I crostacei parassiti sono fattori importanti nell'ecologia e nella storia della vita dei pesci di barriera. Con la biomassa e l'energia che hanno rimosso dai loro ospiti che sono considerevoli e influenzano il comportamento, la fisiologia e la sopravvivenza. I crostacei isopodi gnatidi rappresentano il gruppo più importante di parassiti dei pesci nei sistemi di barriera tropicale e subtropicale, dove sono sia abbondanti che diversificati e sono il principale alimento dei pesci più puliti.
Gli gnatidi hanno storie di vita insolite in cui solo i tre stadi giovanili si nutrono di sangue e fluidi corporei dei pesci, mentre nella fase adulta non si nutrono più. Dato che l'alimentazione richiede solo una breve associazione con l'ospite, mentre ogni intervallo di interalimentazione dura giorni, gli gnatidi trascorrono la maggior parte della loro vita vivendo liberi nel benthos. Dati i molti modi in cui gli gnatidi influenzano i loro ospiti, ci sono ragioni convincenti per includerli negli studi ecologici delle barriere coralline.
Tuttavia, la loro storia di vita unica e il piccolo numero di ricercatori che li studiano crea una barriera allo sviluppo, all'implementazione e alla diffusione di metodi di campionamento affidabili e riproducibili per raccoglierli per la ricerca. Le trappole luminose sono state a lungo utilizzate per raccogliere piccoli organismi marini durante la notte. Sfruttano e si basano sul fatto che molti organismi notturni attivi, compresi gli artropodi, sono attratti dalla luce.
Tradizionalmente, sono stati utilizzati per raccogliere organismi planctonici nella colonna d'acqua. Tuttavia, i principi di base possono essere applicati alla raccolta di organismi di nuoto libero che sono attivi vicino al benthos. Qui presentiamo un metodo di cattura della luce adattato per raccogliere stadi di vita libera di isopodi Gnathiid vicino al fondo dell'oceano in ambienti remoti della barriera corallina come le Filippine.
Nella raccolta di aree remote, queste trappole offrono alcuni vantaggi rispetto ad altri metodi che sono stati sviluppati per la raccolta di questi organismi. Sono altamente portatili e durevoli e richiedono solo tre parti, che sono facilmente ottenibili e poco costose. Sono anche negativamente vivaci.
Poiché dipendono dalla luce per l'attrazione, sono efficaci solo di notte per la raccolta di specie attive di notte. Inoltre attirano più delle specie bersaglio, richiedendo lo smistamento dei campioni al microscopio da dissezione per ottenere gli organismi bersaglio. Trappole luminose. Costruzione.
Le trappole luminose sono costruite al meglio con tubi in PVC commerciali originariamente progettati per scopi idraulici. Utilizzare PVC da 20 a 25 centimetri di diametro tagliato da 30 a 40 centimetri di lunghezza. Ad entrambe le estremità del tubo, aggiungere tappi in PVC con imbuti acrilici trasparenti inseriti al centro dell'apertura e incollare in posizione con colla epossidica trasparente.
Assicurarsi che un'estremità del tubo abbia una vite sul coperchio altrimenti rimovibile e che entrambe le estremità siano a tenuta stagna quando la trappola è chiusa. Sorgente luminosa. Prima del dispiegamento, una torcia subacquea, come un Fantasea nano spotter 6023, deve essere accesa e posizionata nel tubo di fronte all'imbuto trasparente in modo tale che la luce della torcia subacquea illumini l'esterno davanti a un lato del tubo.
La luce attira una varietà di piccoli organismi notturni, tra cui gli gnathiidi, e li spinge a nuotare nel tubo con l'imbuto trasparente. Una volta entrati nel tubo, non sono in grado di fuggire a causa della geometria della trappola di luce e della presenza continua di una fonte di luce. Collocamento. Riempire le trappole luminose con la luce accesa e con acqua di mare e fissare entrambe le estremità.
Posiziona trappole sul fondo del mare nella sabbia o nelle macerie accanto a teste di corallo o altre strutture complesse note per attirare i pesci. Focalizzare il cono di luce verso l'interno verso le aree in cui i pesci si aggregano. In acque poco profonde, le trappole possono essere posizionate con immersioni in apnea.
Una distribuzione più profonda richiede immersioni. Recupero. Gli organismi rimarranno nella trappola una volta che le batterie delle luci sono scadute e la luce non è più accesa. Ciò offre flessibilità nel tempo in cui le trappole vengono recuperate.
Immediatamente prima di recuperare la trappola, sigillare le aperture di entrambi gli imbuti su entrambe le estremità del tubo con un pezzo di argilla o gomma che sigilla il tappo, mantenendo tutta l'acqua di mare e gli organismi contenuti all'interno. Trasporto. Una volta che le trappole sono state recuperate dal fondo, possono essere trasportate dai subacquei su una barca o nuotate a riva. Tuttavia, è meglio mantenere le trappole il più vicino possibile alla temperatura ambiente dell'acqua di mare una volta rimosse dall'oceano.
Trasportarli in laboratorio per la lavorazione il prima possibile poiché non avverrà alcuno scambio di gas o acqua una volta rimossi dall'oceano. Elaborazione di laboratorio. Memorizzazione e filtraggio dei campioni.
Una volta che le trappole luminose vengono rimosse dall'oceano e riportate al laboratorio, svuotare il loro contenuto in secchi con acqua di mare fresca. Aggiungere aerazione per mantenere in vita gli organismi fino al filtraggio. Filtrare il contenuto del secchio versando attraverso un imbuto rivestito con una maglia di plancton da 50 a 100 UM.
Quindi svuotare il contenuto in un contenitore da cento millilitri di acqua di mare fresca. Utilizzare una pipetta per attingere da questo piccolo contenitore per posizionare le aliquote del campione in una capsula di Petri per la microscopia. Ripetere l'operazione fino a quando l'intero campione non è stato elaborato.
Identificazione e allevamento degli isopodi gnathiidi. Poiché i campioni di trappole luminose attireranno più specie di piccoli invertebrati, i campioni devono essere attentamente selezionati per identificare e rimuovere gli isopodi degli gnathiidi. L'ingrandimento da 10 a 20 volte è il migliore per questo compito.
L'identificazione degli gnatidi a livello di famiglia non richiede esemplari viventi. Tuttavia, gli gnatidi adulti, che raramente vengono catturati in trappole luminose, sono necessari per l'identificazione morfologica delle specie e per la riproduzione. Pertanto, nei casi in cui gli gnatiidi devono essere mantenuti vivi durante l'allevamento, rimuoverli delicatamente con una pipetta e metterli in piccoli contenitori di plastica di acqua di mare fresca.
Risultati rappresentativi. Il campionamento nelle Filippine centrali, il design della trappola di contorno è stato utilizzato quando le trappole sono state posizionate durante la notte. Sono stati raccolti da uno a 1.343 gnatidi per trappola.
Questi includevano sia stadi giovanili nutriti che non nutriti. Questi risultati dimostrano chiaramente l'efficacia delle trappole luminose per la raccolta di isopodi Gnathiid nelle condizioni di studio. Questo metodo per la raccolta di Gnathiid è efficace e sufficientemente flessibile per una varietà di siti sul campo e domande scientifiche.
Ad esempio, in uno studio di Artim et al nel 2020 nei Caraibi, dove hanno usato trappole luminose per quantificare la copertura corallina e la biomassa dei pesci sull'abbondanza di Gnathiid. Conclusione. Mentre altre tecniche sono state sviluppate e utilizzate per raccogliere gli gnathiidi, questa tecnica è particolarmente efficiente. Mentre le trappole luminose qui descritte attirano una vasta gamma di piccoli invertebrati mobili, la composizione di questa cattura accidentale è molto variabile.
Tuttavia, quando vengono collocati in un habitat che include macerie e pesci, gli gnatidi vengono catturati costantemente. Sebbene questo studio dimostrativo si sia concentrato su siti nelle Filippine, trappole di un design simile sono state utilizzate con successo anche per studi in siti nella regione dei Caraibi e nella Grande Barriera Corallina.
