<em&gt; במבחנה</em&gt; תרדמת דגם של סרטן השד רגיש לאסטרוגן במוח העצם: כלי ללימודי מנגנון מולקולרי והשערת דור

Summary

We developed an in vitro model of dormancy in the bone marrow for estrogen-sensitive breast cancer cells. The goal of this protocol is to demonstrate use of the model for the study of the molecular and cellular biology of dormancy and for generation of hypotheses for subsequent testing in vivo.

Abstract

The study of breast cancer dormancy in the bone marrow is an exceptionally difficult undertaking due to the complexity of the interactions of dormant cells with their microenvironment, their rarity and the overwhelming excess of hematopoietic cells. Towards this end, we developed an in vitro 2D clonogenic model of dormancy of estrogen-sensitive breast cancer cells in the bone marrow. The model consists of a few key elements necessary for dormancy. These include 1) the use of estrogen sensitive breast cancer cells, which are the type likely to remain dormant for extended periods, 2) incubation of cells at clonogenic density, where the structural interaction of each cell is primarily with the substratum, 3) fibronectin, a key structural element of the marrow and 4) FGF-2, a growth factor abundantly synthesized by bone marrow stromal cells and heavily deposited in the extracellular matrix. Cells incubated with FGF-2 form dormant clones after 6 days, which consist of 12 or less cells that have a distinct flat appearance, are significantly larger and more spread out than growing cells and have large cytoplasm to nucleus ratios. In contrast, cells incubated without FGF-2 form primarily growing colonies consisting of >30 relatively small cells. Perturbations of the system with antibodies, inhibitors, peptides or nucleic acids on day 3 after incubation can significantly affect various phenotypic and molecular aspects of the dormant cells at 6 days and can be used to assess the roles of membrane-localized or intracellular molecules, factors or signaling pathways on the dormant state or survival of dormant cells. While recognizing the in vitro nature of the assay, it can function as a highly useful tool to glean significant information about the molecular mechanisms necessary for establishment and survival of dormant cells. This data can be used to generate hypotheses to be tested in vivo models.

Introduction

תאי סרטן שד גרורות למוח העצם לפני שהמחלה היא ¹ לזיהוי, ברגע שגידולים קטנים לפתח כלי דם ^2,3. התהליך גרורתי הוא מהיר אבל לא יעיל. תאים להיכנס לכלי הדם החדשים במהירות, במיליון ליום ⁴ אבל כמה לשרוד את המסע לאיברים מרוחקים ^5. עם זאת, כמה micrometastases לשרוד בעצמות ובניתן למצוא כתאים בודדים או גושי תא קטנים בaspirates מח עצם של חולים שאובחנו לאחרונה ^1. תאים אלה להתנגד כימותרפיה אדג'ובנט, המנוהלת למטרה מאוד של חיסולם ^6. התנגדות זו היא ניחן, באופן משמעותי, על ידי הישרדות איתות ביוזמת אינטראקציות עם מייקרו-סביבת מח עצם ^7,8. ניתן למצוא Micrometastases בכשליש מהנשים עם סרטן השד מקומי ומייצג מחוון עצמאי של הישרדות כאשר נותח על ידי ניתוח שונה ^9. microme חלקtastases הוא צמיחה יזם, אבל דפוסי הישנות תלויים בסוג התא. חולים עם סרטן השד שלילי משולש נוטים לחזור על עצמה בין 1 עד 4 שנים, המצביעה על שליטה על עניי המצב הרדום. סוגי תאים אחרים, כוללים ER / PR + תאים, יכולים להישאר רדומים במשך עד 20 שנים, עם קצב קבוע, מתמשך של הישנות ^10. בעוד הבדלים בחתימות ביטוי גני תרדמת בין ER + וקווי ER- שד תא וגידולים משקפים פוטנציאל תרדמת שונה ^11, אינטראקציות עם סטרומה מח עצם עשויים לייצג תרומה משמעותית לתרדמת.

