Lo shock emorragico è la principale causa di morte nei bambini nel mondo sviluppato. Questo studio offre l'opportunità di confrontare la risposta a diverse terapie per lo shock emorragico. Si tratta di un modello semplice e altamente riproducibile che permette l'attivazione di meccanismi in risposta a gravi emorragie in un soggetto immaturo.
In questo protocollo, la traduzione dei risultati è elevata, e con l'aiuto di identificare meglio la scelta dei liquidi e del riposo per la rianimazione in termini di minori effetti avversi. Questo modello permette di studiare l'effetto di diversi fluidi di rianimazione e farmaci vasoattivi in vari sistemi come la microcircolazione, la coagulazione, l'endotelio e il glicocalice. Inizia posizionando l'animale anestetizzato su un tavolo operatorio con una coperta riscaldante.
Quindi misurare la saturazione periferica di ossigeno con un sensore agganciato all'orecchio del maiale. Avviare il monitoraggio elettrocardiografico continuo a tre derivazioni. Inserire un catetere venoso periferico nella vena dell'orecchio, disinfettando preventivamente la pelle con almeno tre cicli alternati di scrub allo iodio povidone o alla clorexidina e alcool.
Quindi, posizionare l'animale in posizione di decubito dorsale e avviare immediatamente la ventilazione della maschera della borsa con una maschera per cani. Per iniziare la procedura di intubazione endotracheale, assicurarsi che le attrezzature e gli strumenti chirurgici necessari siano sterilizzati e pronti all'uso. Estrarre leggermente la lingua e tenere la mascella aperta utilizzando una garza posizionata dietro i canini superiori e inferiori.
Inserire il laringoscopio. E una volta che l'epiglottide è visibile, premila verso l'alto verso la lingua usando la punta del laringoscopio. Una volta visualizzate le corde vocali, far avanzare delicatamente il tubo con una leggera rotazione nella trachea.
Rimuovere lo stiletto e utilizzare una siringa da cinque millilitri per gonfiare il bracciale. Per garantire il corretto posizionamento del tubo endotracheale, osservare l'aumento simmetrico del torace, un'adeguata saturazione di ossigeno tra il 95 e il 100% e una corretta forma d'onda e lettura dell'anidride carbonica di fine espirazione. Una volta confermata l'intubazione, avviare la ventilazione meccanica con una frequenza respiratoria di 20 respiri al minuto.
Volume del titolo di otto millilitri per chilogrammo, frazione di ossigeno inspirato del 40% e pressione espiratoria finale positiva di quattro centimetri di acqua. Regolare la ventilazione per ottenere una pressione parziale di anidride carbonica compresa tra 35 e 45 millimetri di mercurio. Mantenere l'anestesia profonda per tutta la durata dell'esperimento tramite infusione continua di fentanil, propofol e atracurio.
Per preparare l'area femorale al cateterismo vasale, disinfettare l'area inguinale con almeno tre cicli alternati di scrub iodato o clorexidina povidone e alcool. Successivamente, valutare i vasi femorali con l'ecografia e utilizzare la tecnica Doppler per distinguere tra l'arteria e la vena. Sotto visione ecografica continua e utilizzando la tecnica Seldinger, inserire un ago per catetere venoso centrale francese da 5,5 a 7,5 in una delle vene femorali.
Quindi perforare la vena e ottenere il sangue. Estrarre la siringa e introdurre il filo guida nell'ago. Quando il filo guida è al suo posto nella vena, rimuovere il filo guida e introdurre il catetere fino a raggiungere la vena.
Subito dopo il posizionamento del catetere, collegare il sistema di trasduttori per misurare la pressione venosa centrale. Quindi, assicurarsi che un elettrolita con una velocità di infusione di glucosio di 20 millilitri all'ora sia collegato a una delle porte della linea centrale. E poi la soluzione salina di mantenimento viene infusa attraverso la porta rimanente per prevenire l'occlusione del catetere.
