This work was supported by Ministero degli Affari Esteri (MAE, DRPG, Unit&#224; per la cooperazione scientifica e tecnologica, Grant: PGR Italy-USA) and by MIUR, Progetti di Ricerca di Interesse Nazionale (Grant: 2010W2KM5L_006).

1. Preparación del material, Nucleic Acids y Proteínas <ol><li> Nucleic Acids <ol><li> Autoclave los tubos de 1,5 ml y guárdelos en un recipiente estéril. Realice cada paso usando puntas con filtro estériles para eliminar agentes contaminantes, es decir, nucleasas de consumibles de laboratorio. </li><li> Preparar tampón de 10 mM Tris-HCl pH 7,5 en agua tratada con DEPC y filtrar la solución con un filtro de 0,22 micras de tamaño de poro. </li><li> NOTA: El oligonucleótido llamada &quot;alquitrán&quot; corresponde a la secuencia de ARN corto (29-mer) 5&#39;-GGCAGAUCUGAGCCUGGGAGCUCUCUGCC-3 &#39;15 mientras CTAR es su secuencia complementaria de ADN 5&#39;-GGCAGAGAGCTCCCAGGCTCAGATCTGCC-3&#39;. <ol><li> Solubilizar tanto TAR y CTAR en el tampón de Tris antes mencionado (1.1.2.) Para hacer 100 mM de soluciones madre. Tienda CTAR solución madre a -20 ° C (alícuotas se puede almacenar durante meses en estas condiciones). Para el almacenamiento a largo plazo de ARN, hacer 20 ml de alícuotas de la TARsolución madre, seque cada alícuota utilizando un concentrador de centrífuga de vacío y almacenarlos a -80 ° C. Recién antes del uso, resuspender cada alícuota TAR en 20 de agua tratada con DEPC l. NOTA: TAR alícuotas de trabajo se puede almacenar a -20 ° C durante dos semanas. </li></ol></li></ol></li><li> Proteína NC y (12-55) péptido NC <ol><li> Preparar la proteína NC recombinante de longitud completa como se informó. 16 Guarde la solución madre en alícuotas a -20 ° C. Determinar la concentración de proteína exacta con un espectrofotómetro UV-Vis usando un coeficiente de extinción a 280 nm de 6410 M -1 cm -1. </li><li> Resuspender el sintético (12-55) NC péptido en Tris-HCl 10 mM pH 7,5 y almacenar la solución madre en alícuotas a -20 ° C. Determinar la concentración de péptido correcta en un espectrofotómetro UV-Vis usando un coeficiente de extinción a 280 nm de 5700 M -1 cm -1. NOTA: El péptido (12-55) NC se obtuvo HPLC purificado y liofilizadoilized de una solución que contiene dos equivalentes de cloruro de zinc. </li></ol></li><li> Compuesto 1 <ol><li> Pesar aproximadamente 1 mg del compuesto liofilizado 1 usando una balanza analítica y se disuelven en 100 l de DMSO al 100%, oportunamente pesados, para obtener una alta concentración (mM ≈10) solución madre. Determinar la concentración exacta compuesto en un espectrofotómetro UV-Vis utilizando su coeficiente de extinción (a 354 nm: 11387 M -1 cm -1). La solución madre, en la oscuridad a -20 ° C antes de su uso. </li></ol></li></ol> 2. Configuración del aparato de gel y Fundición del gel <ol><li> Para configurar el gel, enjuague dos platos (uno largo y otro más corto) con etanol al 70%, dejar secar, y luego colocar dos espaciadores de 1 mm a lo largo de los bordes largos de la placa más larga; cúbralo con la placa corta, y asegúrese de alinear las dos placas en la parte inferior. </li><li> Para lanzar el gel, siga las instrucciones proporcionadas por el supllier (diferentes proveedores utilizan aparatos ligeramente diferente; abrazaderas sándwich y pilas son proporcionados por cada aparato de fundición). En todos los casos, asegúrese de que las abrazaderas, pilas y las juntas están limpias, y eliminar los restos de acrilamida dejados por los usuarios anteriores. </li><li> Coloque el emparedado de gel montado en el soporte de fundición y seguir las instrucciones específicas por parte del proveedor. NOTA: Por lo general, una junta de silicona limpia en la parte inferior de la ranura de colada se asegura un buen sello y ayuda a evitar fugas cuando se vierte el gel. </li><li> Para comprobar si hay fugas, verter agua destilada utilizando una pipeta entre las placas de vidrio. Agregue agua para llenar el sándwich y esperar algunos minutos para asegurarse de que no se produzcan fugas. Si el sándwich se ensambla correctamente, retire el agua e insertar un papel de filtro entre los dos vasos para secar las gafas. Retire el papel y ahora el sándwich está listo para la fundición de gel. </li><li> Verter gel a temperatura ambiente (RT, 25 ° C). Desde poliacrilamida es altamente neurotóxico, use guantes. Nosotrose continuas 12% geles de poliacrilamida en condiciones no desnaturalizantes (nativos) para llevar a cabo el ensayo NAME. <ol><li> Preparar la solución de gel de 12%: mezclar 12 ml de 40% de acrilamida / bisacrilamida (19/1) solución, 4 ml TBE tampón 10x (10x: Tris-HCl 890 mM, borato 890 mM, EDTA 20 mM) y agua 24 ml MilliQ . Añadir 400 APS ly 50 l de TEMED inmediatamente antes de su uso. Mezclar la solución y utilizar rápidamente una pipeta para verter la solución hacia abajo entre las placas de vidrio. Introducir el peine entre las placas de vidrio, evitando las burbujas. Añadir solución de gel para llenar completamente el sándwich. </li></ol></li><li> Deje que el gel se polimeriza durante 45 minutos a 1 hora. Inmediatamente antes de la carga de muestra, retire el peine y enjuague lentamente pozos a fondo con agua destilada. </li><li> Después de las etapas de polimerización y pozos de enjuague, siga las instrucciones específicas por el proveedor a la sándwich de gel en el aparato de electroforesis en gel vertical. Si un sistema de refrigeración está presente, asegúrese de colocar el sistema de gel en el correct posición de la refrigeración del núcleo. </li><li> Si el sistema está diseñado para manejar más de un gel, pero sólo un gel tiene que ser ejecutado, adjuntar un sándwich de gel como presa de tampón para la refrigeración del núcleo en el otro lado para formar la cámara completa tampón superior. NOTA: si la presa no se coloca correctamente, el búfer superior se escapará posiblemente detener la carrera gel. </li><li> Preparar 2,5 L de tampón de TBE (1x: Tris-HCl 89 mM, borato 89 mM, EDTA 2 mM) en agua desionizada. Apartadme unos 500 ml de tampón TBE para la cámara intermedia superior y vierta el resto en la cámara intermedia inferior. Verter la 500 ml de tampón TBE restante en la cámara de tampón superior. </li><li> Coloque la tapa en la parte superior de la cámara de tampón inferior, de manera que el ánodo y el cátodo están en la posición apropiada. </li><li> Conectar la refrigeración del núcleo, si está presente, a un grifo de agua usando mangueras. Llenar el núcleo con agua del grifo, que actuará como un disipador de calor durante la electroforesis, y dejar que el agua del grifo circule a través del núcleo durante elegidosrophoresis. </li></ol> Mediada por recocido 3. nucleocápside electroforesis (NOMBRE) Ensayo <ol><li> Preparación de tampones <ol><li> Preparar tampón TNMG (1x: Tris-HCl 10 mM, NaCl 20 mM, Mg (ClO 4) 2 1 mM, pH 7,5) en agua tratada con DEPC-y filtrar la solución con un filtro de 0,22 micras de tamaño de poro. NOTA: tampón TNMG se puede almacenar a 4 ° C hasta 7 días. Para obtener los mejores resultados de plegado y de recocido, se recomienda el uso de tampones recién hechos. </li><li> Preparar el tampón de carga de gel que contenía SDS (SDS GLB: Tris-HCl 100 mM, EDTA 4 mM, 50% w / v de glicerol, 2% w / v de SDS, 0,05% w / v azul de bromofenol) en agua tratada con DEPC. NOTA: GLB ayuda a realizar un seguimiento de hasta qué punto las muestras de oligonucleótidos se están ejecutando en el sistema de gel y permite hundir las muestras en el gel. La adición de SDS al GLB es un paso crítico para el éxito óptimo de ensayo NOMBRE. Si no se sigue este paso, no es posible distinguir banda de ácidos nucleicos en la gel sistema (Figura 2). </li></ol></li><li> Controla preparación <ol><li> Diluir los oligonucleótidos en serie soluciones madre y utilizar recién hechos 10 mM soluciones para preparar 10 l de una solución 1 M de TAR. Preparar la misma manera, por separado, 10 l de un 1 mM en tampón de CTAR TNMG 1x. Calentar cada tubo a 95 ° C durante 5 min y luego dejar enfriar a RT con el fin de TAR y CTAR a asumir sus estructuras de tallo-bucle-protuberancia. </li><li> Preparar 1 mM solución de TAR híbrido / CTAR como control. Mezclar 1 l de 10 mM TAR con 1 l de 10 mM CTAR en TNMG 1x, en un volumen total de 10 l. Desnaturalizar los oligonucleótidos calentando el tubo a 95 ° C durante 5 min y se deja enfriar lentamente a temperatura ambiente con el fin de TAR para hibridar con su secuencia complementaria CTAR y para formar el TAR de doble cadena híbrida / CTAR. </li><li> Cuando las soluciones se enfriaron a RT, realizar una centrifugación corta-spin. Añadir 3 l de GLB SDS, eac pipetah solución dentro del tubo 3 veces y poner el tubo en hielo. Mantenga las muestras de control constante en hielo hasta la etapa de carga. </li></ol></li><li> Preparación de muestras para analizar la proteína NC y (12-55) actividad del péptido NC <ol><li> Utilice 2,5 l de solución recién hecha oligonucleótido 4 mu M para cada muestra. Prepare siempre una pequeña cantidad en exceso de cada solución para evitar los errores de pipeteo. Doblar 32,5 l de solución 4 mM de TAR y, por separado, de CTAR en tampón 1x TNMG como se informó para la preparación controles anteriormente mencionado (paso 3.2.1.). </li><li> Diluir la solución madre de ambas proteínas NC y el péptido (12-55) NC 80 mM solución con agua MilliQ. </li><li> Cuando las soluciones de alquitrán y CTAR se enfrió a ta, realizar una centrifugación a corto giro de ambos tubos y comenzar la preparación de los tubos de muestras. </li><li> Preparar 12 vacíos tubos de 0,5 ml en autoclave. Coloque 3 filas de 4 tubos en el rack para muestras de