המחקר של תרדמת in vivo הוא קשה במיוחד כי micrometastases הם נדירים ועלו במספרם על ידי תאי hematopoietic על ידי יותר מ 10 ⁶ -fold. לפיכך, מודלים רלוונטיים חייבים להיות שנוצרו המספקים נתונים במבחנה שיכול להציע מנגנונים וליצור השערות הניתנות לבדיקת in vivo. מספר דגמי תרדמת, כולל מתמטי עבור מערךמודלים מתמטיים ^12,13, במבחנה מודלים ^7,8,14,15, המודלים xenograft in vivo ^16, שילובים של במבחנה ומודלי xenograft ^17,18 ומודלי גידול וגרורים ספונטניים ^19, הניבו כמה תובנות תאים סרטניים תרדמת ²⁰ . בכל אחד מהמודלים האלה המגבלות שלהם והם בעצמם בעיקר שימושיים ליצירת השערות בנוגע לאיתות ואינטראקציות ששולטות תרדמת להיבדק במודלים יותר מבחינה ביולוגית מולקולריות רלוונטיים.

עם המטרה הכללית של הגדרת המנגנונים המולקולריים של תרדמת, אינטראקציות עם מייקרו-הסביבה שגורמת לעצירת מחזור, redifferentiation והתנגדות ומנגנונים טיפוליים שתגרומנה לחזרה בER + תאים, שפיתחנו מודל במבחנה שמספקת נבחר אלמנטים רלוונטיים של מייקרו-סביבת סטרומה ^7. מודל זה, תוך דליל יחסית בcomponents, הוא מספיק חזק כדי לאפשר לחוקרים להפיק מנגנונים מולקולריים ספציפיים המשפיעים על פונקציות משמעותיות של תרדמת. ניסויים אלה ליצור השערות שניתן לבדוק ישירות in vivo. המודל מסתמך על כמה אלמנטים מרכזיים שהפגנו להיות רלוונטי בתרדמת. הם כוללים את השימוש בתאי סרטן השד תלוי באסטרוגן, התרבות של תאים בצפיפות clonogenic בו האינטראקציה שלהם היא בעיקר בתשתית ורכיבים מסיסים של המדיום, תשתית פיברונקטין ואת הנוכחות של גורם גדילה פיברובלסטים בסיסי (FGF-2) בטווח הבינוני.

אנו מאופיינים מנגנונים ששולטים במערכת במבחנה, כולל האינדוקציה של עצירת מחזור התא על ידי FGF-2 ^21, בתיווך באמצעות ²² TGFβ, הישרדות איתות באמצעות PI3 קינאז ^7,8 וERK ⁸ ובידול morphogenic לפנוטיפ אפיתל, שהיה תלוי ב איון RhoA, integrin45; 5β1 upregulation וקשירה של פיברונקטין סטרומה הישרדות ^7,15 (איור 1). האפקטים במבחנה מחזור תא של FGF-2 על MCF-7 תאים מתחילים בריכוזים יומן אחד לפחות מתחת ל -10 ננוגרם / מיליליטר ^21,23. הרציונל היה מבוסס על השליטה הזמנית של FGF-2 ביטוי שלטון המורפוגנזה החלב ductal, הרחבה מחזורית ומיתון במספר מערכות יונקים ^24-27. אנחנו הוכחנו כי FGF-2 גורם בידול, כוללים המורפוגנזה ductal בתרבות 3D ^28, ושFGF-2 ביטוי, בדרך כלל, איבד עם שינוי ממאיר של גידולים אנושיים ^29. הביטוי של FGR1 נותר על כנן בקרצינומה של שד שהשתתף בסקר ²⁹ וMCF-7 תאים ממשיכים לבטא את כל 4 קולטני FGF ^30. בהקשר של תרדמת, FGF-2 מיוצאים על ידי ושהופקדו בכבדות על סטרומה מח עצם ^31,32 שבו מתפקדת בשימור תאי גזע hematopoietic ^33. אנו demonstrated שFGF-2 גורם למצב רדום בתאי ER + סרטן השד בתרבית על substrata פיברונקטין, גם בשפע במוח, שם הוא גורם לבידול morphogenic ^7. במודל, תאי סרטן השד הם גידול עכבות, להשבית Rho באמצעות גרף RhoGap, redifferentiate לפנוטיפ אפיתל מחדש מפורש lost α5β1 integrins עם התקדמות ממארת. הם נקשרים פיברונקטין דרך α5β1 integrin ולהפעיל הישרדות איתות שהופך אותם עמידים לטיפול ציטוטוקסיות ^7,8,15 (איור 1). עיכוב של GTPases כיתת Rho כבר הוכיח בעבר כדי לגרום פנוטיפ רדום ^34.

