Cette méthodologie aide à répondre aux questions clés dans le domaine de l’allergie et de l’immunologie, en particulier celles qui sont concernant les phénotypes qui peuvent être associés à des changements de température corporelle. Les principaux avantages de cette technique sont qu’elle est peu coûteuse, non invasive, et ne nécessite pas d’anesthésie. Les implications de cette technique permettent aux chercheurs de réduire le stress et la douleur des souris lors de la mesure de la température tout en éliminant les effets de l’anesthésie, et /ou de visualiser les phénotypes comportementaux.
Pour mesurer la température corporelle de la souris après l’anesthésie, confirmer la sedation par taux respiratoire ou immobilité et saisir la souris par la nuque avec un index et le pouce et la queue avec un doigt rose. Tout en tenant la souris parallèle à la surface du banc de laboratoire, placez un capteur thermomètre infrarouge sous le bas-ventre avec la surface plane extérieure du thermomètre à deux à cinq millimètres de la surface de l’abdomen entre les deux mamelons supérieurs. Ensuite, apressez la gâchette du thermomètre pour mesurer la température de l’animal, en prenant soin de maintenir la souris et le thermomètre stable.
Pour mesurer la température corporelle de la souris sans anesthésie, ramasser la souris au milieu de la queue et exposer l’abdomen. Laissez la souris s’accrocher à une surface de bord droit avec ses scies avant et maintenez la gâchette pour mesurer la température. Alternativement, laissez la souris s’accrocher au bord droit supérieur du thermomètre et faire reposer la souris sur la surface plane extérieure du thermomètre avec son abdomen juste au-dessus du capteur infrarouge pendant la mesure de température.
Pour une sensibilisation systémique passive à l’anaphylaxie, utilisez une seringue d’un millilitre équipée d’une aiguille de calibre 26 pour injecter 200 microlitres d’anti-dinitrophenol fraîchement préparé, ou DNP, IgE dans PBS, dans le péritoine de chaque animal receveur juste latéralement à la ligne médiane entre les mamelons les plus inférieurs et les deuxièmes plus inférieurs. 24 heures après l’injection, mesurez la température corporelle de chaque animal receveur comme démontré, et chargez une seringue d’un millilitre munie d’une aiguille de calibre 30 avec 100 microlitres d’albumine de sérum humain DNP fraîchement préparée. Pour induire une anaphylaxie systémique passive, insérez l’aiguille sur le côté médial de l’œil à un angle peu profond visant derrière l’œil, et injectez tout le volume de solution par voie intraveineuse dans le sinus veineux rétro-orbital.
Placez ensuite la souris seule dans une cage de récupération avec surveillance jusqu’à ce que la charge complète, et de mesurer la température corporelle et l’activité toutes les 10 minutes pendant 70 minutes. Les souris sensibilisées IgE démontrent une baisse de température maximale de trois degrés Celsius à 20 minutes tandis que les souris témoins PBS présentent une baisse maximale de 1,1 degré Celsius dans la même période après le défi. Des observations comportementales peuvent également être effectuées chez des animaux non anesthésiés afin d’évaluer la relation entre les baisses de température observées et l’activité de la souris.
Dans ce défi représentatif d’allergie alimentaire de souris, le groupe témoin de PBS a démontré une baisse significative de température 10 minutes après défi comparé au groupe traité d’inhibiteur de 2CA. L’évaluation des scores d’activité et des baisses de température de ce défi d’allergie alimentaire a indiqué une corrélation statistiquement significative entre les deux ensembles de données. Après cette procédure, d’autres expériences impliquant des mesures de température corporelle de souris peuvent être effectuées pour répondre à des questions supplémentaires concernant les phénotypes comportementaux qui sont associés au changement de température corporelle.
