식물 단백질 곤충 세포에서 분 비 생산 잠재 식 벡터를 수정

요약

여기, 선물이 곤충 세포 및 잠재 단백질 식 시스템 단백질 결정 화에 대 한 분 비 하는 식물 단백질의 대량 생산에 활용에 대 한 프로토콜. 잠재 식 벡터 GP67 또는 곤충 hemolin 신호 펩 티 드 식물 곤충 세포에서 단백질 분 비 식에 대 한 수정 되었습니다.

초록

그것은 구조 및 생화학 연구 재조합 분 비 진 핵 단백질을 표현 하는 과학자에 대 한 도전이 되었습니다. 잠재 중재 곤충 세포 표현 시스템 일부 포스트 번역 상 수정 재조합 진 핵 세포 분 비 단백질을 표현 하는 데 사용 하는 시스템 중 하나입니다. 분 비 단백질 단백질 glycosylation, 이황화 결합 형성, 및 다른 포스트 번역 상 수정 분 비 경로 통해 라우팅할 필요가 있다. 를 개선 하기 위해 분 비 식물 단백질의 기존 곤충 세포 표현 잠재 식 벡터 중 하나는 GP67의 추가 또는 발기인 및 다중 복제 사이트 간에 hemolin 신호 펩 티 드 순서에 의해 수정 됩니다. 이 새롭게 설계 된 수정된 벡터 시스템은 성공적으로 애기 thaliana의 수용 성 재조합 분 비 식물 수용 체 단백질의 높은 수익률을 생산. 두 애기 TDR 및 PRK3 원형질 막 수용 체의 세포 외 도메인 표현된 식물 단백질의 x 선 결정학 연구 화 시키는 했다. 수정 된 벡터 시스템 뿐만 아니라 동물의 왕국에 있는 재조합 형 분 비 단백질의 표정을 위해 잠재적으로 이용 될 수 있는 향상 된 도구입니다.

서문

특히 x 선 결정학 연구에 대 한 생화학 및 생물 characterizations 위해 균질 재조합 단백질의 대량 생산의 수 연구 실험실을 위한 필수적입니다. 대장균, 효 모, 곤충 세포, 포유류 세포, 식물 세포, 등 그들의 사이에서 많은 확고 분리 식 시스템, 잠재 중재 곤충 세포 표현 시스템은 가장 중 일반적으로 구조적으로 접힌된 대형 재조합 진 핵 단백질의 단백질 결정 화¹대량 생산 기법을 사용.

잠재 식 시스템의 식 벡터는 강한 polyhedrin 또는 재조합 세포내 단백질^2,3의 높은 수익률을 생산 하는 P10 발기인을 포함 하도록 설계 되었습니다. 재조합 잠재 수 있도록, 관심사의 유전자 Autographa californica nucleopolyhedroviral 멀티 게놈의 polyhedrin (polh) 로커 스를 포함 하는 곤충 벡터에 복제 됩니다. 결과 구문 다음 시퀀스 및 올바른 열려있는 독서 프레임 (ORF) 확인. 올바른 구문 다음 transfection의 과정을 통해 호스트 곤충 세포에 도입 되었습니다. 관심사의 유전자는 상 동 재조합에 의해 바이러스 성 게놈에 삽입 됩니다. 이 이벤트는 재조합 생산 하는 후 복제 바이러스 입자¹언약궤 재조합 형 바이러스 성 게놈의 생산에서 발생 합니다.

곤충 세포 표현 시스템에서 가장 일반적으로 사용 되는 Sf9 및 높은 5 (Hi5) 세포 이다. Sf9 세포는 Sf21, Spodoptera frugiperda의 번데기 난소 세포에서 파생 된의 클론 분리 되며 Hi5 세포 클론 분리는 부모의 Trichoplusia ni 난소 세포 선 테네시-368^4,5에서 파생 된. Hi5 셀 일반적으로 재조합 단백질⁶의 더 높은 양을 생성을 선택 하는 동안 공동 transfections, 바이러스 증폭 및 상 패 분석 실험, Sf9 세포에 지휘 된다. Hi5 세포는 돌연변이 바이러스를 생산 하는 그들의 추세 때문에 세대 및 바이러스 progenies의 증폭에 적합 하지 않습니다 지적 가치가 있다. 전통적으로, 25-30 ° C의 온도 범위는 곤충 세포의 경작에 좋은 것으로 간주 됩니다. 그러나, 그것은 27-28 ° C 곤충 세포 성장과 감염^7,8에 대 한 최적의 온도 보고 되었습니다.

