Este trabajo recibió el apoyo financiero del proyecto CRIS 6044-42000-011-00D del USDA-ARS y del proyecto CRIS 6044-21000-005-000-D. Agradecemos a Dan Todd por hacer el estante de sostenimiento de minicolumnas. La mención de nombres comerciales o productos comerciales en este artículo es únicamente con el propósito de proporcionar información específica y no implica una recomendación o respaldo por parte del Departamento de Agricultura de los EE. UU.

1. Preparación de semillas para el desafío fúngico
<ol><li>Incubar el Aspergillus flavus NRRL 3357 aflatoxigénico en una inclinación de agar patata dextrosa (PDA) en un tubo de ensayo durante 6 días a 30 °C. Recolectar las esporas de hongos del tubo de ensayo con 10 mL de agua con Tween 20 (100 μL de Tween en 1 L de agua estéril destilada), filtrar a través de lana de vidrio colocada en un embudo y contar las esporas con un hemocitómetro consultando el manual del usuario.</li>
	<li>Diluir la suspensión de esporas con agua estéril hasta una concentración de 1.000 esporas/μL. Confirme la concentración con un hemocitómetro. NOTA: Prepare la suspensión de esporas no antes de 2 horas antes de los desafiantes experimentos.</li>
	<li>Rompe suavemente las vainas de maní y retira las cáscaras. Coloque las semillas en un vaso de precipitados estéril de modo que el volumen de semillas no supere 1/5 del volumen del vaso de precipitados, añada una solución de peróxido de hidrógeno al 0,05 % hasta aproximadamente el 70 % del volumen del vaso de precipitados y deje que las semillas absorban agua durante 3 h.</li>
	<li>Decanta la solución de peróxido de hidrógeno de las semillas y añade aproximadamente 3 veces la cantidad de una mezcla de etanol y agua al 80% (v/v) en el vaso de precipitados para cubrir las semillas. Deje reposar durante 1 minuto y luego enjuague las semillas 2 veces con volúmenes iguales de agua destilada estéril.</li>
	<li>Agregue 5 veces el volumen de peróxido de hidrógeno al 3% al vaso de precipitados con las semillas esterilizadas con etanol y déjelo reposar durante 5 minutos, luego decantar el líquido y enjuagar las semillas dos veces con volúmenes iguales de agua estéril (Figura 2A).</li>
</ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66574/66574fig2.jpg"> Figura 2: Preparación de semillas de maní para inoculación, incubación y extracción de fracciones de aflatoxina y fitoalexina. (A) Esterilización de semillas empapadas con peróxido de hidrógeno al 3%; (B) quitar la testa (piel) de las semillas; (C) cortar la parte del eje embrionario; (D,E) cavidad de perforación en un medio cotiledón con una broca; (F) colocar partes perforadas de semillas en agar; (G) Aplicación de esporas de hongos en la cavidad perforada. (H) Placa de Petri con semillas después de la incubación; (I) colocación de semillas individuales incubadas (foto de muestras de control) en tubos de cuentas reforzadas; (J) adición del volumen medido de solvente de extracción; (K) pulverización de muestras en un rompedor de perlas; (L) centrifugación de lodos pulverizados. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66574/66574fig2large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<ol start="6"><li>Coloque las semillas sobre una toalla de papel estéril, retire la testa de la semilla con pinzas y corte aproximadamente 1/3 de la semilla que contiene el eje embrionario con un bisturí (Figura 2B, C).</li>
	<li>Deseche esta parte de la semilla o úsela para cultivar una planta en un tubo de ensayo con medio de crecimiento (Figura 1B, E).</li>
	<li>Divida la porción restante de la semilla en dos cotiledones, colóquelos en una placa de Petri, cubra las partes de la semilla con papel de filtro estéril húmedo, vuelva a colocar la tapa para evitar la deshidratación y proceda rápidamente a la etapa de inoculación.</li>
	<li>Antes de realizar los experimentos desafiantes, prepare un número suficiente de placas de Petri con medio de incubación de semillas vertiendo 26 ml de agar estéril al 1,5% en agua en las placas de 100 x 15 mm y deje que se solidifiquen durante la noche.</li>
	<li>En el centro del lado exterior de cada cotiledón restante, haga una cavidad de 1,5-2 mm de profundidad perforando manualmente la semilla con una broca afilada estéril de 1,6-2,34 mm de diámetro. Se necesitan ~ 2-5 s para hacer una cavidad (Figura 2D, E).</li>
	<li>Coloque de 4 a 6 piezas "perforadas" de las semillas en una placa de Petri con agar y aplique 2 μL de la suspensión de 1.000 esporas/μL en la cavidad perforada de cada pieza de medio cotiledón con una pipeta de 10 μL. En lugar de la suspensión de esporas, aplique agua estéril a las semillas de control (Figura 2F, G).</li>
	<li>Cubra todas las placas de Petri con tapa e incube a 30 °C sin luz durante 72 h.</li>
</ol>2. Toma de muestras y preparación de las piezas de semillas incubadas para el análisis de aflatoxinas y fitoalexinas
<ol><li>Recoja los trozos de semilla a las 72 h retirándolos del agar con pinzas y colocando cada uno de ellos en viales de perlas de 7 ml etiquetados con 13 perlas de cerámica de circonio (12 de 2,8 mm de diámetro y 1 de 6,5 mm de diámetro) (Figura 2H,I). NOTA: En este punto, si no se procesan inmediatamente, los viales pueden colocarse en un congelador a -80 °C y conservarse hasta 2 meses antes de continuar con el procesamiento.</li>
	<li>Las fitoalexinas y las aflatoxinas se determinan en el mismo extracto de semilla. Para la extracción, dependiendo del tamaño visual de la semilla (pequeña, mediana o grande), agregue 2 o 4 mL de mezcla de metanol-agua medida con precisión (90:10, v/v) a los viales de perlas y pulverize a 5,5 m/seg durante 45 s. Coloque los viales con semillas pulverizadas en una centrífuga y centrifuga a 1.860 × g durante 3 min (Figura 2J - L). NOTA: Se determinan los siguientes derivados importantes de17,22 estilbenoides (todos en transconfiguración): resveratrol, araquidina-1, araquidina-2, araquidina-3, 3′-isopentadienil-3,5,4′-trihidroxiestilbeno (IPD) y SB-1.</li>
	<li>Para los análisis de aflatoxinas, antes de realizar los experimentos desafiantes, prepare un número suficiente de columnas de limpieza de la siguiente manera. Coloque una frita porosa de polietileno (20 μL) a juego en una columna de polipropileno de 1,5 mL con la ayuda de una varilla de vidrio cortada en un ángulo de 90° . Coloque 50 mg del gel de sílice de magnesio (malla 100-200) en la columna con una cuchara hecha a medida y cubra la columna con una frita idéntica empujándola hacia abajo con una varilla de vidrio (Figura 3A - E). NOTA: Esta cantidad de gel de sílice magnésica ocupa un volumen de 75 μL y la altura de la capa adsorbente es de 3 mm.</li>
</ol><img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66574/66574fig3.jpg"> Figura 3: Preparación de columnas de limpieza y filtros. (A,B) Colocación de una frita porosa en el barril; (C,D) barril de llenado con gel de sílice magnésica; (E) empaquetando el adsorbente e insertando una frita porosa superior en el barril. (F) Colocar un círculo de fibra de vidrio de 11,5 mm de diámetro encima de una pipeta Pasteur. (G,H) Empujar el centro del círculo con una varilla de plástico o madera hasta el fondo del cilindro de la pipeta Pasteur y compactar firmemente la fibra de vidrio. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66574/66574fig3large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<ol start="4"><li>En este punto, prepare un número coincidente de filtros personalizados como se muestra en la Figura 3F - H.</li>
	<li>Para los análisis de aflatoxinas, mida con precisión hasta 0,5 mL de alícuota del sobrenadante (obtenida como se describe en el paso 2.2), transfiéralo a la minicolumna empaquetada a medida y deje que el extracto se drene por gravedad en un vial de vidrio de 4 mL. Transfiera 1,0 mL de mezcla de metanol-agua (90:10, v/v) a la columna para lavar las impurezas por gravedad en el mismo vial de 4 mL (Figura 4A).</li>
