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* Ces auteurs ont contribué à parts égales
On présente ici un protocole pour initier, maintenir et analyser des cultures de cellules souches hématopoïétiques de souris en utilisant une expansion ex vivo à base d’alcool polyvinylique, ainsi que des méthodes pour les manipuler génétiquement par transduction lentivirale et électroporation.
Les cellules souches hématopoïétiques multipotentes (CSH) autorenouvelables sont un type cellulaire important en raison de leur capacité à soutenir l’hématopoïèse tout au long de la vie et à reconstituer l’ensemble du système sanguin après la transplantation. Les CSH sont utilisées cliniquement dans les thérapies de transplantation de cellules souches, qui représentent un traitement curatif pour une gamme de maladies du sang. Il existe un intérêt considérable à la fois pour la compréhension des mécanismes qui régulent l’activité des CSH et de l’hématopoïèse, et pour le développement de nouvelles thérapies basées sur les CSH. Cependant, la culture stable et l’expansion des CSH ex vivo ont été un obstacle majeur à l’étude de ces cellules souches dans un système ex vivo traitable. Nous avons récemment développé un système de culture à base d’alcool polyvinylique qui peut soutenir l’expansion à long terme et à grande échelle des CSH de souris transplantables et des méthodes pour les modifier génétiquement. Ce protocole décrit les méthodes de culture et de manipulation génétique des CSH de souris par électroporation et transduction lentivirale. Ce protocole devrait être utile à un large éventail d’hématologues expérimentaux intéressés par la biologie des CSH et l’hématopoïèse.
Le système hématopoïétique soutient une gamme de processus essentiels chez les mammifères, de l’apport d’oxygène à la lutte contre les agents pathogènes, en passant par des types de cellules sanguines et immunitaires spécialisées. La production sanguine continue (hématopoïèse) est nécessaire pour soutenir l’homéostasie du système sanguin, qui est soutenue par les cellules souches et progénitrices hématopoïétiques (HSPC)1. La cellule hématopoïétique la plus primitive est la cellule souche hématopoïétique (CSH), qui possède des capacités uniques d’auto-renouvellement et de différenciation multilignée 2,3
Toutes les procédures animales, y compris l’élevage et l’euthanasie, doivent être effectuées dans le respect des directives institutionnelles et nationales. Les expériences détaillées ci-dessous ont été approuvées par le ministère de l’Intérieur du Royaume-Uni. Voir le tableau des matériaux pour une liste de tous les matériaux, réactifs et équipements utilisés dans ce protocole.
1. Préparation des solutions de stock
Pour la purification FACS des CSH, nous nous attendons à ce que dans la moelle osseuse enrichie en c-Kit, ~0,2% des cellules soient la population CD150+CD34-c-Kit+Sca1+Lineage- pour les jeunes souris C57BL/6 (8-12 semaines) (Figure 1). Cependant, il est probable que les souris transgéniques ou les souris d’âges différents présentent des fréquences de CSH différentes. Après 4 semaines de culture, nous nous attendons à ce que la.......
Nous espérons que ce protocole fournira une approche utile pour étudier la biologie des CSH, l’hématopoïèse et l’hématologie plus généralement. Depuis le développement initial de la méthode de culture à base de PVA pourles CSH 8 purifiés par FACS, la méthode a été étendue. Par exemple, il a été démontré que la méthode fonctionne avec c-Kit enrichi en moelle osseuse et avec des plaques chargées en surface négative14. Sa compatibilité avec la trans.......
Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts.