강한 신호 순서 선행 하는 유전자의 소개 secreted 단백질의 높은 식이 필요 합니다. 신호 순서 효율적으로 단백질 분 비와 포스트 번역 상 수정 적절 한 접는 및 안정화³에 필요한에 대 한 바인딩과 그물에 번역 된 재조합 단백질을 안내 것입니다. 신호 펩 티 드 순서는 잠재 봉투 단백질 GP64/67, 꿀벌 melittin, 그리고 다른 사람, 같이 잠재 중재 식 시스템³분 비 재조합 형 단백질의 표정을 촉진 하기 위해 선택 되었습니다. GP67의 신호 펩 티 드의 도입 대상 유전자⁹의 내장 신호 펩 티 드를 사용 하 여 비교 secreted 재조합 단백질의 식 수율을 개선 하기 위해 표시 되었습니다. Hemolin는 거 대 한 실크 나 방 Hyalophora cecropia, 박테리아 감염¹⁰시 유도의 hemolymph 단백질 이다. 유도 식의 상대적으로 높은 수준으로 인해 유전자의 신호 펩 티 드 순서 잠재 곤충 세포 시스템에서 재조합 단백질의 분 비 식 중재에 사용할 수 있습니다.

A. thaliana Tracheary 요소 차별화 금지 요인 수용 체 (TDR)와 꽃가루 수용 체 키 니 아 제 3 (PRK3) 둘 다 단백질^{11,12의 식물 신 부유한 반복 같은 수용 체 키 니 아 제 (LRR-RLK) 가족에 속하는} . 구조와 공장 수용 체 단백질의, 뿐만 아니라 다른 식물 분 비 단백질의 구조 및 생 화 확 적인 특성 있을이 가족의 기능을 공부 하기 위하여 잠재 곤충 세포 표현 시스템 수정 되었습니다. 단백질의 품질 및 생산 수율을 향상 시킵니다. TDR 및 PRK3의 세포 외 도메인 성공적으로 두 개의 수정된 식 벡터를 사용 하 여 잠재 곤충 세포 표현 시스템에서 표현 되었습니다. TDR 및 PRK3 단백질의 extracellular 도메인 모두 화 시키는 되는. 이 문서는 GP67 또는 발기인 및 여러 복제 사이 hemolin 신호 순서를 통합 하 여 표현과 많은 양의 두 수정된 잠재 식 벡터와 재조합 분 비 식물 단백질의 정화를 보고 사이트입니다.

프로토콜

참고: 분 비 식물 단백질 표정 및 결정 화에 대 한 수정 된 식 벡터와 곤충 셀/잠재 시스템 사용 됩니다.

