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* Ces auteurs ont contribué à parts égales
Nous décrivons ici un système d’induction organoïde rétinienne optimisé, qui convient à diverses lignées de cellules souches pluripotentes humaines pour générer des tissus rétiniens avec une reproductibilité et une efficacité élevées.
Les maladies dégénératives de la rétine sont les principales causes de cécité irréversible sans traitement efficace. Les cellules souches pluripotentes qui ont le potentiel de se différencier en tous types de cellules rétiniennes, même les mini-tissus rétiniens, sont très prometteuses pour les patients atteints de ces maladies et offrent de nombreuses possibilités dans la modélisation des maladies et le dépistage des médicaments. Cependant, le processus d’induction des CSEh aux cellules rétiniennes est compliqué et prend beaucoup de temps. Nous décrivons ici un protocole d’induction rétinienne optimisé pour générer des tissus rétiniens avec une reproductibilité et une efficacité élevées, adaptés à diverses cellules souches pluripotentes humaines. Ce protocole est réalisé sans ajout d’acide rétinoïque, ce qui profite à l’enrichissement des photorécepteurs coniques. L’avantage de ce protocole est la quantification de la taille EB et de la densité de placage pour améliorer considérablement l’efficacité et la répétabilité de l’induction rétinienne. Avec cette méthode, toutes les principales cellules rétiniennes apparaissent séquentiellement et récapitulent les principales étapes du développement rétinien. Il facilitera les applications en aval, telles que la modélisation des maladies et la thérapie cellulaire.
Les maladies dégénératives de la rétine (MR), telles que la dégénérescence maculaire liée à l’âge (DMLA) et la rétinite pigmentaire (RP), sont caractérisées par le dysfonctionnement et la mort des cellules photoréceptrices et entraînent généralement une perte de vision irréversible sans moyens efficaces de guérir1. Le mécanisme sous-jacent à ces maladies est largement inconnu en partie en raison de l’absence de modèles de maladies humaines2. Au cours des dernières décennies, des progrès importants ont été réalisés en médecine régénérative grâce à la technologie des cellules souches. De nombreux chercheurs, y compris nous....
1. Culture et expansion des CSEh
Le processus d’induction rétinienne dans ce protocole imite le développement de la rétine fœtale humaine. Pour initier la différenciation rétinienne, les CSEh ont été dissociés en petites touffes et cultivés en suspension pour induire la formation d’EBs. Sur D1, les agrégats cellulaires uniformes ou EBs se sont formés (Figure 1C). Le milieu de culture a été progressivement transféré en NIM. Sur D5, les ÉBs ont été plaqués sur les plats de culture enrobés d’ECM. Les.......
Dans ce protocole d’induction rétinienne en plusieurs étapes, les CSEh ont été guidés étape par étape pour gagner le destin rétinien et auto-organisés en organoïdes rétiniens contenant des NR et des EPR stratifiés. Au cours de la différenciation, les CSEh ont récapitulé toutes les principales étapes du développement rétinien humain in vivo,de l’EF, de l’OV et de l’EPR à la stratification rétinienne, générant tous les sous-types de cellules rétiniennes, y compris les cellules gangli.......
Xiufeng Zhong est l’inventeur du brevet lié à la génération de cellules rétiniennes à partir de cellules souches pluripotentes humaines.
Cette étude a été soutenue par le National Key R&D Program of China (2016YFC1101103, 2017YFA0104101), le Guangzhou Science and Technology Project Fund (201803010078), le Science & Technology Project of Guangdong Province (2017B020230003), la Natural Science Foundation (NSF) de Chine (81570874, 81970842), le programme Cent talents de l’Université Sun Yat-sen (PT1001010) et les Fonds de recherche fondamentale du State Key Laboratory of Ophthalmology.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
(−)-Blebbistatin | Sigma | B0560-5mg | ROCK-inhibitor |
1 ml tips | Kirgen | KG1313 | 1 ml |
10 ml pipette | Sorfa | 3141001 | Pipette |
100 mm Tissue culture | BIOFIL | TCD000100 | 100 mm Petri dish |
100 mm Tissue culture | Falcon | 353003 | 100 mm Petri dish |
15 ml Centrifuge tubes | BIOFIL | CFT011150 | Centrifuge tubes |
35 mm Tissue culture dishes | Falcon | 353001 | 35 mm Petri dish |
5 ml pipette | Sorfa | 313000 | Pipette |
50 ml Centrifuge tubes | BIOFIL | CFT011500 | Centrifuge tubes |
6 wells tissue culture plates | Costar | 3516 | Culture plates |
Anti-AP2α Antibody | DSHB | 3b5 | Primary antibody |
ANTIBIOTIC ANTIMYCOTIC 100X | Gibco | 15240062 | Antibiotic-Antimycotic |
Anti-ISL1 Antibody | Boster | BM4446 | Primary antibody |
Anti-Ki67 Antibody | Abcam | ab15580 | Primary antibody |
Anti-L/M opsin Antibody | gift from Dr. jeremy | / | Primary antibody |
Anti-PAX6 Antibody | DSHB | pax6 | Primary antibody |
Anti-rabbit 555 | Invitrogen | A31572 | Donkey anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 |
Anti-Recoverin Antibody | Millipore | ab5585 | Primary antibody |
Anti-Rhodopsin Antibody | Abcam | ab5417 | Primary antibody |
Anti-sheep 555 | Invitrogen | A21436 | Donkey anti-Sheep IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 |
Anti-SOX9 Antibody | Abclonal | A19710 | Primary antibody |
Anti-VSX2 Antibody | Millipore | ab9016 | Primary antibody |
B-27 supplement W/O VIT A (50X) | Gibco | 12587010 | Supplement |
Cryotube vial | Thermo scientific-NUNC | 375418 | 1.8 ml |
DAPI | DOJINDO | D532 | 4',6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride; multiple suppliers |
Dimethyl sulphoxide(DMSO) Hybri-max | Sigma | D2650-100ML | Multiple suppliers |
DMEM | Gibco | C11995500BT | Medium |
DMEM /F12 | Gibco | C11330500BT | Medium |
EDTA | Invitrogen | 15575-020 | 0.5 M PH 8.0 |
FBS | NATOCOR | SFBE | Serum |
Filter | Millipore | SLGP033RB | 0.22μm, sterile Millex filter |
GlutaMax, 100X | Gibco | 35050061 | L-alanyl-L-glutamine |
Heparin | Sigma | H3149 | 2 mg/ml in PBS to use |
Matrigel, 100x | Corning | 354277 | Extracellular matrix (ECM) |
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100X) | Gibco | 11140050 | MEM NEAA |
mTeSR1 | STEM CELL | 85850 | hPSCs maintenance medium (MM) |
N2 supplement | Gibco | 17502048 | Supplement |
Phosphate-buffered saline (PBS) buffer | GNM | GNM10010 | Without Ca+,Mg+,PH7.2±0.1 0.1M |
Taurine | Sigma | T0625 | Supplement |
Ultra-low attachment culture dishes 100mm petri dish, low-attachment | Corning | CLS3262-20EA | Petri dish |
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