כאן אנו מתארים את הנהלים הספציפיים שיאפשר לחוקרים לקבוע את המודל ולחקור מנגנונים מולקולריים ותאיים ספציפיים המסדירים תרדמת של תאי ER + סרטן השד. בניסויים שהוצגו כאן כדי להמחיש את השימוש במודל, אנו ממוקדים מסלול PI3K (איור 1) עם מעכב Akt ומעכב PI3K וכל בני משפחת Rho (איור 1) עם מעכב פאן-רו וRho קינאז מעכב (סלע).

Protocol

1. Assay clonogenic

1. הכן השעיות תא בודדות של שורות תאי סרטן השד תלוי באסטרוגן תאי MCF-7 וT47D באמצעות הצעדים המפורטים להלן
   1. לשאוב את מדיום התרבות (DMEM / 10% חום בסרום / גלוטמין מומת עגל עוברי ועט / סטרפטוקוקוס) מצלחת תרבית רקמת 10 סנטימטרים שאינה מחוברים יותר מ- 50% עם MCF-7 או תאי T-47D. לשטוף עם PBS. דגירה עם טריפסין 0.25% / 2.21 mM EDTA מומס בגלוקוז הגבוהה DMEM על 37 מעלות צלזיוס במשך 1-4 דקות.
   2. בדקו תאים במרווחי 1 דקות תחת מיקרוסקופ לעומת שלב כדי להבטיח הפצת תא בודדת. Resuspend תאים עם טפטפת 2 מיליליטר ידי pipetting למעלה ולמטה כמה פעמים כדי לשבש קשר תאי תאים כדי להשיג מעמד תא כמעט בלתי משתנה, אחת.
   3. תמשיך לדגור תאים בטריפסין על 37 מעלות צלזיוס במשך עד 4 דק 'אם אתה רואה גושים של תאים רק לאחר 2 דקות של דגירה. אין להשתמש בתאים אלה ללימודי clonogenic אם הם יישארו חסיד לדוארבגלל שגיאה יושקו אח אחר לאחר 4 דקות של trypsinization בתשואת מספר המושבה.
      הערה: אם תאים בכבדות, מספר מושבות הוקמו ישקף את המוצר של פחות תאים מהמספר מודגרות. אם תאי trypsinized מוגזמים, פוטנציאל clonogenic עשוי להצטמצם.
   4. הכן השעיה תא בודדת של 1,500 תאים / בינוני תרבות מיליליטר במשך 24 צלחות גם, או, פחות (+ 500 מיליליטר / תאים, בהתאם לסוג התא או מספר מעבר), על ידי דילולים סדרתי בצינור ראשי אחד המכילים את כל הנפח הדרוש ל כל המשתנים בניסוי.
      הערה: המטרה היא צפיפות תא סופית של 800 תאים / ² סנטימטר (טווח של כ -500 עד 1,100 תאים / ² סנטימטר). המטרה היא להניב כ 100 + 50 מושבות, המאפשרת ספירה קלה יחסית, מונעת צפיפות ומאפשרת מושבות מספיק כדי לגרום להבדלים סטטיסטיים משמעותיים כאשר מושבות עלו או ירד בperturba הניסיונימשא.
2. תאי דגירה בצפיפות clonogenic שימוש צעדים המפורטים להלן
   1. דגירה תאים בבארות ארבע פעמים ב -24 צלחות מצופים פיברונקטין גם בצפיפות clonogenic של 1500 תאים / גם מצינור השעיה תא בודד אדון של 1,500 תאים / מיליליטר. Triturate הבינוני המכילים תאים עם טפטפת 5 מיליליטר על ידי ציור עד 3 מיליליטר וניפוק בינוני 1 מיליליטר בכל אחד מ2 בארות.
      הערה: צלחות מצופה פיברונקטין יש לרכוש מראש מצופים מספק מסחרי. צלחות ציפוי חיצוניים של איכות מבוקרת, תוצאות תהליך אוטומטיות במשטח אחיד שלא התאימו לassay זה.
   2. מערבבים את ההשעיה על ידי pipetting למעלה ולמטה עם טפטפת 5 מיליליטר, להכין 3 מיליליטר של השעיה תא ולמלא 2 בארות עם 1 מיליליטר כל אחד. מלא רק 2 בארות בכל זמן מפיפטה אחד. להחזיר את הנפח שנותר בפיפטה ההשעיה התא בצינור הראשי, תאים גלולים שוב על ידי pipetting למעלה ולמטה ולהכין עוד 3 מיליליטר כדי למלא עוד 2 welLS עם 1 מיליליטר כל אחד.
      הערה: ערבוב רציף של הצינור הראשי הוא הכרחית, כי תאים יהיו ברציפות משקעים. הכנת נפח מספיק כדי למלא רק 2 בארות יש צורך להוסיף מספרים סלולריים דומים זה לזה היטב, כי תאים משקעים, כמו גם בפיפטה.
   3. לעבוד במהירות כדי להפיץ כמויות הגדולות של תאים כי תאים המאפשרים לשבת בהשעיה בטמפרטורת חדר וריכוז CO ₂ יהיה לווסת (התצפיות לא פורסמו) פוטנציאל clonogenic.