1. 식물 단백질 분 비 식 GP67 신호 펩 티 드와 잠재 식 벡터의 수정

1. 5' BglII 절단 사이트¹³, GP67 분 비 신호 순서, 노트, BamHI, EcoRI, StuI, 사리, SpeI, XbaI, PstI, 및 XhoI (그림 1A)의 다중 복제 사이트를 포함 하는 DNA 파편을 음성 합성.
   참고: BglII와 BamHI 소화 이후 같은 접착제 끝 귀착되 었 다 DNA, 선형화 벡터 단련된 결 찰 순서에 BglII 및 BamHI 사이트 여 쪼갤은 시퀀스를 변경 될 것입니다 하는 동안 소화 DNA 단편에 선 수 있습니다. BglII 또는 BamHI¹⁴.
2. BglII와 XhoI, DNA의 다이제스트 4 µ g 그리고 BamHI 및 XhoI¹⁴는 식 벡터 DNA의 4 µ g. Dna 농도 반응 버퍼 (50mm 칼륨 아세테이트, 20 mM 트리 아세테이트, 10 m m 마그네슘 아세테이트, 및 100 µ g/mL BSA, pH 7.9 25 ° C에서) x 1에 각 제한 효소의 10 단위를 혼합 하 고 37 ° C 4 h에서 혼합물을 품 어.
   1. 삭제 DNA 파편 및 선형화 벡터 DNA는 DNA 젤 추출 키트¹⁵정화.
3. 400 선형화 벡터 DNA의 믹스 100 ng ng 소화 DNA의 x T4 DNA 리가 반응 버퍼 (50 mM Tris HCl, 10 m m MgCl₂, 1 ATP, 그리고 10 mM DTT, pH 7.5 25 ° C에서)와 T4 DNA의 5 대 1을 포함 하는 10 µ L 결 찰 반응 혼합물에서 조각 리가입니다. 16 h 16 ° C에서 반응 혼합물을 품 어.
4. 100 µ L DH5α 유능한 세포 표준 변환 프로토콜을 다음의 결 찰 혼합물의 5 µ L를 변환 하 고 암 피 실린-파운드 한 접시¹⁶에 결과 식민지를 선택 합니다. 5-10 식민지를 선택 하 고 220 rpm 및 16 h 떨고 인큐베이터에서 37 ° C에서 100 µ g/mL 암 피 실린 포함 된 파운드 매체의 2 mL에 각 식민지를 성장.
5. DNA miniprep 키트¹⁷ 각 플라스 미드 DNA를 추출 하 고 AGTATTTTACTGTTTTCGTAACAG 뇌관 DNA 연속 클론을 확인.
6. PCR 증폭 A. thaliana TDR 유전자 조각 인코딩 잔류물 구성 합성 TDR 유전자에서 30-642 (뇌관을 앞으로: CATG GCGGCCGC CTCAAGTTTTCACCTCAACTCTTGTC, 반전 뇌관: GC GGATCC CTA GTG GTG ATG GTG GTG GTG ACCGTCTATATCTGCATTTCCGGC). 0.5 m m dNTP 믹스, 0.2 µ M 뇌관, 템플릿 DNA의 0.1 µ g, 0.4 m m MgCl₂및 DNA 중 합 효소의 1 반응 단위를 포함 하는 DNA 중 합 효소 반응 버퍼에 30 사이클에 대 한 DNA를 증폭.
   1. 95 ° c 30에 대 한 초기 변성 PCR 주기 단계에 대 한 설정 들, 그리고 다음 30 주기 변성 95 ° C에서 30 s, 30 s 및 1 분에 72 ° C에서 5 분 동안 72 ° C에서 최종 확장 확장에 대 한 55 ° C에 어 닐 링.
7. PCR 파편 및 노트와 BamHI 제한 endonuclease 효소 수정된 벡터 다이제스트. 선형화 벡터와 유전자 단편 선 400 선형화 벡터 DNA의 믹스 100 ng ng 소화 DNA의 조각 T4 DNA 리가 반응 버퍼 및 T4 DNA 리가의 5 단위를 포함 하는 10 µ L 결 찰 반응 혼합물에서. 16 h 16 ° C에서 반응 혼합물을 품 어.
8. 100 µ L DH5α 유능한 세포 표준 변환 프로토콜을 다음의 결 찰 혼합물의 5 µ L를 변환 하 고 암 피 실린-파운드 한 접시¹⁶에 결과 식민지를 선택 합니다. DNA 시퀀싱에 의해 정확한 복제를 확인 합니다.

