JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

פרוטוקול זה מציג את ההקמה והאישור של מודל עומס יתר של נפח החדר הימני (VO) לאחר הלידה בעכברים עם פיסטולה עורקית בטנית (AVF), אשר ניתן ליישם כדי לחקור כיצד VO תורם להתפתחות הלב לאחר הלידה.

Abstract

עומס יתר בנפח החדר הימני (RV) שכיח בקרב ילדים עם מחלת לב מולדת. לאור שלבים התפתחותיים ברורים, שריר הלב של RV עשוי להגיב באופן שונה ל- VO אצל ילדים בהשוואה למבוגרים. המחקר הנוכחי נועד לבסס מודל RV VO לאחר הלידה בעכברים המשתמשים בפיסטולה עורקית בטנית שונה. כדי לאשר את יצירת VO ואת השינויים המורפולוגיים וההמודינמיים הבאים של RV, אולטרסאונד בטן, אקוקרדיוגרפיה, צביעה היסטוכימית בוצעו במשך 3 חודשים. כתוצאה מכך, ההליך בעכברות לאחר הלידה הראה שיעור הישרדות והצלחה פיסטולה מקובל. בעכברי VO, חלל הקרוואן הוגדל עם דופן חופשית מעובה, ונפח השבץ הוגדל בכ-30%-40% תוך חודשיים לאחר הניתוח. לאחר מכן, הלחץ הסיסטולי RV גדל, רגורגיטציה של שסתום ריאתי תואם נצפתה, והופיע שיפוץ עורק ריאתי קטן. לסיכום, ניתוח פיסטולה עורקית מותאמת (AVF) אפשרי כדי לבסס את מודל RV VO בעכברים לאחר הלידה. בהתחשב בהסתברות לסגירת פיסטולה והתנגדות מוגברת לעורק הריאתי, יש לבצע אולטרסאונד בטן ואקוקרדיוגרפיה כדי לאשר את מצב המודל לפני היישום.

Introduction

עומס נפח החדר הימני (RV) (VO) שכיח בקרב ילדים עם מחלת לב מולדת (CHD), מה שמוביל לעיצוב מחדש פתולוגי של שריר הלב ופרוגנוזה גרועה לטווח ארוך 1,2,3. הבנה מעמיקה של שיפוץ קרוואנים והתערבויות מוקדמות מוקדמות הקשורות חיונית לתוצאה טובה אצל ילדים עם CHD. ישנם מספר הבדלים במבנים המולקולריים, בתפקודים הפיזיולוגיים ובתגובות לגירויים בליבם של מבוגרים וילדיםבגילאי 1,4,5,6. לדוגמה, בהשפעת עומס לחץ, התפשטות קרדיומיוציטים היא התגובה העיקרית בלבבות יילודים, ואילו פיברוזיס מתרחשת בלבבות בוגרים 5,6. בנוסף, לתרופות יעילות רבות לטיפול באי ספיקת לב במבוגרים אין השפעה טיפולית על אי ספיקת לב בילדים, ואף עלולות לגרום לנזק נוסף 7,8. לכן, מסקנות שהוסקו מבעלי חיים בוגרים אינן יכולות להיות מיושמות ישירות על בעלי חיים צעירים.

מודל הפיסטולה העורקית (AVF) שימש לגרימת VO כרוני בלב ותפקוד לקוי של הלב במשך עשרות שנים בבעלי חיים בוגרים ממינים שונים 9,10,11,12,13. עם זאת, מעט ידוע על המודל בעכברים לאחר הלידה. במחקרים הקודמים שלנו, מודל עכבר VO לאחר הלידה נוצר בהצלחה על ידי יצירת AVF בטן. המסלול ההתפתחותי של הקרוואנים שהשתנו בלב לאחר הלידה הודגם גם הוא14,15,16,17.

כדי לבחון את התהליך הכירורגי המותאם ואת המאפיינים של המודל הנוכחי, מוצג פרוטוקול מפורט; המודל מוערך במשך 3 חודשים במחקר זה.

Protocol

כל הנהלים המוצגים כאן תאמו את העקרונות המפורטים בהצהרת הלסינקי ואושרו על ידי הוועדה לרווחת בעלי חיים ולימודי אדם במרכז הרפואי לילדים בשנחאי (SCMC-LAWEC-2023-003). במחקר הנוכחי נעשה שימוש בגורי עכברים C57BL/6 (P7, זכרים, 3-4 גרם). בעלי החיים התקבלו ממקור מסחרי (ראו טבלת חומרים). גורי העכברים ואימהותיהם המניקות (גורים:אמהות = 6:1 בכלוב יחיד) הוחזקו בתנאי מעבדה ספציפיים נטולי פתוגנים במחזור אור וחושך של 12 שעות בטמפרטורה של 22 ± 2 מעלות צלזיוס עם גישה חופשית למים ותזונה תזונתית. הגורים חולקו באקראי לשתי קבוצות: קבוצת VO וקבוצת דמה (דמה).

1. הכנת ציוד וכלי ניתוח

הערה: הפרטים המסחריים של כל החומרים/ציוד מפורטים בטבלת החומרים.

  1. ודא כי סוגי הציוד הבאים מוכנים ומתפקדים כראוי: שולחן ניתוחים (לוח פלסטיק מוקצף), מכונת הרדמה בשאיפה, מיקרוסקופ עם תאורה אנכית ומצלמה מובנית, מכשיר אולטרסאונד עם מתמר 24 MHz ופלטפורמת חימום תרמוסטטית.
  2. לעקר את כלי הניתוח (כלומר, מחזיק מיקרו-מחט, מלקחיים עדינים ומספריים קפיציים Vannas עגולים).
  3. להרכיב את החומרים המתכלים הבאים: 11-0 ו 9-0 מחטי תפר כירורגי (נקודת taper) עם חוט, רצועות קלטת, מחטי מזרק 5 מ"ל, משי 2-0 (קיבוע כירורגי), צמר גפן סטרילי, וג'ל אולטרסאונד.
  4. ודא שהריאגנטים הבאים קיימים: בטדין, אתנול 70%, מי מלח סטריליים רגילים, איזופלורן, פרצטמול, משחה אופתלמית וקרם להסרת שיער.

2. הליך כירורגי

הערה: הליך ניתוח הפיסטולה שונה בהתאם לשיטה11 שתוארה לעיל. איור 1 מראה תרשים סכמטי של פעולת AVF בעכברות לאחר לידה.

