Questo lavoro è stato sostenuto dalla Fondazione Nazionale delle Ricerche Singapore amministrata da uno dei suoi Centri di Ricerca di eccellenza, l&#39;Istituto mechanobiology, Singapore. MFAC è sostenuta dall&#39;Agenzia per la Scienza, Tecnologia e Ricerca (Singapore) e l&#39;Agenzia Nazionale per la Ricerca (Francia) programma comune con il numero 1122703037. BKKT progetto è sostenuto dall&#39;Istituto mechanobiology. Ringraziamo il Sig Daniel HC Wong per il manoscritto e la signora Alba JH Neo per contribuire alla realizzazione di video di lettura a prova di.

1. Preparazione di polielettrolita Solutions <ol><li> Purificare chitosano, come dettagliato in Liao et al. Brevemente, creare un 1% (w / v) di chitosano a 2% (v / v) di acido acetico e filtro di vuoto usando grade 93 carta da filtro. Neutralizzare il filtrato utilizzando 5M NaOH fino a pH stabilizzato per 7. Centrifugare chitosano precipitato a 1.200 xg per 10 min. Decantare il surnatante e aggiungere acqua deionizzata per lavare il chitosano. Ripetere la fase di centrifugazione e lavaggio altre due volte. Congelare il chitosano precipitato a -80 ° C e lyophilize O / N avere la forma purificata. Conservare chitosano purificato in un armadio deumidificato. </li><li> Pesare 1 g di chitosano purificato in un piatto di coltura tissutale sterili. Posizionare il chitosano nella cultura piatto tessuti più vicino possibile alla lampada UV nella cappa di sicurezza biologica ed esporre alla luce UV per 15 min. Utilizzando pinze sterili, collocare il chitosano sterilizzato in un contenitore di vetro. Sciogliere chitosano utilizzando filtrato 0.15M acido acetico ad una concentrazione finale compresa tra 0,5% e 1% (w / v). </li><li> Pesare 0,1 g del sale sodico dell&#39;acido alginico e sciogliere in 10 ml deionizzata (DDI) di acqua distillata per ottenere una soluzione all&#39;1% (w / v). Mescolare il sale sodico dell&#39;acido alginico per almeno 2 ore sul vortex per garantire la completa dissoluzione. Filtrare la soluzione di alginato attraverso 0,2 micron filtro siringa. Conservare la soluzione di alginato a 4 ° C. </li><li> Ricostituire fattori umani ricombinanti crescita come fattore di crescita vascolare endoteliale (VEGF) o beta - nerve growth factor (NGF), come raccomandato dal costruttore. </li></ol> 2. Disegno di fibre IPC <ol><li> Mescolare proteine, fattori di crescita o altre biomolecole in 10-20 microlitri aliquota della soluzione polielettrolita che ha una carica netta simile. Molecole biologiche con carica negativa (ad esempio albumina di siero bovino [ASC]) al netto deve essere miscelato con la soluzione di alginato. Molecole biologiche con carica positiva netta (ad esempio VEGF) devono essere mescolati consoluzione chitosano. </li><li> Inserire piccole aliquote (10-20 mL) di chitosano e alginato su una superficie piana e stabile che è coperto con parafilm. Le goccioline di chitosano e alginato devono essere posti in prossimità ma non in contatto tra loro. </li><li> Leggermente immergere ogni punta su un paio di pinze nelle chitosano e alginato goccioline. Portare le goccioline di polielettroliti insieme stringendo la pinza. Quando le goccioline entrano in contatto tra loro, tirare lentamente la pinza verticalmente verso l&#39;alto per disegnare la fibra IPC dall&#39;interfaccia delle due gocce (Figura 1A). </li><li> Posizionare accuratamente l&#39;estremità della fibra IPC disegnato sulla pinza su un collettore, ad esempio una matrice polimerica piatta apposto su un mandrino rotante (vedere la sezione 3 e 4). Ruotare il mandrino ad una velocità fissa di 10 mm / sec per permettere la formazione di uniforme e beadless fibre IPC. Aumentando la velocità di trarre le fibre IPC formeranno perline, che provocherà una raffica di rilascio incorporataterminazione fibra biochimica e prematura. 10 </li><li> Per determinare l&#39;efficienza di incorporazione, raccogliere tutte le rimanenti liquidi lasciati sul parafilm diluendo con 500 ml di 1X tampone fosfato salino (PBS). Misurare la proteina o la crescita dei contenuti fattore residuo attraverso BCA assay (per BSA), ELISA (per VEGF e NGF) o un test appropriato per rilevare biomolecola incorporato. </li></ol> 3. Realizzazione di composito Hydrogel impalcatura di Pullulan-destrano (PD) polisaccaride e Fibre IPC <ol><li> Realizzazione telaio pullulan sacrificale per la raccolta fibra IPC <ol><li> Pesare polisaccaride pullulan e mescolare con deionizzata distillata (DDI) acqua per creare un 20% (w / v) in soluzione acquosa. Mescolare la soluzione pullulan O / N per assicurare l&#39;omogeneità. </li><li> Cast 15 g di soluzione di pullulano in un 10 centimetri coltura di tessuti diametro polistirene (TCPS) piatto. Asciugare la soluzione pullulan O / N a 37 ° C. Tagliare i film pullulano in 7mm x 7 mm cornici quadrate. </li></ol></li><li> Preparazione soluzione polisaccaride pullulano destrano <ol><li> Creazione di un 30% (w / v) di polisaccaridi pullulan e destrano (rapporto 3: 1) in acqua DDI. Mescolare O / N per assicurare l&#39;omogeneità della soluzione polisaccaride. Aggiungere lentamente in bicarbonato di sodio alla soluzione di polisaccaride per ottenere una concentrazione finale del 20% (w / v). Mescolare O / N per assicurare l&#39;omogeneità della soluzione. Conservare la soluzione polisaccaride a 4 ° C. </li></ol></li><li> Raccolta fibre IPC sul telaio pullulano <ol><li> Fissare il telaio pullulan sacrificale (punto 3.1) con un coccodrillo. Stick il coccodrillo e cornice pullulan sull&#39;estremità del mandrino rotante con nastro adesivo plastificato. Ruotare il mandrino con il telaio affisso a una velocità costante di 10 mm / sec. Il telaio pullulan può essere apposto sul mandrino rotante orientamenti desiderati. </li></ol></li><li> Disegnare le fibre IPC con un paio di pinze (sezione 1) e attach fine disegnato delle fibre IPC sul telaio pullulan rotante. Disegnare le fibre IPC a velocità costante. Raggiunta l&#39;estremità terminale della fibra IPC, asciugare il costrutto O fibre-on-frame / N a RT. </li><li> Incorporare fibre IPC nel PD idrogel ponteggio </li><li> Per reticolare ogni grammo di soluzione pullulan-destrano, aggiungere 100 ml di 11% (w / v) di sodio trimetafosfato soluzione acquosa e idrossido di sodio 10M 100 microlitri. 