laboratorio. Cada fila indica respectivamente las muestras para analizar ªe proteína NC de larga duración, las muestras sin proteína y las muestras para analizar el (12-55) actividad péptido NC. </li><li> Siempre reemplace consejos cada vez que se utiliza un reactivo diferente. </li><li> Añadir en cada tubo 2,5 l de TAR plegada y 2,5 l de plegado CTAR. Añadir 4 l de agua tratada con DEPC a las muestras para el análisis de NC y de (12-55) NC. Añadir 5 l de agua tratada con DEPC a las otras muestras. </li><li> Añadir 1 l de 80 mM NC o 1 l de 80 micras (12-55) NC a las muestras, respectivamente, NC o (12-55) análisis NC. </li><li> Añadir inmediatamente 3 l de GLB SDS a las muestras min tiempo 0 (reportados como 0 &#39;en la Figura 1), pipeteando la solución en el interior de cada tubo 3 veces, y finalmente poner el tubo en hielo. Repita este paso para todas las muestras y controles. Mantenga las muestras constante en hielo hasta la etapa de carga. </li><li> Después de 15 minutos, 30 minutos y 1 hora de incubación a temperatura ambiente, añadir 3 l de GLB SDS, pipeta la solución dentro eactubo h 3 veces y poner el tubo en hielo. Repita este paso para todas las muestras y controles, respectivamente, y mantener en hielo hasta la etapa de carga. </li><li> Retirar la tapa del aparato de gel. Cargar 13 l de cada muestra en los pocillos formados como se describió previamente por colada del gel con un peine de formación de bien. Cargar las muestras siguiendo el orden reportado en la Figura 1. </li><li> Vuelva a colocar la tapa del aparato de gel. Conecte los cables del aparato de gel para la fuente de alimentación. Compruebe que los electrodos se conectan en las ranuras correctas en la fuente de alimentación. </li><li> Encienda la alimentación y ejecutar el gel durante 2 horas y 30 min a un voltaje constante de 200 V, hasta que el colorante ha migrado a 1,5 cm por encima de la parte inferior del gel. </li></ol></li><li> Preparación de muestras para analizar la actividad de antraquinona en Carolina del Norte y (12-55) NC <ol><li> Diluir la solución madre de compuesto 1. Preparar 10 l de la 500 mM, 250 mM, 50 mM, dilución 5 M de compuesto &lt;strong&gt; 1 en agua MilliQ. </li><li> Preparar las muestras de control como se informó anteriormente (apartado 3.2.). </li><li> Utilice 2,5 l de solución recién hecha oligonucleótido 4 mu M para cada muestra. Prepare siempre una pequeña cantidad en exceso de cada solución para evitar los errores de pipeteo. Doblar 27,5 l de solución 4 mM de TAR y, por separado, de CTAR en tampón 1x TNMG como se mencionó anteriormente (paso 3.2.1.). </li><li> Diluir la solución madre de tanto la proteína NC y el péptido (12-55) NC a 80 mM solución en agua. </li><li> Cuando las soluciones de alquitrán y CTAR se enfrió a ta, realizar una centrifugación a corto giro de ambos tubos y comenzar la preparación de las muestras. </li><li> Preparar 20 vacíos tubos de 0,5 ml en autoclave. Coloque 2 filas de 10 tubos cada uno en el bastidor para muestras de laboratorio. </li><li> Siempre reemplace consejos cada vez que se utiliza un reactivo diferente. </li><li> Añadir todos los tubos de la primera fila con 2,5 l de TAR plegada. Añadir todos los tubos de la segunda fila con 2,5 l de plegado CTAR. </li><li&gt; Añadir 2 l de compuesto apropiado 1 de dilución (aumento de la concentración de los 5 M a la dilución 500 m) para TAR y al CTAR. Reemplazar compuesto con agua en las muestras para el análisis de NC y (12-55) NC en ausencia de compuesto. Se incuban las muestras durante 15 min a RT. </li><li> Después de 15 minutos de incubación, mezclar las muestras CTAR (tubos de segunda fila) con las muestras TAR corresponsal (tubos de primera fila). </li><li> Añadir 1 l de 80 mM NC o 1 l de 80 mM (12-55) NC a las muestras de Carolina del Norte o (12-55) el análisis NC, respectivamente. </li><li> Después de 15 minutos de incubación, añadir 3 l de GLB SDS, pipetear cada tubo 3 veces y poner el tubo en hielo. Repita este paso, respectivamente, utilizando las muestras para NC y (12-55) análisis NC. Mantenga las muestras constante en hielo hasta la etapa de carga. </li><li> Retirar la tapa del aparato de gel. Cargar 13 l de cada muestra en los pocillos. Cargar las muestras siguiendo el orden reportado en la figura3B Ure. </li><li> Vuelva a colocar la tapa del aparato de gel. Conecte los cables del aparato de gel para la fuente de alimentación. Compruebe que los electrodos se conectan en las ranuras correctas en la fuente de alimentación. </li><li> Encienda la alimentación y ejecutar el gel durante 2 horas y 30 min a un voltaje constante de 200 V, hasta que el colorante ha migrado a 1,5 cm por encima de la parte inferior del gel. </li></ol></li><li> Preparación de la muestra: el modo de oligo-preincubación vs modo NC-preincubación <ol><li> Diluir el compuesto 1 solución madre. Preparar 10 l de los 500 m, 250 mM, 50 mM, 5 mM de dilución de compuesto 1 en agua MilliQ. </li><li> Preparar las muestras de control como se informó anteriormente (apartado 3.2.). </li><li> Utilice 2,5 l de solución de oligonucleótido 4 mu M para cada muestra. Prepare siempre una pequeña cantidad en exceso de cada solución para evitar los errores de pipeteo. Doblar 27,5 l de solución 4 mM de TAR y, por separado, de CTAR en tampón 1x TNMG como se mencionó anteriormente (paso 3.20.1.). </li><li> Diluir la solución madre de tanto la proteína NC y el péptido (12-55) NC a 80 mM solución en agua. </li><li> Cuando las soluciones de alquitrán y CTAR se enfrió a ta, realizar una centrifugación a corto giro de ambos tubos y comenzar la preparación de las muestras. </li><li> Siempre reemplace consejos cada vez que los reactivos se cambian o si cualquier otro líquido o solución contenida en el tubo de reacción se toca. </li><li> A partir de este paso en asegurarse de etiquetar y separar las muestras de los dos procedimientos de pre-incubación diferentes claramente. <ol><li> Modo Oligo-preincubación <ol><li> Preparar 10 vacíos tubos de 0,5 ml en autoclave. Coloque 2 filas de 5 tubos en el rack para muestras de laboratorio. </li><li> Añadir en cada tubo de la primera fila 2,5 l de TAR plegada. Añadir en cada tubo de la segunda fila 2,5 l de plegado CTAR. </li><li> Añadir 2 l de el compuesto apropiado 1 de dilución (aumento de la concentración de los 5 M a la dilución 500 m) para TAR y al CTAR.Reemplazar compuesto con agua en las muestras para el análisis de NC en ausencia de compuesto. Se incuban las muestras durante 15 min a RT. </li><li> Después de 15 minutos de incubación, tomar las muestras CTAR (segunda fila) y ponerlos con las muestras TAR corresponsal (primera fila). </li><li> Añadir 1 l de 80 mM NC a cada muestra e incubar las muestras durante 15 min a TA. </li><li> Después de 15 minutos de incubación, añadir 3 l de GLB SDS, pipetear cada tubo 3 veces y poner el tubo en hielo. Mantenga las muestras constante en hielo hasta la etapa de carga. </li></ol></li><li> Modo NC-preincubación <ol><li> Preparar 5 vacías tubos de 0,5 ml en autoclave y colocarlos en el bastidor para muestras de laboratorio. </li><li> Añadir en cada tubo 4 l del compuesto 1 dilución apropiada (aumento de la concentración de la 5 M a la dilución 500 mM). Reemplazar compuesto con agua en las muestras para el análisis de NC en ausencia de compuesto. </li><li> Añadir en cada tubo 1 l de 80 μ; M NC e incubar las muestras durante 15 min a TA. </li><li> Mezclar 15 l de TAR plegado con 15 l de plegado CTAR en un tubo y utilizar esta solución TAR + CTAR en la siguiente etapa. </li><li> Después de 15 min de incubación, añadir a cada muestra 5 l de la solución mezcla de TAR + CTAR e incubar las muestras durante 15 min a TA. </li><li> Después de 15 minutos de incubación, añadir 3 l de GLB SDS, pipetear cada tubo 3 veces y poner el tubo en hielo. Mantenga las muestras constante en hielo hasta la etapa de carga. NOTA: A partir del paso 3.5.8 en adelante, el análisis se puede realizar con todas las muestras (curriculum vitae de 3.5.7). </li></ol></li></ol></li><li> Retirar la tapa del aparato de gel. Cargar 13 l de cada muestra en los pocillos. Cargar las muestras siguiendo el orden indica en la figura 4. </li><li> Vuelva a colocar la tapa del aparato de gel. Conecte los cables del aparato de gel para la fuente de alimentación. Compruebe que los electrodos se conectan en las ranuras correctas en el supl podery. </li><li> Encienda la alimentación y ejecutar el gel durante 2 horas y 30 min a un voltaje constante de 200 V, hasta que el colorante ha migrado a 1,5 cm por encima de la parte inferior del gel. </li></ol></li></ol> 4. Quitar el gel y gel de tinción <ol><li> Después de la electroforesis, apague la fuente de alimentación y desconecte los cables eléctricos. Cierre el grifo de agua del sistema de refrigeración y desconecte las mangueras del núcleo. </li><li> Retire la tapa, y, si el sistema se enfrió, retire la refrigeración del núcleo y verter el tampón de ambas cámaras. </li><li> Desensamblar suavemente el sándwich de gel del aparato y eliminar todas las abrazaderas de las placas de vidrio. Para retirar el gel de las placas, empujar uno de los espaciadores fuera al lado de las placas y girar suavemente para tirar hacia arriba y lejos de la placa de vidrio superior. Sujete dos esquinas del gel y lo despega suavemente para retirarla de la copa. </li><li> Colocar el gel en un recipiente adecuado con la solución de tinción de ácidos nucleicos deseada para30-45 min con agitación. </li><li> Después de la tinción, poner el gel en un transiluminador sistema de imágenes para detectar ácidos nucleicos señal de fluorescencia en el sistema de gel. </li></ol>

