Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

C. elegans is an attractive model organism to study signal transduction pathways involved in oxidative stress resistance. Here we provide a protocol to measure oxidative stress resistance of C. elegans animals in liquid phase, using several oxidizing agents in 96 well plates.

Abstract

סטרס חמצונים, אשר הוא התוצאה של חוסר איזון בין ייצור וסילוק רעלים של מיני חמצן מגיבים, הוא תורם עיקרי להפרעות אנושיות כרוניות, כוללים לב וכלי דם ומחלות ניווניות, סוכרת, הזדקנות וסרטן. לכן, חשוב ללמוד סטרס חמצונים לא רק במערכות תא אלא גם באמצעות כל האורגניזמים. ג elegans הוא אורגניזם מודל אטרקטיבי ללמוד את הגנטיקה של מסלולי חמצוני אות מתח התמרה, אשר השמורים ביותר מבחינה אבולוציונית.

כאן, אנו מספקים פרוטוקול למדידת התנגדות סטרס חמצונים בג elegans בנוזל. ריאגנטים לזמן קצר, ROS-התרמה כגון paraquat (PQ) ו- H 2 O 2 מומסים במאגר M9, ופתרונות aliquoted בבארות של צלחת microtiter 96 גם. L4 המסונכרן / מבוגרים צעירים ג בעלי החיים elegans מועברים לבארות (5-8 בעלי חיים / טוב) והישרדות נמדדתבכל שעה עד שרוב התולעים מתים. בעת ביצוע assay התנגדות סטרס חמצונים באמצעות ריכוז נמוך של לחץ בצלחות, הזדקנות עשויה להשפיע על התנהגותם של בעלי חיים על סטרס חמצונים, אשר עלול להוביל לפרשנות שגויה של הנתונים. עם זאת, בassay תאר במסמך זה, בעיה זה לא סביר שיתרחש שכן רק בעלי חיים מבוגרים צעירים L4 / נמצאים בשימוש. יתר על כן, פרוטוקול זה הוא זול ותוצאות מתקבלות ביום אחד, אשר הופך את הטכניקה הזאת אטרקטיבית למסכים גנטיים. בסך הכל, זה יעזור להבין מסלולי העברת אותות עקה חמצונית, שיכול להיות מתורגם לאפיון טוב יותר של הפרעות אנושיות הקשורים סטרס חמצונים.

Introduction

באאוקריוטים, זרחון חמצוני מתרחשים בשרשרת הובלת אלקטרונים של המיטוכונדריה הוא הנהג העיקרי של ייצור אנרגיה בצורה של ה- ATP. מיני חמצן מגיבים (ROS) הם תוצר לוואי טבעי של תהליך זה. למרות תפקידם החשוב כמולקולות איתות, ROS מוגזם יכול לגרום לנזק לדנ"א, carbonylation חלבון, וחמצון שומנים בדם. חוסר איזון בין ייצור וסילוק הרעלים ROS גורם ללחץ חמצוני, מה שמוביל לדלדול אנרגיה, נזק לתאים, וגורם לתא מוות 1,2. סטרס חמצונים תורמים להזדקנות וההתפתחות של מחלות מסכנות חיים רבות, כולל סרטן, סוכרת, לב וכלי דם ומחלות ניווניות 3-9.

תאים התפתחו אסטרטגיות הגנה האנזימטית ואינם אנזימטית כדי לשמור על רמות ROS נכונים ולהגן על בוחריהם מפני נזק חמצוני 1,2. סופראוקסיד דיסמוטאז אנזימים (SOD) לפעול ראשון לconveסופראוקסיד RT לH 2 O 2, אשר מאוחר יותר הופך למים על ידי catalase או אנזימי peroxidase. אסטרטגיות הגנה האנזימטית ללא כוללות בעיקר מולקולות המגיבות מהר יותר עם ROS בהשוואה למקרו-מולקולות תאיות, הגנה על מרכיבים תאיים חיוניים. למרות התפקיד המגן של ROS הטיהור אנזימים, כמה מולקולות ROS לברוח מנגנוני הגנה נוגדי חמצון ולגרום לנזק חמצוני. איתור, תיקון, והשפלה של המרכיבים התאיים הפגומים אסטרטגיות הגנה חיוניות בסטרס החמצונים 1,2.

