Un abonnement à JoVE est nécessaire pour voir ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre essai gratuit.
Ici, nous introduisons une méthode de trempage détaillée de l’interférence ARN chez Bursaphelenchus xylophilus pour faciliter l’étude des fonctions des gènes.
Le nématode du pin, Bursaphelenchus xylophilus, est l’une des espèces envahissantes les plus destructrices au monde, causant le flétrissement et éventuellement la mort des pins. Malgré la reconnaissance de leur importance économique et environnementale, il a été jusqu’à présent impossible d’étudier les fonctions génétiques détaillées des nématodes parasites des plantes (NPP) à l’aide de la génétique avancée conventionnelle et des méthodes transgéniques. Cependant, en tant que technologie de génétique inverse, l’interférence ARN (ARNi) facilite l’étude des gènes fonctionnels des nématodes, y compris B. xylophilus.
Cet article décrit un nouveau protocole pour l’ARNi du gène ppm-1 chez B. xylophilus, qui joue un rôle crucial dans le développement et la reproduction d’autres nématodes pathogènes. Pour l’ARNi, le promoteur T7 a été lié au 5'-terminal du fragment cible par réaction en chaîne de la polymérase (PCR), et l’ARN double brin (ARNds) a été synthétisé par transcription in vitro . Par la suite, l’administration d’ARNds a été accomplie en trempant les nématodes dans une solution d’ARNds mélangée à des neurostimulants synthétiques. Des juvéniles synchronisés de B. xylophilus (environ 20 000 individus) ont été lavés et trempés dans de l’ARNds (0,8 μg/mL) dans le tampon de trempage pendant 24 heures dans l’obscurité à 25 °C.
La même quantité de nématodes a été placée dans un tampon de trempage sans ARNds comme témoin. Pendant ce temps, une autre quantité identique de nématodes a été placée dans un tampon de trempage avec le gène dsRNA de la protéine fluorescente verte (gfp) comme témoin. Après trempage, le niveau d’expression des transcrits cibles a été déterminé à l’aide de la PCR quantitative en temps réel. Les effets de l’ARNi ont ensuite été confirmés à l’aide d’une observation microscopique des phénotypes et d’une comparaison de la taille corporelle des adultes parmi les groupes. Le protocole actuel peut aider à faire progresser la recherche pour mieux comprendre les fonctions des gènes de B. xylophilus et d’autres nématodes parasites vers l’élaboration de stratégies de contrôle par génie génétique.
Les nématodes phytoparasites (NPP) constituent une menace permanente pour la sécurité alimentaire et les écosystèmes forestiers. Ils causent environ 100 milliards USD de pertes économiques chaque année1, dont les plus problématiques sont principalement les nématodes à galles, les nématodes à kystes et les nématodes du pin. Le nématode du pin, Bursaphelenchus xylophilus, est un nématode endoparasite migrateur, qui est l’agent pathogène causal de la maladie du flétrissement du pin2. Il a causé de grands dommages aux forêts de pins dans le mondeentier 3. En utilisant la terminologie de Van M....
L’étude a été approuvée par le conseil pour l’expérimentation animale de l’Université agricole et forestière du Zhejiang. L’isolat NXY61 de B. xylophilus a été extrait à l’origine d’un Pinus massoniana malade dans la région de Ningbo de la province du Zhejiang, en Chine11.
1. Clonage génétique
REMARQUE : Consultez le tableau des matériaux pour plus de détails sur les amorces utilisées dans ce protocole.
Analyse de l’expression ppm-1 de B. xylophilus après ARNi
Le niveau d’expression relative du gène ppm-1 de B. xylophilus imbibé d’ARNds GFP et celui imbibé du gène cible dsRNA était respectivement de 0,92 et 0,52 (le niveau d’expression génique ppm-1 du groupe témoin traité par ddH2O a été fixé à 1) (Figure 1). Ainsi, l’ARNds e.......
Bien que le cycle biologique et l’environnement parasitaire de B. xylophilus soient différents de ceux d’autres nématodes, il y a eu peu de recherches sur la pathogenèse moléculaire de ce phytopathogène. Malgré de grands progrès réalisés dans l’application de la technologie d’édition du génome CRISPR/Cas9 chez C. elegans et d’autres nématodes, seule la technologie ARNi appliquée à B. xylophilus a été publiée à ce jour17. L’ARNi est l’un de.......
Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.
