar el medio con las células.
      1. Añadir 25 mL de medios de la gracia completa que contiene 10% FBS y 100 μg/mL (o 100 I.U./mL) antibióticos de penicilina-estreptomicina. Incube la placa para 3 d en un incubador de 27 ° C para obtener el virus paso de P1.
   3. Recoger el sobrenadante de la placa infectada en un tubo cónico estéril de 50 mL y centrifugado a 1010 x g durante 5 min eliminar los restos celulares. Decantar el sobrenadante a un tubo limpio y almacenar a 4 ° C hasta por 1 año.
      Nota: El virus P1 puede alícuotas y almacenados a-80 ° C durante un tiempo.
   4. Para amplificar el virus desde P1 a P2 paso, crecer una monocapa de células Sf9 en una placa de 150 mm a 90% de confluencia, aspirar los medios de comunicación de la placa, agregar 2 mL del virus P1 a la placa e incubar durante 1 h en un incubador de 27 ° C.
   5. Repita los pasos 3.8.2 y 3.8.3 para obtener los pasajes P2 y P3 de los virus. No guarde el virus P3 por más de 2 meses.

4. proteína expresión, purificación y NiNTA, cristalización

1. 1 L de Hi5 células de los insectos en los antibióticos de penicilina-estreptomicina de medios de cultivo con 100 μg/mL (o 100 I.U./mL) a una densidad de 2 x 10⁶ a 100 rpm en un agitador incubador de 27 ° C de la cultura. Desactivación de las células a 570 x g durante 5 min, decantar el sobrenadante, resuspender las células en 20 mL de los virus recién producidos de P3 y mantenerlo a temperatura ambiente por 1 h. Agite suavemente la botella de vuelta para resuspender las células 1 x cada 15 min.
2. Transferir las células a 1 L de medio de cultivo con 100 μg/mL (o 100 I.U./mL) antibióticos de penicilina-estreptomicina, cultura de las células a 100 rpm en una coctelera de la incubadora de 27 ° C por 72 h. vuelta hacia abajo de las células a 1.010 x g durante 5 min y recoger el sobrenadante.
3. Tiras indicadoras de pH de uso para ajustar el pH del sobrenadante a 8.0 mediante la adición de 0.1 M HCl o 0,1 M NaOH y añadir el tampón de unión a una concentración final, conteniendo 20 mM de tampón Tris pH 8.0, 100 mM NaCl y el imidazol de 5 mM. Añadir una cierta cantidad de resina NiNTA (10-40 mL) basada en el rendimiento estimado de la proteína recombinante expresada su etiquetado.
   1. Mezcle la solución en una agitación magnética con velocidad baja a 4 ° C por 1 h. lavar la resina y eluir la proteína encuadernada siguiendo el estándar de protocolo de purificación de NiNTA¹⁸.
4. Conforme la proteína purificada a intercambio iónico y cromatografía de filtración, así como otros métodos de purificación de proteínas, para obtener una muestra homogénea del gel.
   Nota: Para el ectodominio TDR, 20 mM Tris, pH 8, 100 mM NaCl fueron utilizados como búfer de filtración de gel. Para PRK3 ectodominio, bis-20 mM de Tris, pH 6, 100 mM NaCl fueron utilizados como el búfer de filtración recomendado: gel.

Resultados

Como se muestra en la figura 1, se utilizaron dos vectores de expresión de baculovirus modificados pFastBac1 para expresar las proteínas secretadas con la GP67 o la secuencia de señal hemolin para reemplazar la secuencia de la señal intrínseca de la gene de la blanco. GP67 viral y los genes de insectos hemolin han demostrado tener niveles de expresión de alta secreción en las células. Se espera que las proteínas de fusión con cualquiera de estas dos...