Successivamente, inserire un ago per catetere arterioso 4-French nell'arteria femorale. Quindi inserire il filo guida sotto guida ecografica, quindi inserire il catetere. Una volta inserito il catetere arterioso, collegare il filo arterioso del sistema di monitoraggio della gittata cardiaca e il trasduttore arterioso direttamente alla porta del monitor.
Allo stesso tempo, collegare l'unità di misura venosa del monitor al trasduttore venoso centrale. Successivamente, disinfettare la zona del collo con almeno tre cicli alternati di scrub allo iodio o alla clorexidina di povidone e alcol. Fai un'incisione paratracheale sinistra di 10 centimetri dividendo in due una linea tra il manubrio e l'angolo della mascella.
Per esporre la vena giugulare esterna, sezionare il tessuto laterale al muscolo sternocleidomastoideo e isolare la vena dalla fascia circostante. Successivamente, utilizzare due suture di seta non assorbibili avvolte attorno alla vena per fissare il vaso prima della puntura. Incidere la vena con un ago venflon calibro 18.
Una volta all'interno della vena, ritrarre l'ago e inserire il filo guida attraverso il tubo venflon. Rimuovere il tubo venflon e inserire la guaina con l'introduttore 5-French sul filo. Una volta inserita la guaina, rimuovere sia l'introduttore che il filo.
Subito dopo l'inserimento, sciacquare le guaine con cloruro di sodio allo 0,9% per prevenire la formazione di trombi. Quindi, lega la sutura di seta prossimale attorno alla guaina per fissarla in posizione. Quindi fissare il manico della guaina al muscolo sternocleidomastoideo e chiudere la pelle con graffette.
Per ottenere i valori dell'indice cardiaco, infondere cinque boli da millilitro di soluzione fisiologica normale allo 0,9% attraverso il catetere venoso centrale. Infine, registrare la media di due misure consecutive. Una volta raggiunto lo stato stazionario dopo la strumentazione e la raccolta dei dati di base, indurre uno shock ipovolemico prelevando 30 millilitri per chilogrammo di sangue dalla vena giugulare in 30 minuti.
Attendere 30 minuti per la stabilizzazione e non fare alcun tentativo di rianimazione durante questo periodo per emulare il ritardo nell'arrivo delle squadre mediche di emergenza. Questo modello ha mostrato che un'emorragia controllata ha prodotto notevoli cambiamenti nei parametri emodinamici e nella perfusione cerebrale e tissutale. Dopo la sospensione del volume, è stata osservata una significativa tachicardia e una diminuzione dell'indice cardiaco medio della pressione arteriosa, dell'indice del volume sistolico, dei parametri del volume ematico e del flusso sanguigno arterioso carotideo, mentre l'indice di resistenza vascolare sistemica è aumentato.
L'infusione di albumina più soluzione salina ipertonica ha prodotto un'espansione del volume maggiore e più lunga rispetto alla sola soluzione salina normale o ipertonica con differenze significative nella frequenza cardiaca, nell'indice del volume sistolico e nella variazione del polso della pressione. L'infusione di liquidi ha anche mostrato l'assenza di una progressiva diminuzione dopo l'espansione del volume della pressione sanguigna e dell'indice globale del volume diastolico finale. I parametri di perfusione sistemica hanno dimostrato un aumento della concentrazione di lattato, mentre la saturazione venosa centrale, l'indice di ossigenazione dei tessuti cutanei e cerebrali sono diminuiti.
L'albumina ipertonica ha migliorato i parametri di perfusione con un aumento del flusso sanguigno carotideo e dell'indice di ossigenazione del tessuto cerebrale e una significativa diminuzione dei livelli di lattato. Mantenere l'anestesia profonda durante l'esperimento per ottenere uno stato stazionario prima dell'induzione dello shock, compresa la temperatura corporea e per mantenere un ritmo costante durante il prelievo di sangue. La registrazione e l'ulteriore analisi della microcircolazione sublinguale è molto interessante per studiare la differenza tra macro e micro circolazione.
D'altra parte, questo test scolastico per valutare la coagulazione è utile per analizzare la compromissione indotta dall'emodiluizione dopo l'espansione del volume.