מסלולי איתות מעורבים בהתנגדות ללחץ ומתח במיוחד חמצוני הם מאוד שמורים באבולוציה 10,11. בניגוד לניסויי תא תרבות שבה תנאי האורגניזם הם בתמונות באופן חלקי בלבד, המחקר של סטרס חמצונים באורגניזמים מודל 12,13 יש משמעות רבה. ג elegans הוא נמטודות חיים חופשיים שיכול להיות בקלות ובזול רחוב ללאשניחן בדשא חיידקים על תקשורת אגר. הוא קטן בגודלם (כ 1 מ"מ אורך) ובדרך כלל גדל כאנדרוגינוס דישון עצמי, המאפשר מניפולציות גנטיות. יש לה מחזור חיים מהיר ויכולת רבייה גבוהה, הפקה כ -300 צאצאים לדור, מה שהופך אותו לכלי רב עוצמה כדי לבצע מסכי גנטיים בקנה מידה גדולה 14. ג הגנום elegans הוא רצף באופן מלא ו40-50% מהגנים הם חזו להיות homologues של גנים הקשורים למחלות אנושיים 15-18. מציאה של גנים של עניין באמצעות RNAi היא מהירה וקל בג elegans. ג'ין את הרגולציה יכול להיות מושגת על ידי האכלת בעלי החיים א חיידקי coli כי נמל פלסמיד המבטא את RNA פעמיים תקועים שמכוון את ה- mRNA של עניין 19. לכן, קביעת תפקוד גן באמצעות מסכי RNAi בקנה מידה גדולה יש השפעה רבה על הבנת מחלות בבני אדם, כולל סרטן 20,21.

מחקרים של oהתנגדות מתח xidative בג elegans הוביל לזיהוי של מנגנוני שימור של התנגדות ללחץ חמצוני 13,22. כמה מסלולים המזוהים הם מסלולים נפוצים שלווסת אריכות ימים והתנגדות ללחצים אחרים, כמו גם כמו היפוקסיה, חום, ולחץ האוסמוטי. מסלולים אלה כוללים את איתות האינסולין, איתות TOR, וautophagy. מסלולים מרכזיים אחרים כרוכים סילוק רעלים של ROS כגון אנזימי סופראוקסיד דיסמוטאז ואנזימי catalase, או בתיקון נזק כגון חלבוני הלם חום ומלווה 11,13,22.

פרוטוקול זה מתאר כיצד לקבוע את ההתנגדות ללחץ חמצוני של ג elegans בנוזל. השתמשנו flcn-1 (ok975) וחיות בר-סוג להפגין הפרוטוקול מאז שהראינו בעבר התנגדות מוגברת ללחץ חמצוני על אובדן flcn-1 (ok975) בג elegans 23. יש לנו גם הראה כי התנגדות מוגברת זה תלויהעל AMPK וautophagy, ציר איתות שמשפר bioenergetics הסלולרי ומקדם התנגדות מתח 23. PQ הוא לחץ חמצוני שמפריע לשרשרת הובלת אלקטרונים כדי לייצר מיני חמצן מגיב 24. אותו assay יכול להיות מותאם ומקורות ROS אחרים או תרכובות יצירת ROS יכולים לשמש כגון H 2 O 2 וrotenone. מבחני דומים פותחו על צלחות שבו ריכוזים נמוכים של PQ משמשים 25,26. היתרון של assay זה הוא שזה מאוד מהר, ויכול להיות שהושגו התוצאות ביום אחד. בנוסף, ההיקף הכולל של נוזל המשמש לביצוע assay התנגדות סטרס החמצונים ב 96 צלחות גם הוא נמוך בהשוואה לנפח המשמש להכנת לוחות PQ המכיל. לפיכך, הסכום של PQ משמש הוא בassay הנוזלי הוא נמוך, שהופך את assay זול ומגביל את הייצור של פסולת רעילה. עם זאת, מגבלות של assay זה בהשוואה למבחני צלחת כוללות להck של מזון בassay הנוזלי והריכוז הנמוך של חמצן בנוזל בהשוואה לאוויר. אלה הם גורמים חשובים שבמקרים מסוימים, עלול להשפיע על התוצאות. לכן, המאשר שחזור תוך שימוש בשיטות אחרות של התנגדות ללחץ חמצוני מומלץ לתמוך תוצאות שהתקבלו בassay זה.

