Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

כאן, אנו מתארים את פרוטוקול מפורט חלוקה לרמות של פלורסנט חדש מכתים טכניקה לגילוי חלבון סה בג'לים לזיהוי. הפרוטוקול מנצל בדיקה קרינה פלואורסצנטית ספציפיים יון כסף מדליק, אשר מגלה Ag+-חלבון מכלולי ומונע הגבלות מסוימות של כתמי כסף הדפסות כסף מסורתי.

Abstract

צביעת כסף היא טכניקה ערכי צבע מוחלטים בשימוש נרחב כדי להמחיש להקות חלבון בג'לים לזיהוי בעקבות נתרן dodecyl סולפט-לזיהוי בג'ל (מרחביות-עמוד). כתמי כסף קלאסי יש חסרונות מסוימים, כגון רקע מכתים, חלבון המסכן התאוששות, הפארמצבטית נמוך, טווח דינמי צר ליניארי עבור כימות ותאימות מוגבלת עם ספקטרומטר מסה (MS). עכשיו, עם השימוש של בדיקה Ag+ fluorogenic, TPE-4TA, פיתחנו כסף פלורסנט מכתים שיטת עבור הפריט החזותי הכולל חלבון ב לזיהוי ג'לים. הכתם החדש הזה מונע הצעד הפחתת כסף בעייתי כתמי כסף מסורתי. יתר על כן, הכתם כסף פלורסנט מדגים הפארמצבטית טוב, רגישות, כימות ליניארי בזיהוי חלבון, שהופך אותו כתם ג'ל חלבון שימושי ומעשי.

Introduction

שיטות מכתימים רבות היו בשימוש להמחיש חלבונים בעקבות בג'ל, לדוגמה באמצעות ערכי צבע מוחלטים צבעי כחול מבריק Coomassie, הכתם כסף, זריחה, או רדיואקטיבי תיוג1,2, 3 , 4. צביעת כסף נחשב לאחד הטכניקות הרגישים ביותר לגילוי חלבון הדורשים ריאגנטים פשוט וזול. יכולים להיות מסווגים לתוך שתי המשפחות הגדולות: הכתם כסף אמוני, של כסף חנקתי כתם5,6. השיטה כסף אמוני אלקליין, המתחם diamine בכסף הוא הפיק עם אמוניה, סודיום הידרוקסיד והוריד את כסף מטאלי במהלך הפיתוח באמצעות פתרון פורמלדהיד חומצי. הכתם להכיל ביעילות חלבונים בסיסי אבל מציגה הופעה פרוץ חלבונים חומצי ונייטרלי, הוא, יתר על כן, הוגבלו גליצין קלאסית ומערכות electrophoretic טאורין. לשם השוואה, לנצל הכתמים כסף חנקתי הביו-בזיקה גבוהה של יוני כסף לחלבון, בעיקר את sulfhydryl ואת carboxyl קבוצות מכל הכבלים צד ועל נוטים כתם חומצי חלבונים ביעילות רבה יותר7. לאחר יון כסף מחייב, פתרון המתפתח (בדרך כלל ממתכות פתרון קרבונט מתכת המכילים פורמלדהיד, נתרן thiosulphate) מוחל כדי לצמצם את יוני כסף מטאלי גרגירי כסף, אשר לבנות בצבע חום-כדי-כהה כדי להמחיש להקות חלבון.

למרות צביעת כסף היה ידוע שלו רב-תכליתיות, רגישות גבוהה מאז פיתוחה ב שנות השבעים8, השיטה לעתים קרובות נחשב מסובך. שיטות מכתים כסף יש זמן מוגבלת צעדים ולהראות הפארמצבטית נמוכה. מאז צבע הכתם כסף. בדרך כלל לא אחיד ובלתי תלויה השלב צמצום, אשר קשה לשלוט, הכתם כסף היא לא שיטה כמותית, לפיכך, אינה מומלצת ג'ל השוואה המחקר וחלבון כימות9. שיטות אופטימיזציה של רגישות עלולה לנצל את aldehydes אשר יכול גם לספק מדים יותר להכתים10. עם זאת, זה על חשבון הזרם ניתוח נוסף בשל crosslinking של חלבונים על-ידי aldehydes. פרוטוקולים מהיר בעיקר לשלב או לקצר שלבים כדי לצמצם את זמן, להתפשר על הפארמצבטית ואחידות של הכתם5. כתוצאה מכך, ישנם רבים כסף מכתים משתנים בתוך ג'ל חלבון מכתים, כל אחד בצורה מיטבית כדי שיתאימו בדרישות מסוימות; לדוגמה, פשטות, רגישות או פפטיד שחזור קצב לניתוח במורד הזרם. תכונות אלה עשויים גם להשפיע אחד על השני, והוא מספק את כל הדרישות באחד הפרוטוקולים יכול להיות קשה.

בעבודה זו, אנו מציגים כסף פלורסנט חדש מכתים שיטה לגילוי חלבון בג'ל לזיהוי. בשיטה זו, אנו משתמשים בדיקה fluorogenic על יוני כסף, TPE-4TA (איור 1), כדי להמחיש את החלבונים ספוג כסף11. TPE-4TA מיועד על פי. העיקרון הנוצרות על-ידי צבירת פליטה (קובי אשכנזי). זה בלתי-emissive נמס בתמיסה המימית, אבל הוא מאוד emissive בנוכחות יוני כסף. על-ידי החלפת הפיתוח הדפסות כסף בכתמי כסף המסורתי fluorogenic פיתוח שלב, מאפשרת השיטה כסף פלורסנט ההכתמה חזקים של חלבונים הכולל עם רקע מופחת.

יתר על כן, הכתם כסף פלורסנט הראה טווח דינמי טוב ליניארי על כימות חלבון, שהוא דומה עם הכתם עברית בשימוש נרחב וגם לא בר השגה עם כתמי כסף מסורתי. הג'ל יכול לדימות במערכות תיעוד ג'ל נפוץ עם מנורת אולטרה סגול (אורך גל עירור: ערוץ nm 302/365; פליטה: ~ 490-530 ננומטר) במעבדות ביולוגיות רבות.

Protocol

1. הכנת הג'ל

הערה: ההפגנה כדלקמן פרוטוקול רגיל להכין הג'ל מכתים זמן קצר לאחר מרחביות-דף12. בקצרה, השלבים הבאים מתארים את הכנת הדגימות, ג'ל אלקטרופורזה.

  1. לבצע מרחביות-דף עם 4% - 12% Bis-טריס חלבון ג'ל (1 מ"מ, ובכן 15) באמצעות ג'ל מיני טנק מלא 2-(N -מורפולינו) ethanesulfonic חומצה (MES) מאגר.
  2. לדלל את הדגימות עם תערובת של מים מזוקקים, ליתיום dodecyl סולפט (LDS) מאגר סוכן בהפחתת דגימה.
  3. לטעון את הנתיב הראשון עם כמות כפולה של המניות (10 µL), ואחריו את כמות מניות רגילה (5 µL) ואת סדרת דילולים כפולה של המניה לאחר מכן (13 דילולים, מ- 2 x ל 8192 x).
  4. הפעל את הג'ל על מתח קבוע של 200 וולט למשך 30 דקות.

2. קיבוע של הג'ל

  1. לאחר אלקטרופורזה, להטביע את ג'ל בריכוז 100 מ של 40% חומצה אצטית ethanol/10% על תפקודי לב / נשימה ב-50 סל ד בטמפרטורת החדר 2 x (כל אחד למשך 30 דקות), או ללון ב 4 º C.
  2. לשטוף את ג'ל 3 x 10 דקות כל הנדסה גנטית מים במיכל נקי. השלב כביסה הוא קריטי. אם החומצה מהפתרון תיקון לא יוסר כראוי בשלב פיתוח fluorogenic, יתר TPE-4TA יופעלו על ידי החומצה ולהוביל רקע חזק פלורסצנטיות הג'ל.

3. הכנת AgNO3פתרון והספגה כסף של הג'ל

  1. כדי להפוך את הפתרון3 AgNO (0.0001%) על ההפריה, ראשית, להמיס 0.01 גר' AgNO3 מ"ל של מים הנדסה גנטית כדי להכין AgNO 0.1%3 מניות פתרון. לאחר מכן, להוסיף 100 µL של 0.1% AgNO3 מניות הפתרון לתוך 100 מ של מים הנדסה גנטית כדי להפוך את הפתרון עובד.
    הערה: יש לאחסן את הפתרון3 AgNO בחושך לפני השימוש.
  2. להפרות את הג'ל עם 100 מ של כסף עובד פתרון עבור 1 h על תפקודי לב / נשימה ב-50 סל ד במיכל זכוכית אטום. זה חיוני כדי לבצע את ההפריה כסף ברדס fume, מוגן מפני אור ברדיד אלומיניום.
  3. לשטוף את הג'ל עם הנדסה גנטית מים (בערך 100 מ ל) במיכל נקי עבור 2 x 60 s.

4. Fluorogenic הפיתוח של הג'ל

  1. כדי להכין הפתרון מלאי צבע (0.1 מ מ), להוסיף 3.0 מ"ג לצבוע TPE-4TA 50 מ של מים הנדסה גנטית. Sonicate הפתרון לכמה דקות ולהוסיף קצת פתרון NaOH (לדוגמה 1 מ') כדי לעזור לפזר את הצבע.
  2. בדוק את זריחה של הפתרון תחת מנורה nm UV 365 כדי להבטיח כי מולקולת צבע מלא התפרקה. רק פתרונות חלש או nonemissive מצביעים על פירוק מלא.
    הערה: לצבוע ש-TPE-4TA היה מסונתז להלן הפרוטוקול דיווח לאחרונה על-ידי שיה. et al. 10 הפתרון TPE-4TA יציב מאוד, יכול להישמר בחושך במשך חודשים.
  3. כדי להכין 100 מ של הפתרון פיתוח fluorogenic (10 מיקרומטר), להוסיף 10 מ של הפתרון מניות TPE-4TA לתוך 90 מיליליטר מים הנדסה גנטית. בדוק את ה-pH של התמיסה באמצעות מד pH, לכוונן אותו כדי 7-9 באמצעות פתרון נתרן הידרוקסידי (1 מיקרומטר).
  4. להעביר את הג'ל מיכל sealable ונקי עם 100 מ של פתרון fluorogenic מתפתחות. ודא שהג'ל הוא שקוע לגמרי בפתרון. חותם את המכולה. לכסות את זה האור ולנער אותו בן לילה על תפקודי לב / נשימה ב-50 סל ד בטמפרטורת החדר. לחלופין, שלב הדגירה יכולה גם יתקצר בערך ~ 2 ש על ידי חימום הפתרון המתפתח קובי אשכנזי עד 80 ° C עבור צביעת ולהשאיר אותו ואז בטמפרטורת החדר.

5. destaining והדמיה

  1. להעביר את הג'ל במיכל נקי, destain אותו ב- 100 מ של 10% אתנול למשך 30 דקות.
    הערה: מים לבד יכול לשמש כדי לשטוף את הג'ל. עם זאת, יותר זמן יעיל לשימוש 10% אתנול הפתרון destaining. פעולה זו תסייע להפחית את תהליך destaining שעות עד 30 דקות.
  2. יש לשטוף את ג'ל אלקטרופורזה מים במשך 5 דקות.
  3. תמונה הג'ל בערוץ nm 365 או ערוץ nm 302 ע י מכונה תיעוד ג'ל.

תוצאות

הלהקות חלבון מוכתמת הכתם כסף פלורסנט התערוכה של קרינה פלואורסצנטית ירוק עז תחת מנורת UV nm 365. חלבון 14 כל להקות (10-200 kDa), מלמעלה למטה, נראו בבירור, מתאם טוב עם אלה שצבעו אדום 14 מוכתמת צבען (איור 2)10עברית.

לגבי זיהוי ח...

Discussion

המוצג כאן כסף פלורסנט הרומן מכתימה שיטת חלבונים בג'לים לזיהוי. אסטרטגיה זו משלבת כתמי כסף קונבנציונאלי כתמי פלורסנט. מעלליו מכתימים הכריכה סלקטיבי של יון כסף חלבונים כמו כסף אחרים כתמים אך מעסיקה כסף fluorogenic רגישה מאוד בדיקה TPE-4TA כדי להאיר את החלבונים מאוגד כסף. מאז המכשיר fluorogenic

Disclosures

כבר הגיש בקשה לרישום פטנט על זה צביעת כסף פלורסנט.

Acknowledgements

המחברים רוצה להודות פטריק צ'אן במרכז לאו וואי מינג תיקוני לרפואה, Institutet קרולינסקה, לתמיכה טכנית שלו. ס י הוא אסיר תודה על התמיכה של מועצת המחקר השבדי (מענק מס 2017-06344).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments

LDS Sample Buffer (4X)
Thermo Fisher ScientificNP0007Reagent

4-12% Bis-Tris Protein Gels, 1.0 mm, 15-well
Thermo Fisher ScientificNP0323BOXPrecast gel
Sample Reducing Agent (10X)Thermo Fisher ScientificNP0004Reagent
MES SDS Running Buffer (20X)Thermo Fisher ScientificNP0002Reagent
Mini Gel TankThermo Fisher ScientificA25977Equipment
300W Power Supply (230 VAC)Thermo Fisher ScientificPS0301Equipment
Unstained Protein LadderThermo Fisher Scientific26614Sample
Silver nitrateSigma-Aldrich31630-25G-RReagent
EthanolBragg and co.42520JReagent
Acetic acidJ.T. Baker103201AReagent
Milli-Q Synthesis A10Merk-Provides 18.2 MΩ.cm water
gel documentation system (c600 model)Azure biosystems-Equipment

References

  1. Chevalier, F. Highlights on the capacities of "Gel-based" proteomics. Proteome Science. 8 (1), (2010).
  2. Harris, L. R., Churchward, M. A., Butt, R. H., Coorssen, J. R. Assessing detection methods for gel-based proteomic analyses. Journal of Proteome Research. 6 (4), 1418-1425 (2007).
  3. Gauci, V. J., Wright, E. P., Coorssen, J. R. Quantitative proteomics: assessing the spectrum of in-gel protein detection methods. Journal of Chemical Biology. 4 (1), 3-29 (2011).
  4. Candiano, G., Bruschi, M., et al. Blue silver: A very sensitive colloidal Coomassie G-250 staining for proteome analysis. Electrophoresis. 25 (9), 1327-1333 (2004).
  5. Chevallet, M., Luche, S., Rabilloud, T. Silver staining of proteins in polyacrylamide gels. Nature Protocols. 1 (4), 1852-1858 (2006).
  6. Jin, L. T., Hwang, S. Y., Yoo, G. S., Choi, J. K. Sensitive silver staining of protein in sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gels using an azo dye, calconcarboxylic acid, as a silver-ion sensitizer. Electrophoresis. 25 (15), 2494-2500 (2004).
  7. Celis, J. E., et al. . Cell Biology: A Laboratory Handbook. , (2006).
  8. Bartsch, H., Arndt, C., Koristka, S., Cartellieri, M., Bachmann, M. Silver Staining Techniques of Polyacrylamide Gels. Methods in Molecular Biology. 869 (1), 481-486 (2012).
  9. Rabilloud, T., Vuillard, L., Gilly, C., Lawrence, J. Silver-staining of proteins in polyacrylamide gels: a general overview. Cellular and Molecular Biology. 40 (1), 57-75 (1994).
  10. Zhou, M., Yu, L. Proteomic Analysis by Two-Dimensional Polyacrylamide Gel Electrophoresis. Advances in Protein Chemistry. 65 (1), 57-84 (2003).
  11. Xie, S., et al. Fluorogenic Ag+-Tetrazolate Aggregation Enables Efficient Fluorescent Biological Silver Staining. Angewandte Chemie International Edition. 57 (20), 5750-5753 (2018).
  12. . Protein gel electrophoresis technical handbook Available from: https://www.thermofisher.com/content/dam/LifeTech/global/Forms/PDF/protein-gel-electrophoresis-technical-handbook.pdf (2015)

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

146dodecylinducedfluorogenic

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved