Le choc hémorragique est la principale cause de décès chez les enfants dans les pays développés. Cette étude offre l’occasion de comparer la réponse à différentes thérapies pour le choc hémorragique. Il s’agit d’un modèle simple et hautement reproductible qui permet d’activer des mécanismes en réponse à des hémorragies sévères chez un sujet immature.
Dans ce protocole, la traduction des résultats est élevée, et avec l’aide pour mieux identifier le choix des fluides et du repos pour la réanimation en termes d’effet indésirable plus faible. Ce modèle permet d’étudier l’effet de différents fluides de réanimation et médicaments vasoactifs dans divers systèmes tels que la microcirculation microscopique, la coagulation, l’endothélium et le glycocalyx. Commencez par placer l’animal anesthésié sur une table d’opération avec une couverture chauffante.
Mesurez ensuite la saturation en oxygène périphérique à l’aide d’un capteur clipsé sur l’oreille du porc. Initier une surveillance électrocardiographique continue à trois dérivations. Insérez un cathéter veineux périphérique dans la veine de l’oreille, en désinfectant la peau avec au moins trois rondes alternées de gommage à la povidone iodée ou à la chlorhexidine et d’alcool au préalable.
Ensuite, placez l’animal en position couchée dorsale et lancez immédiatement la ventilation du masque de sac à main avec un masque pour chien. Pour commencer la procédure d’intubation endotrachéale, assurez-vous que l’équipement et les outils chirurgicaux nécessaires sont stérilisés et prêts à l’emploi. Tirez légèrement sur la langue et maintenez la mâchoire ouverte à l’aide d’une gaze d’attache placée derrière les canines supérieures et inférieures.
Insérez le laryngoscope. Et une fois que l’épiglotte est visible, poussez-la vers le haut en direction de la langue à l’aide de la pointe du laryngoscope. Une fois les cordes vocales visualisées, avancez doucement le tube avec une légère rotation dans la trachée.
Retirez le stylet et utilisez une seringue de cinq millilitres pour gonfler le brassard. Pour assurer le bon placement de la sonde endotrachéale, observez l’élévation symétrique de la poitrine, une saturation en oxygène adéquate entre 95 et 100 % et une forme d’onde et une lecture correctes du dioxyde de carbone en fin de marée. Une fois l’intubation confirmée, initier une ventilation mécanique avec une fréquence respiratoire de 20 respirations par minute.
Volume de titre de huit millilitres par kilogramme, fraction d’oxygène inspiré de 40% et pression expiratoire finale positive de quatre centimètres d’eau. Ajustez la ventilation pour obtenir une pression partielle de dioxyde de carbone comprise entre 35 et 45 millimètres de mercure. Maintenez une anesthésie profonde tout au long de l’expérience grâce à une perfusion continue de fentanyl, de propofol et d’atracurium.
Pour préparer la région fémorale au cathétérisme vasculaire, désinfectez la région inguinale avec au moins trois cycles alternés de gommage à la povidone iodée ou à la chlorhexidine et d’alcool. Ensuite, évaluez les vaisseaux fémoraux à l’aide d’une échographie et utilisez la technique Doppler pour faire la distinction entre l’artère et la veine. Sous échographie continue et à l’aide de la technique de Seldinger, insérez une aiguille de cathéter veineux central français de 5,5 à 7,5 dans l’une des veines fémorales.
Ensuite, ponctionnez la veine et obtenez le sang. Retirez la seringue et introduisez le fil guide dans l’aiguille. Lorsque le fil-guide est à sa place dans la veine, retirez-le et introduisez le cathéter jusqu’à ce qu’il atteigne la veine.
Immédiatement après la mise en place du cathéter, connectez-vous au système de transducteur pour mesurer la pression veineuse centrale. Ensuite, assurez-vous qu’un électrolyte avec un débit de perfusion de glucose de 20 millilitres par heure est connecté à l’un des ports de la ligne centrale. Ensuite, une solution saline d’entretien est perfusée via l’orifice restant pour éviter l’occlusion du cathéter.
