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Ce protocole vidéo démontre l'isolement et l'expansion des cellules souches comme des cellules de glioblastome mutliforme résection chirurgicale humaine (GBM) tissu tumoral en utilisant la méthode de dosage Neurosphère culture.
Proche des cellules souches ont été isolées dans les tumeurs comme le sein, poumon, côlon, prostate et du cerveau. Une question essentielle dans toutes ces tumeurs, en particulier dans mutliforme glioblastome (GBM), est d'identifier et d'isoler la tumeur population cellulaire initiateur (s) pour enquêter sur leur rôle dans la formation tumorale, la progression, et les récidives. Comprendre la tumeur initier les populations de cellules fournira des indices pour trouver des approches thérapeutiques efficaces pour ces tumeurs. Le dosage de Neurosphère (NSA) en raison de sa simplicité et sa reproductibilité a été utilisée comme méthode de choix pour l'isolement et la propagation de nombreuses de cette cellules tumorales. Ce protocole illustre la méthode de culture Neurosphère à isoler et à étendre aux cellules souches dans la résection chirurgicale du tissu tumoral humain GBM. Les procédures comprennent une digestion chimique initial et de dissociation mécanique du tissu tumoral, et par la suite plaquage de la suspension cellulaire unique résultant de la culture NSA. Après 7-10 jours, primaire neurosphères du 150-200 m de diamètre peuvent être observés et sont prêts pour d'autres repiquage et d'expansion.
1. Prélèvement de tissus GBM primaire
2. La dissociation de la tumeur primitive en une seule cellule de suspension
3. Numération cellulaire et placage
4. Le repiquage et l'expansion du GBM sphères dérivés:
5. Les résultats représentatifs:
Après étalement de la récolte des cellules individuelles à partir de tissus tumoraux GBM, une tumeur proche des cellules souches prolifèrent et génèrent de petits amas de cellules composée de quelques cellules dans 3-4 jours (voir la vidéo et graphique 1). Comme ces grappes de croître, ils acquièrent une forme plus sphérique afin que par 7-8 jours, des sphères lumineuses bonne phase avec un diamètre moyen de 150-200 microns forme (voir la vidéo et graphique 2). A plus fort grossissement, de sphères saines habituellement démontrer microspikes à leur périphérie. Ayant grande sphère comme les grappes de 1-2 jours après l'initiation de la culture est due à l'existence de non-dissociée des touffes à l'binging de la culture et ne doivent pas être confondus avec les sphères vrai. La quantité de débris dans la culture sphère tumeur primitive varie en fonction de la source initiale de tissu et si oui ou non il comprend tout tissu cérébral environnant. Techniques appropriées de préparation des tissusnotamment la dissociation enzymatique et mécanique et la filtration ultérieure de l'échantillon avec une quantité suffisante de milieu peut aboutir à moins de débris dans la culture.
Figure 1. Primaires de la culture sphère GBM 4 jours après placage. Tumeur proche des cellules souches prolifèrent et génèrent de petits amas de cellules dans les 3-4 jours. Grossissement original; 20x.
Figure 2. Passage d'une culture sphère GBM 8 jours après placage. Grossissement original; 20x.
Pour isoler souches neurales et de cellules progénitrices d'adulte normal et le cerveau du fœtus 1, 2, 3, 4 et aussi une tumeur proche des cellules souches provenant de tissus de cancer comme le poumon 5, de la prostate 6, 7 et le cerveau maternel 8, 9 le dosage a été Neurosphère fréquemment utilisées comme la méthode de choix. L'utilisation de ce test simple et reproductible, on peut générer un nombre indéfini de cellules de tissu tumoral réséqué qui montrent les mêmes caractéristiques que les cellules souches somatiques; multipotence ex vivo, la capacité de créer de nouvelles tumeurs lors de l'implantation, et l'auto-renouvellement. Ces cellules pourraient être utilisées pour étudier la biologie fondamentale sur le cancer des cellules dont la cellule à cellule des interactions, et de la différenciation, la migration, l'invasion et la mort cellulaire. En outre, les tumeurs isolées proche des cellules souches de fournir un outil précieux pour étudier comment se forment les tumeurs, les progrès et rechutes et aussi de démêler les sous-tendent les mécanismes cellulaires dérivant qui pourraient éventuellement fournir des indications aux thérapeutiquesoptions.
Pas de conflits d'intérêt déclarés.
Ce travail a été soutenu par des subventions du Centre de Recherche en Floride tumeur cérébrale; Preston A. Wells Jr. Center for Therapy tumeur au cerveau.
Name | Company | Catalog Number | Comments | |
Nom du réactif | Tapez | Société | Numéro de catalogue | Commentaires |
NeuroCult NSC milieu de base (l'homme) | Medium | Stem Cell Technologies | 05750 | |
NeuroCult NSC Suppléments prolifération (Human) | Supplément de milieu | Stem Cell Technologies | 05753 | |
0,05% de trypsine-EDTA | Réactif | Gibco | 25300-062 | |
* MEM | Réactif | Gibco | 41500-018 | Composante HEM |
* HEPES | Réactif | Sigma | H4034 | Composante HEM |
* L'eau distillée | Réactif | Gibco | 15230-147 | |
** DNase I | Réactif | Roche | 104159 | |
** Inhibiteur de la trypsine de soja | Réactif | Sigma | T6522 | |
Pen / Strep | Réactif | Gibco | 15140-122 | |
N ° 10 lame de bistouri | Outil chirurgical | BD | 371610 | |
Boîte de Pétri | Culture de la céramique | BD Falcon | 353003 | |
Une petite pince | Outils chirurgicaux | Outils Fine Science | 11050-10 | |
Tamis cellulaire | Tamis | BD Falcon | 352340 | |
T25 flacon | Culture de la céramique | Nalge Nunc internationale | 136196 | |
T80 flacon | Culture de la céramique | Nalge Nunc International | 178905 | |
Tubes de 15 ml | Culture de la céramique | BD Falcon | 352096 | |
Tubes de 50 ml | Culture de la céramique | BD Falcon | 352070 | |
EGF | Facteur de croissance | R & D | 2028-EG | |
b-FGF | Facteur de croissance | R & D | 3139-FB | |
Héparine | Facteur de croissance | Sigma | H4784 | Reconstitué en PBS |
* Pour faire HEM, mélanger des paquets 1x10L de MEM and160ml d'HEPES 1M et porter le volume à 8,75 L en utilisant de l'eau distillée. Réglez le pH final à 7,4 uned stocker à 4 ° C.
** Pour préparer la solution d'inhibiteur de trypsine, faites d'abord 10 ml de solution de DNase I (100 mg DNase dissous dans 100 ml de HEM), puis ajouter 0,14 g d'inhibiteur de la trypsine à la solution de DNase et enfin faire le volume à 1 litre avec de HEM. Gardez aliquotes des produits finaux de -20 ° C au congélateur.
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