7 Mescolare la soluzione a 60 rpm con una stirplate per 1 a 2 min. Dopo l&#39;aggiunta di trimetafosfato di sodio e idrossido di sodio, la soluzione polisaccaride sarà reticolare quasi immediatamente. Versare la soluzione polisaccaride viscosa sul costrutto fibre-on-frame da incorporare completamente le fibre IPC. Incubare le fibre pullulan-destrano-IPC combinate (PD-IPC) a 60 ° C per 30 minuti per formare un reticolato chimicamente scaffold compositi (Figura 1B). </li><li> ATTENZIONE: Eseguire il punto 3.3.2 della cappa e il corretto utilizzo equi di protezionepment come acido acetico è un corrosivo e infiammabile. </li><li> Per indurre la formazione di pori nella scaffold PD-IPC, immergere l&#39;intera impalcatura nel 20% (w / v) di acido acetico per 20 min. </li><li> Rimuovere i reagenti che non hanno reagito per lavaggio impalcature PD-IPC in 1X PBS per 5 minuti agitando a 100 rpm. Ripetere questa operazione 2 volte. </li><li> Rimuovere l&#39;eccesso di PBS e congelare immediatamente i ponteggi PD-IPC a -80 ° CO / N. Lyophilize i ponteggi, almeno 24 ore prima dell&#39;utilizzo in qualsiasi rilascio o di bioattività dosaggi controllati. </li></ol> 4. Realizzazione di composito impalcatura di PCL e fibre IPC ATTENZIONE: diclorometano è una sostanza pericolosa. Utilizzare la cappa e dispositivi di protezione personale quando si impiega diclorometano. <ol><li> Creazione incontaminate e fantasia PDMS substrati <ol><li> Creare un polidimetilsilossano incontaminato (PDMS) substrato elastomerico con un pezzo di TCPS di dimensione desiderata mediante processo di litografia soffice. Crea pattePDMS rned substrati utilizzando metodi litografiche soft di serie di poli (metilmetacrilato) modelli con la topografia desiderata. 12 </li></ol></li><li> Realizzazione sacrificale telaio PCL per la raccolta fibra IPC <ol><li> Pesare PCL e sciogliere in diclorometano per creare un 0,9% (w / v). Per ogni 1 cm 2 superficie del substrato PDMS, goccia 500 ml di soluzione di PCL 0,9%. Consentire tutto il solvente diclorometano di evaporare completamente nella cappa. Ripetere il processo di colata 0,9% PCL per addensare il film fino allo spessore desiderato. Rimuovere la pellicola PCL essiccato dal substrato PDMS. Creare un foro nel telaio PCL utilizzando un perforatore di dimensioni adeguate. 2 </li></ol></li><li> Raccolta fibre IPC sul telaio PCL <ol><li> Fissare il telaio PCL sacrificale con foro (da 4.2.1) in un coccodrillo. Attaccare il coccodrillo sul mandrino rotante utilizzando nastro adesivo plastificato. Collegare l&#39;estremità tratto della fibra IPC sul fram PCLe prima di iniziare la rotazione ad una velocità costante di 10 mm / sec (sezione 2). Dopo la fine del IPC filatura della fibra, asciugare la fibra-on-frame costrutto O / N a 4 ° C. </li></ol></li><li> Incorporare fibra-on-frame costrutto in fantasia substrato PCL <ol><li> Cada 500 ml di soluzione di PCL 0,9% sul substrato PDMS di creare una base PCL incontaminata o fantasia, come richiesto. Cast strati multipli di soluzione PCL 0,9% per ottenere un ponteggio con lo spessore desiderato. Consentire tutto il solvente diclorometano di evaporare completamente nella cappa. </li><li> Posizionare il costrutto fibra-on-frame (sezione 4.3.1) sulla parte superiore della base PCL. Aggiungere la soluzione PCL 0,9% sui più volte fibra-on-frame costruire per ottenere lo spessore desiderato e incorporare completamente le fibre IPC, fabbricare un ponteggio composita PCL-IPC (Figura 1C). </li></ol></li></ol> 5. Misura di emissione di agenti biologici da Composite IPC Ponteggi <ol><li> Mettere in composito PD-IPC oImpalcature PCL-IPC e stand-alone fibre IPC separatamente in una piastra da 24 pozzetti. </li><li> Immergere il patibolo e stand-alone fibre IPC con 500 ml di PBS 1X. Incubare i campioni a 37 ° C. Raccogliere PBS in vari momenti (Comunicato stampa) e sostituirlo con 500 ml di PBS 1X. </li><li> Misurare la quantità di proteine ​​o di fattore di crescita nei mezzi di rilascio utilizzando un saggio BCA (BSA), ELISA (VEGF e NGF) o altri test appropriato calcolare il profilo di rilascio cumulativo per la biomolecola incorporato. </li></ol> 6. Semina di Celle compositi IPC Ponteggi testare bioattività di agenti biologici Usciti <ol><li> Sterilizzare i liofilizzati PD-IPC o PCL-IPC ponteggi compositi usando la luce UV nella cappa di sicurezza biologica per almeno 20 minuti. </li><li> Utilizzare tecniche standard di coltura cellulare per ottenere una sospensione di cellule di 2 x 10 5 cellule in 200 microlitri terreni di crescita. Seme la sospensione cellulare concentrata sulle impalcature compositi. After 20 min, top-up il volume di terreni di crescita per immergere completamente i ponteggi. </li><li> Misurare l&#39;attività delle cellule attraverso tecniche standard quali Alamar blu metabolico attività di analisi, PC12 neurite saggio escrescenza o immunofluorescenza. </li></ol>