2. 식물 단백질 분 비 식 곤충 Hemolin 신호 펩 티 드와 잠재 식 벡터의 수정

1. 5' BglII 절단 사이트¹³, 곤충 hemolin 분 비 신호 순서, 노트, BamHI, EcoRI, StuI, 사리, SpeI, XbaI, PstI, 및 XhoI (그림 1B)의 다중 복제 사이트를 포함 하는 DNA 파편을 음성 합성.
2. BglII와 XhoI, DNA의 다이제스트 4 µ g 그리고 BamHI 및 XhoI¹⁴는 식 벡터 DNA의 4 µ g. Dna 농도 반응 버퍼 (50mm 칼륨 아세테이트, 20 mM 트리 아세테이트, 10 m m 마그네슘 아세테이트, 및 100 µ g/mL BSA, pH 7.9 25 ° C에서) x 1에 각 제한 효소의 10 단위를 혼합 하 고 37 ° C 4 h에서 혼합물을 품 어.
   1. 삭제 DNA 파편 및 선형화 벡터 DNA는 DNA 젤 추출 키트¹⁵정화.
3. 400 선형화 벡터 DNA의 믹스 100 ng ng 소화 DNA의 x T4 DNA 리가 반응 버퍼 (50 mM Tris HCl, 10 m m MgCl₂, 1 ATP, 그리고 10 mM DTT, pH 7.5 25 ° C에서)와 T4 DNA의 5 대 1을 포함 하는 10 µ L 결 찰 반응 혼합물에서 조각 리가입니다. 16 h 16 ° C에서 반응 혼합물을 품 어.
4. 100 µ L DH5α 유능한 세포의 결 찰 혼합물의 5 µ L를 변환 하 고 암 피 실린-파운드 한 접시에 식민지를 선택 합니다. 5-10 식민지를 선택 하 고 포함 하는 100 µ g/mL 암 피 실린 220 rpm 및 16 h 떨고 인큐베이터에서 37 ° C에서의 2 mL 파운드 매체에 각 식민지를 성장.
5. DNA miniprep 키트¹⁷ 플라스 미드 DNA를 추출 하 고 AGTATTTTACTGTTTTCGTAACAG 뇌관 DNA 연속 클론을 확인 합니다.
6. PCR 증폭를 A. thaliana 꽃가루 수용 체 키 니 아 제 3 (PRK3) 유전자 조각 잔류물 20-237 합성 PRK3 유전자 구성에서 인코딩 (뇌관을 앞으로: CATG GCGGCCGC CTACAAAACGTTAGTGAATCGGAACC, 반전 뇌관: CGC GGATCC CTA GTG GTG ATG GTG GTG GTG TGAAGGTTTCTCATCGCATTCTATATTC)입니다. 0.5 m m dNTP 믹스, 0.2 µ M 뇌관, 템플릿 DNA의 0.1 µ g, 0.4 m m MgCl₂및 DNA 중 합 효소의 1 반응 단위를 포함 하는 DNA 중 합 효소 반응 버퍼에 30 사이클에 대 한 DNA를 증폭.
   1. 초기 변성 95 ° C 30에 대 한 설정에 대 한 PCR 주기 단계 s, 그리고 다음 30 주기 변성 95 ° C에서 30 s, 30 s 및 30에 대 한 72 ° C에서 확장 하는 55 ° C에서 어 닐 링 각 주기 및 5 분 동안 72 ° C에서 마지막 확장 내에서 s.
7. PCR 파편 및 노트와 BamHI 제한 endonuclease 효소 수정된 벡터 다이제스트. 선형화 벡터와 유전자 단편 선 400 선형화 벡터 DNA의 믹스 100 ng ng 소화 DNA의 조각 T4 DNA 리가 반응 버퍼 및 T4 DNA 리가의 5 단위를 포함 하는 10 µ L 결 찰 반응 혼합물에서. 16 h 16 ° C에서 반응 혼합물을 품 어.
8. 100 µ L DH5α 유능한 세포 표준 변환 프로토콜을 다음의 결 찰 혼합물의 5 µ L를 변환 하 고 암 피 실린-파운드 한 접시¹⁶에 결과 식민지를 선택 합니다. DNA 시퀀싱에 의해 정확한 복제를 확인 합니다.