</ol><img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66574/66574fig4.jpg"> Figura 4: Purificación de extractos de semillas y preparación para los análisis de UPLC. (A) Bastidor con columnas empaquetadas. (B) Disolvente evaporante con gas N2 de seis viales de 4 mL con extracto purificado eluido de columnas de limpieza. (C) Llevar los viales y filtros a una temperatura bajo cero en recipientes de espuma (1 y 2) con hielo antes y después de la adición del solvente de inyección (MeOH-H2O 9:1, v/v) a los viales de 4 mL. (D) Filtrado de extracto enfriado de un vial de 4 ml en un vial de muestreador automático de 400 μl. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66574/66574fig4large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<ol start="6"><li>Deseche los eluidos combinados. Eluir la fracción de aflatoxina por gravedad desde la columna en un vial de vidrio limpio de 4 mL con una mezcla de 1,2 mL de acetona-acetonitrilo-agua-88% de ácido fórmico (65:31:3.5:0,5, v/v) (Figura 4A).</li>
	<li>Alternativamente, eluya las aflatoxinas de la columna con 2,0 mL de mezcla de acetonitrilo-agua-88% de ácido fórmico (96:3.5:0.5, v/v), e inyecte una alícuota del eluido, hasta 2 μL, directamente en el sistema de cromatografía líquida de ultra rendimiento (UPLC) (sin evaporación del solvente con N2). NOTA: En este caso, espere un límite de cuantificación hasta 10 veces menor para las aflatoxinas; En la mayoría de los casos, tal disminución de la sensibilidad es aceptable ya que las concentraciones de aflatoxinas en las semillas desafiadas suelen ser altas.</li>
	<li>Retire el disolvente de los viales en un chorro de N2 en un bloque calentado a 45 °C. Tape el vial y colóquelo en un recipiente con hielo picado durante 30-45 s para minimizar la evaporación del solvente que se agrega en el siguiente paso. Coloque los filtros hechos a medida en tubos de ensayo desechables e inserte los tubos en hielo en otro recipiente para minimizar la evaporación del solvente durante la filtración (Figura 4B, C).</li>
	<li>Después de la evaporación del disolvente, disuelva el residuo seco en 0,25-1,0 mL de mezcla de metanol y agua (90:10, v/v) y vórtice durante 1-2 s. Coloque los viales con extractos purificados en el muestreador automático UPLC e inyecte de 0.1 a 3.0 μL en el sistema UPLC (Figura 5A, B). NOTA: Si se sospecha que la solución después del vórtice tiene algunas partículas en suspensión, filtre la solución a través del filtro enfriado (Figura 4D).</li>
</ol><img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66574/66574fig5.jpg"> Figura 5: El proceso y los resultados de los análisis UPLC de extractos purificados. (A) Colocación de un estante con extractos de muestras purificados en el muestreador automático UPLC. (B) Realizar los análisis instrumentales, obtener datos e interpretar los resultados. (C) UPLC de cuatro aflatoxinas principales; los principales picos de interés, las aflatoxinasB1 yB2 representan 0,04 y 0,004 ng, respectivamente. (D) UPLC de aflatoxinas B1 y B2; el pico 2 representa la aflatoxina B1 a un nivel de 2 pg (con una celda de flujo de 8 μL). (E) UPLC de extracto purificado de una semilla cosechada de un campo local de maní con una especie silvestre de Arachis . (F) UPLC del extracto de una semilla de maní desafiada purificada con una minicolumna básica de óxido de aluminio. (G) UPLC del extracto de semilla de maní desafiada purificada con una columna de Florisil; el cromatograma azul presenta impurezas que se lavan de la columna con 1 mL de mezcla de metanol-agua (90:10 v/v); el cromatograma negro muestra picos de aflatoxinas M1 y B1. El nivel de aflatoxina B1 es de 48 ng/g. (H) Cromatograma típico de estilbenoides de maní de una semilla desafiada; abreviatura: IPD = 3′-isopentadienil-3,5,4′-trihidroxiestilbeno. Nota: Todos los estilbenoides en los extractos de semillas están en transconfiguración. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66574/66574fig5large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> 
<ol start="10"><li>Para los análisis de fitoalexinas, transfiera 200 μL de sobrenadante al filtro de pipeta Pasteur mencionado anteriormente. Utilice gas N2 de un tanque de nitrógeno comprimido para acelerar la filtración en un vial de muestreador automático UPLC de 400 μL y tape el vial con una tapa correspondiente con un tabique de PTFE (Figura 4D).</li>
</ol>3. Análisis de aflatoxinas
<ol><li>Para las separaciones de aflatoxinas en extractos de semillas, utilice un sistema UPLC equipado con un muestreador automático, una bomba cuaternaria, un detector fluorescente, un UPLC BEH C18 de 3,0 mm x 100 mm, columna de 1,7 μm con una precolumna correspondiente y un reactor fotoquímico de postcolumna (PHRED) con una bobina de PTFE tejida estándar de 0,25 de diámetro interno cortada al 25% de su longitud original. NOTA: El instrumento UPLC y el equipo asociado utilizado por los autores se enumeran en la Tabla de Materiales.</li>
	<li>Utilice agua (A), metanol (B) y acetonitrilo (C) en el siguiente gradiente: condiciones iniciales, 62,7% A, 24% B, 13,3% C, cambiaron linealmente a 30% A, 45% B, 25% C en 3,75 min, cambiaron a 0% A, 64,4% B, 35,6% C en 3,751 min, se mantuvieron isocráticas durante 3,249 min, luego cambiaron a condiciones iniciales en 0,01 min y se mantuvieron isocráticas durante 2,499 min antes de la siguiente inyección. Ajuste el caudal a 0,45 mL/min y el tiempo de ejecución a 9,5 min. Mantenga la columna a 40 °C en el calentador de columna del sistema. Utilice 362 nm y 440 nm como longitudes de onda de excitación y emisión, respectivamente, para la cuantificación de las aflatoxinas B1, B2, G1, G2 y M1 . Las estructuras de las principales aflatoxinas se muestran en la Figura 6A. NOTA: En las condiciones experimentales, solo se espera que las aflatoxinas B1 y B2 sean producidas por A. flavus NRRL 3357; si se utiliza una cepa de A. parasiticus para el desafío de semillas, se espera la producción de aflatoxinas B1, B2, G1 y G2 .</li>
	<li>Determine las concentraciones de aflatoxinas por referencia a las áreas pico de los patrones auténticos correspondientes (curva de calibración) como se describe en el manual del usuario del software. NOTA: Dado que el procedimiento UPLC exhibe ruido de referencia en los ajustes de alta sensibilidad para el detector fluorescente, el límite de detección (LOD) y el límite de cuantificación (LOQ) para aflatoxinas se evalúan utilizando la relación señal-ruido ampliamente aceptada de 3:1 para LOD y 10:1 para LOQ. En la configuración experimental de rutina para el análisis de semillas de maní, descrita en las secciones 2 y 3, se espera que los límites de cuantificación para las aflatoxinas G1 y B1 sean menores o iguales a 0,8 y 0,08 ng/g para las aflatoxinas G2 y B2, respectivamente.</li>
</ol>4. Análisis de fitoalexinas estilbenoides
<ol><li>Para la separación de estilbenoides, use agua (A), metanol (B) y 88% de ácido fórmico (C) en el siguiente gradiente: condiciones iniciales, 53% A, 42% B, 5% C, cambiaron linealmente a 35% A, 60% B, 5% C en 2.0 min, se mantuvieron isocráticos durante 4 min, cambiaron a 0% A, 95% B, 5% C en 0.5 min, se mantuvieron isocráticos durante 2.5 min, Luego cambió a las condiciones iniciales en 0,1 min y se mantuvo isocrático durante 2,9 min antes de la siguiente inyección. Ajuste el caudal a 0,5 mL/min y el tiempo de ejecución a 12,0 min.</li>
	<li>Determine las concentraciones de estilbenoides por referencia a las áreas de pico de los patrones auténticos correspondientes (curva de calibración) y/o a los coeficientes publicados de extinciones molares como se describe en el manual de usuario del software. Las estructuras de las principales fitoalexinas derivadas del estilbeno se muestran en la Figura 6B. NOTA: La separación de las fitoalexinas se logra utilizando el mismo sistema pero sin un detector fluorescente y un reactor PHRED. En su lugar, se utiliza un detector de matriz de diodos para la detección y cuantificación de estilbenoides de maní. El límite de cuantificación (LOQ) para las principales fitoalexinas estilbenoides no tiene un significado práctico, ya que las concentraciones de estilbenoides superan las concentraciones de aflatoxinas en el mismo extracto en algunos órdenes de magnitud; Después de 3 días de incubación, los estilbenoides se cuantifican de forma fiable.</li>
</ol>

