Ce travail a été soutenu par le National Research Foundation de Singapour administré par l&#39;un de ses centres de recherche d&#39;excellence, l&#39;Institut Mechanobiology, Singapour. MFAC est soutenu par l&#39;Agence pour la science, la technologie et la recherche (Singapour) et l&#39;Agence nationale pour la recherche (France) programme commun sous le numéro de projet 1122703037. BKKT est soutenu par l&#39;Institut Mechanobiology. Nous remercions M. Daniel HC Wong pour la relecture du manuscrit et Mme Dawn JH Neo pour aider à la production vidéo.

1. Préparation des solutions de polyélectrolytes <ol><li> Purifier chitosane, comme détaillé dans Liao et al. En bref, créer une solution à 1% de chitosane dans 2% (p / v) (v / v) d&#39;acide acétique et de vide filtre à l&#39;aide de grade 93 papier filtre. Neutraliser le filtrat à l&#39;aide de NaOH 5M jusqu&#39;à ce que le pH est stabilisé à 7. Centrifuger la chitosane précipité à 1200 xg pendant 10 min. Décanter le surnageant et ajouter de l&#39;eau déminéralisée pour laver le chitosane. Répéter l&#39;étape de centrifugation et de lavage deux fois de plus. Congeler le chitosane précipité à -80 ° C et lyophilize O / N pour obtenir la forme purifiée. Stockez chitosane purifié dans une armoire déshumidifié. </li><li> Peser 1 g de chitosane purifié dans une boîte de culture de tissu stérile. Placez le chitosane dans la boîte de culture de tissu le plus près possible de la lampe UV dans l&#39;enceinte de sécurité biologique et d&#39;exposer à la lumière UV pendant 15 minutes. En utilisant des pinces stériles, placer le chitosane stérilisé dans un récipient en verre. Dissoudre chitosane en utilisant filtré 0.Acide acétique 15 M à une concentration finale comprise entre 0,5% et 1% (p / v). </li><li> Peser 0,1 g de sel de sodium de l&#39;acide alginique et dissoudre dans 10 ml d&#39;eau distillée désionisée (DDI) pour obtenir une eau 1% (p / v). Mélanger le sel de sodium de l&#39;acide alginique pendant au moins 2 heures sur le mélangeur vortex pour garantir une dissolution complète. Filtrer la solution d&#39;alginate à travers le filtre de seringue de 0,2 um. Conserver la solution d&#39;alginate à 4 ° C. </li><li> Reconstituer les facteurs humains recombinants de croissance comme facteur de croissance vasculaire endothéliale (VEGF) ou bêta - facteur de croissance nerveuse (NGF), tel que recommandé par le fabricant. </li></ol> 2. Dessin de fibres de la CIB <ol><li> Mélanger les protéines, les facteurs de croissance ou d&#39;autres biomolécules dans 10-20 pl aliquote de la solution de polyélectrolyte qui a une charge nette similaire. Les molécules biologiques avec charge négative (par exemple sérum-albumine bovine [BSA]) net doivent être mélangés avec une solution d&#39;alginate. Les molécules biologiques avec charge nette positive (par exemple VEGF) doivent être mélangés avecsolution de chitosane. </li><li> Placez petites portions (10-20 pi) de chitosane et d&#39;alginate sur une surface plane et stable recouverte avec du parafilm. Les gouttelettes d&#39;alginate et de chitosane doit être placé à proximité mais pas en contact les uns avec les autres. </li><li> Tremper légèrement chaque astuce sur une paire de pinces dans les chitosane et alginate gouttelettes. Apportez les gouttelettes de polyélectrolytes ensemble en pinçant les forceps. Lorsque les gouttelettes entrent en contact les uns avec les autres, tirer lentement la pince verticalement vers le haut pour tirer la fibre IPC de l&#39;interface des deux gouttelettes (figure 1A). </li><li> Placez soigneusement l&#39;extrémité de la fibre IPC tiré sur la pince sur un collecteur, comme un échafaudage polymère plat apposé sur un mandrin en rotation (voir la section 3 et 4). Tournez le mandrin à une vitesse fixe de 10 mm / s pour permettre la formation d&#39;uniforme et sans bourrelet fibres de la CIB. L&#39;augmentation de la vitesse de l&#39;étirage des fibres IPC former des billes, ce qui entraînera une libération d&#39;éclatement de incorporéterminaison de fibre biochimique et prématurée. 