3. 생산 및 잠재의 증폭 재조합 형 단백질 표정 카세트를 품고 생성

1. DH10Bac 유능한 세포 잠재 식 시스템¹의 프로토콜을 다음의 40 µ L 변환 구문 플라스 미드의 사용 100 ng. 48 h에 대 한 37 ° C에서 변환 접시를 품 어.
2. 각 변환 플레이트에서 두 개의 백색 식민지를, 각 식민지 파운드 매체 50 µ g/mL 대, 7 µ g/mL gentamicin, 그리고 10 µ g/mL 항생물질의 2 mL에 접종. 추출 하 고 bacmid DNA 확인 잠재 식 시스템¹ 의 프로토콜을 따릅니다. Aliquot 20 µ L 각와 함께 두 개의 튜브에서 각 DNA-20 ° c.에 튜브를 저장
   참고: 다음 단계는 무 균 작업이 필요합니다.
3. 27 ° C에서 10% 태아 둔감 한 혈 청 (FBS)와 100 µ g/mL (또는 100 I.U./mL) 문화 미디어 스 페니실린 항생제에 Sf9 세포의 단층 6 잘 플레이트 합류 점 80% 성장. 합류의 조직 문화 접시에 덮여 영역 비율에 따라 백분율을 예상 하고있다.
4. 2 살 균 1.5 mL 원심 분리기 튜브에 다음과 같은 솔루션을 준비 합니다.
   1. 1 관: 각 transfection에 대 한 항생제 없이 unsupplemented Sf9 세포 배양 매체의 100 µ L로 bacmid DNA의 20 µ L 희석. 튜브의 측면을 터치 하 여 희석을 부드럽게 혼합.
   2. 2 관: 각 transfection에 대 한 항생제 없이 unsupplemented Sf9 세포 배양 매체의 100 µ L로 지질 transfection 시 약의 8 µ L를 희석. 6 x를 위아래로 pipetting으로 희석을 철저 하 게 혼합.
5. 두 솔루션을 결합, 3 x를 위아래로 천천히 pipetting으로 그들을 부드럽게 혼합 하 고 실 온에서 20-40 분 동안 그들을 품 어.
6. 각 잘 Sf9 단층의 세포 항생제 없이 unsupplemented Sf9 세포 배양 매체의 3 mL 2 x 세척. 각 transfection 지질-DNA 혼합물을 포함 하는 각 관에 항생제 없이 unsupplemented Sf9 세포 배양 매체의 0.8 mL를 추가 합니다. 3 x를 위아래로 천천히 pipetting으로 튜브의 내용의 부드럽게 혼합. Transfection 혼합 샘플을 오버레이 및 격판덮개에서 세척 미디어 발음.
7. Transfection 혼합물의 추가 후에 품 어 27 ° c.에 5 h transfected 플레이트 10 %FBS 100 µ g/mL (100 I.U./mL) 포함 된 완전 한 Sf9 세포 배양 매체 transfection 미디어 바꿉니다 항생제 페니실린 스. 4 d 27 ° C에서 transfected 접시를 품 어.
8. 수확 하 고 재조합 잠재 증폭.
   1. 외피의 4 d 후 살 균 15 mL 원뿔 튜브에 감염 된 접시의 상쾌한을 수집 합니다. 1010 x g 세포 파편을 제거 하 5 분에 상쾌한 스핀. 펠 릿을 삭제 하 고 깨끗 한 튜브에 상쾌한 가만히 따르다 4 ° C에서 최대 1 년 동안 그것을 저장.
      참고: 이것은 P0 바이러스입니다. 그것은 시간이 더 긴 기간 aliquoted 및-80 ° C에서 저장 될 수 있습니다.
   2. 각 재조합 바이러스를 증폭, 80% 합류 150 mm 접시에 Sf9 세포의 단층 성장. 접시에서 미디어를 발음 접시에 세포 부착에 P0 바이러스의 2 개 mL를 추가 하 고 품 어 27 ° C 배양 기에서 1 시간에 대 한 접시. 셀으로 매체를 혼합 판 매 15 분 바위.
      1. 10 %FBS 100 µ g/mL (100 I.U./mL)를 포함 하는 완전 한 그레이스의 미디어의 25 mL를 추가 항생제 페니실린 스. P1 통행 바이러스를 27 ° C 인큐베이터에서 3 d 격판덮개를 품 어.
   3. 살 균 50 mL 원뿔 튜브에 세포 파편을 제거 하 5 분에 대 한 1010 x g 에서 스핀 감염 된 접시의 상쾌한을 수집 합니다. 깨끗 한 튜브에 상쾌한 가만히 따르다 고 최대 1 년 동안 4 ° C에서 그것을 저장 합니다.
      참고: P1 바이러스 수 있습니다 aliquoted-80 ° C에서 저장 시간이 더 긴 기간에 대 한.
   4. P1에서 P2 통행 바이러스를 증폭, 90% 합류를 150 mm 접시에 Sf9 세포의 단층을 성장 하 고, 접시의 미디어를 발음 하 고, 접시, P1 바이러스의 2 개 mL를 추가 한 27 ° C 배양 기에서 1 시간을 위해 그것을 품 어.
   5. 3.8.2 및 3.8.3 바이러스의 P2 및 P3 구절을 단계를 반복 합니다. 2 개월 이상 P3 바이러스를 저장 하지 마십시오.