Protocol

1. הכנת ריאגנטים

  1. הכנת מדיה לג צמיחת elegans (במקרה זה, חיות בר-סוג ובעלי חיים flcn-1 (ok975) מוטציה).
    1. כן השתנה Bacto-peptone בלבד (MYOB) התערובת היבשה של Youngren המכילה 5.5 גרם של טריס HCl, 2.4 גרם של בסיס טריס, 31 גרם של Bactopetone, 20 גרם של NaCl ו0.08 גרם של כולסטרול. מערבבים היטב עם רעד.
      הערה: תערובת זו מספיקה כדי להכין 10 ליטר של מדיום MYOB.
      הערה: ניתן להשתמש בצלחות רגילה מדיום גידול (NGM) במקום צלחות MYOB 27. עם זאת, אותו הסוג של צלחות יש להשתמש להשוואות תקפות בין זנים ובין חזרות עצמאיות. בפרוטוקול זה, השתמשנו רק צלחות MYOB.
    2. הכן 1 ליטר של מדיום MYOB ידי הוספת 6 גרם של תערובת יבשה MYOB, 17 גרם של אגר ולעשות עד 1 ליטר עם H 2 O וחיטוי במשך 45 דקות ב 122 מעלות צלזיוס. יוצקים צלחות ולתת יבשים ב RT עבור 2 ימים.
    3. באמצעות טכניקה סטרילית, לחסן של cultu 100 מיליליטרמחדש של מדיום מרק LB עם E. חיידקים וcoli OP50 לגדול O / N על 37 מעלות צלזיוס.
    4. צלחות MYOB הזרע עם א חיידקי coli OP50. מאפשר לו לגדול ב RT במשך 48 שעות.
  2. הכנה לdownregulation גן באמצעות RNAi
    1. הכן צלחות RNAi האכלת MYOB. המשך כמו בשלבים 1.1.1 ו1.1.2. לאחר מעוקר, תאפשר הבינוני להתקרר לכ -55 מעלות צלזיוס ולהוסיף 1 מיליליטר של 1 β-D-1-thiogalactopyranoside M איזופרופיל (IPTG) ו 1 מיליליטר של 100 מ"מ אמפיצילין.
    2. פס ה coli HT115 חיידקים הפכו עם פלסמיד, שמבטא גם EV שליטה או RNAi flcn-1 ספציפי על אמפיצילין (50 מיקרוגרם / מיליליטר) / tetracyclin (15 מיקרוגרם / מיליליטר) אגר צלחות. לגדול תרבות O / N על 37 מעלות צלזיוס.
    3. פיק מושבות ולחסן E. coli HT115 חיידקים הפכו עם פלסמיד המבטא גם EV השליטה או flcn-1 RNAi הספציפי ולגדול תרבות במדיום LB / אמפיצילין (50 מיקרוגרם / מיליליטר) וO / N ב 37 & #176; C.
    4. צלחות זרע עם א coli HT115 EV חיידקים או חיידקי RNAi HT115 flcn-1.
      הערה: שמור צלחות 48 שעות בRT לפני השימוש. אם RNAi מציאה על ידי האכלה היא בתוקף, להשתמש בשיטות אחרות של משלוח של DS-רנ"א 28.
  3. גרימת סטרס חמצונים באמצעות paraquat (PQ):
    1. הכן חיץ M9 ידי ערבוב 3 גרם של KH 2 PO 4, 6 גרם של Na 2 HPO 4, 5 גרם של NaCl ו0.25 גרם של MgSO 4 · 7 H 2 O. להביא עד 1 ליטר עם מים מזוקקים. פתרון החיטוי במשך 45 דקות ב 122 מעלות צלזיוס בקבוקים ולאחסן ב RT.
    2. ביום של assay, להכין את פתרון M9 / PQ המכיל. לפרוטוקול זה, השתמש 100 מ"מ PQ (.1028 גרם של PQ המומס ב 4 מיליליטר של חיץ M9 ממלא צלחות גם כל 96 עם 40 μl של M9 / PQ בכל טוב).
      זהירות: PQ הוא תרכובת מסוכנת ורעילה ביותר. ידית על פי הנחיות מתאימות.
      הערה: בעת הפעלה של חדש הראשונהרכבת או מצב חדש, מומלץ assay הישרדות בהגדלת ריכוזים של PQ כדי לקבוע את הריכוז הטוב ביותר להשתמש כדי להרוג חיות בתוך 7-10 שעות.