10 </li><li> Pour déterminer l&#39;efficacité d&#39;incorporation, de recueillir tous les liquides restants laissés sur le parafilm par dilution avec 500 pi de 1X tampon phosphate salin (PBS). Mesurer la teneur en protéine ou facteur de croissance dans le résidu par dosage BCA (pour BSA), ELISA (pour le VEGF et NGF) ou un test permettant de détecter les biomolécules incorporé. </li></ol> 3. La fabrication de composite hydrogel échafaudage de Pullulan-Dextran (PD) polysaccharide et fibres de la CIB <ol><li> Fabrication cadre de pullulane sacrificielle pour la collecte des fibres IPC <ol><li> Peser polysaccharide pullulane et mélanger avec distillée déminéralisée (DDI) de l&#39;eau pour créer un 20% (p / v) solution aqueuse. Mélanger la solution de pullulane O / N pour assurer l&#39;homogénéité. </li><li> Cast 15 g de solution de pullulane dans un 10 cm de culture de tissu à diamètre polystyrène (TCPS) plat. Sécher la solution de pullulane O / N à 37 ° C. Couper les films de pullulane dans 7mm x 7 mm cadres carrés. </li></ol></li><li> Préparer une solution de polysaccharide pullulane-dextran <ol><li> Créer une solution à 30% de polysaccharides pullulane et le dextrane (v / p) (rapport 3: 1) dans l&#39;eau DDI. Mélanger O / N pour assurer l&#39;homogénéité de la solution de polysaccharide. Ajouter lentement dans du bicarbonate de sodium à la solution de polysaccharide pour obtenir une concentration finale de 20% (p / v). Mélanger O / N pour assurer l&#39;homogénéité de la solution. Conserver la solution de polysaccharide à 4 ° C. </li></ol></li><li> Collecte des fibres de la CIB sur le cadre pullulane <ol><li> Fixez le cadre de pullulane sacrificielle (section 3.1) en utilisant une pince crocodile. Collez la pince crocodile et le cadre pullulane sur la fin du mandrin en rotation à l&#39;aide de ruban adhésif plastifié. Tournez le mandrin avec le cadre apposée à une vitesse constante de 10 mm / sec. Le cadre de pullulane peut être apposé sur le mandrin tournant dans les orientations souhaitées. </li></ol></li><li> Dessiner les fibres de la CIB en utilisant une paire de pinces (section 1) et attach l&#39;extrémité tirée des fibres de la CIB sur le cadre pullulane rotation. Dessiner les fibres de la CIB à une vitesse constante. En arrivant à l&#39;extrémité terminale de la fibre IPC, sécher la construction O fibres-sur-cadre / N à température ambiante. </li><li> Incorporation des fibres dans la CIB en PD hydrogel échafaudage </li><li> Pour chaque gramme de réticuler la solution de pullulane-dextrane, ajouter 100 ul de 11% (p / v) de sodium et le trimétaphosphate solution aqueuse d&#39;hydroxyde 100 ul de sodium 10M. 7 Mélanger la solution à 60 tpm en utilisant une plaque d&#39;agitation pendant de 1 à 2 min. Après l&#39;addition de trimétaphosphate de sodium et l&#39;hydroxyde de sodium, la solution de polysaccharide se réticuler presque immédiatement. Verser la solution de polysaccharide visqueux sur la construction des fibres-sur-cadre pour intégrer pleinement les fibres de la CIB. Incuber les fibres pullulane-dextran-IPC combinées (PD-CIP) à 60 ° C pendant 30 min pour former un chimiquement réticulés échafaudages composites (figure 1B). </li><li> ATTENTION: Effectuer l&#39;étape 3.3.2 dans la hotte et utiliser equi de protection appropriépement que l&#39;acide acétique est corrosif et inflammable. </li><li> Pour induire la formation de pores dans l&#39;échafaudage PD-IPC, plonger l&#39;ensemble échafaudage dans 20% (p / v) d&#39;acide acétique pendant 20 min. </li><li> Retirer réactifs ayant pas réagi par lavage échafaudages PD-IPC en 1X PBS pendant 5 min en agitant à 100 rpm. Répétez cette étape deux fois. </li><li> Retirer l&#39;excès de PBS et de geler immédiatement les échafaudages PD-IPC à -80 ° CO / N. Lyophiliser les échafaudages au moins 24 heures avant l&#39;utilisation dans toute libération ou de la bioactivité des essais contrôlés. </li></ol> 4. La fabrication de composite échafaudage de PCL et fibres de la CIB ATTENTION: Le dichlorométhane est une substance dangereuse. Utilisez la hotte et l&#39;équipement de protection personnelle lors de la manipulation du dichlorométhane. <ol><li> Création vierges et motifs PDMS substrats <ol><li> Créer un polydiméthylsiloxane vierge (PDMS) substrat élastomère en utilisant un morceau de l&#39;EPTC de dimension souhaitée à l&#39;aide processus de lithographie douce. Créer patteRNED PDMS substrats en utilisant des méthodes lithographiques standards mous de poly (méthacrylate de méthyle) des modèles avec la topographie désirée. 