4. 단백질 식, NiNTA, 및 결정 화 정화

1. 27 ° C 배양 기 통에 100 rpm에서 2 x 10⁶ 의 밀도 100 µ g/mL (100 I.U./mL) 문화 미디어 페니실린 스 항생제에 Hi5 곤충 세포의 1 L 문화. 570 x g 5 분에 셀 아래로 회전 시키십시오, 가만히 따르다는 상쾌한, 갓 생산된 P3 바이러스의 20 mL에 셀 resuspend 그리고 1 헤 부드럽게 흔들어 각 15 분 x 1 셀 resuspend 스핀 병에 대 한 실내 온도에서 보관.
2. 와 100 µ g/mL (100 I.U./mL) 문화 미디어 스 페니실린 항생제의 1 l 셀을 전송 하 고 72 h. 스핀 1,010 x g 5 분에 셀 아래에 27 ° C 배양 기 통에 100 rpm에서 셀 문화는 상쾌한을 수집 합니다.
3. 사용 pH 지시자 0.1 M HCl 또는 0.1 M NaOH 추가 하 여 상쾌한 8.0의 pH를 조정 하 고 최종 농도, pH 8.0, 100 mM NaCl, 20 mM Tris 버퍼 및 5mm 이미에 바인딩 버퍼를 추가를 제거 합니다. 표현된 그의 태그 재조합 단백질의 예상된 수익률에 따라 NiNTA 수 지 (10-40 mL)의 일정 금액을 추가 합니다.
   1. 수 지 1 h. 워시 4 ° C에서 낮은 속도와 자기 파문에 솔루션을 혼합 하 고 표준 NiNTA 정화 프로토콜¹⁸다음 바인딩된 단백질을 elute.
4. 이온 교환 정제 단백질 주제와 젤 여과 착 색 인쇄기, 뿐만 아니라 다른 단백질 정화 방법, 균질 샘플을 얻을.
   참고: TDR ectodomain, 20 mM Tris, pH 8, 100 mM NaCl 젤 여과 버퍼로 사용 했다. PRK3 ectodomain, 20 m m 두번째-트리 스에 대 한 pH 6, 100 mM NaCl 선호 젤 여과 버퍼로 사용 되었다.

결과

그림 1에서 보듯이 두 수정된 pFastBac1 잠재 식 벡터는 GP67 또는 hemolin 신호 순서 대상 유전자의 본질적인 신호 순서를 대체 하는 secreted 단백질을 표현 하기 위해 사용 되었다. 바이러스 성 GP67와 곤충 hemolin 유전자 세포에 있는 높은 분 비 식 수준 입증 되었습니다. 융해 단백질이 두 신호 시퀀스 중 하나가 크게 분 비 식 수준 향상으로 예상 된다. 동일?...