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	<li>Annabi, N., Tamayol, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=25th+Anniversary+Article:+Rational+design+and+applications+of+hydrogels+in+regenerative+medicine.">25th Anniversary Article: Rational design and applications of hydrogels in regenerative medicine.</a> Adv. Mater. 26 (1), 85-124 (2014).</li><li>Teo, B. K. K., Tan, G. D. S., Yim, E. K. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+synergistic+effect+of+nanotopography+and+sustained+dual+release+of+hydrophobic+and+hydrophilic+neurotrophic+factors+on+human+mesenchymal+stem+cell+neuronal+lineage+commitment.">The synergistic effect of nanotopography and sustained dual release of hydrophobic and hydrophilic neurotrophic factors on human mesenchymal stem cell neuronal lineage commitment.</a> Tissue Eng. 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The authors have nothing to disclose.

Fibre IPC sono formate dall&#39;interazione di due polielettroliti carica opposta. Il processo utilizza l&#39;estrazione del complesso dall&#39;interfaccia dei polielettroliti, facilitando il processo di auto-assemblaggio di fibra formazione stabile. Il meccanismo di formazione della fibra IPC garantisce che qualsiasi biomolecola aggiunto nella polielettroliti con carica simile può essere incorporato durante il processo di complessazione. 10,11 contrario, l&#39;aggiunta di una biomolecola nel polielettrolita...