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W., Darlix, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Disordered+RNA+chaperone+proteins:+from+functions+to+disease.">Disordered RNA chaperone proteins: from functions to disease.</a> Cell Mol Life Sciences: CMLS. 62, 1409-1417 (2005).</li><li>Zagotto, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tuning+G-quadruplex+vs+double-stranded+DNA+recognition+in+regioisomeric+lysyl-peptidyl-anthraquinone+conjugates.">Tuning G-quadruplex vs double-stranded DNA recognition in regioisomeric lysyl-peptidyl-anthraquinone conjugates.</a> Bioconjug Chem. 22, 2126-2135 (2011).</li><li>Carlson, C. B., Vuyisich, M., Gooch, B. D., Beal, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preferred+RNA+binding+sites+for+a+threading+intercalator+revealed+by+in+vitro+evolution.">Preferred RNA binding sites for a threading intercalator revealed by in vitro evolution.</a> Chem Biol. 10, 663-672 (2003).</li><li>Gooch, B. D., Beal, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recognition+of+duplex+RNA+by+helix-threading+peptides.">Recognition of duplex RNA by helix-threading peptides.</a> J Am Chem Soc. 126, 10603-10610 (2004).</li><li>Kanevsky, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structural+determinants+of+TAR+RNA-DNA+annealing+in+the+absence+and+presence+of+HIV-1+nucleocapsid+protein.">Structural determinants of TAR RNA-DNA annealing in the absence and presence of HIV-1 nucleocapsid protein.</a> Nucleic Acids Res. 39, 8148-8162 (2011).</li></ol>

The authors declare that they have no competing financial interests.

NOMBRE es un ensayo que permite evaluar rápidamente la inhibición de la actividad chaperona de la proteína de la nucleocápside del VIH-1, un objetivo interesante en la búsqueda de nuevos fármacos anti-VIH. NC hibrida rápido y en ácidos nucleicos temperatura ambiente cuyo plegado estable de otro modo requeriría desnaturalización térmica a alta temperatura seguido por cuidado de recocido. El ensayo se puede realizar con cualquiera de longitud completa NC o con el truncado (12-55) NC: en ambos casos, los dos ácidos nucleicos (ARN y su copia de ADN complementario) se hibridan rápidamente. Esto es consistente con la observación literatura con el péptido NC truncada: recocido se inicia por la fusión eficaz del tallo de CTAR seguido por la interacción de su bucle apical complementaria, que es un sitio de unión débil NC, con la secuencia complementaria de bucle apical TAR, terminando través de varios intermedios inestables al híbrido recocido extendida. 21 NC es un prot muy establemientras que podrían ocurrir NOMBRE realizar ein y pocos problemas. Es muy importante, sin embargo para agregar SDS recién hechos en la carga de gel tampón usado para detener la reacción: Si esto no se logra, el gel no mostrará las bandas de ácido nucleico en las posiciones correctas. De hecho, NC es una proteína de unión a ácido nucleico, de modo que para visualizar correctamente TAR / CTAR heterodúplex mediante electroforesis en gel de SDS debe estar presente en el tampón de carga de gel para desnaturalizar la proteína y liberarla de su complejo apretado con los ácidos nucleicos. Esto también es una posible solución de problemas del experimento, es decir, la formación de bandas pasado durante la ejecución de gel. Este efecto es particularmente evidente cuando se empleó la longitud completa NC, como en la Figura 2, y está vinculada a la presencia de la cola N-terminal altamente básica, que tiene un fuerte efecto de agregación en los ácidos nucleicos. La presencia de la cola básicas del terminal hace que la reacción de hibridación más difícil de ser inhibida, como se muestran en la figura 3, utilizando el compuesto 1, un intercalador enhebrado representativa, es decir, un intercalador particularmente eficaz en la estabilización de las estructuras de tallo-bucle de TAR y de CTAR. De hecho, este tipo de interacción con ácidos nucleicos se ve favorecida cuando protuberancias y bucles interrumpen la continuidad de doble hélice, lo que permite un roscado fácil de los sustituyentes voluminosos en los pares de bases. Estabilización de alquitrán y CTAR por estos aglutinante de ácidos nucleicos se analizó previamente por la determinación del aumento de la temperatura de fusión de los dos oligonucleótidos. 14 Por otra parte, el aumento de la temperatura de fusión se correlaciona con la inhibición de la hibridación catalizada por el VIH-1 NC, que conduce a la reducción de la formación del heterodúplex TAR / CTAR y que indica que intercaladores de roscado son una clase interesante de aglutinantes para estructuras dinámicas de ARN tal como el elemento TAR. 14 El mecanismo de acción invocada para estos compounds se puede validar aún más por la realización del ensayo nombre en diferentes formatos alternativos, como se muestra en la Figura 4: en el caso de intercaladores se mejora la inhibición de heterodúplex recocido cuando el fármaco se incubó con los dos oligos plegadas. Los compuestos que actúan con diferente mecanismo de acción, tales como aglutinantes directos de la proteína NC, serían menos afectada por la diferente modo de preincubación. NOMBRE ensayo realizado en los dos métodos, por tanto, podrían ser utilizados para cribar bibliotecas de compuestos para la identificación de inhibidores de Carolina del Norte, y también para evaluar el supuesto mecanismo de acción de los éxitos positivos durante la búsqueda de fármacos contra el VIH dirigidos a Carolina del Norte. Claramente, el uso de estas técnicas por sí solas cuando reclamando un mecanismo específico de acción de los inhibidores de la NC identificados no es suficiente, y se necesitan otros ensayos bioquímicos adecuados para sostener la hipótesis de trabajo. 14 Por último, hay que subrayar que NOMBRE utiliza altamenteenzimas purificadas, ya sea recombinantes o sintéticos, que dan información valiosa sobre la inhibición &quot;in vitro&quot; de NC por los compuestos ensayados. Esta es la &quot;fuerza y ​​la debilidad&quot; del ensayo: NOMBRE bien puede complementar el cribado virtual y modelado molecular se acerca en los pasos preliminares de los programas de descubrimiento de fármacos, lo que permite construir y analizar rápidamente las relaciones estructura-actividad y eventualmente reorientar el diseño y síntesis de drogas. Sin embargo, como otros ensayos bioquímicos utilizan en proyectos de desarrollo de fármacos en VIH, NAME no dará información sobre los efectos de los inhibidores putativos en células infectadas por virus.

