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  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

Los tumores de vejiga murino son inducidos con el carcinógeno nitrosaminas de N-butyl-N-(4-hydroxybutyl) (BBN). Generación de tumor de vejiga es heterogénea; por lo tanto, es necesaria una evaluación precisa de la carga tumoral antes de la aleatorización al tratamiento experimental. Aquí presentamos un protocolo MRI rápido y confiable para evaluar el escenario y tamaño del tumor.

Resumen

Modelos de tumor vesical murino son críticos para la evaluación de nuevas opciones terapéuticas. Los tumores de vejiga inducidos con el carcinógeno nitrosaminas (BBN) de N-butyl-N-(4-hydroxybutyl) son ventajosos sobre los modelos basados en la línea celular porque replican muy de cerca los perfiles genómicos de tumores humanos, y, a diferencia de modelos celulares y xenoinjertos, proporcionan un buena oportunidad para el estudio de las inmunoterapias. Sin embargo, la generación del tumor de vejiga es heterogénea; por lo tanto, es necesaria una evaluación precisa de la carga tumoral antes de la aleatorización al tratamiento experimental. Se describe aquí es un modelo de ratón BBN y protocolo para evaluar la vejiga cáncer tumor carga en vivo mediante una secuencia rápida y fiable de resonancia magnética (Sr.) (true FISP). Este método es simple y confiable porque, a diferencia del ultrasonido, Señor es independiente del operador y permite el tratamiento de la imagen después de la adquisición directa y la revisión. Utilizando las imágenes axiales de la vejiga, análisis de regiones de interés a lo largo de la pared vesical y tumor permiten el cálculo de área de pared y el tumor de vejiga. Esta medida se correlaciona con ex vivo el peso de la vejiga (rs= 0,37, p = 0,009) y etapa del tumor (p = 0.0003). En conclusión, BBN genera tumores heterogéneos que son ideales para la evaluación de las inmunoterapias, y MRI puede rápida y confiablemente evaluar carga tumoral antes de la aleatorización al tratamiento experimental.

Introducción

Cáncer de vejiga es el cáncer más común en quinto lugar general, responsable de aproximadamente 80.000 nuevos casos y 16.000 muertes en los Estados Unidos en 20171. Luego de 30 años sin avances significativos en el tratamiento sistémico del cáncer de vejiga2, reciente control anti-PD-1 y anti-PD-L1 inhibidor ensayos han demostrado respuestas interesantes y durables de vez en cuando en pacientes con avanzado uroteliales carcinoma3,4,5. Sin embargo, sólo aproximadamente el 20% de los pacientes muestran una respuesta objetiva a estos tratamientos, y se necesitan más estudios para ampliar el uso efectivo de la inmunoterapia en pacientes con cáncer de vejiga.

Modelos de cáncer vesical murino son críticos en la evaluación preclínica de nuevos tratamientos6,7. Para controlar el tamaño del tumor cuando se asignaron al azar a ratones con diferentes tratamientos, carga tumoral debe ser evaluado y controlado entre grupos de tratamiento. Estudios previos han usado ultrasonido o bioluminiscencia para evaluar orthotopic celular basada en línea de vejiga cáncer modelos8,9,10,11. Sin embargo, ambas técnicas presentan varias desventajas. Las medidas de ultrasonido pueden ser influenciadas por las habilidades del operador y carecen de características tridimensionales y alta resolución espacial. Bioluminescence métodos sólo pueden proporcionar una evaluación semi-cuantitativa de las células tumorales y no permiten la visualización de la morfología y anatomía de la vejiga. Además, bioluminiscencia puede ser utilizado con modelos basados en la línea de celulares, que expresan genes bioluminiscentes en ratones sin pelo o ratones con batas blancas.

La proyección de imagen de resonancia magnética (MRI), por el contrario, ofrece una flexibilidad única en la adquisición de imágenes de alta resolución anatómicas, exhibiendo una amplia gama de contraste de tejido que permite la visualización precisa y evaluación cuantitativa de la carga tumoral sin la necesidad de expresar propiedades bioluminiscentes. Imágenes son más fácilmente reproducibles con las tuberías de análisis apropiado y garantizan la visualización 3-d de la vejiga. Las mayores limitaciones de la RMN son la longitud de tiempo necesario para un examen y asociados altos costos que limitan el análisis de alto rendimiento. Sin embargo, varios estudios han demostrado que el Señor secuencias pueden proporcionar imágenes diagnósticas de alta calidad que pueden utilizarse para detectar con eficacia y seguimiento de tumores de vejiga basado en la línea de la célula; así, se puede utilizar para análisis de alto rendimiento9,12.

Aquí, describimos un método no invasivo basado en el Señor para confiablemente y eficientemente caracterizar los tumores de vejiga inducida por carcinógenos en ratones. Para lograr esto, utilizamos una proyección de imagen rápida con estado estacionario precesión Señor técnica (true FISP), garantizando sesiones breves análisis sin dejar de ofrecer alta calidad y alta resolución espacial (~ 100 micras) para la detección y medición de la vejiga tumores13. Además, para confirmar la exactitud de este análisis no invasivo de MRI, se describe la correlación entre parámetros derivados del MRI y ex vivo el peso de la vejiga así como estadio tumoral patológico confirmado.

Protocolo

Todos los métodos aquí descritos han sido aprobados por el institucional Animal Care y el Comité uso (IACUC) de la Universidad Northwestern.

1. inducción de tumores con BBN

  1. Obtener ratones C57/BL6 machos, cada uno por lo menos 6 semanas.
    Nota: Ratones machos desarrollan cáncer de vejiga más rápida y consistentemente de ratones femeninos14,15.
  2. Añadir N-nitrosobutyl(4-hydroxybutyl) amina (BBN) en una dosis de 0.05% a agua potable. Guardarlo en un recipiente opaco y se dan ad libitum como agua potable a ratones16.
    Nota: Almacenar la solución BBN en un contenedor transparente se degradará el carcinógeno17.
  3. Cambie el agua BBN 0,05% dos veces por semana.
  4. Seguimiento de los animales mediante la inspección de signos de distrés asociado a tumores de la vejiga incluyen hematuria, firme vejiga y masas. Inspeccione los ratones dos veces por semana o de acuerdo con las pautas locales de IACUC.
  5. Esperar que los tumores entre 16 y 24 semanas de exposición18.

2. configuración MRI

  1. Realizar una inyección subcutánea de solución salina estéril (0,1 – 0,2 mL usando una jeringa de aguja y 1 mL de 25-27 G) 10 minutos antes de la resonancia magnética para facilitar el llenado de la vejiga.
  2. Anestesiar cada ratón con una mezcla de gas de 100% O2 y el isoflurane (2%-4% según sea necesario). Verificar un adecuado plano de anestesia por el reflejo de retirada (pellizco del dedo del pie) antes de continuar la prueba. Aplique ungüento oftálmico estéril a los animales.
  3. Transferir el ratón al imagen titular equipado con una ojiva para la administración de isoflurano inhalado (0,5% – 3%).
  4. Controlar la temperatura corporal y respiración utilizando una sonda rectal de la temperatura conectada a la computadora de registro fisiológico.
    Nota: La temperatura Normal del cuerpo (36-37 ° C) se mantiene mediante el recirculación circuito de agua caliente incorporado el titular Señor animal. Temperatura es medida a través de un sensor rectal y registrada en el equipo de monitoreo fisiológico con dedicado software de monitoreo fisiológico. El mismo sistema se utiliza para registrar las señales de respiración y electrocardiograma mide a través de una almohada neumática bajo la caja torácica y a través de electrodos de electrocardiograma 3 derivaciones. La señal de respiración también se utiliza para accionar adquisición de MRI y la reducción de artefactos asociados con el movimiento de la respiración.

3. adquisición de imágenes de MRI

  1. Utilizar una bobina de cuadratura del cuerpo para la excitación.
  2. Coloque una bobina del receptor de 4 canales en la parte inferior del abdomen del ratón está escaneando para habilitar la detección optimizada de las señales de la región de interés.
  3. Iniciar ajustes automáticos a través del software de imagen integrado para adquirir un sistema triaxial de imágenes del cuerpo entero del ratón. Sistema de imágenes de esta referencia, identificar la región de interés (en este caso, la región de la vejiga).
  4. Adquirir tres conjuntos de imágenes ortogonales en rodajas a lo largo de los planos axiales, coronales y sagitales, utilizando marcos de referencia radiológicos.
  5. Utilizar el true FISP (incluida como una de las características en el software integrado de la proyección de imagen) de la secuencia de imágenes con los siguientes parámetros de Señor: TR = 900 mseg, TE = 2 ms, FA = 70, promedios de 14.
    Nota: Este conjunto de parámetros permite la proyección de imagen rápida con alta calidad diagnóstico, incluyendo la ponderación T1/T2 en < 10 min por ratón.
  6. Grosor de rebanada y resolución espacial está determinada por parámetros geométricos seleccionados por el usuario a través de la interfaz gráfica de la plataforma de proyección de imagen integradora. Esto resulta en una serie de sectores a través de la vejiga entera de 0,5 mm de espesor con una resolución en el plano de 0.148 mm.

4. D. Análisis de imagen

  1. Identificar el conjunto de láminas de 0,5 mm de espesor y resolución en el plano de 0.148 mm que cubre la vejiga entera.
  2. Exportar a software de análisis de imagen médico seleccionando la carpeta con las imágenes correspondientes en el formato de análisis.
  3. Seleccione "vista axial representativo" en el centro de la vejiga para el análisis cuantitativo por desplazarse a través de las imágenes generadas y la identificación de un segmento en el punto medio de la vejiga, que permite la visualización de la pared de la vejiga y el lumen.
    Nota: El segmento del centro debe ser el elegido con el diámetro más grande.
  4. Delinear con cuidado la región de interés (ROI) manualmente trazando los límites alrededor del borde externo de la vejiga (BLAhacia fuera) y alrededor de la luz interna (BLAen) de la vejiga (vea las figuras esquemáticas y representativas en la figura 2) en la vista axial representativa seleccionada.
  5. Restar la luz interna del borde exterior para calcular la superficie de la pared de la vejiga.
    BLApared = BLAhacia fuera - BLAen
    Nota: Se espera que la superficie de una vejiga de control sin tumor sea menor que con un tumor de vejiga.

5. eutanasia y disección de la vejiga

  1. Después de 20 semanas de la exposición BBN, eutanasia los ratones utilizando procedimientos normalizados de acuerdo con las pautas locales de IACUC.
  2. Limpiar la zona de incisión con etanol al 70%, entonces Sujete y levante la piel de la pared abdominal con el fórceps.
  3. Hacer una incisión de línea media de la sínfisis púbica para el proceso del xiphoid.
  4. Bruscamente haga una incisión en la cavidad peritoneal sujetando con pinzas y incisión con tijeras.
  5. Identificar la vejiga, que se encuentra en el abdomen inferior de línea media.
  6. Identificar y cortar el ligamento umbilical mediano conectar la cúpula de la vejiga al ombligo y la pared abdominal.
  7. Agarre la cúpula de la vejiga con pinzas countertraction y disecar la vejiga de las estructuras, incluyendo las vesículas seminales, recto y grasa circundantes.
  8. Identificar los uréteres en la vejiga y corte con unas tijeras cerca de la vejiga.
  9. La vejiga de elevación cefálica, cortó la uretra con unas tijeras y quitar la vejiga.
  10. Inmediatamente pesar la vejiga después de lavado con PBS.

6. histologic examinación del tejido de la vejiga

  1. Fijar el tejido de la vejiga en 10% formalina tamponada neutra durante 36-48 h a temperatura ambiente (RT).
  2. Incrustar el tejido en bloques de parafina, cortar las diapositivas para el examen posterior y las diapositivas con hematoxilina y eosina para la examinación microscópica de la mancha como se describió anteriormente19,20.
  3. Realizar un examen microscópico de la vejiga de ratón en baja (2.5 x y 10 x) y aumentos de alto (20 x y 40 x), examen de las lesiones macroscópicas, hiperplasia, carcinoma en situ, papilomas, tumores papilares y neoplasias invasoras19 , 21.

Resultados

Utilizando el protocolo descrito (figura 1), los tumores de vejiga fueron inducidos en ratones machos C57/B6. MRI fue realizado en 16 semanas, y los ratones fueron sacrificados a las 20 semanas. Se registraron ex vivo vejiga pesos (BW) para cada ratón. Diapositivas se tiñeron con hematoxilina y eosina, todas las diapositivas de histología se revisaron y etapa del tumor.

Para analizar la ...

Discusión

Precisa proyección de imagen de modelos de tumores es necesario para la adecuada estadificación de la eutanasia y aleatorización animal antes de la iniciación del tratamiento experimental. Utilizando el procedimiento presentado aquí, demostramos metodología para (1) generar tumores de la vejiga usando el carcinógeno BBN y (2) estratificar la carga tumoral de vejiga mediante el uso de derivados de MR. Señor un área medida (BLApared) se correlaciona significativamente con ex vivo el peso de la ...

Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

J. J. M. está financiado por el mérito de la administración de salud de veteranos conceder BX0033692-01. J. J. M. también es apoyado por el P. John Hanson Foundation for Cancer Research de la Universidad Robert H. Lurie integral cáncer centro de noroeste. Agradecemos el centro traslacional la proyección de imagen para proporcionar la adquisición de MRI y de procesamiento. Fuentes de financiamiento no tuvieron ningún papel por escrito del manuscrito o la decisión de enviar para su publicación.

Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
C57BL/6 miceThe Jackson Laboratory664Mice
N-butyl-N-(4-hydroxybutyl)nitrosamine carcinogen (BBN)TCI AmericanB0938Carcinogen
0.9% normal salineHospira, IncNDC 0409-488-02
IsofluranePiramal HealthCare60307-120-25Anesthetic
7Tesla ClinScan MRIBrukerNADedicated Small Animal Imaging MRI
SyngoSiemensNAMR Integrated Imaging Software
Model 1030 Monitoring & Gating SystemSmall Animal Instruments, Inc. (SAII)NASmall animal physiologic monitoring
Formalin, Neutral Buffered, 10%SigmaHT501128Fixative
Eosin YFisher ScientificNC1093844Histologic staining agent
HematoxylinFisher Scientific23-245651Histologic staining agent
Jim7Xinapse SystemsNAMedical image analysis software
GraphPad Prism v7.04GraphpadNAGraphing software
R v3.4.2The R Project for Statistical ComputingNAStatistical software
R package pROC v1.10.0.The R Project for Statistical ComputingNAROC analysis

Referencias

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer Statistics, 2017. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 67 (1), 7-30 (2017).
  2. Abdollah, F., et al. Incidence, survival and mortality rates of stage-specific bladder cancer in United States: a trend analysis. Cancer Epidemiology. 37 (3), 219-225 (2013).
  3. Rosenberg, J. E., et al. Atezolizumab in patients with locally advanced and metastatic urothelial carcinoma who have progressed following treatment with platinum-based chemotherapy: a single-arm, multicentre, phase 2 trial. The Lancet. 387 (10031), 1909-1920 (2016).
  4. Sharma, P., et al. Nivolumab monotherapy in recurrent metastatic urothelial carcinoma (CheckMate 032): a multicentre, open-label, two-stage, multi-arm, phase 1/2 trial. The Lancet Oncology. 17 (11), 1590-1598 (2016).
  5. Bellmunt, J., et al. Pembrolizumab as Second-Line Therapy for Advanced Urothelial Carcinoma. New England Journal of Medicine. 376 (11), 1015-1026 (2017).
  6. Chan, E., Patel, A., Heston, W., Larchian, W. Mouse orthotopic models for bladder cancer research. BJU International. 104 (9), 1286-1291 (2009).
  7. Zhang, N., Li, D., Shao, J., Wang, X. Animal models for bladder cancer: The model establishment and evaluation (Review). Oncology Letters. 9 (4), 1515-1519 (2015).
  8. Patel, A. R., et al. Transabdominal micro-ultrasound imaging of bladder cancer in a mouse model: a validation study. Urology. 75 (4), 799-804 (2010).
  9. Chin, J., Kadhim, S., Garcia, B., Kim, Y. S., Karlik, S. Magnetic resonance imaging for detecting and treatment monitoring of orthotopic murine bladder tumor implants. The Journal of Urology. 145 (6), 1297-1301 (1991).
  10. Jurczok, A., Fornara, P., Soling, A. Bioluminescence imaging to monitor bladder cancer cell adhesion in vivo: a new approach to optimize a syngeneic, orthotopic, murine bladder cancer model. BJU International. 101 (1), 120-124 (2008).
  11. Vandeveer, A. J., et al. Systemic Immunotherapy of Non-Muscle Invasive Mouse Bladder Cancer with Avelumab, an Anti-PD-L1 Immune Checkpoint Inhibitor. Cancer Immunology Research. 4 (5), 452-462 (2016).
  12. Kikuchi, E., et al. Detection and quantitative analysis of early stage orthotopic murine bladder tumor using in vivo magnetic resonance imaging. Journal of Urology. 170, 1375-1378 (2003).
  13. Chung, H. W., et al. T2-weighted fast MR imaging with true FISP versus HASTE: comparative efficacy in the evaluation of normal fetal brain maturation. American Journal of Roentgenology. 175 (5), 1375-1380 (2000).
  14. Miyamoto, H., et al. Promotion of bladder cancer development and progression by androgen receptor signals. Journal of the National Cancer Institute. 99 (7), 558-568 (2007).
  15. Bertram, J. S., Craig, A. W. Specific induction of bladder cancer in mice by butyl-(4-hydroxybutyl)-nitrosamine and the effects of hormonal modifications on the sex difference in response. European Journal of Cancer. 8 (6), 587-594 (1972).
  16. Nagao, M., et al. Mutagenicity of N-butyl-N-(4-hydroxybutyl)nitrosamine, a bladder carcinogen, and related compounds. Cancer Research. 37, 399-407 (1977).
  17. Hirose, M., Fukushima, S., Hananouchi, M., Shirai, T., Ogiso, T. Different susceptibilities of the urinary bladder epithelium of animal species to three nitroso compounds. Gan. Gann; The Japanese Journal of Cancer Research. 67 (2), 175-189 (1976).
  18. Shin, K., et al. Cellular origin of bladder neoplasia and tissue dynamics of its progression to invasive carcinoma. Nature Cell Biology. 16 (5), 469-478 (2014).
  19. Epstein, J. I. Chapter 17: Immunohistology of the Bladder, Kidney, and Testis. Diagnostic Immunohistochemistry. , 624-661 (2019).
  20. Cohen, S. M., Ohnishi, T., Clark, N. M., He, J., Arnold, L. L. Investigations of rodent urinary bladder carcinogens: collection, processing, and evaluation of urine and bladders. Toxicologic Pathology. 35 (3), 337-347 (2007).
  21. Wood, D. P. Tumors of the bladder. Campbell-Walsh Urology. 11 (92), 2184-2204 (2016).
  22. Zitvogel, L., Pitt, J. M., Daillere, R., Smyth, M. J., Kroemer, G. Mouse models in oncoimmunology. Nature Reviews Cancer. , (2016).
  23. Kaneko, S., Li, X. X chromosome protects against bladder cancer in females via a KDM6A-dependent epigenetic mechanism. Science Advances. 4 (6), eaar5598 (2018).
  24. Smilowitz, H. M., et al. Biodistribution of gold nanoparticles in BBN-induced muscle-invasive bladder cancer in mice. International Journal of Nanomedicine. 12, 7937-7946 (2017).
  25. Dai, Y. C., et al. The interaction of arsenic and N-butyl-N-(4-hydroxybutyl)nitrosamine on urothelial carcinogenesis in mice. PLoS One. 12 (10), e0186214 (2017).
  26. Williams, P. D., Lee, J. K., Theodorescu, D. Molecular Credentialing of Rodent Bladder Carcinogenesis Models. Neoplasia. 10 (8), (2008).
  27. Fantini, D., et al. A Carcinogen-induced mouse model recapitulates the molecular alterations of human muscle invasive bladder cancer. Oncogene. 37 (14), 1911-1925 (2018).
  28. . NCCN Guidelines in Clinical Oncology - Bladder Cancer 5.2018 Available from: https://www.nccn.org/professionals/physician_gls/pdf/bladder.pdf (2018)
  29. Costa, M. J., Delingette, H., Novellas, S., Ayache, N. Automatic segmentation of bladder and prostate using coupled 3-D deformable models. Medical Image Computing and Computer-Assisted Intervention. 10 (Pt 1), 252-260 (2007).
  30. Rosenkrantz, A. B., et al. Utility of quantitative MRI metrics for assessment of stage and grade of urothelial carcinoma of the bladder: preliminary results. American Journal of Roentgenology. 201 (6), 1254-1259 (2013).

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