2. הכנת אוכלוסיית L4 מסונכרנת-גיל

  1. העברה 20 הרמפרודיטים מבוגרים הרה להולדת לצלחת MYOB טרי זורעים עם E. חיידקי coli OP50. הכן כמה צלחות המבוססות על המספר של תולעי צורך במהלך assay.
  2. לאפשר להם להטיל ביצים במשך שעה 6 ולאחר מכן באמצעות תולעת חוט פלטינה לאסוף להסיר את האמהות. בדוק את הצלחות תחת מיקרוסקופ כדי להעריך את מספר הביצים שהוטלו.
  3. לאפשר הביצים לבקוע ולגדול ב 20 מעלות צלזיוס במשך 48 שעות. בשלב זה, בעלי החיים נמצאים ב/ שלב בוגר מאוחר L4 צעיר. פיק אותו שלב חיות ולהעביר לבארות המכיל פתרון PQ.
    הערה: מאחר 48 הדגירה שעה חלה רק על מוטציות שגדלות באופן דומה לחיות בר-סוג, חשוב לפקח התפתחותיתשיעור מוטציות שנבדקו חדש כדי להבטיח שהיא עומדת בקצב הפיתוח בר-הסוג, אחרת, יש להשתמש בצירה זמן אחר.
  4. לחלופין, להשתמש בטכניקות סנכרון. צור אוכלוסייה מסונכרנת של תולעי זחלי L1 באמצעות פתרון hypochlorite (25 מיליליטר מים, 125 מיליליטר של 5.25% נתרן היפוכלוריט, 50 מיליליטר של 4 M NaOH; לעטוף בקבוק בנייר אלומיניום כדי לבודד מהאור). עם זאת, עבור assay זה, זה אינו מומלץ, שכן הלבנה אינטנסיבית עשויה להשפיע על התנהגותם של בעלי החיים במהלך assay.
    זהירות: טפל בפתרון hypochlorite על פי הנחיות.
    הערה: בעת שימוש RNAi להסדיר את הגן של עניין, לסנכרן את הרמפרודיטים כפי שתואר בסעיף 2, למעט העברת האמהות לצלחות RNAi זרע עם חיידקי RNAi הספציפיים. כאשר מציאה עם RNAi היא חלשה, האכלה למספר דורות מומלצת.