   4. לייעל את הפריסה המרחבית של תאים במהלך הפעולה של pipetting אותם לבארות למבחני מושבה. לעשות זאת על ידי pipetting ההשעיה המכילה ריכוז התא הסופי לאמצע גם לאט. אל תחשוף את הצלחת כדי לקדם את התנועה לפני תאים ליישב לתחתית. לא לערבל את הצלחת כי ערבוב החוזר ביעילות צנטריפוגה התאים להיקף של צפיפויות גבוהות תא גם יצירת ומושבות ומחוברות לאינספור בשעה 6 ימים.
      הערה: אין לערבב אלא אם יש צורך, מאחר שזו פחות רצויה מאשר ללא ערבוב בכל לאחר החדרת הנפח עם התאים בתרחיף. אם יש צורך לערבב תאים, עושה זאת על ידי העברת הצלחת קדימה ואחורה בכיוונים ניצבת בזמן שהוא נח על משטח שטוח.
   5. דגירה תאים על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO ₂ ללא שינוי תקשורת במשך 6 ימים. המספר הקטן של תאים ובלאחר 6 ימים לא ישפיע באופן משמעותי את ההרכב התזונתי או ציטוקינים ולא את ה- pH של המדיום המקורי.
   6. לעצב את הקורס של assay הזמן כדלקמן: דגירה תאים בsubstrata פיברונקטין מצופה ביום 1. החלפה הקיימת בינוני עם 1 מיליליטר בינוני טרי או בינוני טרי המכיל FGF-2 10 / מיליליטר ng ביום 0. תאי כתם ביום 6 להלן ב1.4). לנהל כל הפרעות ניסיוניות ביום 3, כלהלן 1.3).
3. הפרעות ניסויי הגדרה מולקולרית איתות או הדבקה מולקולות
   1. ביום 3, להוסיף 10056; L של תמיסה המכילה 10x של הריכוז המיועד הסופי של הסוכן המדאיג למדיום מיליליטר 1 בבארות. אל תערבב. המשך דגירה התאים על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO ₂ ל3 ימים נוספים.
      הערה: מביך סוכנים יכול לכלול מגוון של מעכבים וסוכני חסימה של מולקולות דבקות, קולטנים או חלבוני משטח אחרים, מעכבים של מסלולי איתות תאיים, מולקולות, גורמים, קו-פקטורים או חלבונים מבניים, שעשויה לשחק תפקיד בתמיכה במצב הרדום.
   2. מושבות כתם על יום 6, כדלקמן.
4. מושבות כתם
   1. תאי כתם לאחר 6 ימים בתרבות עם 0.1% סגולים קריסטל טרי ב 2% אתנול / 10 borate נתרן מ"מ (pH 9.0) פתרון. תקשורת לשאוב ולהוסיף פתרון סגול גביש מיליליטר לכל אחד גם עבור 20 דקות.
   2. לשטוף צלחות ידי שיקוע שלהם עם הפתחים גם כלפי מטה בזווית חדה לדלי קרח עולה על גדותיו עם ברז פועל ברציפותמים בכיור. הטה את הצלחת לזווית אופקית פעם מתחת למים, גם פתיחה מטה, ולאחר מכן להטות חזרה לזווית חדה בעת הסרת בתנועה זורמת עדינה אחד.
   3. חזור על הטבילה 2 או 3 פעמים עד שהמים בחלק התחתון של הבארות הוא כבר לא כחולים. שוטף נמרץ עשוי להסיר תאים או מושבות כי הם פחות חסיד בשל התערבות ניסיונית, והוסיף באופן משמעותי לשגיאה בספירה ונתונים.
   4. צלחות יבשים לילה על ידי הצבת אותם במהופך על מגבות על גבי הספסל הסמוך לכיסויי שהכותרת המתאימים שלהם.
5. ספירת מושבות
   1. לספור את מספר המושבות גדלו ורדומות בכל הטוב אחרי 6 ימים של דגירה, צביעה וייבוש. ספירת מושבות בצורה אופטימלית ב40X ההגדלה במיקרוסקופ לעומת שלב הפוך. ספירת מושבות של> 30 תאים כגדלו ומושבות של 12 או פחות תאים, עם המראה המורפולוגי של גודל גדול מאוד בהשוואה לexpa גדל תאים, גדולציטופלסמה nded עם ציטופלסמה הגדולה לגרעין יחסים, שמוצגים באיור 1 ^7,15.
      הערה: אשכולות של 13-29 תאים בדרך כלל לא נספרו כמו שהם לא מאוד תכופים במבחני תרדמת פשוטים. הם ניתן לספור אם הפרעות להעביר את פוטנציאל הצמיחה של שני תאי גידול או רדומים. אז תוצאות אלו צריכה להיות מתואמות עם משמעות ביולוגית.

2. clonogenic דגירה לImmunofluorescence לימודים

1. התאם מספרים סלולריים לכ 7,500-8,000 תאים / גם ב 6 צלחות גם, למתאימים לתא מספרים / שטח דומה לניסויים גם 24.
2. הנח עגול,, להחליק לכסות מצופה פיברונקטין סטרילי לכל בסיס גם של 6 צלחות גם למחקרי הדמיה לפני בנוסף תא. תאי Pipet ב 3 מיליליטר כרכים לתוך זה גם 2 בארות בכל פעם בריכוזים התוו, כפי שתואר עבור ניסויי clonogenic לעיל ב1.2).
3. דגירה תאיםבמשך 6 ימים, כאמור לעיל וב1.2.4 1.2.5. להוסיף גורמים מדאיגים ביום 3 ב10x ריכוזים בכרכי μl 300, כפי שמתואר בנהלי assay המושבה ב1.3).
4. תאי כתם על יום 6 עם נוגדנים לתא מולקולות הדבקה כגון α4 integrins, α5, α6, β1, β3, למשל, מולקולות מורכבות הידבקות מוקד FAK, paxillin וvinculin, למשל, חלבונים מעורבים בתנועתיות כגון α-טובולין, לדוגמא, חברי מסלול איתות כגון phospho-AKT, phospho-ERK, phospho-p38, phospho-JNK, למשל, או כל חלבון אחר שהוא היעד של חקירה לתפקידה בתרדמת, תוך שימוש בטכניקות סטנדרטית עבור ישיר או עקיף מכתים immunofluorescence.
   1. הסר שקופיות עם יום מלקחיים 6. תיקון באצטון / מתנול 1: 1 ב -20 ° C במשך 20 דקות ואוויר יבש. מקבע חלופי, כגון paraformaldehyde, ניתן להשתמש, במידת צורך. תאי Permeabilize עם 0.1% X-100, נתרן ציטרט 0.1% טריטון לו 2 דקותאו זיהוי של אנטיגנים תאיים. לשטוף את התאים עם PBS.
   2. עבור מכתים immunofluorecence עקיף, שקופיות בלוק עבור שעה 1 בטמפרטורת חדר עם BSA 5% או 10% בסרום preimmune מהמינים שבנוגדנים משני נוצרו.
   3. דגירה הלילה ב 4 ° C עם נוגדנים ראשוניים לתא מולקולות הדבקה, מולקולות מורכבות מוקדי, איתות חברי מסלול או כל חלבון אחר שהוא היעד של חקירה לתפקידה בתרדמת בדילול לדילולים ספציפיים מומלצים על ידי היצרן בPBS 0.1% Triton X -100.
   4. לשטוף 3 פעמים עם PBS. דגירה התלושים לכסות עם נוגדני fluorophor מצומדות- בטמפרטורת חדר למשך שעה 2. כדוגמא, אלקסה פלואוריד 488 אנטי עכבר IgG נוגדנים חמורים יכולים לשמש כדי לזהות נוגדנים חד שבטיים עיקריים עכברי. הר coverslips צד תא על שקופיות זכוכית באמצעות סוכן antifade עם DAPI. חותם את היקפה עם לק.
   5. לimmunofluorescence הישיר, לבצע את BSAחסימה כאמור ב2.4.2), דגירה עם נוגדן ראשוני fluorophor מצומדות- הלילה ב 4 מעלות צלזיוס. לשטוף 3 פעמים עם PBS. דגירה השקופיות עם סוכן antifade וDAPI וחותם עם לק.