12 </li></ol></li><li> Fabrication cadre PCL sacrificielle pour la collecte des fibres IPC <ol><li> Peser PCL et dissoudre dans du dichlorométhane pour créer un 0,9% (p / v) de solution. Pour chaque 1 cm2 de surface du substrat PDMS, déposer 500 pi de solution de PCL à 0,9%. Laissez la totalité du solvant dichlorométhane pour évaporer pleinement à la hotte. Répéter le processus de coulée de 0,9% PCL pour épaissir le film à l&#39;épaisseur désirée. Retirez le film PCL séchée du substrat PDMS. Créez un trou dans le cadre PCL utilisant un perforateur de taille appropriée. 2 </li></ol></li><li> Collecte des fibres de la CIB sur le cadre PCL <ol><li> Apposer le cadre PCL sacrificielle avec le trou (de 4.2.1) sur une pince crocodile. Collez la pince crocodile sur le mandrin en rotation en utilisant du ruban adhésif plastifié. Attachez l&#39;extrémité de la fibre tirée IPC sur le Fram PCLe avant de commencer la rotation à une vitesse constante de 10 mm / sec (section 2). Après la fin de l&#39;IPC fibrage, sécher la fibre sur châssis construction O / N à 4 ° C. </li></ol></li><li> Intégration fibres sur châssis construire dans le substrat PCL motifs <ol><li> Déposez 500 pi de solution de PCL de 0,9% sur le substrat PDMS pour créer une base vierge PCL ou à motifs, comme l&#39;exige. Fonte des couches multiples de solution de PCL à 0,9% pour obtenir un échafaudage à l&#39;épaisseur souhaitée. Laissez la totalité du solvant dichlorométhane pour évaporer pleinement à la hotte. </li><li> Placez la construction fibre sur-cadre (section 4.3.1) sur le dessus de la base PCL. Ajouter la solution de PCL de 0,9% sur les plusieurs fois en fibres-sur-cadre construire pour obtenir l&#39;épaisseur désirée et intégrer pleinement les fibres de la CIB, la fabrication d&#39;un échafaudage composite PCL-CIB (figure 1C). </li></ol></li></ol> 5. Mesure de la dissémination d&#39;agents biologiques Composite IPC échafaudages <ol><li> Placez composite PD-IPC ouÉchafaudages PCL-CIB et autonome fibres de la CIB séparément dans une plaque de 24 puits. </li><li> Immerger l&#39;échafaud et autonome fibres IPC avec 500 pi de PBS 1X. Incuber les échantillons à 37 ° C. Recueillir PBS à divers points de temps (la libération des médias) et les remplacer par 500 pi de PBS 1X. </li><li> Mesurer la quantité de protéines ou de facteur de croissance dans les médias de libération en utilisant un dosage BCA (BSA), ELISA (VEGF et NGF) ou un autre dosage approprié de calculer le profil de libération cumulatif pour la biomolécule incorporé. </li></ol> 6. L&#39;ensemencement des cellules sur les échafaudages composites IPC pour tester la bioactivité des agents biologiques libérés <ol><li> Stériliser les échafaudages composites lyophilisés PD-CIB ou PCL-IPC en utilisant la lumière UV dans l&#39;enceinte de sécurité biologique pendant au moins 20 min. </li><li> Utiliser des techniques de culture cellulaire standard pour obtenir une suspension de cellules de 2 x 10 5 cellules dans 200 ul de milieu de croissance. Ensemencer la suspension cellulaire concentrée sur les échafaudages composites. After 20 min, top-up le volume de milieu de croissance pour submerger totalement les échafaudages. </li><li> Mesurer l&#39;activité des cellules par des techniques classiques telles que l&#39;activité métabolique bleu Alamar dosage, le dosage de l&#39;excroissance des neurites PC12 ou immunofluorescence. </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