3. ביצוע סטרס חמצוני ההתנגדות Assay

  1. פיפטה 40 μl של פתרון 100 מ"מ PQ (מוכנים טרי) לכל גם צלחת 96 היטב. השתמש לפחות 12 בארות כמשכפל של כל תנאי (טיפול, מוטציה, וכו '). באמצעות איסוף תולעת חוט פלטינה, להעביר 5-8 חיות זחלי L4 לכל המציינים את שעת ההתחלה ושעת הסיום היטב.
  2. כאשר מתחיל מצב אחר, שים לב לשעת ההתחלה ושעת הסיום. מניחים את הצלחת על 20 מעלות צלזיוס בזמן הדגירה בין העברת התולעים ובקיע חיות מתות כעבור שעה מרגע ההתחלה.
  3. באמצעות מיקרוסקופ לנתח, לספור הישרדות כל שעה. נער בעדינות את הצלחת לפני שמתחיל לספור. מצביע תולעים שלא זזו, אפילו אחרי שהבחין באור בעוצמה גבוהה, כמו חיות מתות. כמו כן לציין את מספר בעלי החיים בחיים.
    הערה: כאשר מסתכלים על צורת תולעת, זנבות ותנועת הראש בהגדלה גבוהה, לעזור לקבוע תולעים מתים מחיים.
  4. חזור על פעולה זו בכל שעה עד שרוב התולעים מתים.
4. קביעת אחוז הישרדות בכל זמן נקודה

  1. לחשב את המספר הכולל של בעלי חיים לכל מצב על ידי הוספת המספר הכולל של בעלי חיים הועברו לכל גם. להתעלם מבעלי החיים שנפגעו או נהרגו על העברה.
  2. עבור כל נקודת זמן, לחשב את המספר הכולל של חיות מתות לכל מצב (סכום של חיות מתות בבארות 12). עבור כל נקודת זמן, לחשב את האחוז של מוות (מספר חיות מתות מחולקות במספר כולל של בעלי חיים וכפולים 100) ואחוז ההישרדות (100 מינוס מות אחוזים).
  3. חזור assay זה לפחות 3 פעמים עצמאיות.

תוצאות

השוואת wild-type ג elegans לflcn-1 (ok975) בעלי חיים מוטציה

כאן אנו משמשים 100 מ"מ PQ כדי לקבוע את ההתנגדות של ג wild-type elegans בעלי חיים בהשוואה לflcn-1 (ok975) אשר הוכח להתנגד סטרס חמצונים, חום, ואנוקסיה 23. לאחר 4 שעות של טיפול, 48.3% ...

Discussion

סי אלגנס הוא אורגניזם מודל אטרקטיבי ללמוד התנגדות מתח גנטי חמצוני in vivo שכן הוא יכול להיות בקלות בתרבית, ומהירות מוביל למספר רב של צאצאים זהים גנטי. מספר שיטות למדידת התנגדות סטרס חמצונים תוארו בעבר והם מבוססים על התוספים של צלחות תרבות עם מקורות ROS שונים כגו...

Disclosures

The authors declare that they have no competing financial interests.

Acknowledgements

אנו מכירים את מרכז Caenorhabditis הגנטיקה לג זני elegans. תמיכת מימון ניתן על ידי טרי פוקס מכון המחקר. אנחנו גם מכירים תמיכה שניתנה לEP מRolande ומרסל גוסלין בוגר Studentship ומענק אימון CIHR / FRSQ בFRN53888 חקר הסרטן של חקר סרטן תכנית הכשרת מקגיל המשולבת.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Agar bacteriological gradeMulticell800-010-LG
Bacteriological peptoneOxoidLP0037
Sodium chloride biotechnology gradeBioshop7647-14-5
CholesterolSigmaC8503-25G
UltraPure tris hydrochlorideInvitrogen15506-017
Tris aminomethaneBio Basic Canada Inc77-86-1
IPTGSanta Cruz Biotechnologysc-202185A
AmpicillinBioshop69-52-3
Yeast extractBio Basic Inc.8013-01-2
Methyl viologen dichloride hydrateAldrich chemistry856177-1G
Petri dish 60x15mmFisherFB0875713A
Pipet 10mlFisher1367520
Potassium phosphate monobasicG-BiosciencesRC-084
Magnesium sulfate heptahydrateSigmaM-5921
Sodium phosphate dibasicBioshop7558-79-4
Discovery v8 stereo zeiss microscope
96 well clear microtiter plate
flcn-1 RNAi sourceAhringer Library

