Parasitische Krebstiere sind wichtige Faktoren in der Ökologie und Lebensgeschichte von Rifffische. Die Biomasse und Energie, die sie ihren Wirten entzogen, war beträchtlich und beeinflusste das Verhalten, die Physiologie und das Überleben. Gnathiide Asselnkrebse stellen die prominenteste Gruppe von Fischparasiten in tropischen und subtropischen Riffsystemen dar, wo sie sowohl reichlich als auch vielfältig sind und das Hauptnahrungsmittel von Putzerfischen sind.
Gnathiiden haben eine ungewöhnliche Lebensgeschichte, in der sich nur die drei juvenilen Stadien von Blut und Körperflüssigkeiten von Fischen ernähren, während sie sich im Erwachsenenstadium nicht mehr ernähren. Da die Fütterung nur eine kurze Assoziation mit dem Wirt erfordert, während jedes Zwischenfütterungsintervall Tage dauert, verbringen Gnathiiden den größten Teil ihres Lebens frei im Benthos. Angesichts der vielen Möglichkeiten, wie Gnathiiden ihre Wirte beeinflussen, gibt es zwingende Gründe, sie in ökologische Studien von Korallenriffen einzubeziehen.
Ihre einzigartige Lebensgeschichte und die geringe Anzahl von Forschern, die sie untersuchen, stellen jedoch ein Hindernis für die Entwicklung, Implementierung und Verbreitung zuverlässiger, reproduzierbarer Probenahmemethoden dar, um sie für die Forschung zu sammeln. Lichtfallen werden seit langem verwendet, um nachts kleine Meeresorganismen zu sammeln. Sie machen sich die Tatsache zunutze, dass viele nachtaktive Organismen, darunter auch Gliederfüßer, von Licht angezogen werden.
Traditionell wurden sie verwendet, um planktonische Organismen in der Wassersäule zu sammeln. Die Grundprinzipien lassen sich jedoch auf das Sammeln frei schwimmender Organismen anwenden, die in der Nähe des Benthos aktiv sind. Hier stellen wir eine Lichtfangmethode vor, die für das Sammeln von freilebenden Stadien von Gnathiidenasseln in der Nähe des Meeresbodens in abgelegenen Korallenriffumgebungen wie den Philippinen geeignet ist.
Beim Sammeln abgelegener Gebiete bieten diese Fallen einige Vorteile gegenüber anderen Methoden, die zum Sammeln dieser Organismen entwickelt wurden. Sie sind sehr tragbar und langlebig und benötigen nur drei Teile, die leicht erhältlich und kostengünstig sind. Sie sind auch negativ schwimmfähig.
Da sie auf Licht angewiesen sind, um sie anzulocken, sind sie nur nachts wirksam, um nachtaktive Arten zu sammeln. Sie ziehen auch mehr als die Zielarten an, so dass die Proben unter einem Seziermikroskop sortiert werden müssen, um die Zielorganismen zu erhalten. Lichtfallen. Konstruktion.
Lichtfallen werden am besten aus handelsüblichen PVC-Rohren hergestellt, die ursprünglich für Sanitärzwecke entwickelt wurden. Verwenden Sie PVC mit einem Durchmesser von 20 bis 25 Zentimetern, das auf eine Länge von 30 bis 40 Zentimetern zugeschnitten ist. Fügen Sie an beiden Enden der Tube PVC-Kappen mit transparenten Acryltrichtern hinzu, die in der Mitte der Öffnung eingesetzt sind, und kleben Sie sie mit transparentem Epoxidkleber fest.
Stellen Sie sicher, dass ein Ende des Rohrs einen verschraubten ansonsten abnehmbaren Deckel hat und dass beide Enden wasserdicht sind, wenn die Falle geschlossen ist. Lichtquelle. Vor dem Einsatz sollte eine Unterwasserlampe, wie z. B. ein Fantasea nano spotter 6023, eingeschaltet und in die Röhre mit Blick auf den transparenten Trichter platziert werden, so dass das Licht der Unterwasserlampe die Außenseite vor einer Seite der Röhre beleuchtet.
Das Licht lockt eine Vielzahl kleiner nachtaktiver Organismen, darunter auch Gnathiiden, an und treibt sie dazu, in die Röhre mit dem durchsichtigen Trichter zu schwimmen. Sobald sie in die Röhre eingedrungen sind, können sie aufgrund der Geometrie der Lichtfalle und des anhaltenden Vorhandenseins einer Lichtquelle nicht mehr entkommen. Platzierung. Füllen Sie Lichtfallen bei eingeschaltetem Licht und mit Meerwasser und befestigen Sie beide Enden.
Platzieren Sie Fallen auf dem Meeresboden im Sand oder Geröll neben Korallenköpfen oder anderen komplexen Strukturen, von denen bekannt ist, dass sie Fische anziehen. Fokussieren Sie den Lichtkegel nach innen auf die Bereiche, in denen sich Fische ansammeln. Im flachen Wasser können die Fallen durch Tauchen mit angehaltenem Atem platziert werden.
Für eine tiefere Bereitstellung ist ein Tauchen erforderlich. Rückgewinnung. Organismen verbleiben in der Falle, wenn die Batterien der Lichter leer sind und das Licht nicht mehr beleuchtet wird. Dies bietet Flexibilität bei der Zeit, in der die Fallen geborgen werden.
Verschließen Sie unmittelbar vor dem Herausholen der Falle die Öffnungen beider Trichter an beiden Enden des Rohrs mit einem Stück Ton oder Gummistopfen, um das gesamte Meerwasser und die darin enthaltenen Organismen zu halten. Transport. Sobald die Fallen vom Grund geborgen wurden, können sie von Tauchern zu einem Boot getragen oder an Land geschwommen werden. Es ist jedoch am besten, die Fallen so nah wie möglich an der Umgebungstemperatur des Meerwassers zu halten, nachdem sie aus dem Meer entfernt wurden.
Transportieren Sie sie so schnell wie möglich zur Verarbeitung ins Labor, da nach der Entnahme aus dem Meer kein Gas- oder Wasseraustausch stattfindet. Verarbeitung im Labor. Speichern und Filtern von Proben.
Sobald eine Lichtfalle aus dem Meer entfernt und zurück ins Labor gebracht wurde, leeren Sie ihren Inhalt in Eimer mit frischem Meerwasser. Fügen Sie Belüftung hinzu, um die Organismen bis zum Filtern am Leben zu erhalten. Filtern Sie den Inhalt des Eimers, indem Sie ihn durch einen Trichter gießen, der mit 50 bis 100 UM Planktongewebe ausgekleidet ist.
Leeren Sie dann den Inhalt in einen Hundert-Milliliter-Behälter mit frischem Meerwasser. Verwenden Sie eine Pipette, um aus diesem kleinen Behälter Aliquots der Probe in eine Petrischale für die Mikroskopie zu geben. Wiederholen Sie diesen Vorgang, bis die gesamte Probe verarbeitet ist.
Identifizierung und Aufzucht von Gnathiidenasseln. Da Lichtfallenproben mehrere Arten kleiner wirbelloser Tiere anziehen, müssen die Proben sorgfältig gescreent werden, um Gnathiiden-Asseln zu identifizieren und zu entfernen. Eine 10- bis 20-fache Vergrößerung eignet sich für diese Aufgabe am besten.
Für die Identifizierung von Gnathiiden auf Familienebene sind keine lebenden Exemplare erforderlich. Adulte Gnathiiden, die selten in Lichtfallen gefangen werden, werden jedoch für die morphologische Artbestimmung und für die Zucht benötigt. In Fällen, in denen Gnathiiden bei der Aufzucht am Leben erhalten werden müssen, entfernen Sie sie vorsichtig mit einer Pipette und legen Sie sie in kleine Plastikbehälter mit frischem Meerwasser.
Repräsentative Ergebnisse. Bei der Probenahme auf den Zentralphilippinen wurde das Umrissfallendesign verwendet, wenn die Fallen über Nacht aufgestellt wurden. Pro Falle wurden ein zu 1.343 Gnathiiden gesammelt.
Dazu gehörten sowohl gefütterte als auch ungefütterte Jungstadien. Diese Ergebnisse zeigen deutlich die Wirksamkeit von Lichtfallen für das Sammeln von Gnathiidenasseln unter den Untersuchungsbedingungen. Diese Methode zur Sammlung von Gnathiiden ist effektiv und ausreichend flexibel für eine Vielzahl von Feldstandorten und wissenschaftlichen Fragestellungen.
Zum Beispiel in einer Studie von Artim et al. aus dem Jahr 2020 in der Karibik, wo sie Lichtfallen verwendeten, um die Korallenbedeckung und die Fischbiomasse auf die Häufigkeit von Gnathiiden zu quantifizieren. Schlussfolgerung. Während andere Techniken zum Sammeln von Gnathiiden entwickelt und verwendet wurden, ist diese Technik besonders effizient. Während die hier beschriebenen Lichtfallen ein breites Spektrum an kleinen mobilen Wirbellosen anziehen, ist die Zusammensetzung dieses Beifangs sehr variabel.
Wenn sie jedoch in einem Lebensraum eingesetzt werden, der Geröll und Fische umfasst, werden Gnathiiden regelmäßig gefangen. Obwohl sich diese Demonstrationsstudie auf Standorte auf den Philippinen konzentrierte, wurden Fallen ähnlicher Bauart auch erfolgreich für Studien an Standorten in der Karibik und im Great Barrier Reef eingesetzt.