Evaluación de especies de maní silvestre para resistencia a la acumulación de aflatoxinas

<ol>
	<li>Janila, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+breeding+for+introgression+of+fatty+acid+desaturase+mutant+alleles+(ahFAD2A+and+ahFAD2B)+enhances+oil+quality+in+high+and+low+oil+containing+peanut+genotypes.">Molecular breeding for introgression of fatty acid desaturase mutant alleles (ahFAD2A and ahFAD2B) enhances oil quality in high and low oil containing peanut genotypes.</a> Plant Sci. 242, 203-213 (2016).</li><li>Rasooly, R., Hernlem, B., He, X., Friedman, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Non-linear+relationships+between+aflatoxin+B1+levels+and+the+biological+response+of+monkey+kidney+vero+cells.">Non-linear relationships between aflatoxin B1 levels and the biological response of monkey kidney vero cells.</a> Toxins (Basel). 5 (8), 1447-1461 (2013).</li><li>American Association for Cancer Research: AACR. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+evaluation+of+chemicals+and+industrial+processes+associated+with+cancer+in+humans+based+on+human+and+animal+data:+IARC+Monographs+Volumes+1+to+20.">An evaluation of chemicals and industrial processes associated with cancer in humans based on human and animal data: IARC Monographs Volumes 1 to 20.</a> Cancer Res. 40 (1), 1-12 (1980).</li><li>Turner, P. 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S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biological+activity+of+peanut+(Arachis+hypogaea)+phytoalexins+and+selected+natural+and+synthetic+stilbenoids.">Biological activity of peanut (Arachis hypogaea) phytoalexins and selected natural and synthetic stilbenoids.</a> J. Agric. Food Chem. 59 (5), 1673-1682 (2011).</li><li>Sobolev, V. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Localized+production+of+phytoalexins+by+peanut+(Arachis+hypogaea)+kernels+in+response+to+invasion+by+Aspergillus+Species.">Localized production of phytoalexins by peanut (Arachis hypogaea) kernels in response to invasion by Aspergillus Species.</a> J. Agric. Food Chem. 56 (6), 1949-1954 (2008).</li><li>Sobolev, V. S., Neff, S. A., Gloer, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=New+stilbenoids+from+peanut+(Arachis+hypogaea)+seeds+challenged+by+an+Aspergillus+caelatus+strain.">New stilbenoids from peanut (Arachis hypogaea) seeds challenged by an Aspergillus caelatus strain.</a> J. Agric. Food Chem. 57 (1), 62-68 (2009).</li><li>Trucksess, M. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunoaffinity+column+coupled+with+solution+fluorometry+or+liquid+chromatography+postcolumn+derivatization+for+determination+of+aflatoxins+in+corn,+peanuts,+and+peanut+butter:+collaborative+study.">Immunoaffinity column coupled with solution fluorometry or liquid chromatography postcolumn derivatization for determination of aflatoxins in corn, peanuts, and peanut butter: collaborative study.</a> J. AOAC Int. 74 (1), 81-88 (1991).</li><li>Dorner, J. W., Blankenship, P. D., Cole, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Performance+of+two+immunochemical+assays+in+the+analysis+of+peanuts+for+aflatoxin+at+37+field+laboratories.">Performance of two immunochemical assays in the analysis of peanuts for aflatoxin at 37 field laboratories.</a> J. AOAC Int. 76 (3), 637-643 (1993).</li><li>Stroka, J., Anklam, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunoaffinity+column+cleanup+with+liquid+chromatography+using+post-column+bromination+for+determination+of+aflatoxins+in+peanut+butter,+pistachio+paste,+fig+paste,+and+paprika+powder:+collaborative+study.">Immunoaffinity column cleanup with liquid chromatography using post-column bromination for determination of aflatoxins in peanut butter, pistachio paste, fig paste, and paprika powder: collaborative study.</a> J. AOAC Int. 83 (2), 320-340 (2000).</li><li>Pal, A., Acharya, D., Saha, D., Roy, D., Dhar, T. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+situ+sample+cleanup+during+immunoassay:+a+simple+method+for+rapid+detection+of+aflatoxin+B1+in+food+samples.">In situ sample cleanup during immunoassay: a simple method for rapid detection of aflatoxin B1 in food samples.</a> J. Food Prot. 68 (10), 2169-2177 (2005).</li><li>Sobolev, V. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simple,+rapid,+and+inexpensive+cleanup+method+for+quantitation+of+aflatoxins+in+important+agricultural+products+by+HPLC.">Simple, rapid, and inexpensive cleanup method for quantitation of aflatoxins in important agricultural products by HPLC.</a> J. Agric. Food Chem. 55 (6), 2136-2141 (2007).</li><li>Sobolev, V. S., Dorner, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cleanup+procedure+for+determination+of+aflatoxins+in+major+agricultural+commodities+by+liquid+chromatography.">Cleanup procedure for determination of aflatoxins in major agricultural commodities by liquid chromatography.</a> J. AOAC Int. 85 (3), 642-645 (2002).</li><li>Levi, C. P., Borker, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Survey+of+green+coffee+for+potential+aflatoxin+contamination.">Survey of green coffee for potential aflatoxin contamination.</a> J. AOAC. 51 (3), 600-602 (1968).</li><li>Levi, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Collaborative+study+on+a+method+for+detection+of+aflatoxins+B1+in+green+coffee+beans.">Collaborative study on a method for detection of aflatoxins B1 in green coffee beans.</a> J. AOAC. 52 (6), 1300-1303 (1969).</li><li>Scott, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Note+on+analysis+of+aflatoxins+in+green+coffee.">Note on analysis of aflatoxins in green coffee.</a> J. AOAC. 51, 609 (1968).</li><li>Bicking, M. K. L., Kniseley, R. N., Svec, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coupled-column+system+for+quantitating+low+levels+of+aflatoxins.">Coupled-column system for quantitating low levels of aflatoxins.</a> J. AOAC. 66 (4), 905-908 (1983).</li><li>Kamimura, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simple,+rapid+cleanup+method+for+analysis+of+aflatoxins+and+comparison+with+various+methods.">Simple, rapid cleanup method for analysis of aflatoxins and comparison with various methods.</a> J. AOAC. 68 (3), 458-461 (1985).</li><li>Hoogenboom, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genotoxicity+testing+of+extracts+from+aflatoxin-contaminated+peanut+meal,+following+chemical+decontamination.">Genotoxicity testing of extracts from aflatoxin-contaminated peanut meal, following chemical decontamination.</a> Food Addit. Contam. 18 (4), 329-341 (2001).</li><li>Castro, L., Vargas, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Determining+aflatoxins+B1,+B2,+G1+and+G2+in+maize+using+Florisil+clean+up+with+thin+layer+chromatography+and+visual+and+densitometric+Quantitation.">Determining aflatoxins B1, B2, G1 and G2 in maize using Florisil clean up with thin layer chromatography and visual and densitometric Quantitation.</a> Cienc. Tecnol. Ailment. Campinas. 21, 115-122 (2001).</li><li>Arias, R. S., Dang, P. M., Sobolev, V. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNAi-mediated+Control+of+Aflatoxins+in+Peanut:+Method+to+Analyze+Mycotoxin+Production+and+Transgene+Expression+in+the+Peanut/Aspergillus+Pathosystem.">RNAi-mediated Control of Aflatoxins in Peanut: Method to Analyze Mycotoxin Production and Transgene Expression in the Peanut/Aspergillus Pathosystem.</a> J. Vis. Exp. (106), e53398 (2015).</li><li>Whitaker, T. B., Dorner, J. W., Giesbrecht, F. G., Slate, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Variability+among+aflatoxin+test+results+on+runner+peanuts+harvested+from+small+field+plots.">Variability among aflatoxin test results on runner peanuts harvested from small field plots.</a> Peanut Sci. 31 (1), 59-63 (2004).</li></ol>

Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.

Sobre la base de nuestra experiencia previa28, hemos desarrollado un procedimiento químico sencillo, barato y respetuoso con el medio ambiente, adecuado para la exploración de colecciones de germoplasma silvestre de Arachis con el fin de identificar especies resistentes al Aspergillus y determinar y caracterizar nuevas fuentes de resistencia genética a este hongo oportunista. Este método se basa en la purificación del extracto de semillas mediante una técnica de extracción en fase sólida (SPE) y la cuantificación de aflatoxinas mediante cromatografía líquida de ultra rendimiento (UPLC) y se caracteriza por una recuperación, precisión y exactitud suficientemente altas. El método "Florisil" propuesto es una modificación del procedimiento de limpieza de una sola minicolumna que se basa en la propiedad única de Florisil (gel de sílice magnésica) para retener fuerte y selectivamente las aflatoxinas28. Al igual que en el método original, las muestras de semillas se extrajeron con la mezcla MeOH-H2O, pero en una proporción diferente de 90:10 (v/v) en comparación con el 80:20 (v/v) publicado. Este cambio ha aumentado el caudal de disolventes a través de la columna de limpieza hasta 2,5 veces con la misma tasa de recuperación de aflatoxinas. Esta mezcla de metanol y agua 90:10 (v/v) proporcionó una recuperación de casi el 100% de los estándares de aflatoxinas B1, B2, G1 y G2 agregados al solvente de extracción a niveles de pico equivalentes a 5-50 ng de concentraciones de aflatoxinas en 1 g de un sustrato, así como proporcionó recuperaciones suficientemente altas de las muestras de semillas de maní enriquecidas (Tabla 1).
Se ha demostrado que las aflatoxinas pueden eluirse del adsorbente Florisil solo con grandes volúmenes de acetona30, acetona-metanol31,32 y mezclas de acetona y agua 33,34,35,36. En el curso de la presente investigación, descubrimos que el acetonitrilo acidificado se comporta de manera similar a la acetona en su capacidad para eluir aflatoxinas de Florisil. Hasta donde sabemos, esta propiedad del acetonitrilo no ha sido reportada en la literatura. El descubrimiento de esta propiedad permite inyectar extracto purificado directamente en el sistema UPLC omitiendo la etapa de evaporación del solvente, lo que reduce sustancialmente el tiempo de preparación. Incluso cuando el acetonitrilo se mezcló con acetona (acetona-acetonitrilo-agua-88% de ácido fórmico (65:31:3.5:0.5, v/v)), proporcionó una eliminación suave, completa y rápida del agua de los eluidos purificados, reduciendo sustancialmente el tiempo de evaporación del solvente. La presencia de acetonitrilo permitió el uso de un solo solvente, una mezcla de metanol y agua (90:10, v/v) para eliminar eficazmente las impurezas de la columna Florisil en comparación con un método publicado, donde se requerían dos solventes de lavado adicionales, metanol y una mezcla de cloroformo y metanol. 28
En promedio, la recuperación estándar de aflatoxina B1 fue de ~98% cuando se usaron 1.2 mL para la elución de aflatoxinas. La cantidad de 50 mg de Florisil se seleccionó de manera que 1,2 mL del solvente de elución llenara la minicolumna hasta la parte superior del barril y, al mismo tiempo, proporcionara una recuperación satisfactoria (Tabla 1). Este enfoque acelera el procedimiento de limpieza, ya que el barril de la columna solo debe llenarse una vez. En las primeras etapas de este proyecto, no estaba claro si una fracción comercial de Florisil con un tamaño de partícula relativamente grande, malla 100-200, sería apropiada para una columna pequeña que contiene solo una capa de 3 mm del adsorbente. Por lo tanto, exploramos diferentes fracciones de Florisil obtenidas de un producto comercial de malla 100-200 utilizando tamices de prueba estándar de EE. UU. 120-140, 140-170, 170-200, 200-270, 270-400 y malla >400. Todas estas fracciones proporcionaron resultados reproducibles, casi iguales a los de una recuperación satisfactoria. Aunque las fracciones de tamaño de partícula más pequeñas mostraron bandas de aflatoxinas más estrechas en la columna bajo luz ultravioleta, esas fracciones no fueron superiores en ningún aspecto al producto comercial de malla 100-200. Además, la fracción de malla 100-200 demostró los tiempos de elución más cortos (8-12 min) durante todo el procedimiento.
La administración de solvente UPLC en gradiente permitió una separación satisfactoria de las aflatoxinas, así como la eliminación completa de las impurezas no polares de la columna (Figura 5G). Este enfoque condujo a un funcionamiento impecable de la columna y a resultados reproducibles de los análisis de cientos de muestras. La identidad de las aflatoxinas eluidas de la columna de Florisil se confirmó como se describió anteriormente. 28 La columna analítica UPLC de 3 mm de diámetro utilizada aquí demostró una mayor selectividad y una separación más fiable de las aflatoxinas B1, B2, G1 y G2 a concentraciones más altas en comparación con la columna de 2,1 mm de diámetro de la misma química. Además, la longevidad de la columna de 3 mm (más de 1.200 inyecciones) fue sustancialmente mayor que la de la columna de 2,1 mm (hasta 800 inyecciones). A pesar de que la columna de 3 mm requirió una mayor tasa de la fase móvil (40% más), este inconveniente fue superado por las ventajas anteriores de la columna.
La minicolumna Florisil fue eficaz para la purificación de extractos de semillas de cacahuete muy contaminados con metabolitos de Aspergillus (Figura 5G); Dichas semillas también contenían altos niveles de fitoalexinas estilbenoides que fueron producidas por las semillas en respuesta a la invasión de hongos. Todas esas impurezas pueden exceder la concentración de aflatoxinas en las semillas hasta 106 veces22, lo que hace que estas semillas sean objetos desafiantes para los análisis de aflatoxinas. La Figura 5G muestra la ausencia de picos de interferencia en el cromatograma dentro de los tiempos de retención de aflatoxinas, lo que hizo que la detección y cuantificación de aflatoxinas no se vieran comprometidas en todos los niveles probados (Tabla 1). Como se observa en la Tabla 1, la exactitud y precisión del método fueron suficientemente altas dentro del rango probado de 1,0-50,0 ng/g, que es también el rango más crítico para la detección de aflatoxinas. Las recuperaciones a diferentes niveles para varios genotipos de maní silvestre fueron uniformes y las desviaciones estándar para cinco extracciones diferentes fueron esencialmente bajas.
El método también se probó en semillas de maní, algodón, maíz y arroz contaminadas naturalmente desde cero hasta niveles extremadamente altos, más de 10,000 ng/g de aflatoxinas totales. La recuperación de aflatoxinas B1, B2, G1 y G2 del maíz, la semilla de algodón y el arroz a un nivel de 5 ng/g varió de 76,1% a 93,7%, 77,1% a 86,6% y 90,5% a 96,2%, respectivamente. La mayor recuperación de aflatoxinas del arroz fue acompañada por la "pureza" del eluyente, es decir, prácticamente la ausencia de impurezas. Además, el arroz representó el objeto más pequeño probado, en promedio, 19 mg/semilla.
El tiempo total de preparación de una sola semilla de maní (incluyendo descascarillado, pesaje, extracción, centrifugación y purificación) usando una columna Florisil no excedió los 20 minutos. El costo de la minicolumna Florisil es >10 veces menor que el de las columnas de limpieza comerciales. Los ahorros adicionales se derivan del uso de volúmenes más bajos de adsorbentes, solventes y gas nitrógeno en comparación con el procedimiento publicado28. La minicolumna no requiere dispositivos de bombeo o vacío para funcionar y tiene una vida útil indefinida.
La exploración del germoplasma vegetal en busca de resistencia a las aflatoxinas es excepcionalmente difícil porque la acumulación de micotoxinas no sigue una distribución normal37,38; Se necesita un gran número de análisis de aflatoxinas en semillas individuales para superar este fenómeno. Además del contenido de aflatoxinas, la información sobre la composición cuantitativa de fitoalexinas es muy valiosa a la luz de una gran cantidad de información que se puede obtener de una sola semilla (Figura 1A) y rastrearla hasta una planta específica (Figura 1E). El método se ha utilizado con éxito para la selección de cientos de accesiones, incluidas razas autóctonas, líneas de mejoramiento avanzadas y variedades de maní de élite. El método se sugiere para su uso en programas de investigación de premejoramiento y mejoramiento genético de maní y puede ayudar en la caracterización de los genes de maní para la resistencia a los hongos.

El cacahuete (Arachis hypogaea L.) es uno de los principales cultivos alimentarios del mundo. Se cultiva en más de 100 países con una producción total que supera los 45 millones de toneladas1. Los productos agrícolas, como el maní, el maíz y la semilla de algodón, a menudo son invadidos por especies de Aspergillus, hongos nacidosen el suelo que producen aflatoxinas. Estos productos son particularmente susceptibles a la contaminación por aflatoxinas antes de la cosecha cuando las condiciones ambientales se caracterizan por altas temperaturas y sequía. Las aflatoxinas se encuentran entre los carcinógenos más potentes que seconocen. Contaminan una cuarta parte de los productos agrícolas del mundo4 , lo que hace que aproximadamente la mitad de la población mundial esté expuesta crónicamente a las aflatoxinas5. Debido a su alta carcinogenicidad y toxicidad, la presencia de aflatoxinas en los alimentos está regulada en los límites más bajos prácticamente aceptables en la mayoría de los países del mundo6.
La Unión Europea (UE) ha legislado un nivel máximo de 2 ng/g para la aflatoxinaB1 y de 4 ng/g para las aflatoxinas totales (B1,B2,G1 yG2) en los productos de consumo humano7. Estos límites tan bajos ejercen una presión sustancial sobre la agricultura y la industria alimentaria que procesa productos contaminados con aflatoxinas. El monitoreo de las aflatoxinas y el reprocesamiento de los cacahuetes contaminados pueden considerarse una estrategia pasiva y costosa para evitar que las aflatoxinas ingresen a la cadena alimentaria. Es por eso que todos los segmentos principales de la industria del maní experimentan enormes pérdidas de ganancias debido a la contaminación por aflatoxinas de los cultivares de maní actuales que a menudo demuestran una resistencia limitada a las enfermedades fúngicas. Un enfoque prospectivo para resolver el problema de las aflatoxinas es obtener cultivares de maní resistentes a los hongos a través de la introgresión de genes, es decir, la transferencia de información genética de especies de maní silvestre resistentes a cultivares de élite. En los últimos años 8,9, las especies silvestres de maní han recibido una consideración sustancial como fuentes de resistencia genética a enfermedades debido a que la estrecha base genética de los cacahuetes cultivados ya no puede proporcionar el nivel necesario de rasgos de resistencia a la planta de maní10,11. La introgresión exitosa de especies silvestres de maní requiere el análisis de miles de semillas individuales, pequeñas y escasas (Figura 1A) 12.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66574/66574fig1.jpg"> Figura 1: Diagrama de flujo de análisis de una sola semilla. (A) Tamaño comparativo de diferentes cultivares de maní de tipo comercial frente a Arachis spp. silvestre (1) Virginia; (2) corredor; (3) español; (4) Arachis spp. silvestre (B) Arachis spp. silvestre (lámina A, semilla 4) cortada en tres secciones, (5) media semilla con eje embrionario; esta porción de la semilla se utiliza para cultivar una planta (E). (C) Las partes (6) y (7) se perforan con una broca y (D) se inoculan con esporas de hongos. Después de la incubación durante 72 h a 30 °C, una de las partes de la semilla, (6) o (7) se utiliza para los análisis de aflatoxinas y fitoalexinas, y otra se utiliza para la secuenciación de ARN/transcriptoma. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66574/66574fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
La resistencia del maní a patógenos fúngicos está fuertemente asociada con las fitoalexinas 13,14,15,16,17. Las fitoalexinas del maní están representadas por estilbenoides antimicrobianos que se biosintetizan y acumulan en los tejidos vegetales después de la exposición a estímulos exógenos, en particular, a la invasión de hongos 16,17,18. La acumulación rápida de concentraciones suficientes de fitoalexinas en el sitio de la invasión fúngica es inhibidor del crecimiento fúngico y es fundamental para la defensa de las plantas 19,20,21. El patógeno deja de crecer cuando las fitoalexinas se acumulan a concentraciones inhibitorias16,22. El papel de los estilbenoides como compuestos defensivos contra hongos aflatoxigénicos en maní fue evaluado hace más de 30 años en experimentos de campo13. Esos experimentos apoyaron claramente la hipótesis de que los estilbenoides del maní son un factor de resistencia crucial en la contaminación por aflatoxinas antes de la cosecha. Esas pruebas se basan en el hecho de que los estilbenos se producen naturalmente en los cacahuetes dañados en el campo; los estilbenos demuestran una actividad biológica apreciable contra los hongos aflatoxigénicos; Y la contaminación por aflatoxinas en las semillas solo se detectó cuando los cacahuetes perdieron la capacidad de síntesis de fitoalexinas debido a la deshidratación de las semillas inducida por la sequía. Otro conjunto de experimentos de campo confirmó la asociación entre la producción de fitoalexinas y la resistencia del genotipo del maní a enfermedades del maní de importancia agrícola17.
Una mejor comprensión del mecanismo natural de resistencia del maní a la invasión fúngica basado en fitoalexinas es una estrategia prometedora para el control de la contaminación por aflatoxinas15,17.Por lo tanto, además de los análisis de aflatoxinas, es importante analizar cuantitativamente las mismas semillas para las fitoalexinas. Aunque este mecanismo de resistencia no se ha investigado ni comprendido completamente, es crucial para el mejoramiento y la modificación genética de las plantas de maní para obtener nuevos cultivares resistentes a los hongos23. A pesar de la existencia de diversos procedimientos analíticos para la determinación de aflatoxinas en diferentes productos, sigue siendo necesario contar con métodos sencillos para la investigación específica, en particular cuando los métodos tradicionales no satisfacen los requisitos analíticos y rentables. Los métodos de limpieza más modernos utilizados por la industria del maní, la agricultura y los laboratorios privados son los dispositivos basados en anticuerpos24 y los dispositivos de inmunoensayo 25,26,27. Son selectivos y sensibles, pero sustancialmente más caros que las minicolumnas repletas de adsorbentes comunes. Además, ninguno de esos métodos fue diseñado para el análisis de muestras de pocos miligramos de peso. Sobre la base de nuestra investigación previa sobre el uso analítico de minicolumnas empaquetadas en gel de sílice magnésico (Florisil)28, modificamos este procedimiento para adaptarlo a las necesidades de los programas de premejoramiento y mejoramiento en curso y prospectivos.
El propósito de este trabajo fue desarrollar un método no destructivo, de rendimiento medio y respetuoso con el medio ambiente para la determinación cuantitativa de aflatoxinas y fitoalexinas en semillas individuales de maní. Este método ya se ha desarrollado. Sus ventajas sobre los métodos publicados son una mayor sensibilidad, la capacidad de analizar aflatoxinas y fitoalexinas en un extracto de una sola semilla, la falta de necesidad de pesar las muestras y un menor costo gracias a volúmenes más pequeños de consumibles. El diagrama de flujo del método integrado se muestra en la Figura 1. Los análisis genéticos y otros pasos se mencionan en este texto y se demuestran en la figura para mostrar la importancia del método sugerido y cómo se integra con todo el procedimiento.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Acetone, Optima</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A929-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetonitrile, Optima</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A996-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acquity BEH C18 2.1 x 5mm Van-Guard pre-column</td>
			<td>Waters Corporation</td>
			<td>186003975</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acquity BEH C18 3 x 100mm column</td>
			<td>Waters Corporation</td>
			<td>186004661</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acquity BEH C18 2.1 x 100mm column</td>
			<td>Waters Corporation</td>
			<td>186002352</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aflatoxins B1, B2, G1, and G2</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A9441-1VL</td>
			<td>Dissolve the contents of the commercial vial in 5 mL of methanol to obtain 5 &#181;g/mL for aflatoxins B1 and G1 and 1.5 &#181;g/mL for B2 and G2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aflatoxin B1 (1mg)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A6636-1MG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aflatoxin B2 (1mg)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A9887-1MG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aflatoxin G1 (1mg)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A0138-1MG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aflatoxin G2 (1mg)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A0263-1MG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aflatoxin M1 (10 &#181;g)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>CRM46319</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agar, Granulated (2kg)</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>BD214510</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alumina oxide basic (60-325 mesh)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A941-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Basal medium</td>
			<td>Murashige and Skoog</td>
			<td>M5519</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bead Ruptor 24&#160;</td>
			<td>Omni International</td>
			<td>19-042E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Beaker (1000mL)</td>
			<td>Corning (Pyrex)</td>
			<td>10001L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Beaker (250mL)</td>
			<td>Corning (Pyrex)</td>
			<td>1000250</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Beaker (400mL)</td>
			<td>Corning (Pyrex)</td>
			<td>1000400</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Beaker (600mL)</td>
			<td>Corning (Pyrex)</td>
			<td>1000600</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blade, scalpel</td>
			<td>Feather</td>
			<td>#10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge (LSE Compact)</td>
			<td>Corning</td>
			<td>Model: 6755</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge, micro</td>
			<td>Corning</td>
			<td>Model: 6770</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ceramic beads (2.8 mm)</td>
			<td>Omni International</td>
			<td>19-646</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ceramic beads (6.5 mm)</td>
			<td>Omni International</td>
			<td>19-682</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chromeleon 7 series Software</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drill bit</td>
			<td>Kyocera</td>
			<td>07896</td>
			<td>1.6 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drill bit</td>
			<td>Kyocera</td>
			<td>07357</td>
			<td>2.0 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drill bit</td>
			<td>Kyocera</td>
			<td>07985</td>
			<td>2.34 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol (200 proof)</td>
			<td>Decon Labs</td>
			<td>2805M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Evaporator, nitrogen</td>
			<td>organimation</td>
			<td>11106</td>
			<td>6-position</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Excel, Microsoft</td>
			<td>Microsoft</td>
			<td>Office 365</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper (#4)</td>
			<td>Cytiva Whatman</td>
			<td>1004-090</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper cutter, stainless steel (ID 11.5mm)</td>
			<td>Unknown</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper, glass fibre</td>
			<td>Cytiva Whatman</td>
			<td>934-AH</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flask (2800mL)</td>
			<td>Corning (Pyrex)</td>
			<td>44202XL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Florisil (100-200 mesh)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>F101-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>Integra Lifescience (Miltex)</td>
			<td>PM-0300</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formic acid (88%, ACS)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A118P-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Freezer (-80oC)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>TSX70086D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Funnel (15 x 80mm)</td>
			<td>DWK Life Sciences (Kimax)</td>
			<td>2902060</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gelzan (medium)</td>
			<td>Caisson Labs&#160;</td>
			<td>G024</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass rod (custom)</td>
			<td>Custom made</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass wool</td>
			<td>Corning (Pyrex)</td>
			<td>3950</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Handle, scalpel&#160;</td>
			<td>Feather</td>
			<td>#7</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hemocytometer</td>
			<td>Hausser Scientific</td>
			<td>3100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrogen peroxide</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>H325-4</td>
			<td>30%, Certified ACS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ice bucket, round with lid</td>
			<td>Corning</td>
			<td>432122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Incubator</td>
			<td>Percival</td>
			<td>136VL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kimtech SCIENCE Brand Kimwipes</td>
			<td>Kimtech</td>
			<td>34120</td>
			<td>8.2&#34; x 4.39&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kimtech SCIENCE Brand Kimwipes</td>
			<td>Kimtech</td>
			<td>34256</td>
			<td>16.4&#34; x 14.43&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lab coat</td>
			<td>Cenmed</td>
			<td>B113660SBXL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methanol, Optima</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A454-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mini column rack (custom)</td>
			<td>Custom made</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mixer, touch (maxi mix II)</td>
			<td>Thermolyne</td>
			<td>37600 (model 231)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nitrile gloves&#160;</td>
			<td>Microflex</td>
			<td>XC310M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nitrogen gas, compressed (ultra high purity)</td>
			<td>Jones Welding</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paper towel</td>
			<td>Georgia-Pacific</td>
			<td>20023 (D400)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pH meter</td>
			<td>Fisher Scientific (Accumet)</td>
			<td>13-636-AB15</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pH/ATC electrode</td>
			<td>Fisher Scientific (Accumet)</td>
			<td>13-620-111</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PhCR Photochemical Reactor</td>
			<td>Waters (Vicam)</td>
			<td>600001222</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette, pasteur</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>13-678-20D</td>
			<td>9&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipettor (1 mL) (Reference 2)</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>4924000088</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipettor (10 &#956;L) (Reference)</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>022470051D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette tips: 10 &#956;L, 200 &#956;L, 1 mL</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>F144054M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipettor (200 &#181;L)(Ergofit)&#160;</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-146-679</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plates, petri (100x15mm)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>FB0875713</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potato Dextrose Agar (500g)</td>
			<td>Becton Dickinson&#160;&#160;</td>
			<td>BD213400</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reinforced bead tube (2 mL)</td>
			<td>Omni International</td>
			<td>19-660</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reinforced bead tube (7 mL)</td>
			<td>Omni International</td>
			<td>19-651</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Repipettor, Dispensette III (10mL)</td>
			<td>Brandtech</td>
			<td>4701141</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Resveratrol</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>R5010-100MG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scoop (custom)</td>
			<td>Custom made</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>screwcap jar (250 mL)&#160;</td>
			<td>Corning (Pyrex)</td>
			<td>1395250</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silica gel, spherical (200-400 mesh)&#160;</td>
			<td>Supelco</td>
			<td>97727-U</td>
			<td>100 g</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Hydroxide</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>S318-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SPE extract clean 1.5-mL polypropylene column&#160;</td>
			<td>American Chromotography Supplies</td>
			<td>SP-5122382</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SPE extract clean PP frits (for 1.5 mL minicolumn)</td>
			<td>American Chromotography Supplies</td>
			<td>SP-3119414</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spectrophotometer, UV-visible</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-385-351 (Genesys 50)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Test tube</td>
			<td>Corning (Pyrex)</td>
			<td>982516X</td>
			<td>16x125mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Test tube (Disposable)(16x125mm)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-961-31</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Test tube (Disposable)(150x250mm)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-961-34</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo Vanquish DAD detector (UPLC)</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>VF-D11-A-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo Vanquish Fluourescense detector (UPLC)</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>VF-D51-A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo Vanquish quaternary pump F (UPLC)</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>VF-P20-A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo Vanquish Split Sampler FT (UPLC)</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>VF-A10-A-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tween 20 (polysorbate 20) (enzyme grade)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP337-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vial caps (4mL)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>C4015-75A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vial caps (autosampler)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>C4010-60A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vials &#38; caps (16 mL)</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>B7800-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vials, glass (4mL)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>C4015-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vials, polypropylene (autosampler) (400mL)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>C4010-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water, Optima&#160;</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>W6-4</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