Cette recherche a été financée par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (31870637, 31200487) et cofinancée par le Zhejiang Key Research Plan (2019C02024, LGN22C160004).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Baermann funnel | n/a | n/a | to isolate nematodes |
Beacon Designer 7.9 | Shanghai kangyusheng information technology co. | n/a | to design qPCR primers |
Botrytis cinerea | n/a | n/a | as food for nematodes |
Bursaphelenchus xylophilus | n/a | n/a | its number was NXY61 and was it was originally extracted from diseased Pinus massoniana in Ningbo, Zhejiang province, China. |
constant temperature incubator | Shanghai Jing Hong Laboratory Instrument Co. | H1703544 | to cultur nematodes |
Electrophoresis apparatus | Bio-Rad Laboratories | 1704466 | to achieve electrophoretic analysis |
Ethanol, 75% | Sinopharm Chemical Reagent Co. | 80176961 | to extract RNA |
Ex Taq Polymerase Premix | Takara Bio Inc. | RR030A | for PCR |
Ex Taq Polymerase Premix | Takara Bio Inc. | RR390A | for PCR |
Gel imager | LongGene Scientific Instruments Co. | LG2020 | to make nucleic acid bands visible |
GraphPad Prism 8 | GraphPad Prism | n/a | to analyze the data and make figurs |
High Speed Centrifuge | Hangzhou Allsheng Instruments Co. | AS0813000 | centrifug |
High-flux tissue grinder | Bertin | to extract RNA | |
ImageJ software | National Institutes of Health | n/a | to measure the body lengths |
isopropyl alcohol | Shanghai Aladdin Biochemical Technology Co. | L1909022 | to extract RNA |
Leica DM4B microscope | Leica Microsystems Inc. | to observe nematodes | |
magnetic beads | Aoran science technology co. | 150010C | to extract RNA |
MEGAscript T7 High Yield Transcription Kit | Thermo Fisher Scientific Inc. | AM1333 | to synthesize dsRNA in vitro |
NanoDrop ND-2000 spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific Inc. | NanoDrop 2000/2000C | to analyze the quality of the dsRNA |
PCR Amplifier | Bio-Rad Life Medical Products Co. | 1851148 | to amplify nucleic acid sequence |
Petri dishes | n/a | n/a | to cultur nematodes |
pGEM-T Easy vector | Promega Corporation | A1360 | for cloning |
Potato Dextrose Agar (Medium) | n/a | n/a | to cultur Botrytis cinerea |
Prime Script RT reagent Kit with gDNA Eraser | Takara Bio Inc. | RR047B | to synthetic cDNA |
Primer Premier 5.0 | PREMIER Biosoft | n/a | to design PCR primers |
primers:ppm-1-F/R | Tsingke Biotechnology Co. | n/a | F: 5'-GATGCGAAGTTGCCAATCATTCT -3'; R: 5'- CCAGATCCAGTCCACCATACACC -3 |
q-ppm-1-F/R | Tsingke Biotechnology Co. | n/a | F: 5'-CATCCGAATGGCAATACAG-3'; R: 5'-ACTATCCTCAGCGTTAGC-3' |
Real-time thermal cycler qTOWER 2.2 | Analytique Jena Instruments (Beijing) Co. | for qPCR | |
shaking table | Shanghai Zhicheng analytical instrument manufacturing co. | to soak nematodes | |
stereoscopic microscope | Chongqing Optec Instrument Co. | 1814120 | to observe nematodes |
T7-GFP-F/R | Tsingke Biotechnology Co. | n/a | F: 5'-TAATACGACTCACTATAGGGAAA GGAGAAGAACTTTTCAC-3'; R: 5'-TAATACGACTCACTATAGGGCTG TTACAAACTCAAGAAGG-3' |
T7 promoter | Tsingke Biotechnology Co. | n/a | TAATACGACTCACTATAGGG |
Takara MiniBEST Agarose Gel DNA Extraction Kit | Takara Bio Inc. | 9762 | to recover DNA |
TaKaRa TB Green Premix Ex Taq (Tli RNaseH Plus) | Takara Bio Inc. | RR820A | for qPCR |
trichloroethane | Shanghai LingFeng Chemical Reagent Co. | to extract RNA | |
TRIzol Reagent | Thermo Fisher Scientific Inc. | 15596026 | total RNA extraction reagent,to extract RNA |
Demande d’autorisation pour utiliser le texte ou les figures de cet article JoVE
Demande d’autorisationExplorer plus d’articles
This article has been published
Video Coming Soon