La proteína de la nucleocápside NCp7 (NC) del virus de inmunodeficiencia humana tipo 1 (VIH-1) es una proteína pequeña, básico que está estrechamente asociada con el ARN genómico en el virus infeccioso maduro, jugando un papel fundamental en la replicación del virus como un cofactor durante la transcripción inversa , el reconocimiento del genoma, y el embalaje. 1-3 NC actúa como una chaperona de ácido nucleico catalizar la desestabilización de estructuras estables de ácidos nucleicos y la hibridación de secuencias complementarias. Su actividad de ácido nucleico reside principalmente en la agregación de los 11 aminoácidos del dominio N-terminal, mientras que la actividad de la desestabilización de dúplex se ha mapeado en sus estructuras de dedos de zinc (12-55 peptídicos). 4 La proteína cargada positivamente reduce la barrera electrostática de la reacción de recocido y aumenta la velocidad a la que dos secuencias complementarias separadas se unen. Los ácidos nucleicos plegadas en la conformación estable requieren las actividades chaperona de la NC a facilitate su recocido 5 Esto es particularmente importante en la transcripción inversa, donde NC es crítico en eventos de transferencia de hebra:. en la transferencia de cadena menos, el ADN parada de cadena menos, sólo retrotranscribed, debe ser transferido y hibrida con una secuencia complementaria en la región R en el extremo 3 &#39;del genoma de ARN de plantilla. 6 Aunque termodinámicamente favorecida, esta reacción no se produce ampliamente en la ausencia de NC debido a la presencia de la estructura estable de la activación trans región sensible (TAR) de ARN en las regiones R, que deben estar asociados a su copia de ADN (CTAR ADN). 7 regiones CTAR y TAR son, de hecho, altamente estructurado con una conformación de piruleta característica. Proteína NC desnaturaliza estas horquillas, y promueve la transferencia de cadena negativa mediante el aumento de la tasa de hibridación intermolecular entre las cadenas de ácido nucleico complementarias. El mecanismo de la NC de recocido de alquitrán y CTAR se ha investigado a fondo y dedescrito como ensayo de recocido TAR en varios trabajos de investigación y la medida propuesta se representa en excelentes críticas. 8-11 resumen, NC desestabiliza la estructura secundaria de ARN estable, como TIE-ARN, desestabiliza la estructura secundaria de su secuencia complementaria, CTAR-DNA , y promueve la reacción de hibridación de ARN / ADN que conduce a TAR / formación de heterodúplex CTAR 10,11. Como resultado, se favorece el paso de cadena de transferencia durante la replicación del VIH. 12 NC es un objetivo atractivo para el desarrollo de nuevos agentes antivirales ya que la posible interferencia inducida por pequeñas moléculas hacia NC resultaría en una reducción de la transcripción inversa del genoma viral como consecuencia de una actividad NC comprometida. 2,13 Este enfoque podría en última instancia conducir al desarrollo de agentes anti-VIH de éxito. En el curso de un cribado de inhibidores de la NC 14 hemos desarrollado un ensayo basándose en las propiedades bien conocidasde nucleocápside desestabilizar de manera eficiente y recocido oligonucleótidos complementarios 10,11. Lo llamamos N ucleocapsid Un nnealing- M ediated lectrophoresis (NOMBRE) ensayo E. NOMBRE ensayo utiliza NC para mediar el recocido entre las copias de manera estable estructurados de ácidos nucleicos complementarios, en nuestro caso del oligonucleótido correspondiente a la parte apical de una secuencia TAR-RNA con su secuencia de ADN complementaria (CTAR) para producir el híbrido TAR / CTAR heterodúplex . El análisis de la TAR / reacción de hibridación CTAR en presencia de NC puede ser investigado mediante electroforesis en gel de poliacrilamida nativa (PAGE). Este protocolo se muestra cómo realizar el ensayo NOMBRE para recocer rápidamente a temperatura ambiente oligonucleótidos dobladas en estructuras de horquilla estables, la forma de analizar el resultado de la reacción y posible resolución de problemas del experimento. No se solicita el etiquetado radioactivo del ácido nucleico, y detectien las bandas de oligonucleótidos se puede realizar por métodos convencionales de tinción. El ensayo, que emplea ya sea la proteína de longitud completa recombinante o una versión sintética truncada de NC, permite la identificación de intercaladores de roscado que inhiben NC, una actividad demostrado que se correlaciona con fuerte unión a ARN y ADN. 14

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="631">
	<tbody>
		<tr height="45">
			<td height="45" style="height:45px;width:192px;">Name of Material/Equipment</td>
			<td style="width:140px;">Company</td>
			<td style="width:145px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:155px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">cTAR, 29-mer DNA oligo. Desalted. HPLC purified.</td>
			<td style="width:140px;">Metabion International AG</td>
			<td style="width:145px;"></td>
			<td style="width:155px;">Store the stock&#160; solution at -20 &#176;C&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">TAR, 29-mer RNA oligo. Desalted. HPLC purified.&#160;&#160;</td>
			<td style="width:140px;">Metabion International AG</td>
			<td style="width:145px;"></td>
			<td style="width:155px;">Store the stock aliquot at -80 &#176;C&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">(12-55)NC peptide</td>
			<td style="width:140px;">EspiKem srl</td>
			<td style="width:145px;"></td>
			<td style="width:155px;">Store the stock solution at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">1.5 mL tubes</td>
			<td style="width:140px;">Eppendorf</td>
			<td style="width:145px;">0030 120 086</td>
			<td>Autoclave before use</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">0.5 mL tubes</td>
			<td style="width:140px;">Eppendorf</td>
			<td style="width:145px;">0030 121 023</td>
			<td>Autoclave before use</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">Biosphere Filter Tips 0.1-10 &#181;L</td>
			<td style="width:140px;">Sarstedt</td>
			<td style="width:145px;">701,130,210</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Biosphere Filter Tips 2-20 &#181;L</td>
			<td style="width:140px;">Sarstedt</td>
			<td style="width:145px;">70,760,213</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Biosphere Filter Tips 200 &#181;L</td>
			<td style="width:140px;">Sarstedt</td>
			<td style="width:145px;">70,760,213</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Syringe Filter 0,22 &#181;m</td>
			<td style="width:140px;">Biosigma srl</td>
			<td style="width:145px;">51,798</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Ethanol</td>
			<td style="width:140px;">Carlo Erba</td>
			<td style="width:145px;">414631</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Sodium Dodecyl Sulfate</td>
			<td style="width:140px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:145px;">71725-50G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Dimethyl Sulfoxide</td>
			<td style="width:140px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:145px;">D8418-1L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Sodium Chloride</td>
			<td style="width:140px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:145px;">71376-1KG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Boric Acid</td>
			<td style="width:140px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:145px;">B0252-2.5KG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">Ethylenediaminetetraacetic Acid</td>
			<td style="width:140px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:145px;">E5134-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">Magnesium Perchlorate</td>
			<td style="width:140px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:145px;">222283-100G</td>
			<td style="width:155px;">Store the 1M solution at&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; -20&#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Glycerol</td>
			<td style="width:140px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:145px;">49770-1L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">Bromophenol Blue</td>
			<td style="width:140px;">GE Healthcare Life Sciences</td>
			<td style="width:145px;">17-1329-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:192px;">N,N,N&#8242;,N&#8242;-Tetramethylethylenediamine</td>
			<td style="width:140px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:145px;">T9281-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:192px;">Ammonium Persulfate</td>
			<td style="width:140px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:145px;">A7460-500G</td>
			<td style="width:155px;">Prepare the 10% solution freshly before use</td>
		</tr>
		<tr height="80">
			<td height="80" style="height:80px;width:192px;">Acrylamide-bis ready-to-use solution 40% (19:1)</td>
			<td style="width:140px;">Merck Millipore</td>
			<td style="width:145px;">1006401000</td>
			<td style="width:155px;">Polyacrylamide is highly neurotoxic: wear gloves during the gel casting</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Tris ultrapure</td>
			<td style="width:140px;">Applichem</td>
			<td style="width:145px;">A1086,1000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">DEPC-treated water</td>
			<td style="width:140px;">Ambion</td>
			<td style="width:145px;">AM9922</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Centrifuge 5415R</td>
			<td style="width:140px;">Eppendorf</td>
			<td style="width:145px;">22,621,408</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">NanoDrop 1000 spectrometer</td>
			<td style="width:140px;">Thermo Scientific</td>
			<td style="width:145px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">UV-VIS spectrometer Lambda 20</td>
			<td style="width:140px;">Perkin Elmer</td>
			<td style="width:145px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Protean II xi Cell</td>
			<td style="width:140px;">Bio-Rad</td>
			<td style="width:145px;">165-1803</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">PowerPac Basic Power Supply</td>
			<td style="width:140px;">Bio-Rad</td>
			<td style="width:145px;">164-5050</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="80">
			<td height="80" style="height:80px;width:192px;">SybrGreen II RNA Gel Staining</td>
			<td style="width:140px;">Lonza</td>
			<td style="width:145px;">50523</td>
			<td style="width:155px;">Make the 1/10000 dilution in TBE 1X. Store it in the dark at 4&#176;C for two weeks&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:192px;">Geliance 600 Imaging System</td>
			<td style="width:140px;">Perkin Elmer</td>
			<td style="width:145px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

nucleocapsid annealing-mediated electrophoresis (name) assay allows the rapid identification of hiv-1 nucleocapsid inhibitors

ARN o ADN doblado en el plegamiento tridimensional estable son objetivos interesantes en el desarrollo de fármacos antivirales o antitumorales. En el caso del VIH-1, proteínas virales implicadas en la regulación de la actividad del virus reconocen varios ácidos nucleicos. La proteína de la nucleocápside NCp7 (NC) es una proteína clave que regula varios procesos durante la replicación del virus. NC es de hecho una chaperona desestabilizar las estructuras secundarias de ARN y ADN y facilitar su recocido. La inactivación de Carolina del Norte es un nuevo enfoque y un objetivo interesante para la terapia anti-VIH. El N ucleocapsid A nnealing- M ediated E lectrophoresis (NOMBRE) de ensayo se desarrolló para identificar moléculas capaces de inhibir la fusión y recocido de ARN y ADN doblado en conformaciones tridimensionales termodinámicamente estables, tales como estructuras de horquilla de TAR y elementos CTAR de VIH, por la proteína de la nucleocápside del VIH-1. El nuevo ensayo emplea ya sea la rerecombinante o la proteína sintética, y los oligonucleótidos sin la necesidad de su etiquetado anterior. El análisis de los resultados se logra mediante electroforesis en gel de poliacrilamida estándar (PAGE) seguido de tinción de ácido nucleico convencional. El protocolo se informa en este trabajo se describe cómo realizar el ensayo NOMBRE con la proteína de longitud completa o su versión truncada que carece del dominio N-terminal básico, tanto competente como ácidos nucleicos chaperones, y la forma de evaluar la inhibición de la actividad chaperona NC por un enhebrar intercalador. Por otra parte, NAME se puede realizar en dos modos diferentes, útil para obtener indicaciones sobre el supuesto mecanismo de acción de los inhibidores de la NC identificados.

La Figura 1 muestra un resultado representativo del ensayo de la nucleocápside Recocido mediada por Electroforesis (NAME), realizado i) con la proteína recombinante de longitud completa, ii) sin la proteína, es decir, la mezcla CTAR + TAR y la incubación de hasta 1 hora a RT, y iii ) el mismo ensayo realizado con (12-55) NC, un péptido sintético que carece de los 11 aminoácidos del dominio N-terminal. El TAR pre-doblado y CTAR se mezclaron y la formación de la TAR heterodúplex recocido / CTAR fue controlado en la presencia de la NC de longitud completa recombinante (carriles de la izquierda de la Figura 1), en ausencia de proteína (carriles centrales en la Figura 1 ), y en presencia de los (12-55) de péptido NC (carriles truncan por la derecha en la Figura 1). Los controles son: plegados CTAR, TAR dobladas, y recocidos híbrido (TAR / CTAR), obtenida a través de la desnaturalización térmica de las estructuras plegadas de forma estable TAR a CTAR seguido de su annealin lentog. 14 La capacidad de NC para desnaturalizar dos secuencias de ácidos nucleicos estables en la hélice heterodúplex extendida es claramente evidente: la proteína NC de longitud completa lleva inmediatamente a la formación de la TAR / CTAR híbrido: 0 &#39;indica el tiempo mínimo que pasa entre la adición de NC de las muestras y la adición de tampón de carga de gel, que se detiene la reacción; formación completa ya se alcanza después de 15 &#39;el tiempo de incubación. El aumento en la intensidad de la heterodúplex recocido es paralela a la disminución en la intensidad de los CTAR y TAR oligonucleótidos plegadas. La formación de heterodúplex se consigue también en la presencia de la forma truncada, es decir, el (12-55) NC, lo que confirma la actividad biológica del péptido sintético. En ausencia de la proteína o del péptido no se observa la formación de heterodúplex, y TAR y los oligonucleótidos CTAR no recocer a temperatura ambiente en el heterodúplex (Figura 1). Entodos los experimentos, la rápida formación de intermedios inestables (&quot;complejos intermedios&quot; en la Figura 1) que disminuyen con el tiempo se observa, de manera coherente con el mecanismo propuesto de la línea de cambio a través de las horquillas de CTAR y TAR hasta que los ácidos nucleicos plegamiento correcto. 17 Una posible solución de problemas del experimento es la falta de SDS en el Gel Loading Buffer. En ausencia de SDS en el GLB se muestra el resultado de la reacción en la Figura 2 y se compara con el resultado con GLB + SDS. El TAR pre-doblado y CTAR se mezclaron y se incubaron durante 3 horas a RT por 3 horas a 37 ° C con la proteína NC recombinante de longitud completa. Después de la incubación las muestras se dividieron en dos: a uno tampón de carga media gel sin SDS (GLB) se añadió, mientras que a la otra mitad GLB estaba con SDS (SDS GLB). Las muestras se cargaron en el gel, y la posición de los ácidos nucleicos bandas se visualizaron después de la gel dirigido portinción de colorante. Cuando NC estaba presente, pero las muestras se cargaron con GLB, todos los ácidos nucleicos bandas se desplazan hacia arriba: se espera e indica una fuerte unión entre la proteína y los ácidos nucleicos. Los resultados con SDS GLB se muestran en la extrema derecha del gel: la adición de SDS desnaturaliza la proteína y libera los ácidos nucleicos a partir del complejo estable con la proteína, lo que permite la comparación con los controles. El ensayo nombre se utiliza para evaluar la capacidad de enhebrar intercaladores para estabilizar estructuras de ácido nucleico dinámicos e inhibir la actividad chaperona NC. 14 intercaladores de roscado son moléculas aromáticas planas sustituidos por cadenas laterales voluminosas situadas en los sitios opuestos del sistema de anillos, tales como la antraquinona muestran en la Figura 3A. 18 Estos intercaladores son capaces de hilo a través de la doble hélice de los ácidos nucleicos, finalmente, la localización de sus cadenas laterales en cada ranura de la doblehélice. 19,20 La Figura 3B muestra el resultado del ensayo NOMBRE en presencia de compuesto 1, un intercalador de roscado conocida, 18 en presencia de NC de longitud completa o del péptido truncado. En ambos casos, la formación del híbrido TAR / CTAR por NC se reduce al aumentar la concentración del intercalador, mientras que, al mismo tiempo, la cantidad de alquitrán libre y aumenta CTAR. La forma truncada de la proteína que carece de la cola N-terminal (12-55NC) es más sensible a la inhibición de su actividad: esta diferencia se verificó con todos los compuestos ensayados hasta ahora. El ensayo NOMBRE se puede realizar de dos maneras, ya sea por pre-incubación del compuesto de prueba con NC, seguido de la adición de los oligonucleótidos plegados (modo NC-preincubación), o preincubando el compuesto de ensayo durante 15 min con los sustratos de ácido nucleico plegadas , seguido por la adición de NC y una incubación adicional durante 15 min (oligo-prmodo de eincubation). Aunque el tiempo total de incubación es de la misma en los dos modos diferentes, la preincubación con los oligonucleótidos plegadas antes de la adición de la NC permite más tiempo para el enhebrado de los intercaladores en el ácido nucleico plegada. Esto da lugar a una estabilización más fuerte de sus estructuras dinámicas y en una inhibición más fácil de las actividades de chaperonas NC. El análisis del ensayo NOMBRE en los dos modos, por tanto, mejora las diferencias en el mecanismo de acción de los inhibidores de Carolina del Norte, como se muestra en la Figura 4: cuando el compuesto 1 se analizó por su nombre en el modo de oligo-preincubación (Figura 4, los carriles de la izquierda) que muestra la inhibición potente de recocido mediada por NC, mientras que la inhibición mucho más baja se observó en el modo NC-preincubación (Figura 4, carriles a la derecha). Tenga en cuenta que para la determinación de las concentraciones inhibitorias mientras cribado series de compuestos relacionados con este ensayo y en estas condiciones, cada una expeción debe ser realizado al menos por triplicado utilizando concentraciones muy próximas entre sí (sobre todo en torno al valor IC 50). 14 <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/52474/52474fig1highres.jpg" /> Figura 1:. NOMBRE ensayo con larga duración NC y con la truncada (12-55) NC TAR Doblado y CTAR, cada 1 mM, se incubaron con NC recombinante o con (12-55) NC (oligos / CN = 1 / 8) para 0 min, 15 min, 30 min y 1 h. TAR y CTAR se incubaron en ausencia de proteína (0 min, 15 min, 30 min y 1 h) se utilizaron como control negativo. TAR doblado, plegado CTAR y el TIE híbrido / CTAR obtuvieron después de la desnaturalización térmica seguido se usaron in vitro de recocido como controles. Las reacciones se detuvieron a continuación, utilizando GLB SDS. Las muestras se resolvieron en un gel de poliacrilamida al 12% en TBE 1X; después de ácidos nucleicos de electroforesis en el gel se tiñeron y se detectó en un transiluminador. <html><img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/52474/52474fig2highres.jpg" /> Figura 2:. Efecto de SDS en tampón de carga de gel (GLB) al analizar TAR / CTAR de recocido por NC TAR y CTAR, dobladas en TNMG 1x, se incubaron con recombinante de longitud completa NC (oligos / NC = 1/8) para 3 hr a temperatura ambiente o a 37 ° C. GLB o GLB SDS a continuación, se añadieron a las muestras incubadas con NC. Controles: TAR, CTAR y el TIE híbrido recocido / CTAR (cada 1 M). Se realizó la electroforesis utilizando un gel de poliacrilamida al 12% en TBE 1x; después de ácidos nucleicos de electroforesis en el gel se tiñeron y se detectó en un transiluminador. Esta cifra se ha modificado desde la figura S4 de:. Sosic, A. et al Diseño, síntesis y evaluación biológica de TAR y aglutinantes CTAR como el VIH-1 inhibidores de la nucleocápside MedChemComm 4, 1388-1393, doi:. 10.1039 / c3md00212h (2013) . &quot;&gt; <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/52474/52474fig3highres.jpg" /> Figura 3: (A) Estructura química del intercalador roscado 1. (B) Efecto de enhebrar intercalador 1 evaluada mediante el ensayo de NAME. Plegada TAR y CTAR, cada uno 1 mM, se incubaron en presencia de las concentraciones indicadas de compuesto 1 con la longitud completa NC o con el (12-55) NC, cada 8 M. TAR doblado, plegado CTAR y el TIE heterodúplex ampliada / CTAR se utilizaron como controles. Las reacciones se detuvieron a continuación, utilizando GLB SDS. Las muestras se resolvieron en un gel de poliacrilamida al 12% en TBE 1X; después de ácidos nucleicos de electroforesis en el gel se tiñeron y se detectó en un transiluminador. <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/52474/52474fig4highres.jpg" /> Figura 4: Oligo-preincubación modos versus NC-preincubación: efectos sobre el ensayo NOMBRE Oligo-preincubación mod.e: TAR doblada y plegada CTAR, cada uno de 1 M, se preincubaron con las concentraciones indicadas de la intercalador roscado 1 durante 15 min, y luego durante otros 15 min en presencia de la longitud completa NC (8 M) NC-preincubación. modo: las concentraciones indicadas de la intercalador de roscado 1 se preincubaron con la longitud completa NC (8 mM) durante 15 min, y luego durante otros 15 min en presencia de TAR doblado y plegado CTAR, cada uno 1 mM. TAR doblado, plegado CTAR y el TIE heterodúplex ampliada / CTAR se utilizaron como controles. Todas las reacciones se detuvieron finalmente usando GLB SDS. Las muestras se resolvieron en un gel de poliacrilamida al 12% en TBE 1X; después de ácidos nucleicos de electroforesis en el gel se tiñeron y se detectó en un transiluminador.

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Nucleocapsid Annealing-Mediated Electrophoresis NAME Assay Allows the Rapid Identification of HIV-1 Nucleocapsid Inhibitors

This protocol describes NAME, an assay that allows the rapid identification of molecules able to inhibit in vitro the chaperone activities of HIV-1 nucleocapsid protein.

El recocido mediada nucleocápside electroforesis (NOMBRE) ensayo permite la identificación rápida del VIH-1 inhibidores de la nucleocápside

RNA or DNA folded in stable tridimensional folding are interesting targets in the development of antitumor or antiviral drugs. In the case of HIV-1, viral ...

nucleocapsid-annealing-mediated-electrophoresis-name-assay-allows

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Nucleocapsid Annealing-Mediated Electrophoresis (NAME) Assay Allows the Rapid Identification of HIV-1 Nucleocapsid Inhibitors

8.8K vistas.  University of Padova. This protocol describes NAME, an assay that allows the rapid identification of molecules able to inhibit in vitro the chaperone activities of HIV-1 nucleocapsid protein.

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Genotypic Inference of HIV-1 Tropism Using Population-based Sequencing of V3

Background: Prior to receiving a drug from CCR5-antagonist class in HIV therapy, a patient must undergo an HIV tropism test to confirm that his or her viral population uses the CCR5 coreceptor for cellular entry, and not an alternative coreceptor. One approach to tropism testing is to examine the sequence of the V3 region of the HIV envelope, which interacts with the coreceptor.
Methods: Viral RNA is extracted from blood plasma. The V3 region is amplified in triplicate with nested reverse transcriptase-PCR. The amplifications are then sequenced and analyzed using the software, RE_Call. Sequences are then submitted to a bioinformatic algorithm such as geno2pheno to infer viral tropism from the V3 region. Sequences are inferred to be non-R5 if their geno2pheno false positive rate falls below 5.75%. If any one of the three sequences from a sample is inferred to be non-R5, the patient is unlikely to respond to a CCR5-antagonist.

HIV tropism can be inferred from the V3 region of the viral envelope. V3 is PCR amplified in triplicate using nested RT-PCR, sequenced, and interpreted using bioinformatic software. Samples with with 1 or more sequence(s) with low g2P scores are classified as non-R5 virus.

Inferencia genotípica del VIH-1 tropismo utilizando la población basada en la secuencia de V3

Background: Prior to receiving a drug from CCR5-antagonist class in HIV therapy, a patient must undergo an HIV tropism test to confirm that his or her ...

Investigación

Inmunología e Infección

Amplifying and Quantifying HIV-1 RNA in HIV Infected Individuals with Viral Loads Below the Limit of Detection by Standard Clinical Assays

Amplifying viral genes and quantifying HIV-1 RNA in HIV-1 infected individuals with viral loads below the limit of detection by standard assays (below 50-75 copies/ml) is necessary to gain insight to viral dynamics and virus host interactions in patients who naturally control the infection and those who are on combination antiretroviral therapy (cART). 
Here we describe how to amplify viral genomes by single genome sequencing (the SGS protocol) 13, 19 and how to accurately quantify HIV-1 RNA in patients with low viral loads (the single-copy assay (SCA) protocol) 12, 20. 
The single-copy assay is a real-time PCR assay with sensitivity depending on the volume of plasma being assayed. If a single virus genome is detected in 7 ml of plasma, then the RNA copy number is reported to be 0.3 copies/ml. The assay has an internal control testing for the efficiency of RNA extraction, and controls for possible amplification from DNA or contamination. Patient samples are measured in triplicate.
The single-genome sequencing assay (SGS), now widely used and considered to be non-labor intensive 3, 7, 12, 14, 15,is a limiting dilution assay, in which endpoint diluted cDNA product is spread over a 96-well plate. According to a Poisson distribution, when less than 1/3 of the wells give product, there is an 80% chance of the PCR product being resultant of amplification from a single cDNA molecule. SGS has the advantage over cloning of not being subjected to resampling and not being biased by PCR-introduced recombination 19. However, the amplification success of SCA and SGS depend on primer design. Both assays were developed for HIV-1 subtype B, but can be adapted for other subtypes and other regions of the genome by changing primers, probes, and standards.

Quantifying levels of HIV-1 RNA in plasma and sequencing single HIV-1 genomes from individuals with viral loads below the limit of detection (50-75 copies/ml) is difficult. Here we describe how to extract and quantify plasma viral RNA using a real time PCR assay that reliably measures HIV-1 RNA down to 0.3 copies/ml and how to amplify viral genomes by single genome sequencing, from samples with very low viral loads.

Amplificación y cuantificación del ARN VIH-1 en individuos infectados por VIH con cargas virales por debajo del límite de detección por parte de Standard Ensayos Clínicos

Amplifying viral genes and quantifying HIV-1 RNA in HIV-1 infected individuals with viral loads below the limit of detection by standard assays (below ...

In vitro Uncoating of HIV-1 Cores

The genome of the retroviruses is encased in a capsid surrounded by a lipid envelope. For lentiviruses, such as HIV-1, the conical capsid shell is composed of CA protein arranged as a lattice of hexagon. The capsid is closed by 7 pentamers at the broad end and 5 at the narrow end of the cone1, 2. Encased in this capsid shell is the viral ribonucleoprotein complex, and together they comprise the core.
Following fusion of the viral membrane with the target cell membrane, the HIV-1 is released into the cytoplasm. The capsid then disassembles releasing free CA in the soluble form3 in a process referred to as uncoating. The intracellular location and timing of HIV-1 uncoating are poorly understood. Single amino-acid substitutions in CA that alter the stability of the capsid also impair the ability of HIV-1 to infect cells4. This indicates that the stability of the capsid is critical for HIV-1 infection.
HIV-1 uncoating has been difficult to study due to lack of availability of sensitive and reliable assays for this process. Here we describe a quantitative method for studying uncoating in vitro using cores isolated from infectious HIV-1 particles. The approach involves isolation of cores by sedimentation of concentrated virions through a layer of detergent and into a linear sucrose gradient, in the cold. To quantify uncoating, the isolated cores are incubated at 37&deg;C for various timed intervals and subsequently pelleted by ultracentrifugation. The extent of uncoating is analyzed by quantifying the fraction of CA in the supernatant. This approach has been employed to analyze effects of viral mutations on HIV-1 capsid stability4, 5, 6. It should also be useful for studying the role of cellular factors in HIV-1 uncoating.

In vitro Uncoating of HIV-1 Cores

Uncoating is an essential step in the early phase of the HIV-1 life cycle and is defined as the disassembly of the capsid shell and the release of the viral ribonucleoprotein complex (vRNP). Here, we demonstrate techniques for isolating intact cores from HIV-1 virions and for quantifying their uncoating in vitro.

En uncoating in vitro del VIH-1 Cores

The genome of the retroviruses is encased in a capsid surrounded by a lipid envelope. For lentiviruses, such as HIV-1, the conical capsid shell is ...

New Tools to Expand Regulatory T Cells from HIV-1-infected Individuals

CD4+ Regulatory T cells (Tregs) are potent immune modulators and serve an important function in human immune homeostasis. Depletion of Tregs has led to measurable increases in antigen-specific T cell responses in vaccine settings for cancer and infectious pathogens. However, their role in HIV-1 immuno-pathogenesis remains controversial, as they could either serve to suppress deleterious HIV-1-associated immune activation and thus slow HIV-1 disease progression or alternatively suppress HIV-1-specific immunity and thereby promote virus spread. Understanding and modulating Treg function in the context of HIV-1 could lead to potential new strategies for immunotherapy or HIV vaccines. However, important open questions remain on their role in the context of HIV-1 infection, which needs to be carefully studied.
Representing roughly 5% of human CD4+ T cells in the peripheral blood, studying the Treg population has proven to be difficult, especially in HIV-1 infected individuals where HIV-1-associated CD4 T cell and with that Treg depletion occurs. The characterization of regulatory T cells in individuals with advanced HIV-1 disease or tissue samples, for which only very small biological samples can be obtained, is therefore extremely challenging. We propose a technical solution to overcome these limitations using isolation and expansion of Tregs from HIV-1-positive individuals.
Here we describe an easy and robust method to successfully expand Tregs isolated from HIV-1-infected individuals in vitro. Flow-sorted CD3+CD4+CD25+CD127low Tregs were stimulated with anti-CD3/anti-CD28 coated beads and cultured in the presence of IL-2. The expanded Tregs expressed high levels of FOXP3, CTLA4 and HELIOS compared to conventional T cells and were shown to be highly suppressive. Easier access to large numbers of Tregs will allow researchers to address important questions concerning their role in HIV-1 immunopathogenesis. We believe answering these questions may provide useful insight for the development of an effective HIV-1 vaccine.

CD4+ Regulatory T cells are potent immune-modulators and serve important functions in immune homeostasis. The paucity of these cells in peripheral blood makes functional studies challenging, specifically in the context of HIV-1-infection. We here describe a method to isolate and expand functional CD4+ Tregs from peripheral blood from HIV-1-infected individuals.

Nuevas herramientas para expandir células T reguladoras de las personas VIH-1-infected

CD4+ Regulatory T cells (Tregs) are potent immune modulators and serve an important function in human immune homeostasis. Depletion of Tregs has led to ...

Rapid Screening of HIV Reverse Transcriptase and Integrase Inhibitors

Although a number of anti HIV drugs have been approved, there are still problems with toxicity and drug resistance. This demonstrates a need to identify new compounds that can inhibit infection by the common drug resistant HIV-1 strains with minimal toxicity. Here we describe an efficient assay that can be used to rapidly determine the cellular cytotoxicity and efficacy of a compound against WT and mutant viral strains.
The desired target cell line is seeded in a 96-well plate and, after a 24 hr incubation, serially dilutions of the compounds to be tested are added. No further manipulations are necessary for cellular cytotoxicity assays; for anti HIV assays a predetermined amount of either a WT or drug resistant HIV-1 vector that expresses luciferase is added to the cells. Cytotoxicity is measured by using an ATP dependent luminescence assay and the impact of the compounds on infectivity is measured by determining the amount of luciferase in the presence or the absence of the putative inhibitors.
This screening assay takes 4 days to complete and multiple compounds can be screened in parallel. Compounds are screened in triplicate and the data are normalized to the infectivity/ATP levels in absence of target compounds. This technique provides a quick and accurate measurement of the efficacy and toxicity of potential anti HIV compounds.

Here we describe cellular cytotoxicity and single round infectivity assays that allow for the rapid and accurate screening of compounds to determine their cellular cytotoxicity (CC50) and IC50 values against WT and drug resistant HIV-1.

Detección rápida de la transcriptasa inversa del VIH y inhibidores de la integrasa

Although a number of anti HIV drugs have been approved, there are still problems with toxicity and drug resistance. This demonstrates a need to identify ...

Conformational Evaluation of HIV-1 Trimeric Envelope Glycoproteins Using a Cell-based ELISA Assay

HIV-1 envelope glycoproteins (Env) mediate viral entry into target cells and are essential to the infectious cycle. Understanding how those glycoproteins are able to fuel the fusion process through their conformational changes could lead to the design of better, more effective immunogens for vaccine strategies. Here we describe a cell-based ELISA assay that allows studying the recognition of trimeric HIV-1 Env by monoclonal antibodies. Following expression of HIV-1 trimeric Env at the surface of transfected cells, conformation specific anti-Env antibodies are incubated with the cells. A horseradish peroxidase-conjugated secondary antibody and a simple chemiluminescence reaction are then used to detect bound antibodies. This system is highly flexible and can detect Env conformational changes induced by soluble CD4 or cellular proteins. It requires minimal amount of material and no highly-specialized equipment or know-how. Thus, this technique can be established for medium to high throughput screening of antigens and antibodies, such as newly-isolated antibodies.

Understanding viral surface antigens conformations is required to evaluate antibody neutralization and guide the design of effective vaccine immunogens. Here we describe a cell-based ELISA assay that allows the study of the recognition of trimeric HIV-1 Env expressed at the surface of transfected cells by specific anti-Env antibodies.

Evaluación conformacional del VIH-1 glicoproteínas de la envoltura trimérica El uso de un ELISA ensayo basado en células

HIV-1 envelope glycoproteins (Env) mediate viral entry into target cells and are essential to the infectious cycle. Understanding how those glycoproteins ...

Isolation of Exosomes from the Plasma of HIV-1 Positive Individuals

Exosomes are small vesicles ranging in size from 30 nm to 100 nm that are released both constitutively and upon stimulation from a variety of cell types. They are found in a number of biological fluids and are known to carry a variety of proteins, lipids, and nucleic acid molecules. Originally thought to be little more than reservoirs for cellular debris, the roles of exosomes regulating biological processes and in diseases are increasingly appreciated.
Several methods have been described for isolating exosomes from cellular culture media and biological fluids. Due to their small size and low density, differential ultracentrifugation and/or ultrafiltration are the most commonly used techniques for exosome isolation. However, plasma of HIV-1 infected individuals contains both exosomes and HIV viral particles, which are similar in size and density. Thus, efficient separation of exosomes from HIV viral particles in human plasma has been a challenge.
To address this limitation, we developed a procedure modified from Cantin et. al., 2008 for purification of exosomes from HIV particles in human plasma. Iodixanol velocity gradients were used to separate exosomes from HIV-1 particles in the plasma of HIV-1 positive individuals. Virus particles were identified by p24 ELISA. Exosomes were identified on the basis of exosome markers acetylcholinesterase (AChE), and the CD9, CD63, and CD45 antigens. Our gradient procedure yielded exosome preparations free of virus particles. The efficient purification of exosomes from human plasma enabled us to examine the content of plasma-derived exosomes and to investigate their immune modulatory potential and other biological functions.

Techniques describing a gradient procedure to separate exosomes from human immunodeficiency virus (HIV) particles are described. This procedure was used to isolate exosomes away from HIV particles in human plasma from HIV-infected individuals. The isolated exosomes were analyzed for cytokine/chemokine content.

Aislamiento de exosomas del plasma de VIH-1 en individuos positivos

Exosomes are small vesicles ranging in size from 30 nm to 100 nm that are released both constitutively and upon stimulation from a variety of cell types. ...

Visualization of HIV-1 Gag Binding to Giant Unilamellar Vesicle (GUV) Membranes

The structural protein of HIV-1, Pr55Gag (or Gag), binds to the plasma membrane in cells during the virus assembly process. Membrane binding of Gag is an essential step for virus particle formation, since a defect in Gag membrane binding results in severe impairment of viral particle production. To gain mechanistic details of Gag-lipid membrane interactions, in vitro methods based on NMR, protein footprinting, surface plasmon resonance, liposome flotation centrifugation, or fluorescence lipid bead binding have been developed thus far. However, each of these in vitro methods has its limitations. To overcome some of these limitations and provide a complementary approach to the previously established methods, we developed an in vitro assay in which interactions between HIV-1 Gag and lipid membranes take place in a &#34;cell-like&#34; environment. In this assay, Gag binding to lipid membranes is visually analyzed using YFP-tagged Gag synthesized in a wheat germ-based in vitro translation system and GUVs prepared by an electroformation technique. Here we describe the background and the protocols to obtain myristoylated full-length Gag proteins and GUV membranes necessary for the assay and to detect Gag-GUV binding by microscopy.

Visualization of HIV-1 Gag Binding to Giant Unilamellar Vesicle GUV Membranes

We illustrate here an in vitro membrane binding assay in which interactions between HIV-1 Gag and lipid membranes are visually analyzed using YFP-tagged Gag synthesized in a wheat germ-based in vitro translation system and GUVs prepared by an electroformation technique.

Visualización de VIH-1 Gag unión a Giant unilamelares vesículas membranas (GUV)

The structural protein of HIV-1, Pr55Gag (or Gag), binds to the plasma membrane in cells during the virus assembly process. Membrane binding of Gag is an ...

Evaluation of the Efficacy And Toxicity of RNAs Targeting HIV-1 Production for Use in Gene or Drug Therapy

Small RNA therapies targeting post-integration steps in the HIV-1 replication cycle are among the top candidates for gene therapy and have the potential to be used as drug therapies for HIV-1 infection. Post-integration inhibitors include ribozymes, short hairpin (sh) RNAs, small interfering (si) RNAs, U1 interference (U1i) RNAs and RNA aptamers. Many of these have been identified using transient co-transfection assays with an HIV-1 expression plasmid and some have advanced to clinical trials. In addition to measures of efficacy, small RNAs have been evaluated for their potential to affect the expression of human RNAs, alter cell growth and/or differentiation, and elicit innate immune responses. In the protocols described here, a set of transient transfection assays designed to evaluate the efficacy and toxicity of RNA molecules targeting post-integration steps in the HIV-1 replication cycle are described. We have used these assays to identify new ribozymes and optimize the format of shRNAs and siRNAs targeting HIV-1 RNA. The methods provide a quick set of assays that are useful for screening new anti-HIV-1 RNAs and could be adapted to screen other post-integration inhibitors of HIV-1 replication.

Methods to evaluate the efficacy and toxicity of RNA molecules targeting post-integration steps of the HIV-1 replication cycle are described. These methods are useful for screening new molecules and optimizing the format of existing ones.

Evaluación de la eficacia y la toxicidad de los ARN del VIH-1 Orientación de la producción para uso en terapia génica o de drogas

Small RNA therapies targeting post-integration steps in the HIV-1 replication cycle are among the top candidates for gene therapy and have the potential ...

Measurement of In Vitro Integration Activity of HIV-1 Preintegration Complexes

HIV-1 envelope proteins engage cognate receptors on the target cell surface, which leads to viral-cell membrane fusion followed by the release of the viral capsid (CA) core into the cytoplasm. Subsequently, the viral Reverse Transcriptase (RT), as part of a namesake nucleoprotein complex termed the Reverse Transcription Complex (RTC), converts the viral single-stranded RNA genome into a double-stranded DNA copy (vDNA). This leads to the biogenesis of another nucleoprotein complex, termed the pre-integration complex (PIC), composed of the vDNA and associated virus proteins and host factors. The PIC-associated viral integrase (IN) orchestrates the integration of the vDNA into the host chromosomal DNA in a temporally and spatially regulated two-step process. First, the IN processes the 3&#39; ends of the vDNA in the cytoplasm and, second, after the PIC traffics to the nucleus, it mediates integration of the processed vDNA into the chromosomal DNA. The PICs isolated from target cells acutely infected with HIV-1 are functional in vitro, as they are competent to integrate the associated vDNA into an exogenously added heterologous target DNA. Such PIC-based in vitro integration assays have significantly contributed to delineating the mechanistic details of retroviral integration and to discovering IN inhibitors. In this report, we elaborate upon an updated HIV-1 PIC assay that employs a nested real-time quantitative Polymerase Chain Reaction (qPCR)-based strategy for measuring the in vitro integration activity of isolated native PICs.

Measurement of In Vitro Integration Activity of HIV-1 Preintegration Complexes

This report describes an in vitro assay for measuring the human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) preintegration complex (PIC)-associated integration activity in the cytoplasmic extracts of acutely infected cells. The integration of PIC-associated HIV-1 DNA into heterologous target DNA is quantified by using a nested real-time polymerase chain reaction strategy.

Medida de<em&gt; In Vitro</em&gt; Integración Actividad del VIH-1 preintegration Complejos

HIV-1 envelope proteins engage cognate receptors on the target cell surface, which leads to viral-cell membrane fusion followed by the release of the ...