   6. מגשי שקופיות מכסים ברדיד האלומיניום ולאחסן ב 4 ° C להדמיה וצילום בכל עת עד כמה שבועות לאחר מכן. תאי צפייה וצילום באמצעות כל מערכות הדמיה מיקרוסקופיות הקרינה מצוידת במצלמה ב1,000x הגדלה.
   7. עבור מכתים אקטין סיבי, שקופיות בלוק ב 1% אלבומין בסרום שור (BSA) למשך 30 דקות ודגירה בBODIPY FL-Phallacidin (ירוק) או phalloidin Rhodamine (אדום) בטמפרטורת חדר למשך 20 דקות. הוסף סוכן antifade ולאטום כאמור לעיל.

3. clonogenic דגירה למחקרים מולקולריים

1. כתמים מערביים
   1. דגירה ER + תאי סרטן שד MCF-7 או T47D בצפיפויות clonogenic של / 100 מ"מ צלחת 20,000 תאים / 60 צלחת מ"מ ו50,000 תאים בfibronecצלחות על 37 מעלות צלזיוס ב 5% CO ₂ מצופי פח.
   2. דגירה תאים בצפיפויות גבוהות מעט יותר של 75,000 תאים / 100 מ"מ צלחת למחקרים מולקולריים הדורשים כמויות מ"ג לחלבון מlysates. השתמש עד עשר צלחות לכל נקודה ניסיונית כדי לאסוף מספיק חלבון ללימודים מולקולריים באמצעות כתמים מערביים או לבידוד RNA לכתמי צפון.
   3. טעינת ג'ל על בסיס מספר התא היא תוספת הכרחית להשוואת ביטוי חלבון בתאי גידול ורדום בגדלים שונים בהרבה. איסוף תאים על ידי trypsinizing ולספור aliquot בhemocytometer ב0.2% trypan הכחול להכנת lysates לכתמים מערביים במקום מגרד את התאים עם להב קצה אחד.
   4. תאי צנטריפוגה ב 10,000 XG למשך 2 דקות, להסיר את התקשורת על ידי שאיפה, להוסיף 200 חיץ תמוגה μl, sonicate התאים במאגר תמוגה ולקבוע את ריכוז החלבון.
   5. לחשב את כמות חלבון לכל תא על ידי חלוקת תשואת החלבון במספר התאיםשנוצר סכום זה. טען את lysate לבאר כל ג'ל polyacrylamide הנפרד שמייצג שני) כמויות שווה של חלבון וב) כמויות חלבון המייצגות מספרים סלולריים שווי ערך. לפחות 25 מיקרוגרם חלבון צריך להיות טעון לתוך כל אחד.
      הערה: זה יאפשר השוואות בין תאי גידול והרדומים, שהם שונים באופן משמעותי בגודל ותכולת חלבון (איור 1).
2. Cytometry הזרימה
   1. איסוף תאים מצלחות 100 מ"מ על ידי trypsinization, כמו ב3.1 ולנתח על ידי תא הקרינה סטנדרטי הופעל מיון פרוטוקולים (FACS) באמצעות מכתים immunofluorescence ראשוני או המשני לשני אנטיגנים תאיים או תאיים, כפי שתואר ב2.4.
      הערה: ניתוק תאים מצלחות תרבית רקמה על ידי trypsinization אינו משפיע על הריכוז של חלבונים בממברנה, כפי שנקבע על ידי תיוג נוגדן.