IPC fibres sont formées par l&#39;interaction de deux polyélectrolytes de charges opposées. Le procédé utilise l&#39;extraction du complexe à partir de l&#39;interface des polyélectrolytes, en facilitant un processus d&#39;auto-assemblage pour la formation de fibres stable. Le mécanisme de formation de fibres IPC assure que toute biomolécule ajouté dans un polyélectrolyte chargé de manière similaire peut être incorporé au cours du procédé de complexation. 10,11 A l&#39;inverse, l&#39;addition...

The extracellular matrix has inherent biochemical and biophysical cues that direct cell behaviors. Mimicking this physiological three-dimensional (3D) microenvironment is a widely explored strategy for regenerative medicine and tissue engineering applications. For example, both naturally-derived and synthetic substrates have been modified with topographical cues as a means to mimic the biophysical cellular environment.1 For example, polycaprolactone (PCL) scaffolds can be easily patterned by casting on patterned PDMS substrates.2 However, most synthetic scaffolds inadequately recapitulate the controlled biochemical environment in vivo. Bulk or surface modification of synthetic materials only present biochemical cues for cell attachment but still lack temporal regulation of biochemical delivery.3 Thus, there is a need for optimal scaffolds that can mimic the temporally regulated biochemical delivery system of the extracellular matrix. 
Biochemical delivery systems such as microspheres are plagued by problems of loss of bioactivity and low incorporation efficiency due to the severity and complexity of multi-step synthesis process.4-6 Alternative methods that use a one-step fabrication and incorporation method were proven to have excellent potential to create a favorable biochemical microenvironment without the accompanying inefficiency in incorporation and loss of bioactivity. One viable solution is the use of interfacial polyelectrolyte complexation (IPC) fibers to deliver and protect biological agents. When two oppositely charged polyelectrolyte aqueous solutions are brought together, IPC fibers can be drawn out from the interface. Virtually any type of hydrophlic biomolecule in aqueous solution can be added into either the negatively- or positively-charged polyelectrolyte solution, thus facilitating the incorporation of useful biomolecules into the IPC fiber during the complexation process. Furthermore, this process only requires aqueous and ambient conditions, thereby decreasing the risk of loss of bioactivity. Using this method, active growth factors2,7 even cells8,9 have been successfully delivered. In addition, the simple method of forming IPC fibers allows molding into any shape or orientation. The stability of such fibers has been advantageous in its incorporation into both hydrophobic2 and hydrophilic polymers7 to create composite scaffolds. These composite scaffolds with IPC fibers are beneficial for creating a physiologically relevant biochemical environment while providing physical anchorage for cells. 
In this study, we show a method to incorporate IPC fibers into a hydrophilic and a hydrophobic scaffold with topography for controlled release of active biomolecules. As a proof-of-concept, we incorporate IPC fibers made from chitosan and alginate into the biocompatible, non-immunogenic and non-antigenic pullulan-dextran hydrophilic hydrogel or the biocompatible polycaprolactone hydrophobic scaffold.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Pullulan&#160;</td>
			<td>Hayashibara Inc Okayama Japan</td>
			<td></td>
			<td>Molecular weight (MW) 200 kDa. This material is pharmaceutical grade pullulan used to make pullulan frames and PD-IPC scaffolds.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dextran</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>D1037</td>
			<td>MW 500 kDa. This material is no longer being produced by Sigma Aldrich. Alternative suggested is catalog number 31392 (Sigma Aldrich). This material is used to make PD-IPC scaffolds.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Bicarbonate&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>S5761</td>
			<td>Sodium bicarbonate must be slowly added to the pullulan-dextran polysaccharide solution. Rapid addition of sodium bicarbonate will result in precipitation.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Trimetaphosphate</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>T5508</td>
			<td>This chemical is hygroscopic and must be stored in the dehumidifying cabinet. Aqueous solution of sodium trimetaphosphate must always be made fresh.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Hydroxide</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>S5881</td>
			<td>This material is hazardous and must be handled with proper protective equipment such as nitrile gloves.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chitosan</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>448877</td>
			<td>MW 190-310 kDa. Acetylation degree of 75 to 85%. Purification of chitosan is required to create stable IPC fibers.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetic Acid</td>
			<td>Merck</td>
			<td></td>
			<td>This can be replaced by another brand type. This material is corrosive and flammable. Protective equipment such as face shield, nitrile gloves, lab coat and shoe cover must be worn when handling this chemical in the fume hood.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alginic acid sodium salt from brown algae, low viscosity</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>A2158</td>
