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L'approche de l'écart de vaseline découpe ouverte est utilisée pour obtenir des enregistrements à faible bruit des courants ioniques et dérogeant canaux ioniques voltage-dépendants exprimées dans des ovocytes de Xenopus à haute résolution de la cinétique de canaux rapides. Avec des modifications mineures, la tension de serrage fluorimétrie peut être couplé au protocole d'ovocytes découpe ouverte.
L'écart ovocyte vaseline coupe-ouvert (COVG) technique tension de serrage permet d'analyser les propriétés électrophysiologiques et cinétiques des canaux ioniques hétérologues dans les ovocytes. Les enregistrements de la configuration du coupe-ouvert sont particulièrement utiles pour résoudre des courants faibles ampleur de déclenchement, l'activation du courant ionique rapide, et la désactivation. Les principaux avantages par rapport à la tension à deux électrodes pince (TEVC) comprennent la technique d'augmenter la vitesse de serrage, l'amélioration de rapport signal-sur-bruit, et la capacité de moduler la intracellulaire et milieu extracellulaire.
Ici, nous utilisons le canal sodique cardiaque humain (HNA V 1.5), exprimé dans des ovocytes de Xenopus, pour démontrer l'installation et le protocole coupe-ouverte ainsi que les modifications qui sont nécessaires pour ajouter la capacité de fluorimétrie tension de serrage.
Les propriétés des canaux ioniques rapides d'activation, comme HNA V 1.5, ne peuvent pas être entièrement résolus proche de la température ambiante en utilisant TEVC, dans which, la totalité de la membrane de l'ovocyte est serré, ce qui rend difficile le contrôle de la tension. Cependant, dans la technique de découpe ouverte, l'isolement de seulement une petite partie de la membrane cellulaire permet la fixation rapide requis pour enregistrer avec précision une cinétique rapide, tout en empêchant canal course vers le bas associée à des techniques de patch-clamp.
En liaison avec la technique de COVG, la cinétique des canaux ioniques et les propriétés électrophysiologiques peuvent encore être dosée à l'aide de la tension de serrage fluorimétrie, où le mouvement de la protéine est suivi par l'intermédiaire de la cystéine conjugaison de fluorophores extracellulaire appliqués, l'insertion de protéines fluorescentes codés génétiquement, ou l'incorporation d'acides aminés non naturels dans la région d'intérêt 1. Ces données supplémentaires donne des informations sur les réarrangements conformationnels cinétique de la protéine dépendant de la tension par des changements dans le microenvironnement autour de la molécule fluorescente.
Techniques spécialisées tension de serrage permettent l'enregistrement des courants ioniques à des potentiels de membrane contrôlées. Largement utilisé tension à deux électrodes pince (TEVC) et des techniques de patch-clamp fournissent des informations électrophysiologique fiable sur les propriétés de nombreux canaux ioniques. Cependant, ces deux méthodes présentent des inconvénients qui empêchent l'acquisition de données fiables pour les canaux sodiques voltage-dépendants rapides et d'autres canaux d'activation rapide dans les membranes tels que ceux des ovocytes de Xenopus. Les laboratoires Bezanilla et Stefani donc développé la technique écart de vaseline tension pince coupe-ouvert (COVG) pour 2 ovocytes. La technique a été largement appliqué pour enregistrer, Na +, K + et Ca 2 + canaux 3-8.
Pendant l'enregistrement COVG, une membrane de l'ovocyte exprimant la protéine hétérologue est divisée en trois régions. Les données du courant ionique est enregistrée à partir de la région supérieure de l'ovocyte que lebain entourant la zone de tête est fixée à un potentiel de commande, qui peut être changé facilement et rapidement. La région du Moyen protège contre les courants de fuite par serrage au même potentiel que la région supérieure 9. La zone inférieure est l'endroit où l'ouverture de l'ovocyte (cut-open) se produit grâce à l'utilisation d'une solution de saponine ou d'une canule. Chimique ou ouverture manuelle de la membrane dans la zone de fond permet un contrôle du potentiel interne, qui est fixée à la masse, et rend l'intérieur de la cellule contiguë avec la solution de la chambre inférieure. Perfusion de solutions dans la chambre inférieure peut ajuster les propriétés de l'environnement interne, alors que l'échange de solution dans la chambre supérieure modifie l'environnement extérieur.