Nous remercions le WIMM Flow Cytometry Core pour l’accès à la cytométrie en flux et le WIMM Virus Screening Core pour la génération de vecteurs lentiviraux. Ce travail a été financé par le Kay Kendall Leukaemia Fund et le Medical Research Council du Royaume-Uni.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Equipment | |||
Dissection kit | Fisher Scientific | 12764416 | |
Hemocytometer | Appleton Woods Ltd | HC002 | |
P3 Primary Cell 4D-Nucleofector X Kit | Lonza | V4XP-3024 | |
Pestle and mortar | Scientific Laboratory Supplies Limited | X18000 | |
QuadroMACS separator | Miltenyi Biotec | 130-090-976 | |
Materials | |||
5 mL syringe | VWR International Ltd | 720-2519 | |
19 G needle | VWR International Ltd | 613-5394 | |
50 μm cell strainer | Sysmex | 04-004-2317 | |
70 μm cell strainer | Corning | 431751 | |
Kimtech wipes | VWR International Ltd | 115-2075 | |
LS MACS column | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | |
Reagents | |||
Alt-R S.p. Cas9 Nuclease V3, 100 μg | IDT | 1081058 | |
Animal free recombinant mouse stem cell factor | Peprotech | AF-250-03 | |
Animal free recombinant mouse thrombopoietin | Peprotech | AF-315-14 | |
Anti-mouse CD117 APC (clone: 2B8) | ThermoFisher | 17-1171-83 | |
Anti-mouse CD117 BV421 (clone: 2B8) | Biolegend | 105828 | |
Anti-mouse CD127 APC/Cy7 (clone: A7R34) | Biolegend | 135040 | |
Anti-mouse CD127 biotin (clone: A7R34) | Biolegend | 135006 | |
Anti-mouse CD150 PE/Cy7 (clone: TC15-12F12.2) | Biolegend | 115914 | |
Anti-mouse CD201 APC (clone: eBio1560) | ThermoFisher | 17-2012-82 | |
Anti-mouse CD34 FITC (clone: RAM34) | ThermoFisher | 11-0341-85 | |
Anti-mouse CD4 APC/Cy7 (clone: RM4-5) | Biolegend | 100526 | |
Anti-mouse CD4 biotin (clone: RM4-5) | Biolegend | 100508 | |
Anti-mouse CD45R APC/Cy7 (clone: RA3-6B2) | Biolegend | 103224 | |
Anti-mouse CD45R biotin (clone: RA3-6B2) | Biolegend | 103204 | |
Anti-mouse CD48 BV421 (clone: HM48-1) | Biolegend | 103428 | |
Anti-mouse CD8 biotin (clone: 53-6.7) | Biolegend | 100704 | |
Anti-mouse CD8a APC/Cy7 (clone: 53-6.7) | Biolegend | 100714 | |
Anti-mouse Ly6G/Ly6C APC/Cy7 (clone: RB6-8C5) | Biolegend | 108424 | |
Anti-mouse Ly6G/Ly6C biotin (clone: RB6-8C5) | Biolegend | 108404 | |
Anti-mouse Sca1 PE (clone: D7) | Biolegend | 108108 | |
Anti-mouse Ter119 APC/Cy7 (clone: TER-119) | Biolegend | 116223 | |
Anti-mouse Ter119 biotin (clone: TER-119) | Biolegend | 116204 | |
CellBIND plates, 24-well | Corning | 3337 | negative surface charged |
CellBIND plates, 96-well | Corning | 3330 | negative surface charged |
Custom synthetic sgRNA | Synthego, Sigma Aldrich, IDT | Custom order | |
Fetal bovine serum | Merck Life Science UK Limited | F7524-50ML | |
Fibronectin Coated plates, 96-well | BD Biosciences | 354409 | |
Ham's F-12 Nutrient Mix | Gibco | 11765054 | |
Insulin-Transferrin-Selenium-X (100x) | Gibco | 51500.056 | |
Phosphate buffered saline | Alfa Aesar | J61196.AP | |
Polyvinyl alcohol | Sigma Aldrich | P8136 | |
Propidium Iodide | Enzo Life Sciences (UK) Ltd | EXB-0018 | |
Streptavidin APC/Cy7 | Biolegend | 405208 | |
Türks’ solution | Sigma Aldrich | 109277 | |
Virkon | Mettler-Toledo Ltd | 95015662 |
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