Discusión

Dada la diversidad de tamaño y estabilidad de los miles de proteínas presentes en los sistemas biológicos, a menudo es empírica para la investigación de un laboratorio para decidir qué sistema de expresión heteróloga debe elegirse para la expresión de una proteína específica. El sistema de expresión de e. coli es a menudo la primera opción para la expresión de la proteína debido al corto ciclo de vida de las bacterias, bajo costos de los medios de cultivo y la relativa facilidad para escalar

Materiales

Name	Company	Catalog Number	Comments
Incubator shaker	VWR	Model Excella E25	27 oC
Incubator	VWR	Model 2005	27 oC
Centrifuge	BECKMAN	Model J-6	with a swing bucket rotor
Herculase II Fusion DNA Polymerase	Agilent	600677-51	For PCR amplification of DNA
Thermal Cycler	BIO-RAD	Model C1000 Touch	For PCR amplification of DNA
Incubator shaker	New Brunswick Scientific	Model I 24	For growing baceria culture
Customer DNA synthesis	GENSCRIPT
BamHI (HF)	New England Biolabs	R3136S	Restriction Endonuclease
BglII	New England Biolabs	R0144S	Restriction Endonuclease
NotI (HF)	New England Biolabs	R3189S	Restriction Endonuclease
XhoI	New England Biolabs	R0146S	Restriction Endonuclease
T4 DNA ligase	New England Biolabs	M0202T	DNA ligation
QIAquick Gel Extraction Kit	Qiagen	28704	DNA purification from Agorase gel
QIAprep Spin Miniprep Kit	Qiagen	27104	Plasmid DNA purification from bacteria culture
Agarose	Thermo Fisher Scientific	15510-019	For DNA gel electropherosis
MAX Efficiency DH5α competen cell	Invitrogen	18-258-012	For transformation of DNA ligation mixture
Lennox L LB Broth	Research Product International Corp.	L24066-5000.0	For making bacteria culture
Ampicillin sodium salt	Thermo Fisher Scientific	11593-019	Antibiotics
Kanamycin Sulfate	Thermo Fisher Scientific	15160-054	Antibiotics
Tetracycline	Thermo Fisher Scientific	64-75-5	Antibiotics
Gentamicin	Thermo Fisher Scientific	15710-064	Antibiotics
MAX Efficiency DH10Bac competent cells	Thermo Fisher Scientific	10361-012	For making bacmid DNA
S.O.C. Medium	Thermo Fisher Scientific	15544-034	For DNA transformation
CellFECTIN II Reagent	Thermo Fisher Scientific	10362-101	Insect cell transfection reagent
Bac-to-Bac Expression System	Thermo Fisher Scientific	10359-016	Baculovirus-insect cells expression kit
Bluo-gal	Thermo Fisher Scientific	15519-028	For isolation of recominant Bacmid DNA
IPTG	Thermo Fisher Scientific	15529-019	For isolation of recominant Bacmid DNA
pFastBac1	Thermo Fisher Scientific	10360014	Baculorirus expression vector
Sf9 cells	Thermo Fisher Scientific	11496015	Sf9 monolayer cells
Hi5 cells	Thermo Fisher Scientific	B85502	High Five insect cells
Grace’s insect medium, unsupplemented	Thermo Fisher Scientific	11595030	Sf9 cell transfection minimum medium
Grace’s insect medium, supplemented	Thermo Fisher Scientific	11605102	Sf9 monolayer cell culture complete medium
Sf-900 II SFM	Thermo Fisher Scientific	10902104	Sf9 suspension cell culture medium without FBS
Express Five SFM	Thermo Fisher Scientific	10486025	Hi5 cell culture medium
Penicillin-Streptomycin	Thermo Fisher Scientific	15140122	100 ml (10,000 I.U./ml)
L-Glutamine (200 mM)	Thermo Fisher Scientific	25030081	100 ml
FBS Certified	Thermo Fisher Scientific	16000-044	500 ml
6-well plates	Thermo Fisher Scientific	08-772-1B	Flat-bottom
150 mm plates	Thermo Fisher Scientific	353025	100/case
1.5 ml Microcentrifuge Tubes	USA Scientific	1415-2500	500 tubes/bag
15 ml conical screw cap centrifuge tubes	USA Scientific	1475-0511	25 tubes/bag
50 ml conical screw cap centrifuge tubes	USA Scientific	1500-1211	25 tubes/bag
Ni-NTA Superflow	Qiagen	30430	NiNTA resin
pH-indicator strips	EMD Millipore Corporation	1.09535.0001	pH 0 - 14