תוצאות

ניסויים שנערכו כדי לשחזר את assay. במהלך הניסוי הזמן מוצג באיור 2 א. תאים טופחו על צפיפות clonogenic ביום -1, FGF-2 במדיום חדש מתווסף ביום 0 ותאים בתרבית עד שהיום 6 כאשר הם מוכתמים ומושבות נספרות. כל הפרעות למערכת מנוהלות ביום 3 ב100 כרכי μl ב10x ריכוזים סופיים רצוי. אי?...

Discussion

המודל שלנו מורכב ממספר אלמנטים המרכזיים של תרדמת במח העצם. זה מורכב של אסטרוגן תאים רגישים, שהם הסוג צפוי להישאר רדום במוח לפרקי זמן ממושך ^10, זה מורכב של פיברונקטין, אלמנט מבני עיקרי של מוח, FGF-2, גורם גדילה מסונתז בשפע על ידי סטרומה מח העצם והופקד בכבדות במטריקס ש?...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
MCF-7 cells	ATCC	HTB-22
T47D cells	ATCC	HTB-123
BD BioCoat Fibronectin 24 Well Clear Flat Bottom TC-Treated Multiwell Plate	Corning	354411
BD BioCoat Fibronectin 60 mm Culture Dishes	Corning	354403
BD BioCoat Fibronectin 100 mm Culture Dishes	Corning	354451
BD BioCoat 22x22mm #1 Glass Coverslip with a uniform application of human fibronectin	Corning	354088
6 Well tissue culture plate	CellTreat	229106
Dulbecco Modified Eagle Medium High Glucose 10X Powder	Corning Life Sciences	50-013-PB
Heat Inactivated, Fetal Bovine Serum	Serum Source International	FB02-500HI
0.25% Trypsin/2.21 mM EDTA	Corning	25-053-CI
Penicillin-Streptomycin Solution, 100X	Corning	30-002-CI
L-Glutamine, 100x, Liquid	Corning	25-005-CI
Recombinant Human FGF basic	R&D Systems	234-FSE-025
Akt Inhibitor (1L6-Hydroxymethyl-chiro-inositol-2-(R)-2-O-methyl-3-O-octadecyl-sn-glycerocarbonate)	CalBiochem	124005
LY294002	CalBiochem	19-142	Chenical PI3K inhibitor
C3 transferase	Cytoskeleton	CTO3	Inhibits RhoA, RhoB, and RhoC, but not related GTPases such as Cdc42 or Rac1
Y-27632 dihydrochloride	Santa Cruz Biotechnology	129830-28-2
BODIPY FL-Phallacidin (green)	Molecular Probes	B607	Fluorochrome for fibrillar actin staining
BODIPY FL-Rhodamine phalloidin (red)	Molecular Probes	R415	Fluorochrome for fibrillar actin staining
Alexa Fluor 488 Donkey anti-Mouse IgG Antibody, ReadyProbes Reagent	Molecular Probes	R37114
ProLong Gold Antifade Mountant with DAPI	Molecular Probes	P-36931