			<td>Dissolve in water overnight. Filter through sterile 0.2&#181;m syringe filter before use. Store at 4 &#176;C.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine Serum Albumin</td>
			<td>Sinopharm Chemical Reagent</td>
			<td></td>
			<td>Dissolve in sterile PBS and filter using 0.2 &#181;m syringe filter before use.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BCA assay kit</td>
			<td>Pierce</td>
			<td>23225</td>
			<td>This kit was used to measure BSA release from PD-IPC scaffolds.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Recombinant Vascular Endothelial Growth Factor</td>
			<td>R&#38;D systems</td>
			<td>293-VE</td>
			<td>Dissolve growth factor in 0.2% heparin solution to a final concentration of 5 mg/ml.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin Sodium Salt From Porcine</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>H3393</td>
			<td>This can be replaced by another brand type. Dissolve heparin salt in sterile water at a final concentration of 1% and filter through 0.2 &#181;m syringe filter before use.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Umbilical Vein Endothelial Cells (HUVEC)</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>C2517A</td>
			<td>This primary cell type was used in the assay to determine VEGF bioactivity after release from PD-IPC scaffolds.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alamar blue</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>DAL1025</td>
			<td>This is used to measure cell metabolic activity. Incubate Alamar blue with cells and maintain in standard cell culture conditions for 2 to 4 hours. Measure absorbance at 570 nm to determine Alamar blue percent reduction, which is correlated to the cell activity.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ScanVac Coolsafe Lyophilizer</td>
			<td>Labogene</td>
			<td>7.001.200.060</td>
			<td>This is a non-programmable freeze dryer that operates at -105 to -110 &#176;C, This can be replaced by other standard lab lyophilizers.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polycaprolactone (PCL)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>181609</td>
			<td>MW 65 kDa. This is no longer being manufactured by Sigma Aldrich. This can be replaced by Sigma Aldrich catalog number 704105.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dichloromethane</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>V800151</td>
			<td>This can be replaced by another brand type. This material is hazardous and must be handled in the fume hood. Protective equipment must be worn at all times when handling this chemical.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polydimethylsiloxane (PDMS; 184 Silicone Elastomer Kit)</td>
			<td>Dow Corning</td>
			<td>(240)4019862</td>
			<td>The elastomer kit comes with polymer base and crosslinker. Mixing the polymer base and crosslinker in different ratios will result in different stiffness of the PDMS.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Recombinant Beta-Nerve Growth Factor (NGF)</td>
			<td>R&#38;D systems</td>
			<td>256-GF</td>
			<td>Reconstituted in sterile DI water to a final concentration of 100 &#181;g/ml. Aliquot and store in -20 &#176;C until use.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Mesenchymal Stem Cells (hMSC)</td>
			<td>Cambrex</td>
			<td></td>
			<td>This cell type was used in the assay to determine synergistic effect of NGF and nanotopography.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat PC12 Pheochromocytoma Cells&#160;</td>
			<td>ATCC</td>
			<td></td>
			<td>This cell type was used in the neurite outgrowth assay to determine bioactivity of NGF. After exposure to release media with NGF, measure number of cells with neurite extensions and normalize to total number of cells.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Grade 93 filter paper</td>
			<td>Whatman</td>
			<td>Z699675</td>
			<td>This is used for the purification of chitosan after its precipitation with sodium hydroxide at pH 7.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Swing bucket centrifuge</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5810R</td>
			<td>To be used during the purification of chitosan using 1200 x g speed.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Motor with mandrel rotating at constant speed</td>
			<td>Rhymebus</td>
			<td>RM5E</td>
			<td>The motor is used for the fabrication of IPC fibers on pullulan or PCL frame.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate buffered saline</td>
			<td>FirstBase</td>
			<td></td>
			<td>Sterilize through filtration (0.2 &#181;m filter) and autoclave.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10-mm diameter Tissue Culture Polystyrene Dish (TCPS)</td>
			<td>Greiner</td>
			<td></td>
			<td>The TCPS dish is used for casting of pullulan frame.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human VEGF ELISA kit</td>
			<td>R&#38;D systems</td>
			<td>DVE00</td>
			<td>The ELISA kit is used for detection of VEGF in the release medium.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human NGF ELISA kit</td>
			<td>R&#38;D systems</td>
			<td>DY256</td>
			<td>&#160;The ELISA kit is used for detection of NGF in the release medium.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plastic Coated Adhesive Tape</td>
			<td>Bel-Art</td>
			<td>9040336</td>
			<td>The adhesive tape is used to securely stick the alligator clip to the rotating mandrel</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