토론

크기 및 생물 학적 시스템에 단백질의 수천의 안정성에 다양성을 감안할 때, 그것은 종종 경험적 연구에 대 한 실험실을 분리 표현 시스템을 결정 하는 특정 단백질의 표현에 대 한 선택. 대장균 식 시스템은 종종¹⁹최대 규모 박테리아, 문화 미디어, 그리고 상대적으로 완화의 저렴 한 비용의 짧은 라이프 사이클에 따른 단백질 표정에 대 한 첫 번째 선택. 그러나 60 kDa,, ?...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
Incubator shaker	VWR	Model Excella E25	27 oC
Incubator	VWR	Model 2005	27 oC
Centrifuge	BECKMAN	Model J-6	with a swing bucket rotor
Herculase II Fusion DNA Polymerase	Agilent	600677-51	For PCR amplification of DNA
Thermal Cycler	BIO-RAD	Model C1000 Touch	For PCR amplification of DNA
Incubator shaker	New Brunswick Scientific	Model I 24	For growing baceria culture
Customer DNA synthesis	GENSCRIPT
BamHI (HF)	New England Biolabs	R3136S	Restriction Endonuclease
BglII	New England Biolabs	R0144S	Restriction Endonuclease
NotI (HF)	New England Biolabs	R3189S	Restriction Endonuclease
XhoI	New England Biolabs	R0146S	Restriction Endonuclease
T4 DNA ligase	New England Biolabs	M0202T	DNA ligation
QIAquick Gel Extraction Kit	Qiagen	28704	DNA purification from Agorase gel
QIAprep Spin Miniprep Kit	Qiagen	27104	Plasmid DNA purification from bacteria culture
Agarose	Thermo Fisher Scientific	15510-019	For DNA gel electropherosis
MAX Efficiency DH5α competen cell	Invitrogen	18-258-012	For transformation of DNA ligation mixture
Lennox L LB Broth	Research Product International Corp.	L24066-5000.0	For making bacteria culture
Ampicillin sodium salt	Thermo Fisher Scientific	11593-019	Antibiotics
Kanamycin Sulfate	Thermo Fisher Scientific	15160-054	Antibiotics
Tetracycline	Thermo Fisher Scientific	64-75-5	Antibiotics
Gentamicin	Thermo Fisher Scientific	15710-064	Antibiotics
MAX Efficiency DH10Bac competent cells	Thermo Fisher Scientific	10361-012	For making bacmid DNA
S.O.C. Medium	Thermo Fisher Scientific	15544-034	For DNA transformation
CellFECTIN II Reagent	Thermo Fisher Scientific	10362-101	Insect cell transfection reagent
Bac-to-Bac Expression System	Thermo Fisher Scientific	10359-016	Baculovirus-insect cells expression kit
Bluo-gal	Thermo Fisher Scientific	15519-028	For isolation of recominant Bacmid DNA
IPTG	Thermo Fisher Scientific	15529-019	For isolation of recominant Bacmid DNA
pFastBac1	Thermo Fisher Scientific	10360014	Baculorirus expression vector
Sf9 cells	Thermo Fisher Scientific	11496015	Sf9 monolayer cells
Hi5 cells	Thermo Fisher Scientific	B85502	High Five insect cells
Grace’s insect medium, unsupplemented	Thermo Fisher Scientific	11595030	Sf9 cell transfection minimum medium
Grace’s insect medium, supplemented	Thermo Fisher Scientific	11605102	Sf9 monolayer cell culture complete medium
Sf-900 II SFM	Thermo Fisher Scientific	10902104	Sf9 suspension cell culture medium without FBS
Express Five SFM	Thermo Fisher Scientific	10486025	Hi5 cell culture medium
Penicillin-Streptomycin	Thermo Fisher Scientific	15140122	100 ml (10,000 I.U./ml)
L-Glutamine (200 mM)	Thermo Fisher Scientific	25030081	100 ml
FBS Certified	Thermo Fisher Scientific	16000-044	500 ml
6-well plates	Thermo Fisher Scientific	08-772-1B	Flat-bottom
150 mm plates	Thermo Fisher Scientific	353025	100/case
1.5 ml Microcentrifuge Tubes	USA Scientific	1415-2500	500 tubes/bag
15 ml conical screw cap centrifuge tubes	USA Scientific	1475-0511	25 tubes/bag
50 ml conical screw cap centrifuge tubes	USA Scientific	1500-1211	25 tubes/bag
Ni-NTA Superflow	Qiagen	30430	NiNTA resin
pH-indicator strips	EMD Millipore Corporation	1.09535.0001	pH 0 - 14