The extracellular matrix has inherent biochemical and biophysical cues that direct cell behaviors. Mimicking this physiological three-dimensional (3D) microenvironment is a widely explored strategy for regenerative medicine and tissue engineering applications. For example, both naturally-derived and synthetic substrates have been modified with topographical cues as a means to mimic the biophysical cellular environment.1 For example, polycaprolactone (PCL) scaffolds can be easily patterned by casting on patterned PDMS substrates.2 However, most synthetic scaffolds inadequately recapitulate the controlled biochemical environment in vivo. Bulk or surface modification of synthetic materials only present biochemical cues for cell attachment but still lack temporal regulation of biochemical delivery.3 Thus, there is a need for optimal scaffolds that can mimic the temporally regulated biochemical delivery system of the extracellular matrix. 
Biochemical delivery systems such as microspheres are plagued by problems of loss of bioactivity and low incorporation efficiency due to the severity and complexity of multi-step synthesis process.4-6 Alternative methods that use a one-step fabrication and incorporation method were proven to have excellent potential to create a favorable biochemical microenvironment without the accompanying inefficiency in incorporation and loss of bioactivity. One viable solution is the use of interfacial polyelectrolyte complexation (IPC) fibers to deliver and protect biological agents. When two oppositely charged polyelectrolyte aqueous solutions are brought together, IPC fibers can be drawn out from the interface. Virtually any type of hydrophlic biomolecule in aqueous solution can be added into either the negatively- or positively-charged polyelectrolyte solution, thus facilitating the incorporation of useful biomolecules into the IPC fiber during the complexation process. Furthermore, this process only requires aqueous and ambient conditions, thereby decreasing the risk of loss of bioactivity. Using this method, active growth factors2,7 even cells8,9 have been successfully delivered. In addition, the simple method of forming IPC fibers allows molding into any shape or orientation. The stability of such fibers has been advantageous in its incorporation into both hydrophobic2 and hydrophilic polymers7 to create composite scaffolds. These composite scaffolds with IPC fibers are beneficial for creating a physiologically relevant biochemical environment while providing physical anchorage for cells. 
In this study, we show a method to incorporate IPC fibers into a hydrophilic and a hydrophobic scaffold with topography for controlled release of active biomolecules. As a proof-of-concept, we incorporate IPC fibers made from chitosan and alginate into the biocompatible, non-immunogenic and non-antigenic pullulan-dextran hydrophilic hydrogel or the biocompatible polycaprolactone hydrophobic scaffold.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Pullulan&#160;</td>
			<td>Hayashibara Inc Okayama Japan</td>
			<td></td>
			<td>Molecular weight (MW) 200 kDa. This material is pharmaceutical grade pullulan used to make pullulan frames and PD-IPC scaffolds.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dextran</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>D1037</td>
			<td>MW 500 kDa. This material is no longer being produced by Sigma Aldrich. Alternative suggested is catalog number 31392 (Sigma Aldrich). This material is used to make PD-IPC scaffolds.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Bicarbonate&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>S5761</td>
			<td>Sodium bicarbonate must be slowly added to the pullulan-dextran polysaccharide solution. Rapid addition of sodium bicarbonate will result in precipitation.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Trimetaphosphate</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>T5508</td>
			<td>This chemical is hygroscopic and must be stored in the dehumidifying cabinet. Aqueous solution of sodium trimetaphosphate must always be made fresh.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Hydroxide</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>S5881</td>
			<td>This material is hazardous and must be handled with proper protective equipment such as nitrile gloves.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chitosan</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>448877</td>
			<td>MW 190-310 kDa. Acetylation degree of 75 to 85%. Purification of chitosan is required to create stable IPC fibers.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetic Acid</td>
			<td>Merck</td>
			<td></td>
			<td>This can be replaced by another brand type. This material is corrosive and flammable. Protective equipment such as face shield, nitrile gloves, lab coat and shoe cover must be worn when handling this chemical in the fume hood.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alginic acid sodium salt from brown algae, low viscosity</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>A2158</td>
			<td>Dissolve in water overnight. Filter through sterile 0.2&#181;m syringe filter before use. Store at 4 &#176;C.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine Serum Albumin</td>
			<td>Sinopharm Chemical Reagent</td>
			<td></td>
			<td>Dissolve in sterile PBS and filter using 0.2 &#181;m syringe filter before use.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BCA assay kit</td>
			<td>Pierce</td>
			<td>23225</td>
			<td>This kit was used to measure BSA release from PD-IPC scaffolds.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Recombinant Vascular Endothelial Growth Factor</td>
			<td>R&#38;D systems</td>
			<td>293-VE</td>
			<td>Dissolve growth factor in 0.2% heparin solution to a final concentration of 5 mg/ml.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin Sodium Salt From Porcine</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>H3393</td>
			<td>This can be replaced by another brand type. Dissolve heparin salt in sterile water at a final concentration of 1% and filter through 0.2 &#181;m syringe filter before use.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Umbilical Vein Endothelial Cells (HUVEC)</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>C2517A</td>
			<td>This primary cell type was used in the assay to determine VEGF bioactivity after release from PD-IPC scaffolds.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alamar blue</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>DAL1025</td>
			<td>This is used to measure cell metabolic activity. Incubate Alamar blue with cells and maintain in standard cell culture conditions for 2 to 4 hours. Measure absorbance at 570 nm to determine Alamar blue percent reduction, which is correlated to the cell activity.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ScanVac Coolsafe Lyophilizer</td>
			<td>Labogene</td>
			<td>7.001.200.060</td>
			<td>This is a non-programmable freeze dryer that operates at -105 to -110 &#176;C, This can be replaced by other standard lab lyophilizers.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polycaprolactone (PCL)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>181609</td>
			<td>MW 65 kDa. This is no longer being manufactured by Sigma Aldrich. This can be replaced by Sigma Aldrich catalog number 704105.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dichloromethane</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>V800151</td>
			<td>This can be replaced by another brand type. This material is hazardous and must be handled in the fume hood. Protective equipment must be worn at all times when handling this chemical.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polydimethylsiloxane (PDMS; 184 Silicone Elastomer Kit)</td>
			<td>Dow Corning</td>
			<td>(240)4019862</td>
			<td>The elastomer kit comes with polymer base and crosslinker. Mixing the polymer base and crosslinker in different ratios will result in different stiffness of the PDMS.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Recombinant Beta-Nerve Growth Factor (NGF)</td>
			<td>R&#38;D systems</td>
			<td>256-GF</td>
			<td>Reconstituted in sterile DI water to a final concentration of 100 &#181;g/ml. Aliquot and store in -20 &#176;C until use.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Mesenchymal Stem Cells (hMSC)</td>
			<td>Cambrex</td>
			<td></td>
			<td>This cell type was used in the assay to determine synergistic effect of NGF and nanotopography.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat PC12 Pheochromocytoma Cells&#160;</td>
			<td>ATCC</td>
			<td></td>
			<td>This cell type was used in the neurite outgrowth assay to determine bioactivity of NGF. After exposure to release media with NGF, measure number of cells with neurite extensions and normalize to total number of cells.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Grade 93 filter paper</td>
			<td>Whatman</td>
			<td>Z699675</td>
			<td>This is used for the purification of chitosan after its precipitation with sodium hydroxide at pH 7.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Swing bucket centrifuge</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5810R</td>
			<td>To be used during the purification of chitosan using 1200 x g speed.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Motor with mandrel rotating at constant speed</td>
			<td>Rhymebus</td>
			<td>RM5E</td>
			<td>The motor is used for the fabrication of IPC fibers on pullulan or PCL frame.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate buffered saline</td>
			<td>FirstBase</td>
			<td></td>
			<td>Sterilize through filtration (0.2 &#181;m filter) and autoclave.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10-mm diameter Tissue Culture Polystyrene Dish (TCPS)</td>
			<td>Greiner</td>
			<td></td>
			<td>The TCPS dish is used for casting of pullulan frame.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human VEGF ELISA kit</td>
			<td>R&#38;D systems</td>
			<td>DVE00</td>
			<td>The ELISA kit is used for detection of VEGF in the release medium.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human NGF ELISA kit</td>
			<td>R&#38;D systems</td>
			<td>DY256</td>
			<td>&#160;The ELISA kit is used for detection of NGF in the release medium.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plastic Coated Adhesive Tape</td>
			<td>Bel-Art</td>
			<td>9040336</td>
			<td>The adhesive tape is used to securely stick the alligator clip to the rotating mandrel</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

composite scaffolds of interfacial polyelectrolyte fibers for temporally controlled release of biomolecules

Various scaffolds used in tissue engineering require a controlled biochemical environment to mimic the physiological cell niche. Interfacial polyelectrolyte complexation (IPC) fibers can be used for controlled delivery of various biological agents such as small molecule drugs, cells, proteins and growth factors. The simplicity of the methodology in making IPC fibers gives flexibility in its application for controlled biomolecule delivery. Here, we describe a method of incorporating IPC fibers into two different polymeric scaffolds, hydrophilic polysaccharide and hydrophobic polycaprolactone, to create a multi-component composite scaffold. We showed that IPC fibers can be easily embedded into these polymeric structures, enhancing the capability for sustained release and improved preservation of biomolecules. We also created a composite polymeric scaffold with topographical cues and sustained biochemical release that can have synergistic effects on cell behavior. Composite polymeric scaffolds with IPC fibers represent a novel and simple method of recreating the cellular niche.

In questo articolo, abbiamo cercato di creare impalcature compositi con fibre IPC per il rilascio prolungato di diverse biomolecole. Caratteristiche delle biomolecole utilizzati in questo studio sono presentati nella tabella 1. Fibre IPC sono stati incorporati in un PD idrogel idrofila per creare un&#39;impalcatura composita PD-IPC (Figura 1B). Modello molecola BSA è stata testata prima di determinare la possibilità di utilizzare un ponteggio in composito per il rilascio controllato b...

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Composite Scaffolds of Interfacial Polyelectrolyte Fibers for Temporally Controlled Release of Biomolecules

Scaffolds for tissue engineering need to recapitulate the complex biochemical and biophysical microenvironment of the cellular niche. Here, we show the use of interfacial polyelectrolyte complexation fibers as a platform to create composite, multi-component polymeric scaffolds with sustained biochemical release.

Ponteggi composto di fibre di interfacce polielettrolita per rilascio controllato di Biomolecole temporalmente

Various scaffolds used in tissue engineering require a controlled biochemical environment to mimic the physiological cell niche. Interfacial ...

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

8.3K Views.  National University of Singapore. Scaffolds for tissue engineering need to recapitulate the complex biochemical and biophysical microenvironment of the cellular niche. Here, we show the use of interfacial polyelectrolyte complexation fibers as a platform to create composite, multi-component polymeric scaffolds with sustained biochemical release.