composite scaffolds of interfacial polyelectrolyte fibers for temporally controlled release of biomolecules

Various scaffolds used in tissue engineering require a controlled biochemical environment to mimic the physiological cell niche. Interfacial polyelectrolyte complexation (IPC) fibers can be used for controlled delivery of various biological agents such as small molecule drugs, cells, proteins and growth factors. The simplicity of the methodology in making IPC fibers gives flexibility in its application for controlled biomolecule delivery. Here, we describe a method of incorporating IPC fibers into two different polymeric scaffolds, hydrophilic polysaccharide and hydrophobic polycaprolactone, to create a multi-component composite scaffold. We showed that IPC fibers can be easily embedded into these polymeric structures, enhancing the capability for sustained release and improved preservation of biomolecules. We also created a composite polymeric scaffold with topographical cues and sustained biochemical release that can have synergistic effects on cell behavior. Composite polymeric scaffolds with IPC fibers represent a novel and simple method of recreating the cellular niche.

Dans cet article, nous avons cherché à créer des échafaudages composites à fibres de la CIB pour la libération prolongée de diverses biomolécules. Caractéristiques des biomolécules utilisées dans cette étude sont présentés au tableau 1. Fibres de la CIB ont d&#39;abord été intégrées dans un PD hydrogel hydrophile pour créer un échafaudage composite PD-CIB (figure 1B). molécule modèle BSA a été testé d&#39;abord de déterminer la faisabilité d&#39;utiliser un é...

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Composite Scaffolds of Interfacial Polyelectrolyte Fibers for Temporally Controlled Release of Biomolecules

Scaffolds for tissue engineering need to recapitulate the complex biochemical and biophysical microenvironment of the cellular niche. Here, we show the use of interfacial polyelectrolyte complexation fibers as a platform to create composite, multi-component polymeric scaffolds with sustained biochemical release.

Les échafaudages composites de fibres interfaciale Polyelectrolyte pour sortie temporellement contrôlée des biomolécules

Various scaffolds used in tissue engineering require a controlled biochemical environment to mimic the physiological cell niche. Interfacial ...

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

8.3K vues.  National University of Singapore. Scaffolds for tissue engineering need to recapitulate the complex biochemical and biophysical microenvironment of the cellular niche. Here, we show the use of interfacial polyelectrolyte complexation fibers as a platform to create composite, multi-component polymeric scaffolds with sustained biochemical release.