Los crustáceos parásitos son factores importantes en la ecología y la historia de vida de los peces de arrecife. Con la biomasa y la energía que eliminaron de sus anfitriones siendo considerable e influyendo en el comportamiento, la fisiología y la supervivencia. Los crustáceos isópodos gnatíidos representan el grupo más prominente de parásitos de peces en los sistemas de arrecifes tropicales y subtropicales, donde son abundantes y diversos y son el alimento principal de los peces más limpios.
Los gnatíidos tienen historias de vida inusuales en las que solo las tres etapas juveniles se alimentan de sangre y fluidos corporales de peces, mientras que en la etapa adulta, ya no se alimentan. Dado que la alimentación requiere solo una breve asociación con el huésped, mientras que cada intervalo de interalimentación dura días, los gnatíidos pasan la mayor parte de su vida viviendo libremente en el bentos. Dadas las muchas formas en que los gnatíidas impactan a sus anfitriones, hay razones convincentes para incluirlos en estudios ecológicos de arrecifes de coral.
Sin embargo, su historia de vida única y el pequeño número de investigadores que los estudian crean una barrera para el desarrollo, implementación y difusión de métodos de muestreo reproducibles confiables para recolectarlos para la investigación. Las trampas de luz se han utilizado durante mucho tiempo para recolectar pequeños organismos marinos por la noche. Aprovechan y se basan en el hecho de que muchos organismos nocturnos activos, incluidos los artrópodos, se sienten atraídos por la luz.
Tradicionalmente, se han utilizado para recolectar organismos planctónicos en la columna de agua. Sin embargo, los principios básicos se pueden aplicar a la recolección de organismos de natación libre que están activos cerca del bentos. Aquí presentamos un método de captura de luz adaptado para recolectar etapas de vida libre de isópodos gnatíidos cerca del fondo del océano en entornos remotos de arrecifes de coral como Filipinas.
En la recolección de áreas remotas, estas trampas ofrecen algunas ventajas sobre otros métodos que se han desarrollado para recolectar estos organismos. Son altamente portátiles y duraderos y requieren solo tres partes, que son fáciles de obtener y económicas. También son negativamente flotantes.
Debido a que dependen de la luz para la atracción, solo son efectivos por la noche para recolectar especies nocturnamente activas. También atraen más que las especies objetivo, lo que requiere la clasificación de las muestras bajo un microscopio de disección para obtener los organismos objetivo. Trampas de luz. Construcción.
Las trampas de luz se construyen mejor a partir de tubos comerciales de PVC diseñados originalmente para fines de plomería. Use PVC de 20 a 25 centímetros de diámetro cortado de 30 a 40 centímetros de longitud. En ambos extremos del tubo, agregue tapas de PVC con embudos de acrílico transparente insertados en el centro de la abertura y pegue en su lugar con pegamento epoxi transparente.
Asegúrese de que un extremo del tubo tenga un tornillo en la tapa extraíble y que ambos extremos sean herméticos cuando la trampa esté cerrada. Fuente de luz. Antes del despliegue, se debe encender una antorcha submarina, como un Fantasea nano spotter 6023, y colocarse en el tubo frente al embudo transparente de modo que la luz de la antorcha subacuática ilumine el exterior frente a un lado del tubo.
La luz atrae a una variedad de pequeños organismos nocturnos, incluidos los gnatíidos, y los impulsa a nadar en el tubo con el embudo transparente. Una vez que han entrado en el tubo, no pueden escapar debido a la geometría de la trampa de luz y la presencia continua de una fuente de luz. Colocación. Llene las trampas de luz con la luz encendida y con agua de mar y asegure ambos extremos.
Coloque trampas en el fondo del mar en la arena o los escombros junto a las cabezas de coral u otras estructuras complejas conocidas por atraer peces. Enfoca el cono de luz hacia adentro hacia las áreas donde se agregan los peces. En aguas poco profundas, las trampas se pueden colocar mediante buceo de retención de la respiración.
Una implementación más profunda requiere buceo. Recuperación. Los organismos permanecerán en la trampa una vez que las baterías de las luces hayan expirado y la luz ya no esté encendida. Esto proporciona flexibilidad en el tiempo en que se recuperan las trampas.
Inmediatamente antes de recuperar la trampa, selle las aberturas de ambos embudos en cada extremo del tubo con un trozo de arcilla o sellado de tapón de goma, manteniendo toda el agua de mar y los organismos contenidos dentro. Transporte. Una vez que las trampas han sido recuperadas del fondo, pueden ser llevadas por buzos a un bote o nadadas a tierra. Sin embargo, es mejor mantener las trampas lo más cerca posible de la temperatura ambiente del agua de mar una vez que se hayan retirado del océano.
Transpórelos al laboratorio para su procesamiento lo antes posible, ya que no se realizará ningún intercambio de gas o agua una vez retirados del océano. Procesamiento de laboratorio. Almacenamiento y filtrado de muestras.
Una vez que se retiren las trampas de luz del océano y se devuelvan al laboratorio, vacíe su contenido en cubos con agua de mar fresca. Agregue aireación para mantener vivos los organismos hasta que se filtren. Filtre el contenido del cubo vertiendo a través de un embudo forrado con malla de plancton de 50 a 100 UM.
Luego vacíe el contenido en un recipiente de cien mililitros de agua de mar fresca. Use una pipeta para extraer de este pequeño recipiente para colocar alícuotas de la muestra en una placa de Petri para microscopía. Repita hasta que se haya procesado toda la muestra.
Identificación y cría de isópodos gnatíidos. Debido a que las muestras de trampa de luz atraerán múltiples especies de pequeños invertebrados, las muestras deben examinarse cuidadosamente para identificar y eliminar los isópodos de Gnathiids. Un aumento de 10 a 20 veces es lo mejor para esta tarea.
La identificación de gnatíidos a nivel familiar no requiere especímenes vivos. Sin embargo, los gnatíidos adultos, que rara vez son atrapados en trampas ligeras, son necesarios para la identificación morfológica de especies y para la reproducción. Por lo tanto, en los casos en que los gnatíidos necesitan mantenerse vivos de la cría, retírelos suavemente con una pipeta y colóquelos en pequeños recipientes de plástico con agua de mar fresca.
Resultados representativos. El muestreo en el centro de Filipinas, el diseño de la trampa de contorno se utilizó cuando las trampas se colocaron durante la noche. Se recolectaron de uno a 1, 343 gnatíidos por trampa.
Estos incluyeron etapas juveniles alimentadas y no alimentadas. Estos resultados demuestran claramente la efectividad de las trampas de luz para recolectar isópodos gnatíidos en las condiciones de estudio. Este método para la recolección de gnatíidos es efectivo y suficientemente flexible para una variedad de sitios de campo y preguntas científicas.
Por ejemplo, en un estudio de Artim et al en 2020 en el Caribe, donde utilizaron trampas de luz para cuantificar la cobertura de coral y la biomasa de peces en la abundancia de gnatíidos. Conclusión. Mientras que otras técnicas se han desarrollado y utilizado para recolectar gnatíidos, esta técnica es particularmente eficiente. Si bien las trampas de luz descritas aquí atraen a una amplia gama de pequeños invertebrados móviles, la composición de esta captura incidental es muy variable.
Sin embargo, cuando se establecen en un hábitat que incluye escombros y peces, los gnatíidos se capturan constantemente. Aunque este estudio de demostración se centró en sitios en Filipinas, trampas de un diseño similar también se han utilizado con éxito para estudios en sitios en la región del Caribe y la Gran Barrera de Coral.