non-destructive spe-uplc-based quantification of aflatoxins and stilbenoid phytoalexins in single peanut (arachis spp.) seeds

Las aflatoxinas son metabolitos secundarios altamente cancerígenos de algunas especies fúngicas, en particular Aspergillus flavus. Las aflatoxinas a menudo contaminan productos agrícolas de importancia económica, incluidos los cacahuetes, lo que representa un alto riesgo para la salud humana y animal. Debido a la estrecha base genética, los cultivares de maní demuestran una resistencia limitada a los patógenos fúngicos. Por lo tanto, numerosas especies de maní silvestre con tolerancia a Aspergillus han recibido una consideración sustancial por parte de los científicos como fuentes de resistencia a enfermedades.
La exploración del germoplasma vegetal en busca de resistencia a las aflatoxinas es difícil, ya que la acumulación de aflatoxinas no sigue una distribución normal, lo que dicta la necesidad de analizar miles de semillas de maní individuales. Las semillas de maní (Arachis spp.) suficientemente hidratadas, cuando están infectadas por especies de Aspergillus , son capaces de producir estilbenos biológicamente activos (estilbenoides) que se consideran fitoalexinas defensivas. Los estilbenos de maní inhiben el desarrollo de hongos y la producción de aflatoxinas. Por lo tanto, es crucial analizar las mismas semillas para los estilbenoides del maní para explicar la naturaleza de la resistencia/susceptibilidad de las semillas a la invasión de Aspergillus . Ninguno de los métodos publicados ofrece análisis de una sola semilla para aflatoxinas y/o fitoalexinas de estilbeno.
Intentamos satisfacer la demanda de un método que sea respetuoso con el medio ambiente, que utilice consumibles baratos y que sea sensible y selectivo. Además, el método no es destructivo, ya que utiliza solo la mitad de la semilla y deja intacta la otra mitad que contiene el eje embrionario. Dicha técnica permite la germinación y el crecimiento de la planta de maní hasta la madurez completa a partir de la misma semilla utilizada para el análisis de aflatoxinas y estilbenoides. La parte integrada de este método, el desafío manual de las semillas con Aspergillus, es un paso limitante que requiere más tiempo y trabajo en comparación con otros pasos del método. El método se ha utilizado para la exploración de germoplasma silvestre de Arachis con el fin de identificar especies resistentes a Aspergillus y para determinar y caracterizar nuevas fuentes de resistencia genética a este patógeno fúngico.

Peanut (Arachis hypogaea L.) is one of the major food crops in the world. It is cultivated in more than 100 countries with total production exceeding 45 million tons1. Agricultural commodities, such as peanut, corn, and cottonseed are often invaded by species of Aspergillus, soil-born fungi that produce aflatoxins2. These commodities are particularly susceptible to preharvest aflatoxin contamination when environmental conditions are characterized by high temperatures and drought. Aflatoxins are among the most potent carcinogens known3. They contaminate a quarter of the agricultural commodities in the world4 making about half of the world&#39;s population chronically exposed to aflatoxins5. Due to their high carcinogenicity and toxicity, aflatoxin presence in food is regulated at the lowest practically acceptable limits in most countries of the world6.
The European Union (EU) has legislated a maximum level of 2 ng/g for aflatoxin B1 and 4 ng/g for total aflatoxins (B1, B2, G1, and G2) in products for human consumption7. Such low limits put substantial pressure on agriculture and the food industry that processes commodities contaminated with aflatoxins. Aflatoxin monitoring and reprocessing of contaminated peanuts may be considered a passive and costly strategy to prevent aflatoxins from entering the food chain. That is why all major segments&#160;of the peanut industry experience tremendous profit losses due to the aflatoxin contamination of current peanut cultivars that often demonstrate limited resistance to fungal diseases. A prospective approach to resolve the aflatoxin problem is to obtain fungus-resistant peanut cultivars through gene introgression, that is, the transfer of genetic information from resistant wild peanut species to elite cultivars. In recent years8,9, wild peanut species have received substantial consideration as sources of genetic disease resistance because the narrow genetic base of cultivated peanuts can no longer provide the needed level of resistance traits to the peanut plant10,11. Successful introgression from wild peanut species requires the analyses of thousands of single small and scarce&#160;seeds (Figure 1A) 12.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66574/66574fig1.jpg" /> 
Figure 1: Single-seed analysis flowchart. (A) Comparative size of different market-type peanut cultivars vs. wild Arachis spp. (1) Virginia; (2) runner; (3) Spanish; (4) wild Arachis spp. (B) Wild Arachis spp. (plate A, seed 4) cut into three sections, (5) half seed with embryonic axis; this portion of the seed is used to grow a plant (E). (C) Parts (6) and (7) are drilled with a drill bit and (D) inoculated with fungal spores. After incubation for 72h at 30 &#176;C, one of the seed parts, (6) or (7) is used for aflatoxin and phytoalexin analyses, and another is used for RNA/transcriptome sequencing. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66574/66574fig1large.jpg" target="_blank">Please click here to view a larger version of this figure.</a>
Peanut resistance to fungal pathogens is strongly associated with phytoalexins13,14,15,16,17. Peanut phytoalexins are represented by antimicrobial stilbenoids that are biosynthesized and accumulated in plant tissues after exposure to exogenous stimuli, particularly, to fungal invasion16,17,18. Rapid accumulation of sufficient concentrations of phytoalexins at the site of fungal invasion is inhibitory to fungal growth and is critical for plant defense19,20,21. Pathogen stops growing when phytoalexins accumulate to inhibitory concentrations16,22. The role of stilbenoids as defensive compounds against aflatoxigenic fungi in peanut was evaluated over 30 years ago in field experiments13. Those experiments clearly supported the hypothesis that peanut stilbenoids are a crucial resistance factor in preharvest aflatoxin contamination. Such evidence is based on the facts that stilbenes are naturally produced in field-damaged peanuts; stilbenes demonstrate appreciable biological activity against aflatoxigenic fungi; and aflatoxin contamination in seeds was detected only when peanuts lost the capacity for phytoalexin synthesis due to drought-induced seed dehydration. Another set of field experiments confirmed the association between phytoalexin production and peanut genotype resistance to agriculturally important peanut diseases17.
A better understanding of the natural phytoalexin-based mechanism of peanut resistance to fungal invasion is a promising strategy for the control of aflatoxin contamination15,17. Therefore, in addition to the aflatoxin analyses, it is important to quantitatively analyze the same seeds for phytoalexins. Although this mechanism for resistance is not fully researched and understood, yet it is crucial for breeding and genetically modifying peanut plants for new fungal-resistant cultivars23. Despite the existence of various analytical procedures for aflatoxin determination in different commodities, there is still a need for simple methods for specific research, particularly when traditional methods do not satisfy analytical and cost-effective requirements. Most modern cleanup methods used by the peanut industry, agriculture, and private laboratories are antibody-based24 and immunoassay25,26,27devices. They are selective and sensitive but substantially more expensive than minicolumns packed with common adsorbents. In addition, none of those methods were designed for the analyses of few-milligram-weight samples. Based on our previous research on the analytical use of magnesium silica gel (Florisil)-packed minicolumns28, we modified this procedure to suit the needs of ongoing and prospective pre-breeding and breeding programs.
The purpose of this work was to develop a non-destructive, medium throughput, environment-friendly method for the quantitative determination of aflatoxins and phytoalexins in single peanut seeds. Such a method has been developed. Its advantages over published methods are higher sensitivity, the ability to analyze aflatoxins and phytoalexins in a single-seed extract, lack of the need to weigh samples, and lower cost thanks to smaller volumes of consumables. The flow chart of the integrated method is shown in Figure 1. The genetic analyses and other steps are mentioned in this text and demonstrated in the figure to show the importance of the suggested method and how it is integrated with the entire procedure.

