ניטור היפוקסיה כלייתי לא פולשני ופולשני במודל חזירי של הלם דימומי

Summary

מוצג כאן פרוטוקול למדידת חמצון כלייתי במדולה ולחץ חלקי חמצן לא פולשני בשתן במודל חזירי הלם דימומי כדי לבסס לחץ חלקי של חמצן בשתן כאינדיקטור מוקדם לפגיעה חריפה בכליות (AKI) ונקודת סיום חדשנית להחייאה.

Abstract

עד 50% מהחולים עם טראומה מפתחים פגיעה כלייתית חריפה (AKI), בין היתר בשל זילוח כליות לקוי לאחר איבוד דם חמור. AKI מאובחן כיום על סמך שינוי בריכוז הקריאטינין בסרום מנקודת ההתחלה או תקופות ממושכות של ירידה בתפוקת השתן. למרבה הצער, נתוני ריכוז קריאטינין בסרום אינם זמינים ברוב החולים עם טראומה, ושיטות האומדן הנוכחיות אינן מדויקות. בנוסף, ריכוז קריאטינין בסרום לא יכול להשתנות עד 24-48 שעות לאחר הפציעה. לבסוף, אוליגוריה חייבת להתמיד לפחות 6 שעות כדי לאבחן AKI, מה שהופך אותה לבלתי מעשית לאבחון מוקדם. גישות אבחון AKI הקיימות כיום אינן שימושיות לניבוי הסיכון במהלך החייאה של חולים עם טראומה. מחקרים מראים כי לחץ חלקי בשתן של חמצן (PuO₂) עשוי להיות שימושי להערכת היפוקסיה כלייתית. מוניטור המחבר בין קטטר השתן לבין שקית איסוף השתן פותח למדידת PuO₂ באופן לא פולשני. המכשיר משלב חיישן חמצן אופטי שמעריך את PuO₂ בהתבסס על עקרונות מרווה של לומינסנציה. בנוסף, המכשיר מודד את זרימת השתן ואת הטמפרטורה, האחרון כדי להתאים את ההשפעות המבלבלות של שינויי טמפרטורה. זרימת השתן נמדדת כדי לפצות על ההשפעות של חדירת חמצן בתקופות של זרימת שתן נמוכה. מאמר זה מתאר מודל חזירי של הלם דימומי כדי לחקור את הקשר בין PuO₂ לא פולשני, היפוקסיה כלייתית והתפתחות AKI. מרכיב מרכזי במודל הוא מיקום כירורגי מונחה אולטרסאונד במדולה הכליה של בדיקת חמצן, המבוססת על מיקרופייבר אופטי ללא מעטפת. PuO 2 יימדד גם בשלפוחית השתן ויושווה למדידות הכליות והלא פולשניות של PuO₂. מודל זה יכול לשמש לבדיקת PuO 2 כסמן מוקדם של AKI ולהעריך את PuO₂ כנקודת קצה של החייאה לאחר דימום המעידה על איבר קצה ולא על חמצון מערכתי.

Introduction

פגיעה חריפה בכליות (AKI) משפיעה על עד 50% מהחולים עם טראומה שאושפזו ביחידה לטיפול נמרץ¹. חולים המפתחים AKI נוטים להיות בעלי משך שהייה ארוך יותר בבית החולים וביחידות טיפול נמרץ וסיכון גבוה פי שלושה לתמותה ^2,3,4. נכון לעכשיו, AKI מוגדר בדרך כלל על ידי הנחיות KDIGO לשיפור תוצאות גלובליות של מחלות כליות, המבוססות על שינויים בריכוז קריאטינין בסרום מנקודת ההתחלה או תקופות של אוליגוריה⁵ ממושכת. נתוני ריכוז קריאטינין בסיסיים אינם זמינים ברוב החולים עם טראומה, ומשוואות האומדן אינן אמינות ולא אומתו בחולים עם טראומה⁶. בנוסף, ריכוז קריאטינין בסרום עשוי לא להשתנות עד לפחות 24 שעות לאחר הפציעה, מניעת זיהוי מוקדם והתערבות⁷. בעוד שמחקרים מצביעים על כך שתפוקת השתן היא אינדיקטור מוקדם יותר של AKI מאשר ריכוז קריאטינין בסרום, הקריטריונים של KDIGO דורשים מינימום של 6 שעות של אוליגוריה, מה שמונע התערבויות הממוקדות במניעת פציעות⁸. כמו כן מתווכחים סף תפוקת השתן השעתי האופטימלי ומשך הזמן המתאים של אוליגוריה להגדרת AKI, המגבילים את יעילותו כסמן מוקדם של המחלה ^9,10. לפיכך, אמצעי האבחון הנוכחיים עבור AKI אינם שימושיים במצבי טראומה, מובילים לאבחון מאוחר של AKI, ואינם מספקים מידע בזמן אמת לגבי מצב הסיכון של המטופל לפתח AKI.

בעוד שהתפתחות AKI במסגרת טראומה היא מורכבת וככל הנראה קשורה למספר סיבות כגון זילוח כליות לקוי עקב היפובולמיה, זרימת דם כלייתית מופחתת עקב התכווצות כלי דם, דלקת הקשורה לטראומה או פגיעה באיסכמיה-רפרפוזיה, היפוקסיה כלייתית היא גורם שכיח בקרב רוב הצורות של AKI^11,12. בפרט, אזור המדולה של הכליה רגיש מאוד לחוסר איזון בין דרישת החמצן לאספקה במצב הטראומה עקב אספקת חמצן מופחתת ופעילות מטבולית גבוהה הקשורה לספיגה מחדש של נתרן. לכן, אם ניתן היה למדוד חמצון כליות medulla, ייתכן שניתן יהיה לעקוב אחר מצב הסיכון של המטופל לפתח AKI. אמנם זה לא אפשרי קלינית, לחץ חלקי בשתן של חמצן (PuO₂) במוצא הכליה נמצא בקורלציה חזקה עם חמצון רקמה מדולרית^13,14. מחקרים אחרים הראו כי ניתן למדוד את שלפוחית השתן PuO 2 וכי היא משתנה בתגובה לגירויים המשנים את רמות החמצן המדולרי ואגן הכליה PuO₂, כגון ירידה בזרימת הדם הכלייתית^15,16,17. מחקרים אלה מצביעים על כך ש- PuO₂ עשוי להצביע על זילוח איברי קצה ויכול להיות שימושי לניטור ההשפעה של התערבויות במצבי טראומה על תפקוד הכליות.

כדי לנטר את PuO 2 באופן לא פולשני, פותח מוניטור PuO₂ לא פולשני שיכול להתחבר בקלות לקצה של קטטר שתן מחוץ לגוף. צג PuO₂ הלא פולשני מורכב משלושה רכיבים עיקריים: חיישן טמפרטורה, חיישן חמצן מרווה-אור וחיישן זרימה תרמי. מכיוון שכל חיישן חמצן מבוסס אופטית ומסתמך על יחסי שטרן-וולמר כדי לכמת את הקשר בין עוצמת האור לריכוז החמצן, יש צורך בחיישן טמפרטורה כדי לקזז את ההשפעות המבלבלות האפשריות של שינויים בטמפרטורה. חיישן הזרימה חשוב לכימות תפוקת השתן ולקביעת כיוון ועוצמת זרימת השתן. כל שלושת הרכיבים מחוברים על ידי שילוב של מחברי נעילה Luer בצורת זכר, נקבה ו- T וצינורות גמישים פולי-ויניל כלוריד (PVC). הקצה עם המחבר החרוטי מתחבר לשקע של קטטר השתן, והקצה עם צינורות מעל המחבר החרוטי מתחבר מחליק מעל המחבר על שקית איסוף השתן.

למרות מדידה שונה לשלפוחית השתן, מחקר שנערך לאחרונה הראה כי PuO₂ נמוך בשתן במהלך ניתוח לב קשור לסיכון מוגבר לפתח AKI^18,19. באופן דומה, המודלים הנוכחיים של בעלי חיים התמקדו בעיקר בגילוי מוקדם של AKI במהלך ניתוחי לב ואלח דם 14,20,21,22. לפיכך, נותרו שאלות לגבי השימוש במכשיר חדשני זה במסגרות של טראומה. מטרת מחקר זה היא לבסס את PuO₂ כסמן מוקדם של AKI ולחקור את השימוש בו כנקודת קצה להחייאה בחולים עם טראומה. כתב יד זה מתאר מודל חזירי של הלם דימומי הכולל מיקום של צג PuO 2 לא פולשני, חיישן PuO₂ של שלפוחית השתן וחיישן חמצן רקמתי במדולה הכליה. הנתונים מהמוניטור הלא פולשני יושוו למדידות PuO₂ וחמצן פולשני ברקמות. המוניטור הלא פולשני כולל גם חיישן זרימה שיהיה שימושי להבנת הקשר בין קצב זרימת השתן לבין חדירת חמצן, מה שמפחית את היכולת להסיק חמצון רקמה מדולרית כלייתית מ- PuO₂ לא פולשני כאשר השתן חוצה את דרכי השתן. בנוסף, הנתונים משלושת חיישני החמצן יושוו לסימנים חיוניים מערכתיים, כגון לחץ עורקים ממוצע. ההשערה המרכזית היא שנתוני PuO₂ לא פולשניים יהיו בקורלציה חזקה עם תכולת חמצן מדולרית פולשנית וישקפו היפוקסיה מדולרית במהלך החייאה. לניטור לא פולשני של PuO₂ יש פוטנציאל לשפר את התוצאות הקשורות לטראומה על ידי זיהוי מוקדם יותר של AKI ולשמש כנקודת קצה חדשה להחייאה לאחר דימום המעידה על איבר קצה ולא על חמצון מערכתי.

Protocol

הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים של אוניברסיטת יוטה אישרה את כל פרוטוקולי הניסוי המתוארים כאן. לפני הניסוי, 12 חזירות יורקשייר מסורסות או לא הרות במשקל 50-75 ק"ג ובין 6-8 חודשים התאקלמו במכלאות שלהם במשך 7 ימים לפחות. במהלך תקופה זו, כל הטיפול מנוהל על ידי וטרינר ובהתאם למדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה ולתקנות ותקנים של חוק צער בעלי חיים. בעלי החיים צמים לילה לפני השראת ההרדמה, אך ניתנת להם גישה חופשית למים.

1. הרכבת חיישנים

1. חתכו חתיכה בקוטר 6 ס"מ של צינורות אלסטומר תרמופלסטי (TPE), חתיכות 25 מ"מ של צינורות PVC בגודל 1/8 אינץ' ו-3/16 אינץ', וחתיכות 31 מ"מ של צינורות PVC בגודל 1/8 אינץ' ו-3/16 אינץ'.
2. קדח חור בחלק העליון של המכסה הלא מאוורר כדי להתאים לקצה החשוף של בדיקת הטמפרטורה; התחל עם 3/32 במקדח, ולאחר מכן השתמש ב- 1/8 במקדח.
3. השתמש במקדח 5/32 אינץ' כדי לקדוח את החלק העליון של מחבר T כך שיתאים לחיישן החמצן.
4. החלק את החלק הקצר יותר של צינורות PVC 1/8 על צד הכניסה של חיישן הזרימה. החלק את ה-1/8 הארוך יותר של צינור PVC על צד היציאה (כפי שמציין החץ בחיישן הזרימה עצמו) של חיישן הזרימה. החלק את 3/16 הקצר והארוך יותר בחתיכות של צינורות PVC על פני האורכים המתאימים של 1/8 בצינורות PVC. הכנס את הקצה הדוקרני של מחבר נעילת הלואר הגברי לקצה הפתוח של 1/8 בצינורות PVC.
   הערה: במידת הצורך, השתמש באקדח חום כדי לחמם את הצינור לפני החלקה מעל אביזרי גדרות. ניתן גם להשתמש באלכוהול איזופרופיל כדי לשמן את קצה הדוקרן כדי להקל על החלקת הצינור מעל מחבר הדוקרני.
5. מערבבים את הדבק התואם ביולוגית.
6. חשוף את קצה בדיקת הטמפרטורה על ידי הסרת כל מעטפת מגן או צינור. מלאו את החלק הפנימי של הצינור של התרמיסטור בדבק תואם ביולוגית, אך אל תכסו את הקצה החשוף.
7. הרכיבו את החלקים כפי שמוצג באיור 1. השתמש בדבק כדי לאבטח כל חיבור נעילת פיתוי, בעת הכנסת התרמיסטור למכסה שאינו מאוורר, ולפני החלקת צינורות TPE 3/8 על קצה הדוקרני.
8. לפני העיקור, יש לוודא שהפקק הכחול על מקל החמצן אינו מעוות חזק מדי, אחרת יהיה קשה להתיר אותו לאחר העיקור.
   הערה: תמונה של התקן מורכב מוצגת באיור 1 לעיון. לצורך ניסוי זה, כבל הסיב האופטי חובר למודול אלקטרואופטי המכיל תוכנה שנועדה לעבוד עם חיישני החמצן הספציפיים המשמשים במכשיר. כל חיישן חמצן מבוסס מרווה זוהר ומכשיר איסוף נתונים תואם יפעלו. בנוסף, מודול מותאם אישית ומעגל מודפס תוכננו לחבר את חיישן הזרימה ובדיקת הטמפרטורה. תוכנה מותאמת אישית שימשה לאיסוף והצגה של נתונים בזמן אמת.

2. הליך ניסיוני

1. השראת הרדמה וניטור.
   1. הרגיעו את בעל החיים בהזרקה תוך שרירית משולבת של קטמין (2.2 מ"ג/ק"ג) וקסילזין (2.2 מ"ג/ק"ג) וטלזול (4.4 מ"ג/ק"ג).
   2. בהתאם לגודל החיה, מניחים צינור אנדוטרכאלי אזוק בגודל מתאים (ככל הנראה בין 7 מ"מ ל -8 מ"מ) בעזרת לרינגוסקופ.
   3. יש למרוח חומר סיכה לעיניים על שתי העיניים.
   4. לאחר הזירוז, אווררו מכנית את בעל החיים עם תחזוקת הרדמה עם איזופלורן גזי 1.5%-3.0% מעורבב בחמצן. הגדר את חלק החמצן בהשראה בין 40%-100%, את הלחץ הסופי החיובי ל- 4 ס"מ H2 O, את נפח הגאות ל- 6-8 מ"ל / ק"ג, והתאם את קצב הנשימה ואת נפח הגאות כדי לשמור על CO₂ של 35-45 מ"מ כספית.
   5. נטר ואשר את עומק ההרדמה הנכון על ידי הערכת טונוס הלסת, רפלקס מישוש בערך כל 15 דקות, והיעדר תנועה ספונטנית לאורך כל הניסוי. בנוסף, עקוב אחר פרמטרים קליניים של זילוח רקמות (צבע קרום רירי, זמן מילוי נימים, קצב לב), אוקסימטריה של הדופק, CO₂ של סוף הגאות, טמפרטורת גוף הליבה ואלקטרוקרדיוגרמה.
   6. הניחו את בעל החיים בשכיבה גבית על שמיכה מחממת והצמידו כל רגל לשולחן.
   7. הפרוטוקול הוא הליך לא הישרדותי עם המתת חסד של בעל החיים בסוף הניסוי, כמתואר בסעיף 5.
2. הכינו את בעל החיים לניסוי.
   1. הכינו את כל אתרי הניקוב (המפורטים בשלבים 2.2.3-2.2.7) על ידי קרצוף העור עם שלושה קרצוף לסירוגין של כלורהקסידין ואחריו אלכוהול. לאחר הפילינג השלישי, להחיל chlorhexidine ולאפשר להתייבש לחלוטין, ולאחר מכן לעטוף את האתר כירורגי בצורה סטרילית.
   2. יש לחדור באופן מקומי לכל אתרי הניקוב והחתך עם 2% לידוקאין לשיכוך כאבים מקומי.
   3. בעזרת הנחיית אולטרסאונד וטכניקת סלדינגר מניחים צנתר 9 Fr בווריד הצוואר החיצוני הימני לעירוי תרופות וניטור לחץ ורידי מרכזי וצנתר 7 Fr בווריד הירך הימני לצורך החייאה.
   4. בהנחיית אולטרסאונד, הניחו נדן 7 Fr בעורק הברכיאלי הימני.
   5. בהנחיית אולטרסאונד, מניחים נדן 7 Fr בעורק הירך הימני.
   6. בהנחיית אולטרסאונד, יש להניח נדן 7 Fr בעורק הירך השמאלי.
   7. בהנחיית אולטרסאונד, הניחו נדן 5 Fr בעורק התרדמה הימני או השמאלי.
   8. יש לעקוב אחר הלחץ הדיסטלי לבלון של החסימה האנדווסקולרית החייאת צנתר אבי העורקים (REBOA) דרך מעטפת עורק הירך השמאלי.
      1. חברו מתמר לחץ חד פעמי לצנתר העורקי שהוא דיסטלי לבלון REBOA.
   9. עקוב אחר הלחץ הפרוקסימלי לבלון של צנתר REBOA דרך נדן עורק התרדמה.
      1. חברו מתמר לחץ חד פעמי לצנתר העורקי שהוא פרוקסימלי לבלון REBOA.
   10. בצע laparotomy קו האמצע על ידי ביצוע חתך לאורך קו האמצע של הבטן, החל בחלק התחתון של עצם החזה וכלה בפאביס.
   11. כאשר הבטן פתוחה, זהה את שלפוחית השתן ובצע ציסטוטומיה, או בצע חתך קטן, כדי להחדיר קצה של קטטר שתן 20 Fr לשלפוחית השתן. סגור את הציסטוטומיה עם קטטר השתן במקומו באמצעות תפר חוט ארנק. לאחר שהקטטר נמצא במקומו, הצמידו אותו לעור באמצעות תפרים.
   12. לפני חיבור יציאת הצנתר לשקית איסוף השתן, הכנס את הקצה בצורת חרוט של צג PuO₂ הלא פולשני לשקע הצנתר.
   13. הניחו את הצינורית הפתוחה בקצה צג PuO₂ החדשני מעל המחבר בצורת חרוט על הצינורית המחוברת לשקית איסוף השתן.
   14. הסר את הטחול כדי למנוע דימום המושרה עירוי אוטומטי.
       1. אתר את הטחול. זהה את הילום הטחול או את האתר שבו עורק הטחול ווריד נכנסים לטחול. מהדקים ומעבירים כל כלי.
       2. לאחר הטרנסקציה, קשרו כל כלי באמצעות קשרי מילר מותאמים באמצעות תפרים 2-0.
3. הניחו את המכשיר למדידת שלפוחית השתן PuO₂ וחמצון רקמות.
   1. יש למדוד PuO₂ במוצא שלפוחית השתן.
      1. זהה את הבלון על הצנתר. ממש מתחת לבלון בצעו חתך לאורך הציר הארוך של הצנתר, וודאו שלא תחתכו את הלומן שמתחבר לבלון.
      2. לאחר ביצוע החתך, הכנס מחבר t המכיל את חומר החישה לתוך החתך.
      3. השתמש בדבק רקמות כדי לאבטח את מחבר t במקומו.
      4. חבר את כבל הסיב האופטי מהתקן איסוף הנתונים של שלפוחית השתן למחבר המכיל את חומר החישה.
      5. צור קובץ חדש בהתקן איסוף הנתונים ושים לב להפרש הזמנים בין התקן האיסוף העצמאי לבין התקנים אחרים המשמשים בניסוי.
         1. עבור מכשיר איסוף הנתונים המשמש במחקר זה: לחץ על החץ אחורה כדי להגיע לתפריט הראשי.
         2. עבור אל הגדרות המדידה ולחץ על אישור. השתמש בחצים כדי לסמן את תיבת דפדפן המדידה ולחץ על אישור.
         3. לחץ על החץ ימינה כדי ליצור קובץ חדש. הקלד את שם הקובץ החדש ובחר סיום.
         4. סמן את שם הקובץ החדש ובחר אישור. נווט אל מסך המדידה ולחץ על אישור כדי להתחיל להקליט.
   2. למדוד חמצון רקמת הכליה medullary.
      1. זהה את מיקום הכליה באופן פנימי.
      2. הזז את המעי כך שיהיה לך קו ברור של אתר וגישה לכליה כולה.
      3. הכנס את החיישן לצנתר 2 אינץ' בעל מד 18 אינץ'. כוונן את מחבר נעילת הפיתוי בחיישן כך שקצה החיישן ייחשף. מוציאים את הצנתר ומניחים אותו מעל מחט 18 מד.
      4. הכניסו את המחט 18 מד ו-2 בצנתר למדולה הכליה תחת הנחיית אולטרסאונד.
      5. הסר את המחט, שמירה על הצנתר במקום. השחילו את חיישן הרקמה דרך הצנתר והשתמשו בנעילת הלואר כדי לחבר את החיישן לצנתר.
      6. השתמש בדבק רקמות כדי לאבטח את הצנתר במקומו.
      7. חבר את חיישן הרקמה לתיבת איסוף הנתונים.
      8. המתן 10 דקות לפני תחילת פרוטוקול הניסוי לאחר הכנת המכשור והחיה. זה ייחשב תקופת בסיס.
4. פרוטוקול ניסויי
   1. לפני תחילת ההליך הניסיוני, ודא שהלחץ העורקי הממוצע (MAP) הוא ≥65 מ"מ כספית. אם MAP נמצא מתחת לסף, יש לוותר על עד שני בולוסים של 5 מ"ל/ק"ג של תמיסת קריסטלואיד איזוטונית. אם MAP נשאר מתחת ל-65 מ"מ כספית, יש להחדיר נוראפינפרין (0.02 מיקרוגרם/ק"ג/דקה) עד להשגת היעד MAP.
   2. לגרום להלם דימומי.
      1. יש להסיר 25% (כ-60 מ"ל/ק"ג) מנפח הדם המשוער של בעל החיים דרך מעטפת העורק הברכיאלי הימני במשך 30 דקות לתוך שקיות איסוף דם ציטרלי נסערות בעדינות. סמן את תחילת הסרת הדם כ- t = 0 דקות.
      2. לאחסן את הדם שהוסר באמבט מים חמים ב 37 °C (77 °F).
      3. לאחר מכן בצעו אקראיות כדי להקצות בעלי חיים לקבוצת REBOA עם דם מלא או REBOA עם קבוצת קריסטלואידים (n = 6 לכל קבוצה).
   3. מניחים את צנתר REBOA.
      1. הכנס קטטר 7 Fr REBOA למעטפת עורק הירך הימני. מניחים את הבלון של הצנתר מיד מעל הסרעפת ומאשרים את המיקום באמצעות פלואורוסקופיה.
      2. ב t = 30 דקות, לנפח את בלון REBOA ולחסום לחלוטין את אבי העורקים למשך 45 דקות.
   4. ליזום החייאה ולנהל טיפול נמרץ.
      1. ב t = 70 דקות, transfuse כל חיה עם הדם שלהם שפך במשך 15 דקות.
      2. יש להחדיר סידן תוך ורידי במשך 10 דקות כדי למנוע היפוקלצמיה הנגרמת על ידי ציטראט.
      3. ב t = 75 דקות, לנפח את בלון REBOA מעל 10 דקות.
      4. עד t = 360 דקות, להחיות את החיה עם נוזלים נוראפינפרין כדי לשמור על MAP > 65 מ"מ כספית.
5. סיום הניסוי והמתת חסד
   1. יש לאסוף את דגימות הדם או השתן שנותרו.
   2. הרדימו את בעל החיים על ידי הזרקת שילוב של נתרן Pentobarbital (390 מ"ג) ונתרן Phenytoin (50 מ"ג) (1 מ"ל / 10 lbs).

3. עיבוד נתונים

1. סנכרון בזמן של כל קבצי הנתונים.
   1. בהתבסס על הזמנים שצוינו בכל מכשיר ביחס זה לזה ותחילת הניסוי, יישר את כל קבצי הנתונים כך ש- t = 0 מציין את תחילת הניסוי.
2. הסר נקודות נתונים המשויכות לדגלי שגיאה מחיישן הזרימה.
   הערה: סוגי השגיאה הם קצב זרימה גבוה ואוויר בשורה. השגיאה High Flow Rate מציינת שקצב הזרימה חרג ממגבלת התפוקה של החיישן. דגל השגיאה Air-in-Line מונף כאשר החיישן מזהה אוויר בערוץ הזרימה.
3. מחק את הנתונים המשויכים לזרימה השלילית.
   1. ברגע שהזרימה הופכת לשלילית, עקוב אחר עוצמת הקול שזורמת מעבר לחיישן בכיוון ההפוך.
   2. לאחר שהזרימה הופכת חיובית, עקוב אחר עוצמת הקול והשווה אותה לנפח הזרימה השלילית כדי לכלול רק מדידות משתן שהתרוקן לאחרונה.

תוצאות

איור 1 מראה תמונה של צג PuO₂ לא פולשני המתואר בכתב היד הזה. איור 2 מראה תרשים של מדידות MAP ו-PuO₂ לא פולשניות בקרב נבדק יחיד במהלך ניסוי דומה למודל הדימום החזירי המתואר. בתחילת הניסוי, עם תחילת הדימום, חלה ירידה ב-MAP וב-PuO₂. לאחר הירידה הראשונית ב-PuO

Discussion

AKI הוא סיבוך שכיח בחולים עם טראומה, ונכון לעכשיו, אין מוניטור מאומת ליד המיטה עבור חמצון רקמת הכליה, אשר יכול לאפשר זיהוי מוקדם יותר של AKI ולהנחות התערבויות פוטנציאליות. כתב יד זה מתאר את השימוש והמכשור של מודל הלם דימום חזירי כדי לבסס PuO₂ לא פולשני כאינדיקטור מוקדם של AKI ונקודת סיום חדש...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
1/8" PVC tubing	Qosina	SKU: T4307	Part of noninvasive PuO2 monitor
3/16" PVC tubing	Qosina	SKU: T4310	Part of noninvasive PuO2 monitor
3/8" TPE tubing	Qosina	SKU: T2204	Part of noninvasive PuO2 monitor
3/32" (1), 1/8" (1), 5/32" (1) drill bit	Dewalt	N/A	For building noninvasive PuO2 monitor
Biocompatible Glue	Masterbond	EP30MED	Part of noninvasive PuO2 monitor
Bladder PuO2 sensor	Presens	DP-PSt3	Oxygen dipping probe
Bladder oxygen measurement device	Presens	Fibox 4	Stand-alone fiber optic oxygen meter
Chlorhexidine 4% scrub	Vetone	N/A	For scrubbing insertion or puncture sites
Conical connector with female luer lock	Qosina	SKU: 51500	Part of noninvasive PuO2 monitor
Cuffed endotracheal tube	Vetone	600508	For sedating the subject and providing respiratory support
Euthanasia solution (pentobarbital sodium|pheyntoin sodium)	Vetone	11168	For euthanasia after completion of experiment
General purpose temperature probe, 400 series thermistor	Novamed	10-1610-040	Part of noninvasive PuO2 monitor
HotDog veterinary warming system	HotDog	V106	For controlling subject temperature during experiment
Invasive tissue oxygen measurement device	Optronix	N/A	OxyLite™ oxygen monitors
Invasive tissue oxygen sensor	Optronix	NX-BF/OT/E	Oxygen/Temperature bare-fibre sensor
Isoflurane	Vetone	501017	To maintain sedation throughout the experiment
Isotonic crystalloid solution	HenrySchein	1537930 or 1534612	Used during resuscitation in the critical care period
Liquid flow sensor	Sensirion	LD20-2600B	Part of noninvasive PuO2 monitor
Male luer lock to barb connector	Qosina	SKU: 11549	Part of noninvasive PuO2 monitor
Male to male luer connector	Qosina	SKU: 20024	Part of noninvasive PuO2 monitor
Norepinephrine	HenrySchein	AIN00610	Infusion during resuscitation
Noninvasive oxygen measurement device	Presens	EOM-O2-mini	Electro optical module transmitter for contactless oxygen measurements
Non-vented male luer lock cap	Qosina	SKU: 65418	Part of noninvasive PuO2 monitor
O2 sensor stick	Presens	SST-PSt3-YOP	Part of noninvasive PuO2 monitor
PowerLab data acquisition platform	AD Instruments	N/A	For data collection
REBOA catheter	Certus Critical Care	N/A	Used in experimental protocol
Super Sheath arterial catheters (5 Fr, 7 Fr, 9 Fr)	Boston Scientific	C1894	for intravascular access
Suture	Ethicon	C013D	For securing catheter to skin and closing incisions
T connector, all female luer locks	Qosina	SKU: 88214	Part of noninvasive PuO2 monitor