Ensuite, insérez une aiguille de cathéter artériel à 4 français dans l’artère fémorale. Insérez ensuite le fil guide sous guidage échographique, puis insérez le cathéter. Une fois le cathéter artériel inséré, connectez le fil artériel du système de surveillance du débit cardiaque et le transducteur artériel directement à l’orifice du moniteur.
Dans le même temps, connectez l’unité de mesure veineuse du moniteur au transducteur veineux central. Ensuite, désinfectez la zone du cou avec au moins trois cycles alternés de gommage à la povidone, à l’iode ou à la chlorhexidine et de l’alcool. Faites une incision paratrachéale gauche de 10 centimètres en coupant en deux une ligne entre le manubrium et l’angle de la mâchoire.
Pour exposer la veine jugulaire externe, disséquez le tissu latéral du muscle sterno-cléido-mastoïdien et isolez la veine du fascia environnant. Ensuite, utilisez deux sutures de soie non résorbables enroulées autour de la veine pour fixer le vaisseau avant la ponction. Inciser la veine à l’aide d’une aiguille à venflon de calibre 18.
Une fois à l’intérieur de la veine, rétractez l’aiguille et insérez le fil guide dans le tube de venflon. Retirez le tube de venflon et insérez la gaine avec l’introducteur 5-French sur le fil. Une fois la gaine insérée, retirez à la fois l’introducteur et le fil.
Immédiatement après l’insertion, rincez les gaines avec du chlorure de sodium à 0,9 % pour éviter la formation de thrombus. Ensuite, attachez la suture proximale en soie autour de la gaine pour la maintenir en place. Attachez ensuite la poignée de la gaine au muscle sterno-cléido-mastoïdien et fermez la peau avec des agrafes.
Pour obtenir les valeurs de l’indice cardiaque, perfusez cinq bolus de cinq millilitres de solution saline normale à 0,9 % dans le cathéter veineux central. Enfin, notez la moyenne de deux mesures consécutives. Une fois qu’un état d’équilibre est atteint après l’instrumentation et la collecte de données de base, induire un choc hypovolémique en prélevant 30 millilitres par kilogramme de sang de la veine jugulaire pendant 30 minutes.
Prévoyez 30 minutes pour la stabilisation et ne faites aucun effort de réanimation pendant cette période pour imiter le retard dans l’arrivée des équipes médicales d’urgence. Ce modèle a montré qu’une hémorragie contrôlée produisait des changements notables dans les paramètres hémodynamiques ainsi que dans la perfusion cérébrale et tissulaire. Après le retrait du volume, une tachycardie significative et une diminution de l’indice cardiaque de la pression artérielle moyenne, de l’indice de volume d’AVC, des paramètres de volume sanguin et du débit sanguin artériel carotidien ont été observés, tandis que l’indice de résistance vasculaire systémique a augmenté.
La perfusion d’albumine et de solution saline hypertonique a produit une expansion de volume plus importante et plus longue que la solution saline normale ou hypertonique seule, avec des différences significatives dans la fréquence cardiaque, l’indice de volume d’AVC et la variation du pouls de pression. La perfusion de liquide a également montré l’absence d’une chute progressive après l’augmentation du volume de la pression artérielle et de l’indice de volume diastolique global. Les paramètres de perfusion systémique ont montré une augmentation de la concentration en lactate, tandis que la saturation veineuse centrale, l’indice d’oxygénation des tissus cutanés et cérébraux ont diminué.
L’albumine hypertonique a amélioré les paramètres de perfusion avec une augmentation du débit sanguin carotidien et de l’indice d’oxygénation des tissus cérébraux, et une diminution significative des niveaux de lactate. Maintenir une anesthésie profonde tout au long de l’expérience pour atteindre un état stable avant l’induction du choc, y compris la température corporelle et pour maintenir un rythme constant pendant le prélèvement sanguin. L’enregistrement et l’analyse plus approfondie de la micro circulation sublinguale sont très intéressants pour étudier la différence entre macro et micro circulation.
D’autre part, ce test scolaire d’évaluation de la coagulation est utile pour analyser la déficience induite par l’hémodilution après expansion volumique.