Autor destacado: Cuantificación de aflatoxinas y fitoalexinas en semillas de maní para identificar la resistencia genética contra Aspergillus

Cuantificación no destructiva de aflatoxinas y fitoalexinas estilbenoides basadas en SPE-UPLC en maní individual (Arachis spp.) Semillas

The scope of the research was to develop a method of quantification of aflatoxins and defensive phytoalexins in thousands of peanut seeds for the exploration of wild Arachis germplasm, to identify species resistant to aspergillus, and to determine and characterize novel sources of genetic resistance to this fungal pathogen. Our research group has found that the most promising approach to identify peanut germplasm that does not accumulate aflatoxin is to perform a holistic analysis of each individual seed, including its transcriptomics, genomics, phytoalexins, and mycotoxin profiles. We have developed protocols for wild and cultivated peanut seed analysis, which means using 1/4 of a single seed for chemical profiling, Developing high-throughput methods for effective seed challenging, extraction, and accurate quantification of phytoalexins in peanut seed samples.We have discovered numerous peanut phytoalexins and developed efficient and inexpensive methods for aflatoxin analysis, as well as for screening peanut germplasm with reduced or no aflatoxin accumulation. The methods include genotyping and determination of seed viability.

El método desarrollado para la cuantificación de aflatoxinas en semillas es el núcleo de todo el procedimiento de evaluación de especies de maní silvestre para determinar su resistencia a la acumulación de aflatoxinas. Las minicolumnas y los filtros empaquetados a medida proporcionan ahorros sustanciales y simplifican el procedimiento general debido a la falta de grandes volúmenes de solventes, filtros comerciales costosos e innecesarios de 0,22 o 0,45 μm y dispositivos de bombeo. El método para los análisis de aflatoxinas proporciona altas recuperaciones, exactitud y precisión dentro del rango probado de 1.0-50.0 ng/g de aflatoxinas de semillas molidas, como se ve en la Tabla 1. Las muestras altamente contaminadas se diluyeron hasta el valor lineal de ensayo. La Figura 5C muestra una separación de referencia de cuatro aflatoxinas principales, B1, B2, G1 y G2 dentro de un tiempo de elución de 5 min, lo cual es aceptable ya que el desafío fúngico de las semillas de maní es la etapa limitante del procedimiento y no los análisis UPLC.
El método propuesto es suficientemente sensible, con un límite de cuantificación de 2 pg para la aflatoxinaB1 (Figura 5D). La alta pureza de los extractos permite una cuantificación inequívoca de las aflatoxinas como se ve a partir de un UPLC (Figura 5E) de extracto purificado de semillas cosechadas en un campo con una especie de Arachis silvestre. Un método de minicolumna publicado anteriormente29 no es capaz de lograr una pureza satisfactoria para las semillas de maní desafiadas por hongos (Figura 5F) en comparación con el método propuesto (Figura 5G). A partir de la Figura 5F es obvio que las aflatoxinas B2, G1 y G2 no se pueden detectar y cuantificar de manera confiable debido a la presencia de altas concentraciones de impurezas interferentes, muchas de las cuales, eluidas después de las aflatoxinas, son fitoalexinas estilbenoides y metabolitos fúngicos. Por el contrario, la Figura 5G demuestra la alta eficiencia de la columna de gel de sílice de magnesio en la eliminación de impurezas de la fracción de aflatoxinas. El cromatograma azul presenta impurezas interferentes que se lavan de la columna con 1 mL de mezcla de metanol y agua (90:10); el cromatograma negro muestra picos no oscurecidos de las aflatoxinas M1 y B1. Este cromatograma representa el extracto de una semilla de una especie silvestre desafiada. El nivel de aflatoxina B1 es de 48 ng/g.
La cuantificación de las fitoalexinas del maní es una valiosa adición a los análisis de aflatoxinas en la misma semilla, que puede ser una semilla natural de un campo o una semilla con hongos. La Figura 5H muestra un cromatograma típico de estilbenoides defensivos de maní de una semilla desafiada. La separación de los compuestos se logra utilizando la misma columna analítica que se utiliza para los análisis de aflatoxinas. La columna y las condiciones cromatográficas elegidas proporcionan una separación satisfactoria de los picos, lo que permite una cuantificación fiable de los estilbenoides. La evaluación de la relación aflatoxina-fitoalexina en semillas desafiadas está fuera del alcance de esta presentación y el método se sugiere aquí como una herramienta de investigación potencial, que se ha utilizado en el laboratorio de los autores durante varios años y ha demostrado ser útil.

<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66574/66574fig6.jpg"> Figura 6: Estructuras de las principales aflatoxinas y fitoalexinas de cacahuete derivadas del estilbeno. (A) Estructuras de las principales aflatoxinas: 1, B1; 2, B2; 3, G1; 4, G2. (B) Estructuras de las principales fitoalexinas de maní derivadas de estilbenos: 6, resveratrol; 7, araquidina-1; 8, araquidina-2; 9, araquidina-3; 10, IPD (3′-isopentadienil-3,5,4′-trihidroxiestilbeno); 11, SB-1. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66574/66574fig6large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> 
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td rowspan="2">Nivelde espiga a (ng/g)</td>
			<td colspan="4">Aflatoxinas</td>
		</tr><tr><td>B1</td>
			<td>B2</td>
			<td>G1</td>
			<td>G2</td>
		</tr><tr><td>50</td>
			<td>85.87 (0.97)</td>
			<td>82.33 (0.67)</td>
			<td>86.63 (2.89)</td>
			<td>84.01 (0.86)</td>
		</tr><tr><td>5</td>
			<td>91.43 (2.76)</td>
			<td>87.32 (0.47)</td>
			<td>88.08 (2.08)</td>
			<td>87.73 (0.77)</td>
		</tr><tr><td>1</td>
			<td>81.21 (3.16)</td>
			<td>85.33 (1.98)</td>
			<td>81.76 (4.66)</td>
			<td>88.46 (3.24)</td>
		</tr></tbody></table>Tabla 1: Recuperación de aflatoxinas de semillas de maní utilizando la columna Florisil y 1,2 mL de la mezcla de elución de la fracción de aflatoxinas. [media (DE), %; n = 5]. Las muestras molidas libres de aflatoxinas (50 g) del cultivar de maní Georgia 06G se enriquecieron uniformemente con la ayuda de una microjeringa con solución de stock de aflatoxinas a un nivel de 50, 5 o 1 ng/g, y se dejaron a temperatura ambiente durante 16 h. a Se dan niveles de pico para las aflatoxinas B1 y G1; en el caso de las aflatoxinasB2 yG2 , se utilizará el factor de multiplicación de 0,33.

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Demostramos un método de rendimiento medio para la cuantificación de aflatoxinas y fitoalexinas estilbenoides en semillas individuales de maní utilizando cromatografía líquida de ultra rendimiento. Este método fue desarrollado específicamente para el análisis de especies silvestres de Arachis desafiadas por la especie aflatoxigénica Aspergillus .

Aflatoxins are highly carcinogenic secondary metabolites of some fungal species, particularly Aspergillus flavus. Aflatoxins often contaminate ...