Figure 1. Ovocyte Cut-Ouvrir un diagramme de configuration Voltage-Clamp Bath. (A) Hautbas de la vue des trois salles de bains séparées les unes des autres. Les dimensions des chambres pour COVG sont affichés sur la figure. (B) Vue de côté de l'installation de salles de bains en position d'essai. Cliquez ici pour agrandir l'image .
Les avantages de la technique de COVG comprennent faible bruit actuel (1 nA à 3 kHz), le contrôle de la composition ionique des médias externes, la capacité de moduler les médias interne, la résolution de temps rapide (20-100 constante ps de temps de décroissance de la capacité transitoire), et des enregistrements stables pendant plusieurs heures 9. Les inconvénients sont que cela nécessite un équipement spécialisé et il est plus difficile à réaliser par rapport aux deux serrage de tension des électrodes (TEVC) 10.
Bien que l'approche de COVG nécessite un équipement hautement spécialisé et éléments de procédure complexes, il peut permettre l'acquisition de précieuxdonnées électrophysiologiques capables. Ces données, comme gating courants avec une cinétique rapide et courants de queue 4, peut être enregistrée sans certains des problèmes associés à d'autres protocoles tension de serrage y compris le canal délabré. Des modifications mineures à la configuration COVG peuvent permettre l'utilisation de régulateurs de température et de la tension de serrage fluorométrie (VCF). L'inclusion d'éléments de serrage fluorimétrie de tension au sein de l'assemblage COVG peut augmenter la sortie des données en conférant la capacité à surveiller les changements de conformation des protéines tout en enregistrant simultanément de courant de 11 à 13.
Une. Installation du matériel initial
2. Ovocytes et préparation préliminaire
3. Agar Pont Préparation
4. Rig Préparation Coupez-ouvert
5. Procédure de Cut-ouvert
6. Nettoyage
7. Ajout de la tension de serrage Fluorimétrie
La figure 4 montre la variation de la perméabilité de l'ovocyte en tant que solution de saponine est appliquée à la partie inférieure de l'ovocyte. Figure 5 démontre le taux de conversion de la solution intracellulaire par diffusion suivant la perméabilisation de la saponine. 20-40 min sont nécessaires pour arriver à un état d'équilibre 2,18.
Figure 6A présentent des traces générées par le protocol...
L'ovocyte vaseline tension d'espace technique du clamp de coupe-ouverte permet la résolution rapide des données, à faible bruit, un contrôle accru sur la solution interne et la composition de la solution externe, et des enregistrements stables sur de relativement longues protocoles 19. Ces avantages mis cette technique en dehors de la pince de tension à deux électrodes standard et des techniques de patch-clamp. Bien que l'équipement spécialisé est nécessaire et le protocole est relativem...
Les auteurs n'ont rien à révéler.
Tous les membres de l'Université Washington à St. Louis cardiaque moléculaire Engineering Lab. Un Burroughs Bienvenue Fonds bourse de carrière à l'interface science - 1010299 (JS).
Name | Company | Catalog Number | Comments |
External Solution | Brand | Catalog Number | [Final], weight, or volume |
N-methyl-D-glucamine (NMDG) | Sigma-Aldrich | M2004 | 25mM |
MES Sodium Salt | Sigma-Aldrich | M5057 | 90mM |
HEPES | Research Products International | H75030 | 20mM |
Calcium hydroxide | Sigma-Aldrich | 239232 | 2mM |
MES Hydrate | Sigma-Aldrich | M8250 | variable (pH to 7.4) |
Internal Solution | |||
N-methyl-D-glucamine (NMDG) | Sigma-Aldrich | M2004 | 105mM |
MES Sodium Salt | Sigma-Aldrich | M5057 | 10mM |
HEPES | Research Products International | H75030 | 20mM |
Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid (EGTA) | Sigma-Aldrich | E4378 | 2mM |
MES Hydrate | Sigma-Aldrich | M8250 | variable (pH to 7.4) |
Depolarizing Solution | |||
