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* Estos autores han contribuido por igual
Las vesículas extracelulares son muy prometedoras para las aplicaciones biomédicas, pero los métodos de aislamiento actuales requieren mucho tiempo y no son prácticos para el uso clínico. En este estudio, presentamos un dispositivo microfluídico que permite el aislamiento directo de vesículas extracelulares de grandes volúmenes de biofluidos de forma continua y con pasos mínimos.
Las vesículas extracelulares (VE) tienen un inmenso potencial para diversas aplicaciones biomédicas, como el diagnóstico, la administración de fármacos y la medicina regenerativa. Sin embargo, las metodologías actuales para aislar los vehículos eléctricos presentan desafíos significativos, como la complejidad, el consumo de tiempo y la necesidad de equipos voluminosos, lo que dificulta su traslación clínica. Para abordar estas limitaciones, nos propusimos desarrollar un sistema microfluídico innovador basado en tiol-eno de copolímero de olefina cíclica fuera de estequiometría (COC-OSTE) para el aislamiento eficiente de EV de muestras de gran volumen de manera continua. Al utilizar la separación basada en el tamaño y la flotabilidad, la tecnología utilizada en este estudio logró una distribución de tamaño significativamente más estrecha en comparación con los enfoques existentes a partir de muestras de orina y medios celulares, lo que permite apuntar a fracciones específicas de tamaño EV en aplicaciones futuras. Nuestro innovador diseño de dispositivo microfluídico COC-OSTE, que utiliza la tecnología de fraccionamiento de flujo de campo de flujo asimétrico bifurcado, ofrece un enfoque de aislamiento EV sencillo y continuo para muestras de gran volumen. Además, el potencial para la fabricación en masa de este dispositivo microfluídico ofrece escalabilidad y consistencia, lo que hace factible integrar el aislamiento de EV en diagnósticos clínicos rutinarios y procesos industriales, donde la alta consistencia y rendimiento son requisitos esenciales.
Las vesículas extracelulares (VE) son partículas derivadas de células unidas a la membrana que comprenden dos tipos principales: exosomas (30-200 nm) y microvesículas (200-1000 nm)1. Los exosomas se forman a través de la gemación hacia adentro de la membrana endosomal dentro de un cuerpo multivesicular (MVB), liberando vesículas intraluminales (ILV) en el espacio extracelular al fusionarse con la membrana plasmática1. Por el contrario, las microvesículas se generan por gemación y fisión hacia afuera de la membrana celular2. Los VE desempeñan un papel crucial en la comunicación intercelular mediant....
La recogida de muestras fue aprobada por el Comité de Ética de la Investigación en Ciencias Médicas y de la Vida de la Universidad de Letonia (decisión N0-71-35/54)
NOTA: Los materiales utilizados en este estudio se incluyen en el archivo de la Tabla de Materiales .
1. Fabricación de moldes impresos tridimensionales (3D)
Fabricamos un dispositivo microfluídico utilizando un molde de doble negativo impreso en 3D (Figura 1) mediante litografía blanda (Figura 2A) para la separación de EV de alto rendimiento basado en el principio A4F bifurcado (Figura 2B, C). La configuración requiere una bomba y una estación de flujo continuo, como se puede ver en la Figura 3, para el aislamiento de vehículos eléct.......
El dispositivo microfluídico presentado ofrece un método prometedor para el aislamiento y la extracción de vehículos eléctricos de fluidos biológicos, abordando algunas de las limitaciones críticas de los métodos estándar de oro existentes, como UC y SEC12. Se sabe que la UC y la SEC requieren mucha mano de obra, consumen mucho tiempo y tienen un bajo rendimiento, lo que las hace menos adecuadas para aplicaciones de alto rendimiento en las que se necesitan grandes cantidades de vehículos.......
A.A., G.M. y R.R. son fundadores, miembros de la junta directiva y accionistas de Cellbox Labs, LLC
Agradecemos a todos los donantes que participaron en este estudio, al personal de la Base de Datos del Genoma de Letonia por proporcionar las muestras. El Instituto de Física del Estado Sólido de la Universidad de Letonia, como Centro de Excelencia, ha recibido financiación del Programa Marco Horizonte 2020 de la Unión Europea H2020-WIDESPREAD-01-2016-2017-TeamongPhase2 en virtud del acuerdo de subvención n.º 739508, proyecto CAMART2. Este trabajo fue apoyado por el Proyecto No. lzp-2019/1-0142 y Proyecto No: lzp-2022/1-0373.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.1 µm carboxylate FluoSpheres | Invitrogen | #F8803 | Stock concentration: 3.6 x 1013 beads/mL (LOT dependent) |
0.5 mL microcentrifuge tubes | Starstedt | 72.704 | |
1 mL Luer cone syringe single use without needle | RAYS | TUB1ML | |
1.0 µm polystyrene FluoSpheres | Invitrogen | #F13083 | Stock concentration: 1 x 1010 beads/mL (LOT dependent) |
10 mL Serological pipettes | Sarstedt | 86.1254.001 | |
15 mL (100k) Amicon Ultra centrifugal filters | Merck Millipore | UFC910024 | |
2.0 mL Protein LoBind tubes | Eppendorf | 30108132 | |
20 mL syringes | BD PlastikPak | 10569215 | |
250 µm ID polyether ether ketone tubing | Darwin Microfluidics | CIL-1581 | |
3 kDa MWCO centrifugal filter units | Merck Millipore, | UFC200324 | |
5 mL Medical Syringe without Needle | Anhui Hongyu Wuzhou Medical | 159646 | |
50 mL conical tubes | Sarstedt | 62.547.254 | |
70 Ti fixed angle ultracentrifuge rotor | Beckman Coulter | 337922 | |
800 µm ID polytetrafluoroethylene tubing | Darwin Microfluidics | LVF-KTU-15 | |
96 well microplate, f-bottom, med. binding | Greiner Bio-One | 655001 | ELISA plate |
B-27 Supplement (50x), serum free | Thermo Fisher Scientific | 17504044 | |
Bovine serum albumin | SigmaAldrich | A7906-100G | |
COC Topas microscopy slide platform | Microfluidic Chipshop | 10000002 | |
COC Topas microscopy slide platform 2 x 16 Mini Luer | Microfluidic Chipshop | 10000387 | |
Elveflow OB1 pressure controller | Elvesys Group | ||
Luer connectors | Darwin Microfluidics | CS-10000095 | |
Mask aligner Suss MA/BA6 | SUSS MicroTec Group | ||
Mixer Thinky ARE-250 | Thinky Corporation | ||
NanoSight NS300 | Malvern Panalytical | NS300 | nanoparticle analyzer |
Optical microscope Nikon Eclipse LV150N | Nikon Metrology NV | ||
OSTE 322 Crystal Clear | Mercene Labs | ||
PBS TABLETS.Ca/Mg free. Fisher Bioreagents. 100 g | Fisher Scientific | BP2944-100 | |
PC membrane (50 nm pore diameter, 11.8% density) | it4ip S.A., Louvain-La Neuve, Belgium | ||
Petri dishes, sterile | Sarstedt | 82.1472.001 | |
Plasma Asher GIGAbatch 360 M | PVA TePla America, LLC | ||
qEVoriginal/35 nm column | Izon | SP5 | SEC column |
QSIL 216 Silicone Elastomer Kit | PP&S | ||
Resin Tough Black | Zortrax | ||
SW40 Ti swing ultracentrifuge rotor | Beckman Coulter | 331301 | |
Syringe pump | DK Infusetek | ISPLab002 | |
T175 suspension flask | Sarstedt | 83.3912.502 | |
TIM4-Fc protein | Adipogen LifeSciences | AG-40B-0180B-3010 | |
TMB (3,3',5,5'-tetramethylbenzidine) | SigmaAldrich | T0440-100ML | Horseradish peroxidase substrate |
Tween20 | SigmaAldrich | P1379-100ML | |
Ultracentrifuge Optima L100XP | Beckman Coulter | ||
Ultrasonic cleaning unit P 60 H | Elma Schmidbauer GmbH | ||
Universal Microplate Spectrophotometer | Bio-Tek instruments | 71777-1 | |
Urine collection cup, 150mL, sterile | APTACA | 2120_SG | |
Whatman Anotop 25 Syringe Filter | SigmaAldrich | 68092002 | |
Zetasizer Nano ZS | Malvern Panalytical | dynamic light scattering (DLS) system | |
Zortrax Inkspire | Zortrax |
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