El alcance de la investigación fue desarrollar un método de cuantificación de aflatoxinas y fitoalexinas defensivas en miles de semillas de maní para la exploración de germoplasma silvestre de Arachis, para identificar especies resistentes al aspergillus, y para determinar y caracterizar nuevas fuentes de resistencia genética a este patógeno fúngico. Nuestro grupo de investigación ha descubierto que el enfoque más prometedor para identificar el germoplasma de maní que no acumula aflatoxinas es realizar un análisis holístico de cada semilla individual, incluidos sus perfiles transcriptómicos, genómicos, de fitoalexinas y micotoxinas. Hemos desarrollado protocolos para el análisis de semillas de maní silvestres y cultivadas, lo que significa usar 1/4 de una sola semilla para el perfil químico, desarrollar métodos de alto rendimiento para un desafío efectivo de semillas, extracción y cuantificación precisa de fitoalexinas en muestras de semillas de maní.Hemos descubierto numerosas fitoalexinas de cacahuete y hemos desarrollado métodos eficientes y económicos para el análisis de aflatoxinas, así como para el cribado de germoplasma de cacahuete con una acumulación reducida o nula de aflatoxinas. Los métodos incluyen el genotipado y la determinación de la viabilidad de las semillas.

non-destructive-spe-uplc-based-quantification-aflatoxins-stilbenoid

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Non-destructive SPE-UPLC-based Quantification of Aflatoxins and Stilbenoid Phytoalexins in Single Peanut (Arachis spp.) Seeds

590 vistas.  U.S. Department of Agriculture. El alcance de la investigación fue desarrollar un método de cuantificación de aflatoxinas y fitoalexinas defensivas en miles de semillas de maní para la exploración de germoplasma silvestre de Arachis, para identificar especies resistentes al aspergillus, y para determinar y caracterizar nuevas fuentes de resistencia genética a este patógeno fúngico. Nuestro grupo de investigación ha descubierto que el enfoque más prometedor para identificar el germoplasma de maní que no acumula af...

Video: Autor destacado: Cuantificación de aflatoxinas y fitoalexinas en semillas de maní para identificar la resistencia genética contra Aspergillus 

Aflatoxins are highly carcinogenic secondary metabolites of some fungal species, particularly Aspergillus flavus. Aflatoxins often contaminate economically important agricultural commodities, including peanuts, posing a high risk to human and animal health. Due to the narrow genetic base, peanut cultivars demonstrate limited resistance to fungal pathogens. Therefore, numerous wild peanut species with tolerance to Aspergillus have received substantial consideration by scientists as sources of disease resistance.
Exploring plant germplasm for resistance to aflatoxins is difficult since aflatoxin accumulation does not follow a normal distribution, which dictates the need for the analyses of thousands of single peanut seeds. Sufficiently hydrated peanut (Arachis spp.) seeds, when infected by Aspergillus species, are capable of producing biologically active stilbenes&#160;(stilbenoids) that are considered defensive phytoalexins. Peanut stilbenes inhibit fungal development and aflatoxin production. Therefore, it is crucial to analyze the same seeds for peanut stilbenoids to explain the nature of seed resistance/susceptibility to the Aspergillus invasion. None of the published methods offer single-seed analyses for aflatoxins and/or stilbene phytoalexins.
We attempted to fulfill the demand for such a method that is environment-friendly, uses inexpensive consumables, and is sensitive and selective. In addition, the method is non-destructive since it uses only half of the seed and leaves the other half containing the embryonic axis intact. Such a technique allows germination and growth of the peanut plant to full maturity from the same seed used for the aflatoxin and stilbenoid analysis. The integrated part of this method, the manual challenging of the seeds with Aspergillus, is a limiting step that requires more time and labor compared to other steps in the method. The method has been used for the exploration of wild Arachis germplasm to identify species resistant to Aspergillus and to determine and characterize novel sources of genetic resistance to this fungal pathogen.

We demonstrate a medium-throughput method for quantification of aflatoxins and stilbenoid phytoalexins in single peanut seeds using ultra performance liquid chromatography. This method was specifically developed for the analyses of wild Arachis species challenged by the aflatoxigenic Aspergillus species.

Investigación

Bioquímica

Preparing Aflatoxigenic Aspergillus flavus Spores and Inoculating Peanut Seeds for Challenging Studies

After growing aflatoxigenic Aspergillus flavus NRRL 3357 on a potato dextrose auger slant for six days at 30 degrees Celsius, elute the fungal spores from the test tube with 10 milliliters of water containing Tween 20. Vortex the test tube for 20 seconds. Filter the fungal spore suspension through glass wool placed in a funnel, and use the vortexed filtrate for dilution.Dilute a 100 microliter aliquot of the filtered suspension with 9.9 milliliters of water. After vortexing, count the spores with a hemocytometer. Using the onscreen formula, calculate the volume of water needed to dilute one volume of the original suspension from the slant to 1000 spores per microliter.Add one volume of the original suspension to the calculated amount of water. Next, gently crack the peanut pods and remove the hulls. Place the seeds in a sterile beaker.Add 0.05%hydrogen peroxide solution until the beaker is 70%full, allowing seeds to imbibe water for three hours. Decant the hydrogen peroxide solution from the seeds and add approximately three times the amount of 80%ethanol water mixture to cover the seeds. Incubate for one minute.Then rinse the seeds twice with equal volumes of sterile distilled water. Add the fivefold volume of 3%hydrogen peroxide solution to the beaker and allow it to stand for five minutes. After decanting the hydrogen peroxide solution, rinse the seeds twice with equal volumes of sterile water.Place a 90 millimeter diameter filter paper into the lid and moisten the paper with one milliliter of sterile water. Place the lid on the dish. Place the seeds on a sterile paper towel.Using forceps, remove the seed's skin. Place the de-skinned seeds promptly in the Petri dish to avoid dehydration. Cut about one third of the seed containing the embryonic axis.Split the seed into cotyledons, and using a sharp drill bit, drill approximately 1.5 to two millimeter deep into the middle of the outer side of each cotyledon. Place four to six drilled pieces of the seeds on a 1.5%auger dish. Using a 10 microliter pipette, add two microliters of the spore suspension into the drilled cavity of each half cotyledon piece.After covering the dish with a lid, incubate at 30 degrees Celsius without light for 72 hours.

Preparación de esporas aflatoxigénicas de Aspergillus flavus e inoculación de semillas de maní para estudios desafiantes

Sampling, Preparation, and Quantification of Aflatoxins and Phytoalexins in Peanut Seeds Following Aflatoxigenic Aspergillus flavus Spore Inoculations

After incubation of peanut seeds, following Aspergillus flavus spore inoculation, use forceps to remove the seed pieces from the agar. Place the seed pieces into labeled seven milliliter bead vials containing 13 zirconium ceramic beads. For the extraction of phytoalexins and aflatoxins, depending on the seed size, add two or four milliliters of a methanol water mixture to the bead vial and pulverize at 5.5 meters per second for 45 seconds.Then centrifuge at 1, 860 x g for three minutes, and collect the supernatant in a fresh vial. For aflatoxins analysis, using a glass rod, cut at a 90 degree angle, insert a polyethylene porous frit into a 1.5 milliliter polypropylene column. With a custom made scoop, add 50 milligrams of magnesium silica gel into the column.Cap the column with an identical frit and push it down with a glass rod. Add 0.5 milliliters of supernatant into the custom packed mini column and allow the extract to drain by gravity into a four milliliter glass vial. Add one milliliter of methanol water mixture into the column to wash out impurities by gravity into the same vial.After discarding the combined eluates from the vial, add 1.2 milliliters of acetone acetyl nitrile water, 88%formic acid mixture into the column to elute the aflatoxin fraction into a clean glass vial. Evaporates solvent from the vial in a stream of nitrogen in a heating block at 45 degrees Celsius. After evaporation, cap the vial and cool it in crushed dice for one minute.Place the custom made Pasteur pipette filters in disposable test tubes and put them on ice to minimize evaporation upon filtration. Dissolve the dry residue in precisely measure 0.25 to 1.0 milliliter of methanol water mixture. After vortexing, transfer an aliquot of 0.2 milliliters into the filter.Use nitrogen gas to expedite the filtration into a 400 microliter autosampler vial. Place the vial in the UPLC autosampler and set the injection volume to 0.1 to 3.0 microliters. For phytoalexin, transfer 200 microliters of supernatant from the seven milliliter centrifuge vial into a Pasteur pipette filter.After filtration, place a matching cap with polytetrafluoroethylene septum on the vial. For separations of aflatoxins, implement a gradient using water, methanol, and acetyl nitrile with specific percentage compositions and runtimes. Set the flow rate to 0.45 milliliters per minute and runtime to 9.5 minutes.In the system column heater, set the column temperature to 40 degrees Celsius. To quantify aflatoxins, set excitation and emission wavelengths to 362 and 440 nanometers, respectively. Then using the calibration curve method and UPCL software manual, perform the analysis to determine aflatoxin concentrations in the test samples.For the separation of stilbenoids, use a gradient consisting of water, methanol, and 88%formic acid with specific percentage conditions and times. Set the flow rate to 0.5 milliliters per minute and runtime to 12 minutes. Using the calibration curve method, determine the concentrations of stilbenoids and compare the peak areas of the test sample with pure, authentic standards.The UPLC based aflatoxin quantification method achieve sensitive quantification of aflatoxin B1 with a limit of two picograms per injection. The purified extract of seeds harvested from a wild Areca species showed unambiguous quantification of aflatoxins. The magnesium silica gel column approach effectively removes impurities from the aflatoxin fraction and demonstrates high efficiency of quantification in contrast to previous methods.In addition, this method also aids in the quantitation of peanut phytoalexins.

Muestreo, preparación y cuantificación de aflatoxinas y fitoalexinas en semillas de maní después de inoculaciones de esporas aflatoxigénicas de Aspergillus flavus