Plus de la moitié des cas d’insuffisance cardiaque dans le monde sont classés comme une insuffisance cardiaque avec fraction d’éjection sanguine préservée ou HFpEF. Cette vidéo présente une procédure étatiste étape par étape pour modéliser des miniporcs HFpEF ainsi que des techniques d’échocardiographie pour évaluer la fonction cardiaque. Ce modèle dispose d’un seul filtre prédisposant.
Il y a constriction aortique, surcharge de pression induite. Par conséquent, le modèle est utile pour l’étude d’un certain type de HFpEF. En plus de la technique chirurgicale par planification de l’opération, le contrôle de la qualité des animaux et les soins postopératoires sont des étapes essentielles.
Les tests biochimiques et l’électrocardiographie aident à surveiller la santé de l’animal et les changements dans sa structure et sa fonction. Xiaohui Li, chirurgien cardiaque clinicien. Weijiang Tan, un chirurgien animalier de formation.
Xiang Li, un anesthésiste qualifié pour cette opération. Shuang Chen, infirmière de salle d’opération qualifiée. Et Honghua Chen, une infirmière de salle d’opération qualifiée, fera la démonstration de la procédure.
Pour commencer, acclimater les animaux à l’installation pendant 14 jours avant la chirurgie. Préparez la salle d’opération et les appareils. Contentez et placez le mini-porc en position couchée latérale droite sur la table d’opération.
Allumez le système de chauffage pour maintenir la température corporelle de l’animal. Effectuez l’échocardiographie et prélevez un échantillon de sang de deux millilitres. Initier la ventilation à huit millilitres par kilogramme de volume courant et 30 respirations par minute.
Établir une canulation intraveineuse à l’aide d’un cathéter intraveineux périphérique provenant d’une veine de l’oreille. Connectez ensuite l’animal à un moniteur vétérinaire. Rasez la région thoracique gauche.
Appliquer 0,7 % d’iode et 75 % d’alcool pour préparer la peau de manière aseptique de l’omoplate au diaphragme. Placez des champs stériles sur la zone chirurgicale. Marquez une incision d’environ 15 centimètres de long le long du quatrième espace intercostal.
Faites ensuite l’incision cutanée à l’aide d’électrocautérisation. Ouvrez la poitrine à l’aide d’une combinaison de cautérisation et de dissection contondante du muscle et du tissu conjonctif. Utilisez un écarteur de côtes pour écarter les côtes.
Localisez le segment d’aorte thoracique descendant et déterminez le site de constriction et utilisez deux sutures chirurgicales OTT pour faire deux fois le tour du segment. Configurer les unités de mesure de pression. Pour déterminer le degré de constriction, resserrez progressivement la suture chirurgicale entourant le segment descendant de l’aorte pour obtenir le degré de constriction souhaité.
Laissez les lectures de pression se stabiliser pendant 20 minutes et resserrer de façon permanente les nœuds chirurgicaux. Utilisez une sonde thoracique de drainage pour évacuer l’air et l’excès de liquide dans la cavité thoracique. Surveillez la présence de clignements d’yeux et de mouvements des membres de l’animal.
Débranchez le ventilateur, mais laissez la sonde endotrachéale et surveillez la présence d’une respiration spontanée. Placez l’animal dans une unité de contention mobile avec une housse en toile. Rasez la poitrine gauche de l’animal.
Placez les doigts sur le centre gauche de la poitrine pour sentir le pouls épique. Appliquez le gel ultrasonique sur la zone environnante. Placez le transducteur multiéléments de l’échographe dans le troisième espace intercostal.
Déplacez le transducteur vers l’avant ou vers l’arrière et ajustez l’angle d’encoche. Identifiez les oreillettes, les ventricules et l’aorte et enregistrez les images péripérinéales du grand axe en mode B et en mode M. Ensuite, dans la vue parasternale à court axe, identifiez le septum interventriculaire, la paroi postérieure du ventricule gauche et le muscle papillaire, et enregistrez les images en mode B et en mode M.
Utilisez le poste de travail fourni par le fabricant de l’échographe pour évaluer la structure et la fonction cardiaques. L’évaluation de la structure et de la fonction cardiaques a montré les enregistrements affichés en mode B et en mode M de l’axe court péri-arrière. L’épaisseur du septum ventriculaire a augmenté dans les cœurs de constriction aortique descendante, tandis que l’épaisseur de la paroi postérieure a augmenté puis diminué au cours de la période d’observation, suggérant le remodelage hypertrophique dans le ventricule gauche des mini-porcs de constriction aortique descendante.
La dimension interne du ventricule gauche à la fin de la diastole a diminué au cours des quatrième et sixième semaines, puis a augmenté progressivement après la huitième semaine, ce qui suggère que les ventricules ont subi une hypertrophie concentrique avant la dilatation. La fraction d’éjection ventriculaire gauche des cœurs modèles a été maintenue à plus de 50 % pendant les 12 semaines. Par rapport aux cœurs factices, un élargissement des cœurs de constriction aortique descendante a été observé.
Le marqueur de l’insuffisance cardiaque, la troponine cardiaque I, était significativement plus élevé aux semaines 4, 8 et 12 dans le groupe de constriction aortique descendante que dans le groupe simulé aux points de temps correspondants. Les cardiomyocytes de la cloison ventriculaire et des ventricules des oreillettes présentaient une hypertrophie avec pignosis. Les couches musculaires ont été réduites dans la valve endométriale et une hyperplasie endothéliale vasculaire a été observée dans l’aorte.
De plus, la constriction aortique descendante a induit une fibrose étendue dans le myocarde des miniporcs, accompagnée d’une infiltration de cellules inflammatoires dans les ventricules gauches, l’oreillette droite et les parois aortiques. Ce modèle est un outil puissant pour étudier les lésions tissulaires, la fibrose, l’inflammation et le dysfonctionnement concentrique dans la HFpEF induite par la surcharge de pression.