References

  1. Schieber, M., Chandel, N. S. ROS function in redox signaling and oxidative stress. Curr Biol. 24, R453-R462 (2014).
  2. Alfadda, A. A., Sallam, R. M. Reactive oxygen species in health and disease. J Biomed Biotechnol. 2012, 936486 (2012).
  3. Finkel, T., Holbrook, N. J. Oxidants, oxidative stress and the biology of ageing. Nature. 408, 239-247 (2000).
  4. Di Carlo, M., Giacomazza, D., Picone, P., Nuzzo, D., San Biagio, P. L. Are oxidative stress and mitochondrial dysfunction the key players in the neurodegenerative diseases. Free Radic Res. 46, 1327-1338 (2012).
  5. Gandhi, S., Abramov, A. Y. Mechanism of oxidative stress in neurodegeneration. Oxid Med Cell Longev. 2012, 428010 (2012).
  6. Trushina, E., McMurray, C. T. Oxidative stress and mitochondrial dysfunction in neurodegenerative diseases. Neuroscience. 145, 1233-1248 (2007).
  7. Touyz, R. M., Briones, A. M. Reactive oxygen species and vascular biology: implications in human hypertension. Hypertens Res. 34, 5-14 (2011).
  8. Gorrini, C., Harris, I. S., Mak, T. W. Modulation of oxidative stress as an anticancer strategy. Nat Rev Drug Discov. 12, 931-947 (2013).
  9. Sosa, V., et al. Oxidative stress and cancer: an overview. Ageing research reviews. 12, 376-390 (2013).
  10. Van Raamsdonk, J. M., Hekimi, S. Reactive Oxygen Species and Aging in Caenorhabditis elegans: Causal or Casual Relationship. Antioxid Redox Signal. 13, 1911-1953 (2010).
  11. Baumeister, R., Schaffitzel, E., Hertweck, M. Endocrine signaling in Caenorhabditis elegans controls stress response and longevity. J Endocrinol. 190, 191-202 (2006).
  12. Markaki, M., Tavernarakis, N. Modeling human diseases in Caenorhabditis elegans. Biotechnol J. 5, 1261-1276 (2010).
  13. Rodriguez, M., Snoek, L. B., De Bono, M., Kammenga, J. E. Worms under stress: C. elegans stress response and its relevance to complex human disease and aging. Trends Genet. 29, 367-374 (2013).
  14. Hope, I. A. . Practical approach series. , 282 (1999).
  15. C. elegans Sequencing Consortium. Genome sequence of the nematode C. elegans: a platform for investigating biology. Science. 282, 2012-2018 (1998).
  16. Ahringer, J. Turn to the worm!. Current opinion in genetics & development. 7, 410-415 (1997).
  17. Wheelan, S. J., Boguski, M. S., Duret, L., Makalowski, W. Human and nematode orthologs--lessons from the analysis of 1800 human genes and the proteome of Caenorhabditis elegans. Gene. 238, 163-170 (1999).
  18. Culetto, E., Sattelle, D. B. A role for Caenorhabditis elegans in understanding the function and interactions of human disease genes. Hum Mol Genet. 9, 869-877 (2000).
  19. Fire, A., et al. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 391, 806-811 (1998).
  20. Lamitina, T. Functional genomic approaches in C. elegans. Methods Mol Biol. 351, 127-138 (2006).
  21. Poulin, G., Nandakumar, R., Ahringer, J. Genome-wide RNAi screens in Caenorhabditis elegans: impact on cancer research. Oncogene. 23, 8340-8345 (2004).
  22. Moreno-Arriola, E., et al. Caenorhabditis elegans: A Useful Model for Studying Metabolic Disorders in Which Oxidative Stress Is a Contributing Factor. Oxid Med Cell Longev. , 705253 (2014).
  23. Possik, E., et al. Folliculin regulates ampk-dependent autophagy and metabolic stress survival. PLoS Genet. 10, e1004273 (2014).
  24. Fukushima, T., Tanaka, K., Lim, H., Moriyama, M. Mechanism of cytotoxicity of paraquat. Environ Health Prev Med. 7, 89-94 (2002).
  25. Van Raamsdonk, J. M., Hekimi, S. Superoxide dismutase is dispensable for normal animal lifespan. Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 5785-5790 (2012).
  26. Schulz, T. J., et al. Glucose restriction extends Caenorhabditis elegans life span by inducing mitochondrial respiration and increasing oxidative stress. Cell Metab. 6, 280-293 (2007).
  27. Brenner, S. The genetics of Caenorhabditis elegans. Genetics. 77, 71-94 (1974).
  28. Timmons, L. Delivery methods for RNA interference in. C. elegans. Methods Mol Biol. 351, 119-125 (2006).
  29. Wang, B. Y., et al. Caenorhabditis elegans Eyes Absent Ortholog EYA-1 Is Required for Stress Resistance. Biochemistry (Mosc). 79, 653-662 (2014).
  30. Paz-Gomez, D., Villanueva-Chimal, E., Navarro, R. E. The DEAD Box RNA helicase VBH-1 is a new player in the stress response in C. elegans. PLoS One. 9, 97924 (2014).
  31. Ward, J. D., et al. Defects in the C. elegans acyl-CoA synthase, acs-3, and nuclear hormone receptor, nhr-25, cause sensitivity to distinct, but overlapping stresses. PLoS One. 9, 92552 (2014).
  32. Staab, T. A., Evgrafov, O., Knowles, J. A., Sieburth, D. Regulation of synaptic nlg-1/neuroligin abundance by the skn-1/Nrf stress response pathway protects against oxidative stress. PLoS Genet. 10, e1004100 (2014).
  33. Greer, E. L., et al. An AMPK-FOXO pathway mediates longevity induced by a novel method of dietary restriction in. C. elegans. Curr Biol. 17, 1646-1656 (2007).
  34. Allen, E., Walters, I. B., Hanahan, D. Brivanib, a dual FGF/VEGF inhibitor, is active both first and second line against mouse pancreatic neuroendocrine tumors developing adaptive/evasive resistance to VEGF inhibition. Clin Cancer Res. 17, 5299-5310 (2011).
  35. Apfeld, J., O'Connor, G., McDonagh, T., DiStefano, P. S., Curtis, R. The AMP-activated protein kinase AAK-2 links energy levels and insulin-like signals to lifespan in C. elegans. Genes Dev. 18, 3004-3009 (2004).
  36. Lee, H., et al. The Caenorhabditis elegans AMP-activated protein kinase AAK-2 is phosphorylated by LKB1 and is required for resistance to oxidative stress and for normal motility and foraging behavior. J Biol Chem. 283, 14988-14993 (2008).
  37. Honda, Y., Honda, S. The daf-2 gene network for longevity regulates oxidative stress resistance and Mn-superoxide dismutase gene expression in Caenorhabditis elegans. FASEB J. 13, 1385-1393 (1999).
  38. Restif, C., Metaxas, D. Tracking the swimming motions of C. elegans worms with applications in aging studies. Med Image Comput Comput Assist Interv. 11, 35-42 (2008).
  39. Buckingham, S. D., Sattelle, D. B. Fast, automated measurement of nematode swimming (thrashing) without morphometry. BMC Neurosci. 10, 84 (2009).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

99paraquatElegans Caenorhabditis

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved