JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Здесь мы представляем протоколы для использования насекомых клеток и бакуловирусы системе выражения протеина для производства большого количества белков растений выделяется для кристаллизации белка. Вектор выражения бакуловирусы был изменен с GP67 или насекомое hemolin пептид сигнала для растений секрецию белков в клетках насекомых.

Аннотация

Это был вызов для ученых выразить рекомбинантных белков секреторной эукариотических структурных и биохимических исследований. Система выражение бакуловирусы опосредованной насекомых клеток является одной из систем, используемых для Экспресс рекомбинантных белков эукариотических секреторной с некоторыми столб-поступательные изменения. Выделительные протеины должны направляться через выделительные пути гликозилирования белков, формирования дисульфидными облигаций и других столб-поступательные изменения. Для улучшения существующих насекомых клеток выражение секреторной растительных белков, вектор выражения бакуловирусы изменяется путем добавления либо GP67 или hemolin сигнал пептид последовательность между промоутер и клонирование несколько сайтов. Этот недавно разработанный изменение вектора системы успешно производит высокий урожай растворимых рекомбинантных выделяется завод рецептор белков Arabidopsis thaliana. Два из выраженных растительных белков, внеклеточных доменов Arabidopsis ДТР и PRK3 плазмы мембранных рецепторов, были обобщены кристаллографических рентгеновских исследований. Изменение вектора система является усовершенствованный инструмент, который потенциально может использоваться для выражения рекомбинантных белков секреторной в животном царстве также.

Введение

Это необходимо для научно-исследовательская лаборатория быть способны производить большое количество однородных рекомбинантных белков на биохимические и биофизические характеристики, особенно для рентгеновских кристаллографических исследований. Существует много устоявшихся гетерологичных выражение систем, таких как кишечная палочка, дрожжи, насекомых клетки, клетки млекопитающих, клетки растений, и т.д. среди них, система выражение бакуловирусы опосредованной насекомых клеток является одним из самых часто используемых методов для получения большого количества структурно сложенном крупногабаритных рекомбинантных эукариотических белков для кристаллизации протеина1.

Векторы выражения бакуловирусы выражение системы разработаны для содержать сильное polyhedrin или P10 промоутер для получения высокой доходности рекомбинантных внутриклеточные белки2,3. Чтобы сделать рекомбинантных бакуловирусы, гена интереса клонируется в насекомых вектор, содержащий очагов генома multi-nucleopolyhedroviral californica Металловидка polyhedrin (polh). Результате конструкция затем упорядочивать и проверить его правильное чтение открытые рамки (ORF). Правильную конструкцию затем вводят в клетки-хозяина насекомых в процессе transfection. Гена интереса вставляется в вирусного генома гомологичная рекомбинация. Это событие приводит к производству рекомбинантных вирусного генома, который затем реплицирует производить рекомбинантные окулировкой вирусных частиц1.

Насекомое клетки, которые наиболее часто используются в системе выражения являются Sf9 и высокий пять (Hi5) клетки. Sf9 клетки являются клоновых изолировать Sf21, производные от куколки яичников клетки Spodoptera frugiperda, и Hi5 клетки клоновых изолировать, производные от родительского Trichoplusia ni яичников клеток линии TN-3684,5. Со transfections, вирус амплификации и налета анализы проводятся на Sf9 клетки, в то время как Hi5 клетки обычно выбираются производить большее количество рекомбинантных белков6. Стоит отметить, что клетки Hi5 не подходят для генерации и усиления потомков вируса из-за их тенденция производить мутантов вирусов. Традиционно в диапазоне температур 25-30 ° c считается хорошо для культивирования клеток насекомых. Однако сообщалось, что 27-28 ° C — оптимальная температура для насекомых клеток роста и инфекции7,8.

Введение сильный сигнал последовательности предыдущих ген необходима высокая экспрессия секретируемые белки. Последовательность сигнала будет эффективно руководство перевод рекомбинантных белков в эндоплазматический ретикулум секрецию белка и столб-поступательные изменения, необходимые для надлежащего складные и стабилизации3. Сигнальные последовательности пептид, такие как бакуловирусы конверт белков GP64/67, мелиттин медоносной пчелы и другие, были выбраны для облегчения выражение секреторной рекомбинантных белков в бакуловирусы опосредованной выражение систем3. Было показано, что введение сигнала пептидные GP67 улучшить доходность выражение секретируемые рекомбинантных белков, по сравнению с использованием встроенных сигнала пептид целевого гена9. Hemolin — гемолимфа белок гигантский мотылек шелка Hyalophora цекропии, индуцированных после бактерии инфекции10. Из-за относительно высокого уровня индуцированного выражения сигнал пептид последовательность гена может использоваться посредником секрецию выражение рекомбинантных белков в системе бакуловирусы насекомое клеток.

A. thaliana Tracheary элемент дифференциации тормозящий фактор рецептор (ДТР) и 3 киназы рецепторов пыльцы (PRK3), оба принадлежат к семейству растений лейцин богатые киназы рецепторов как повтор (LRR-RLK) белки11,12 . Для того, чтобы изучить структуру и функции этого семейства растений рецептор белков, а также облегчения структурных и биохимических характеристик других выделяется растительных белков, клеток бакуловирусы насекомое выражение системы была изменена для улучшение качества и производства урожайность белка. Внеклеточных доменов ДТР и PRK3 успешно были выражены с помощью двух векторов измененное выражение в системе выражение бакуловирусы насекомое клеток. Было выкристаллизовывано внеклеточных доменов ДТР и PRK3 белков. Эта статья сообщает выражение и очистки больших объемов рекомбинантных секретируемые растительных белков с двух модифицированных бакуловирусы векторы выражения путем включения GP67 либо hemolin последовательность сигнала между организатором и несколько клонирования сайтов.

протокол

Примечание: Используется система насекомых клеток/бакуловирусы с измененное выражение векторы выражения белка секреторных завод и кристаллизации.

1. модификация бакуловирусы вектора выражения с пептида GP67 сигнал для секреции белков растений

  1. Синтезировать фрагмент ДНК, содержащие 5' BglII резки сайт13, последовательность сигнала GP67 секреции и мульти Клонирование сайт с персо, BamHI, EcoRI, StuI, Сали, SpeI, XbaI, PstI и XhoI (рис. 1A).
    Примечание: Так как BglII и BamHI переваривается ДНК в результате же клей концы, линеаризованного вектора можно перевязать переваривается фрагмент ДНК, в то время как BglII и BamHI сайтов в отожженном лигирование последовательности будет мутировал в последовательность, которая не горные BglII или BamHI14.
  2. Дайджест 4 мкг ДНК с BglII и XhoI и 4 мкг дна вектора выражения с BamHI и XhoI14. Смешайте 10 единиц каждого энзима ограничения с ДНК в 1 x концентрации реакции буфера (ацетат калия 50 мм, 20 мм трис ацетат, ацетат магния 10 мм и 100 мкг/мл BSA, pH 7,9 при 25 ° C) и инкубировать смесь при 37 ° C в течение 4 ч.
    1. Очищают подакцизным фрагмент ДНК и линеаризованного вектора ДНК путем экстракции ДНК gel15.
  3. Смесь 100 нг линеаризованного вектора ДНК с 400 нг переваривается ДНК фрагмента в 10-мкл лигирование реакционной смеси, содержащие 1 x T4 ДНК лигаза реакции буфера (50 мм трис-HCl, MgCl 10 мм2, АТФ 1 мм и 10 мм DTT, pH 7.5 при 25 ° C) и 5 единиц T4 ДНК Лигаза. Инкубируйте реакционную смесь на 16 ° C для 16 h.
  4. Превратить 5 мкл лигирование смеси в 100 мкл DH5α компетентных клеток после стандартного преобразования протокол и выберите результирующий колоний на ампициллин LB агар пластины16. Возьмите 5-10 колоний и расти в каждой колонии в 2 мл LB носитель, содержащий 100 мкг/мл ампициллин 220 об/мин, 37 ° C в тряску инкубатор для 16 h.
  5. Извлечь каждый плазмида ДНК с ДНК алкалический комплект17 и подтвердить клонов секвенирования ДНК с AGTATTTTACTGTTTTCGTAACAG грунтом.
  6. ПЦР усилить гена ДТР A. thaliana фрагмент кодирования остатков 30-642 от синтетических генов ДТР построить (вперед грунтовка: CATG GCGGCCGC CTCAAGTTTTCACCTCAACTCTTGTC, обратный грунтовка: GC GGATCC CTA GTG GTG ГПТ GTG GTG GTG ACCGTCTATATCTGCATTTCCGGC). Усилить ДНК для 30 циклов в буфер реакции ДНК-полимеразы, содержащий 0,5 мм dNTP смеси, грунтовки 0,2 мкм, 0,1 µg дна шаблона, 0.4 мм MgCl2и 1 единица реакции полимеразы дна.
    1. Для шаги цикла PCR, установите первоначальный Денатурация при 95 ° C за 30 s, а затем 30 циклов Денатурация при 95 ° C за 30 сек, отжиг при температуре 55 ° C для 30 s и расширение в 72 ° C в течение 1 мин, с расширением окончательный при 72 ° C за 5 мин.
  7. Дайджест ПЦР фрагментов и изменение вектора с Ноти и BamHI Энзимы эндонуклеазы ограничения. Перевязать фрагмента гена с линеаризованного вектора. Смесь 100 нг линеаризованного вектора ДНК с 400 нг переваривается ДНК фрагмента в 10-мкл лигирование реакционной смеси, содержащие T4 ДНК лигаза реакции буфер и 5 единиц T4 ДНК лигаза. Инкубируйте реакционную смесь на 16 ° C для 16 h.
  8. Превратить 5 мкл лигирование смеси в 100 мкл DH5α компетентных клеток после стандартного преобразования протокол и выберите результирующий колоний на ампициллин LB агар пластины16. Подтверждения правильного клоны секвенирования ДНК.

2. модификация бакуловирусы вектора выражения с насекомых Hemolin сигнал пептидные для секреции белков растений

  1. Синтезировать фрагмент ДНК, содержащие 5' BglII резки сайт13, последовательность сигнала насекомых hemolin секреции и мульти Клонирование сайт с персо, BamHI, EcoRI, StuI, Сали, SpeI, XbaI, PstI и XhoI (рис. 1B).
  2. Дайджест 4 мкг ДНК с BglII и XhoI и 4 мкг дна вектора выражения с BamHI и XhoI14. Смешайте 10 единиц каждого энзима ограничения с ДНК в 1 x концентрации реакции буфера (ацетат калия 50 мм, 20 мм трис ацетат, ацетат магния 10 мм и 100 мкг/мл BSA, pH 7,9 при 25 ° C) и инкубировать смесь при 37 ° C в течение 4 ч.
    1. Очищают подакцизным фрагмент ДНК и линеаризованного вектора ДНК путем экстракции ДНК gel15.
  3. Смесь 100 нг линеаризованного вектора ДНК с 400 нг переваривается ДНК фрагмента в 10-мкл лигирование реакционной смеси, содержащие 1 x T4 ДНК лигаза реакции буфера (50 мм трис-HCl, MgCl 10 мм2, АТФ 1 мм и 10 мм DTT, pH 7.5 при 25 ° C) и 5 единиц T4 ДНК Лигаза. Инкубируйте реакционную смесь на 16 ° C для 16 h.
  4. Превратить 5 мкл лигирование смеси в 100 мкл DH5α компетентным ячеек и выберите колоний на плите агар ампициллин ЛБ. Возьмите 5-10 колоний и расти в каждой колонии в 2-мл LB среде, содержащей 100 мкг/мл ампициллина 220 об/мин, 37 ° C в тряску инкубатор для 16 h.
  5. Извлечь плазмида ДНК с ДНК алкалический комплект17 и подтвердить клонов секвенирования ДНК с AGTATTTTACTGTTTTCGTAACAG грунтом.
  6. ПЦР усиливают A. thaliana 3 киназы рецепторов пыльцы (PRK3) ген фрагмент кодирования остатков 20-237 от синтетических конструкции гена PRK3 (вперед грунтовка: CATG GCGGCCGC CTACAAAACGTTAGTGAATCGGAACC, обратный грунтовка: CGC GGATCC CTA GTG GTG ГПТ GTG GTG ГТГ TGAAGGTTTCTCATCGCATTCTATATTC). Усилить ДНК для 30 циклов в буфер реакции ДНК-полимеразы, содержащий 0,5 мм dNTP смеси, грунтовки 0,2 мкм, 0,1 µg дна шаблона, 0.4 мм MgCl2и 1 единица реакции полимеразы дна.
    1. Для шаги цикла PCR, установите первоначальный Денатурация при 95 ° C за 30 s, а затем 30 циклов Денатурация при 95 ° C за 30 сек, отжиг при температуре 55 ° C 30 s, и расширение в 72 ° C за 30 s в рамках каждого цикла и окончательное расширение при 72 ° C за 5 мин.
  7. Дайджест ПЦР фрагментов и изменение вектора с Ноти и BamHI Энзимы эндонуклеазы ограничения. Перевязать фрагмента гена с линеаризованного вектора. Смесь 100 нг линеаризованного вектора ДНК с 400 нг переваривается ДНК фрагмента в 10-мкл лигирование реакционной смеси, содержащие T4 ДНК лигаза реакции буфер и 5 единиц T4 ДНК лигаза. Инкубируйте реакционную смесь на 16 ° C для 16 h.
  8. Превратить 5 мкл лигирование смеси в 100 мкл DH5α компетентных клеток после стандартного преобразования протокол и выберите результирующий колоний на ампициллин LB агар пластины16. Подтверждения правильного клоны секвенирования ДНК.

3. производство и усиления бакуловирусы создает укрывательство кассеты выражение рекомбинантных белков

  1. Использование 100 нг плазмидные конструкции преобразовать 40 мкл DH10Bac компетентных клеток после протокол бакуловирусы выражение системы1. Инкубируйте преобразования пластины при 37 ° C в течение 48 часов.
  2. Подобрать два белых колоний от каждого преобразования пластины, прививок каждой колонии в 2 мл LB среде, содержащей 50 мкг/мл канамицин, гентамицин 7 мкг/мл и 10 мкг/мл тетрациклин. Следуйте протокол бакуловирусы выражение системы1 для извлечения и проверки bacmid ДНК. Аликвота каждый ДНК в две трубы с 20 мкл каждого и хранить трубы при-20 ° C.
    Примечание: Следующие шаги требуют асептических операцию.
  3. Растут монослоя Sf9 клеток в культуре средств массовой информации с 10% плода бычьим сывороточным (ФБС) и 100 мкг/мл (или 100 I.U./mL) пенициллина и стрептомицина антибиотики при 27 ° C до 80% слияния в пластине 6-хорошо. Оцените процент слияния, основанные на процентах площадь на пластину культуры ткани.
  4. Подготовьте следующие решения в двух стерильных 1.5 мл пробирок.
    1. Труба 1: Для каждого трансфекции, Разбавьте 20 мкл bacmid ДНК в 100 мкл unsupplemented Sf9 клеток питательной среды без антибиотиков. Осторожно перемешать разрежения, стряхивая стороне трубки.
    2. Труба 2: Для каждого трансфекции, развести 8 мкл Реагента трансфекции липидов в 100 мкл unsupplemented Sf9 клеток питательной среды без антибиотиков. Тщательно перемешать разрежения, закупорить вверх и вниз для 6 x.
  5. Объединить два решения, осторожно перемешать их, закупорить медленно вверх и вниз для 3 x и проинкубируйте 20-40 мин при комнатной температуре.
  6. Мыть каждый хорошо Sf9 монослой клеток 2 x 3 мл unsupplemented Sf9 клеток питательной среды без антибиотиков. Для каждого трансфекции добавьте 0,8 мл unsupplemented Sf9 клеток питательной среды без антибиотиков в пробирки, содержащие смесь липидов ДНК. Осторожно перемешайте содержимое трубки, закупорить медленно вверх и вниз для 3 x. Аспирационная мыть СМИ от пластин и наложения образцы с трансфекции смеси.
  7. После добавления трансфекции смеси Инкубируйте transfected пластина для 5 h 27 ° c. Заменить трансфекции медиа с полной Sf9 клеток питательной среды, содержащие 10% FBS и 100 мкг/мл (или 100 I.U./mL) антибиотики пенициллин стрептомицином. Инкубируйте transfected пластины при 27 ° C для 4 d.
  8. Урожай и усилить рекомбинантных бакуловирусы.
    1. Соберите супернатант зараженных пластины в стерильную пробирку 15 мл конические после 4 d инкубации. Спиновые супернатант в 1010 x g 5 мин для удаления мусора ячейки. Отменить гранулы и сцеживаться супернатант в чистой трубку и хранить его на 4 ° C на срок до 1 года.
      Примечание: Это вирус P0. Это может быть aliquoted и хранятся при температуре-80 ° C для более длительного периода времени.
    2. Для того чтобы усилить каждый рекомбинантных вирус, растут монослоя клеток Sf9 на тарелку, 150-мм до 80% слияния. Аспирационная СМИ от плиты, добавить 2 мл P0 вируса клетки приверженцем пластину и инкубировать пластину за 1 ч в инкубаторе 27 ° C. Рок плита каждые 15 мин смешать носитель с клетками.
      1. Добавить 25 мл полное благодати СМИ, содержащие 10% FBS и 100 мкг/мл (или 100 I.U./mL) антибиотики пенициллин стрептомицином. Инкубируйте пластину для 3 d в инкубаторе 27 ° C для получения вирус проход P1.
    3. Соберите супернатант зараженных пластины в стерильную пробирку 50 мл конические и спина на 1010 x g 5 мин для удаления мусора ячейки. Декант супернатант в чистой трубку и хранить его на 4 ° C на срок до 1 года.
      Примечание: P1 вирус может быть aliquoted и хранятся при температуре-80 ° C для более длительного периода времени.
    4. Для того чтобы усилить вируса от P1 P2 проход, растут монослоя клеток Sf9 на тарелку, 150-мм до 90% слияния, аспирационная СМИ пластины, добавить 2 мл P1 вируса к пластине и проинкубируйте 1 ч в инкубаторе 27 ° C.
    5. Повторите шаги 3.8.2 и 3.8.3 для получения P2 и P3 проходы вирусов. Не храните вирусом P3 для более чем 2 месяцев.

4. белков, очистки с NiNTA и кристаллизации

  1. Культура 1 Л Hi5 насекомых клеток в антибиотики пенициллин стрептомицином культуры СМИ с 100 мкг/мл (или 100 I.U./mL) к плотности6 2 x 10 при 100 об/мин в шейкер инкубатор 27 ° C. Спин вниз клетки на 570 x g 5 мин, сцеживаться супернатанта, Ресуспензируйте клетки в 20 мл свежезаваренным производства вирусом P3 и держать его при комнатной температуре, по 1 ч. Осторожно встряхните бутылку спин Ресуспензируйте клетки 1 x каждые 15 мин.
  2. Клетки перехода к 1 Л антибиотики пенициллин стрептомицином культуры СМИ с 100 мкг/мл (или 100 I.U./mL), культура клетки на 100 об/мин в шейкер инкубатор 27 ° C за 72 ч. спин вниз клетки на 1010 x g 5 мин и собирать супернатант.
  3. Использование pH индикатор полосы для регулировки рН супернатант 8.0, добавив 0,1 М HCl или 0,1 М NaOH и добавить привязку буфера в конечной концентрации, содержащий буфер Tris 20 мм при pH 8.0, 100 мм NaCl и 5 мм имидазола. Добавьте определенное количество смолы NiNTA (10-40 мл) на основе сметных доходность выразил его меткой рекомбинантных белков.
    1. Mix решение на магнитные перемешать с низкой скоростью при 4 ° C на 1 ч. мыть смолы и элюировать связанный протеин после стандартного NiNTA очистки протокол18.
  4. При условии очищенный протеин ионного обмена и гель хромотографии фильтрации, а также другие методы очистки белков, для получения однородной образца.
    Примечание: Для ectodomain ДТР, 20 мм трис, рН 8, 100 мм NaCl были использованы в качестве буфера фильтрации геля. Для PRK3 ectodomain, 20 мм бис трис, рН 6, 100 мм NaCl были использованы в качестве предпочтительного гель фильтрации буфера.

Результаты

Как показано на рисунке 1, двух векторов выражения бакуловирусы модифицированных pFastBac1 были использованы выразить секретируемые белки с GP67 или hemolin сигнал последовательности заменить встроенные сигнал последовательности целевого гена. Было продемон?...

Обсуждение

Учитывая разнообразие в размер и стабильность тысяч белков, присутствующих в биологических системах, это часто эмпирических исследований лаборатории решить какие гетерологичных выражение системы должен быть выбран для выражения определенного белка. Выражение системы E. coli част?...

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

Эта работа была поддержана новый факультет запуска средства от университета штата Северная Каролина сайта для Guozhou Xu.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Incubator shakerVWRModel Excella E2527 oC
IncubatorVWRModel 200527 oC
CentrifugeBECKMANModel J-6with a swing bucket rotor
Herculase II Fusion DNA PolymeraseAgilent600677-51For PCR amplification of DNA
Thermal CyclerBIO-RADModel C1000 TouchFor PCR amplification of DNA
Incubator shakerNew Brunswick ScientificModel I 24For growing baceria culture
Customer DNA synthesisGENSCRIPT
BamHI (HF)New England BiolabsR3136SRestriction Endonuclease
BglIINew England BiolabsR0144SRestriction Endonuclease
NotI (HF)New England BiolabsR3189SRestriction Endonuclease
XhoINew England BiolabsR0146SRestriction Endonuclease
T4 DNA ligaseNew England BiolabsM0202TDNA ligation
QIAquick Gel Extraction KitQiagen28704DNA purification from Agorase gel
QIAprep Spin Miniprep KitQiagen27104Plasmid DNA purification from bacteria culture
AgaroseThermo Fisher Scientific15510-019For DNA gel electropherosis
MAX Efficiency DH5α competen cellInvitrogen18-258-012For transformation of DNA ligation mixture
Lennox L LB BrothResearch Product International Corp.L24066-5000.0For making bacteria culture
Ampicillin sodium saltThermo Fisher Scientific11593-019Antibiotics
Kanamycin SulfateThermo Fisher Scientific15160-054Antibiotics
TetracyclineThermo Fisher Scientific64-75-5Antibiotics
GentamicinThermo Fisher Scientific15710-064Antibiotics
MAX Efficiency DH10Bac competent cellsThermo Fisher Scientific10361-012For making bacmid DNA
S.O.C. MediumThermo Fisher Scientific15544-034For DNA transformation
CellFECTIN II ReagentThermo Fisher Scientific10362-101Insect cell transfection reagent
Bac-to-Bac Expression SystemThermo Fisher Scientific10359-016Baculovirus-insect cells expression kit
Bluo-galThermo Fisher Scientific15519-028For isolation of recominant Bacmid DNA
IPTGThermo Fisher Scientific15529-019For isolation of recominant Bacmid DNA
pFastBac1Thermo Fisher Scientific10360014Baculorirus expression vector
Sf9 cellsThermo Fisher Scientific11496015Sf9 monolayer cells
Hi5 cellsThermo Fisher ScientificB85502High Five insect cells
Grace’s insect medium, unsupplementedThermo Fisher Scientific11595030Sf9 cell transfection minimum medium
Grace’s insect medium, supplementedThermo Fisher Scientific11605102Sf9 monolayer cell culture complete medium
Sf-900 II SFMThermo Fisher Scientific10902104Sf9 suspension cell culture medium without FBS
Express Five SFMThermo Fisher Scientific10486025Hi5 cell culture medium
Penicillin-StreptomycinThermo Fisher Scientific15140122100 ml (10,000 I.U./ml)
L-Glutamine (200 mM)Thermo Fisher Scientific25030081100 ml
FBS CertifiedThermo Fisher Scientific16000-044500 ml
6-well platesThermo Fisher Scientific08-772-1BFlat-bottom
150 mm platesThermo Fisher Scientific353025100/case
1.5 ml Microcentrifuge TubesUSA Scientific1415-2500500 tubes/bag
15 ml conical screw cap centrifuge tubesUSA Scientific1475-051125 tubes/bag
50 ml conical screw cap centrifuge tubesUSA Scientific1500-121125 tubes/bag
Ni-NTA SuperflowQiagen30430NiNTA resin
pH-indicator stripsEMD Millipore Corporation1.09535.0001pH 0 - 14

Ссылки

  1. Contreras-Gomez, A., Sanchez-Miron, A., Garcia-Camacho, F., Molina-Grima, E., Chisti, Y. Protein production using the baculovirus-insect cell expression system. Biotechnology Progress. 30, 1-18 (2014).
  2. Khan, S., Ng, M. L., Tan, Y. J. Expression of the severe acute respiratory syndrome coronavirus 3a protein and the assembly of coronavirus-like particles in the baculovirus expression system. Methods in Molecular Biology. 379, 35-50 (2007).
  3. Possee, R. D., King, L. A. Baculovirus Transfer Vectors. Methods in Molecular Biology. 1350, 51-71 (2016).
  4. Vaughn, J. L., Goodwin, R. H., Tompkins, G. J., McCawley, P. The establishment of two cell lines from the insect Spodoptera frugiperda (Lepidoptera; Noctuidae). In Vitro. 13, 213-217 (1977).
  5. Hink, W. F. Established insect cell line from the cabbage looper, Trichoplusia ni. Nature. 226, 466-467 (1970).
  6. Davis, T. R., et al. Comparative recombinant protein production of eight insect cell lines. In Vitro Cellular & Development Biology - Animal. 29A, 388-390 (1993).
  7. Wickham, T. J., Nemerow, G. R. Optimization of growth methods and recombinant protein production in BTI-Tn-5B1-4 insect cells using the baculovirus expression system. Biotechnology Progress. 9, 25-30 (1993).
  8. Davis, T. R., Trotter, K. M., Granados, R. R., Wood, H. A. Baculovirus expression of alkaline phosphatase as a reporter gene for evaluation of production, glycosylation and secretion. Nature Biotechnology. 10, 1148-1150 (1992).
  9. Murphy, C. I., et al. Enhanced expression, secretion, and large-scale purification of recombinant HIV-1 gp120 in insect cell using the baculovirus egt and p67 signal peptides. Protein Expression and Purification. 4, 349-357 (1993).
  10. Sun, S. C., Lindstrom, I., Boman, H. G., Faye, I., Schmidt, O. Hemolin: an insect-immune protein belonging to the immunoglobulin superfamily. Science. 250, 1729-1732 (1990).
  11. Li, Z., Chakraborty, S., Xu, G. Differential CLE peptide perception by plant receptors implicated from structural and functional analyses of TDIF-TDR interactions. PLoS One. 12, e0175317 (2017).
  12. Chakraborty, S., Pan, H., Tang, Q., Woolard, C., Xu, G. The Extracellular Domain of Pollen Receptor Kinase 3 is structurally similar to the SERK family of co-receptors. Scientific Reports. 8, 2796 (2018).
  13. Khorana, H. G. Total synthesis of a gene. Science. 203, 614-625 (1979).
  14. Bahl, C. P., Marians, K. J., Wu, R. A general method for inserting specific DNA sequences into cloning vehicles. Gene. 1, 81-92 (1976).
  15. Xu, W., Zhang, Y. Isolation and Characterization of Vaccine-Derived Polioviruses, Relevance for the Global Polio Eradication Initiative. Methods in Molecular Biology. 1387, 213-226 (2016).
  16. Hanahan, D. Studies on transformation of Escherichia coli with plasmids. Journal of Molecular Biology. 166, 557-580 (1983).
  17. Zhang, S., Cahalan, M. D. Purifying plasmid DNA from bacterial colonies using the QIAGEN Miniprep Kit. Journal of Visualized Experiments. (6), 247 (2007).
  18. Reddy, B. G., et al. Expression and purification of the alpha subunit of the epithelial sodium channel, ENaC. Protein Expression and Purification. 117, 67-75 (2016).
  19. Harris, T. J., Emtage, J. S. Expression of heterologous genes in E. coli. Microbiological Sciences. 3, 28-31 (1986).
  20. Kaur, J., Kumar, A., Kaur, J. Strategies for optimization of heterologous protein expression in E. coli: Roadblocks and reinforcements. International Journal of BIological Macromolecules. 106, 803-822 (2018).
  21. Guo, Y., Yang, F., Tang, X. An Overview of Protein Secretion in Yeast and Animal Cells. Methods in Molecular Biology. 1662, 1-17 (2017).
  22. Blight, M. A., Chervaux, C., Holland, I. B. Protein secretion pathway in Escherichia coli. Current Opinion in Biotechnology. 5, 468-474 (1994).
  23. Idiris, A., Tohda, H., Kumagai, H., Takegawa, K. Engineering of protein secretion in yeast: strategies and impact on protein production. Applied Microbiology and Biotechnology. 86, 403-417 (2010).
  24. Wormald, M. R., Dwek, R. A. Glycoproteins: glycan presentation and protein-fold stability. Structure. 7, R155-R160 (1999).
  25. Geisler, C., Mabashi-Asazuma, H., Jarvis, D. L. An Overview and History of Glyco-Engineering in Insect Expression Systems. Methods in Molecular Biology. 1321, 131-152 (2015).
  26. Li, Z., Chakraborty, S., Xu, G. X-ray crystallographic studies of the extracellular domain of the first plant ATP receptor, DORN1, and the orthologous protein from Camelina sativa. Acta Crystallographica Section F: Structural BIology and Crystallization Communications. 72, 782-787 (2016).
  27. Aricescu, A. R., Owens, R. J. Expression of recombinant glycoproteins in mammalian cells: towards an integrative approach to structural biology. Current Opinion in Structural Biology. 23, 345-356 (2013).
  28. Reuter, L. J., Bailey, M. J., Joensuu, J. J., Ritala, A. Scale-up of hydrophobin-assisted recombinant protein production in tobacco BY-2 suspension cells. Plant Biotechnology Journal. 12, 402-410 (2014).
  29. Dohi, K., et al. Inducible virus-mediated expression of a foreign protein in suspension-cultured plant cells. Archives of Virology. 151, 1075-1084 (2006).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

138GP67hemolinbacmidtransfection

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены