Crustáceos parasitas são fatores importantes na ecologia e história de vida de peixes recifais. Com a biomassa e energia que eles removeram de seus hospedeiros sendo considerável e influenciando o comportamento, fisiologia, e sobrevivência. Os crustáceos isópodes gnatiídeos representam o grupo mais proeminente de parasitas de peixes em sistemas recifais tropicais e subtropicais, onde são abundantes e diversificados e são o principal item alimentar de peixes mais limpos.
Os gnatiídeos têm histórias de vida incomuns em que apenas os três estágios juvenis se alimentam de sangue e fluidos corporais de peixes, enquanto na fase adulta, eles não se alimentam mais. Dado que a alimentação requer apenas uma breve associação com o hospedeiro, enquanto cada intervalo de interalimentação dura dias, os gnatiídeos passam a maior parte de sua vida livre nos bentos. Dadas as muitas maneiras pelas quais os gnathiidae impactam seus hospedeiros, há razões convincentes para incluí-los em estudos ecológicos de recifes de coral.
No entanto, sua história de vida única e o pequeno número de pesquisadores que os estudam criam uma barreira para o desenvolvimento, implementação e disseminação de métodos confiáveis de amostragem reprodutível para coletá-los para pesquisa. Armadilhas de luz têm sido usadas há muito tempo para coletar pequenos organismos marinhos à noite. Eles se aproveitam e se baseiam no fato de que muitos organismos noturnos ativos, incluindo artrópodes, são atraídos pela luz.
Tradicionalmente, eles têm sido usados para coletar organismos planctônicos na coluna de água. No entanto, os princípios básicos podem ser aplicados à coleta de organismos nadadores livres que são ativos perto dos bentos. Aqui apresentamos um método de captura de luz adaptado para coletar estágios de vida livre de isópodes Gnathiid perto do fundo do oceano em ambientes remotos de recifes de coral, como as Filipinas.
Na coleta de áreas remotas, essas armadilhas oferecem algumas vantagens sobre outros métodos que foram desenvolvidos para coletar esses organismos. Eles são altamente portáteis e duráveis e exigem apenas três peças, que são facilmente obtidas. Eles também estão negativamente aquecidos.
Por dependerem da luz para a atração, só são eficazes à noite para a coleta de espécies noturnamente ativas. Eles também atraem mais do que as espécies-alvo, exigindo a triagem das amostras sob um microscópio dissecante para obter os organismos-alvo. Armadilhas luminosas. Construção.
As armadilhas de luz são melhor construídas a partir de tubos de PVC comerciais originalmente projetados para fins de encanamento. Use PVC de 20 a 25 centímetros de diâmetro cortado de 30 a 40 centímetros de comprimento. Para ambas as extremidades do tubo, adicione tampas de PVC com funis de acrílico transparente inseridos no centro da abertura e cole no lugar com cola epóxi transparente.
Certifique-se de que uma extremidade do tubo tenha um parafuso na tampa removível e que ambas as extremidades sejam estanques, quando a armadilha estiver fechada. Luz. Antes da implantação, uma tocha subaquática, como uma Fantasea nano spotter 6023, deve ser ligada e colocada no tubo voltado para o funil transparente, de modo que a luz da tocha subaquática ilumine o exterior na frente de um lado do tubo.
A luz atrai uma variedade de pequenos organismos noturnos, incluindo gnathiids, e os leva a nadar no tubo com o funil claro. Uma vez que eles entraram no tubo, eles são incapazes de escapar devido à geometria da armadilha de luz e à presença contínua de uma fonte de luz. Colocação. Encha as armadilhas de luz com a luz acesa e com água do mar e prenda ambas as extremidades.
Coloque armadilhas no fundo do mar na areia ou escombros ao lado de cabeças de corais ou outras estruturas complexas conhecidas por atrair peixes. Focalize o cone de luz para dentro em direção às áreas onde os peixes se agregam. Em águas rasas, as armadilhas podem ser colocadas por mergulho em apneia.
Uma implantação mais profunda requer mergulho. Recuperação. Os organismos permanecerão na armadilha quando as baterias das luzes expirarem e a luz não estiver mais iluminada. Isso proporciona flexibilidade no tempo em que as armadilhas são recuperadas.
Imediatamente antes de recuperar a armadilha, sele as aberturas de ambos os funis em cada extremidade do tubo com um pedaço de argila ou borracha de vedação, mantendo toda a água do mar e os organismos contidos dentro. Transporte. Uma vez que as armadilhas tenham sido recuperadas do fundo, elas podem ser transportadas por mergulhadores para um barco ou nadadas em terra. No entanto, é melhor manter as armadilhas o mais próximo possível da temperatura ambiente da água do mar, uma vez que tenham sido removidas do oceano.
Transporte-os para o laboratório para processamento o mais rápido possível, uma vez que nenhuma troca de gás ou água ocorrerá uma vez removido do oceano. Processamento laboratorial. Armazenamento e filtragem de amostras.
Uma vez que uma armadilha de luz é removida do oceano e trazida de volta ao laboratório, esvazie seu conteúdo em baldes com água doce do mar. Adicione aeração para manter os organismos vivos até a filtragem. Filtre o conteúdo da caçamba despejando através de um funil forrado com malha de plâncton de 50 a 100 UM.
Em seguida, esvazie o conteúdo para um recipiente de cem mililitros de água do mar doce. Use uma pipeta para extrair deste pequeno recipiente para colocar alíquotas da amostra em uma placa de Petri para microscopia. Repita até que toda a amostra tenha sido processada.
Identificação e criação de isópodos gnatiídeos. Como as amostras de armadilhas de luz atrairão várias espécies de pequenos invertebrados, as amostras devem ser cuidadosamente selecionadas para identificar e remover os isópodes Gnathiids. A ampliação de 10 a 20 vezes é a melhor para essa tarefa.
A identificação de gnatiídeos em nível familiar não requer espécimes vivos. No entanto, gnatiídeos adultos, que raramente são capturados em armadilhas luminosas, são necessários para a identificação morfológica da espécie e para a reprodução. Assim, nos casos em que os gnathiidae precisam ser mantidos vivos de criação, retire-os suavemente com uma pipeta e coloque-os em pequenos recipientes plásticos de água doce do mar.
Resultados representativos. Na amostragem central das Filipinas, o desenho de armadilhas delineadas foi usado quando as armadilhas foram colocadas durante a noite. Foram coletados de um a 1 343 gnatiídeos por armadilha.
Estes incluíram estágios juvenis alimentados e não alimentados. Estes resultados demonstram claramente a eficácia de armadilhas luminosas na coleta de isópodos Gnathiidae nas condições de estudo. Este método para a coleta de Gnathiid é eficaz e suficientemente flexível para uma variedade de locais de campo e questões científicas.
Por exemplo, em um estudo de Artim et al em 2020 no Caribe, onde eles usaram armadilhas de luz para quantificar a cobertura de corais e a biomassa de peixes na abundância de gnatídeos. Conclusão. Enquanto outras técnicas foram desenvolvidas e usadas para coletar gnathiids, esta técnica é particularmente eficiente. Embora as armadilhas luminosas aqui descritas atraiam uma ampla gama de pequenos invertebrados móveis, a composição desta captura acessória é altamente variável.
No entanto, quando colocados em habitat que inclui escombros e peixes, os gnatiídeos são capturados de forma consistente. Embora este estudo de demonstração tenha se concentrado em locais nas Filipinas, armadilhas de design semelhante também foram usadas com sucesso para estudos em locais na região do Caribe e na Grande Barreira de Corais.