KCl | Sigma-Aldrich | 221473 | 110mM |
Magnesium chloride | Sigma-Aldrich | M8266 | 1.5mM |
Calcium Chloride | Caisson | C021 | 0.8mM |
HEPES | Research Products International | H75030 | 10mM |
Pipet Solution | |||
KCl | Sigma-Aldrich | 221473 | 3M |
Saponin Solution | |||
Saponin | Sigma-Aldrich | 47036 | 0.125g |
Internal Solution | See above | 50mL | |
Agar Bridge Solution | |||
N-methyl-D-glucamine (NMDG) | Sigma-Aldrich | M2004 | 100ml of 1M |
HEPES | Research Products International | H75030 | 1.2g |
MES Hydrate | Sigma-Aldrich | M8250 | variable (pH to 7.4) |
Granulated Agar | Research Products International | A20250 | 3% |
NMDG Storage Solution | |||
NMDG, HEPES, MES Hydrate solution | see above | 40ml | |
Water | 60ml | ||
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
High Performance Oocyte Clamp | Dagan | CA-1B | |
Data Acquisition System | Axon CNS | Digidata 1440A | |
Oscilloscope | Tektronix | TDS 210 | |
Rack Power Filter | APC | G5 | |
Heating/Cooling Bath Temperature Controller | Dagan | HCC-100A | |
PC | Dell | Optiplex 990 | |
pCLAMP 10.3 Voltage Clamp Software | Molecular Devices, LLC | pCLAMP10.3 | |
TMC Vibration Control TableTop Platform | TMC | 64 SERIES | |
TMC Vibration Control Air Table | TMC | 20 Series | |
V1/I Electrode Data Collector | Dagan | part of CA-1B | |
MX10L Micromanipulator | Siskiyou | MX10L | |
Bath/Guard (I/V) Headstage (with appropriate connectors) | Dagan | part of CA-1B | |
Microscope | Omano | OM2300S-JW11 | |
Temperature Control Bath | Custom or Dagan | Custom or HE-204C | Custom chamber made from materials from Cool Polymers (D-series). Dagan also provides a prefeabricated stage (HE-204C). |
Custom AgCl Pellet Container | Custom | Custom | Custom machined |
Ag/AgCl electrode, pellet, 2.0 mm | Warner | E-206 | |
External Oocyte Bath | Custom or Dagan | Custom or CC-1-T-LB | Custom machined or purchased from Dagan |
Internal Oocyte Bath | Custom or Dagan | Custom or CC-TG-ND | Custom machined or purchased from Dagan |
Capillaries for Agar Bridges and Pulled Electrodes | Warner | G150T-4 | |
Rotatable Mounts for the Microscope, Micromanipulator, and Bath | Siskiyou | SD-1280P | |
Fiber-Lite | Dolan-Jenner | LMI-600 | |
Regular Bleach | Clorox | 470174-764 | |
Xenopus laevis Oocytes | Nasco | LM535M (sexually mature females) | |
90 Na+ External Solution | See Solutions sheet | ||
10 Na+ Internal Solution | See Solutions sheet | ||
3 M KCL | See Solutions sheet | ||
Saponin | Sigma-Aldrich | 47036 | |
NMDG Storage Solution | See Solutions sheet | ||
5mL transfer pipets | SciMart | GS-52 | |
Modified KCl electrode injector | BD | 309659 | Plastic syringe tip melted to allow for injection of solution into electrodes. Alternatively, a Microfil by WPI can be purchased. |
Microvaccum | Custom | Custom | |
Forceps | VWR | 63040-458 | |
Oocyte Handling Tools (Pipette Pump) | VWR | 53502-222 | |
Deionized Water Squirt Bottle | VWR | 16649-911 | |
Vaseline Petroleum Jelly | Fisher Scientific | 19-086-291 | |
Additional Materials Required for VCF Recordings: | |||
VCF Microscope | Nikon | Eclipse FN1 | |
Nikon CFI APO 40XW NIR Objective | Nikon | N40X-NIR | |
X-Y Translator System for Fixed-Stage Upright Microscopes | Sutter Instruments | MT500-586 | |
External VCF Oocyte Bath | Custom | Custom machined. The chamber dimensions are 2.7 x 1.9 x 0.4 cm. | |
Internal VCF Oocyte Bath | Custom | Custom machined. The chamber dimensions are 1.6 x 1.6 x 0.4 cm. | |
Modified Temperature Control Bath | Custom | Custom chamber made from materials from Cool Polymers (D-series). The chamber dimensions of the modified temperature controller bath are 2.7 x 1.9 x 0.3 cm for the horizontal chamber, and 1 x 2.5 x 0.5 cm for the vertical chamber. |
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