  1. הרדמה וריסון
    1. הכניסו את גורי העכברים לקופסת השראת הרדמה המסופקת עם 2% איזופלורן/חמצן למשך 2 דקות כאשר הזרימה מוגדרת ל-1 ליטר/דקה. מתן פרצטמול (0.1 מ"ל PO של 80 מ"ג/2.5 מ"ל) באמצעות מזרק שחפת.
    2. הניחו את הגורים במצב שכיבה על שולחן הניתוחים עם שאיפת אף של 1.5% איזופלורן עם זרימה של 0.8 ליטר/דקה לשמירה על הרדמה. התאימו את מיקום הגור על ידי קשירת הרגליים למחטי המזרק הקבועות. יש למרוח משחה אופתלמית על עיני הגורים כדי למנוע התייבשות הקרנית.
    3. צבטו את זנבו של הגור המורדם כדי לבדוק את תגובתו לכאב; אין תנועות גוף ברורות המעידות על הרדמה מספקת.
  2. ניתוח פיסטולה
    1. לחטא את העור עם שלושה קרצוף לסירוגין של betadine ו 70% אתנול, ולאחר מכן לעטוף את האתר כירורגי. חותכים את קיר הבטן ואת הצפק מן הבטן התחתונה אל subxiphoid כדי לחשוף באופן מלא את חלל הצפק, תוך זהירות לא לפגוע באיברי הבטן. טפטוף מלח סטרילי רגיל כדי להרטיב איברים חיצוניים.
    2. משכו בעדינות את מערכת העיכול ושלפוחית השתן הרחק מאתר הניתוח באמצעות צמר גפן כדי לדמיין את אבי העורקים הבטני האנכי (AA) ואת הווריד הנבוב התחתון (IVC) מתחת לרטרופריטונאום. סובב את שולחן הניתוחים ב-90° נגד כיוון השעון וכוונן את הגדלת המיקרוסקופ כדי להמחיש את שני הכלים האופקיים בבירור.
    3. נקבו את הפיסטולה מה- AA לתוך IVC בכיוון אלכסוני 1 ס"מ דיסטלי לעורק הכליה עם מחט תפר 11-0 (קוטר = 0.07 מ"מ). לוודא יצירת פיסטולה מוצלחת על בסיס נפיחות וערבוב של דם ורידי ועורקי IVC.
    4. לאחר מכן, דחסו במהירות את נקודת הדימום באמצעות כוח מתאים המופעל עם צמר גפן יבש במשך 15 שניות. החלף את הקיבה, המעיים ושלפוחית השתן בחלל הבטן בהקדם האפשרי כדי לקדם דחיסה המוסטטית.
    5. תפרו את דופן הבטן והצפק בתפר שמיכה באמצעות חוט תפר 9-0. יש להפסיק את ההרדמה ולספק לגורים 100% חמצן למשך דקה.
  3. החייאה בהרדמה
    1. הניחו את הגורים על משטח חימום בטמפרטורה של 38 מעלות צלזיוס. לאחר התעוררות מוחלטת עם חיוניות, להחזיר את הגורים לאמם המניקה. ההליך כולו נמשך כרבע שעה.
      הערה: במחקר הנוכחי, קבוצת הדמה עוברת את אותו הליך למעט שלב הניקוב.

3. אישור אולטרסאונד של פיסטולה

הערה: הפעולה הכללית של מכשיר האולטרסאונד הייתה זהה לדיווחים קודמים18,19.

  1. אישור פיסטולה על ידי אולטרסאונד בטן
    1. לאחר השראת הרדמה (שלב 2.1.1), תקן את העכברים עם רצועות סרט במצב שכיבה על הפלטפורמה החמה. לאחר מכן, חבר את העכברים למוניטור אלקטרוקרדיוגרמה (ECG) באמצעות ג'ל אולטרסאונד. יש להרדים באמצעות איזופלורן 1.5% בזרימה של 0.8 ליטר/דקה.
    2. הכינו את עור החזה והבטן באמצעות קרם להסרת שיער. לאחר מספר שניות, הסירו את הקרם עם קצה כותנה חם ספוג מים. מניחים את המתמר (24 מגה הרץ) על קו אמצע הבטן ומסובבים את סמן המתמר לראש העכברים.
    3. הזז את הפלטפורמה למטה לצד שמאל או ימין של העכברים והשתמש במצב B ובמצב דופלר צבע כדי להמחיש את תצוגת הציר הארוך של כלי הדם ואותות הדם18,19. למדוד את מהירות זרימת הדם של AA, IVC ופיסטולה כדי לאשר פטנט AVF באמצעות מצב דופלר גל פועם.
      הערה: יצירת פיסטולה מוצלחת באולטרסאונד צויינה על-ידי אות זרימה טורבולנטי שנראה בין AA ל-IVC (איור 2C). מהירות זרימת הדם בדופלר באתר AVF הייתה גבוהה משמעותית בהשוואה למהירות סיסטולית נמוכה יחסית ב-AA (איור 2A,C). יתר על כן, בניגוד לדפוסי זרימה נורמליים ב-IVC (איור 2B), צורת הגל הפעימה של זרימת הדם IVC הקרובה ל-AVF גם אישרה את היצירה המוצלחת של הפיסטולה (איור 2D).
  2. אישור VO על ידי אקוקרדיוגרפיה
    1. הזיזו את החלק בקצה הזנב של הפלטפורמה כלפי מטה, הניחו את המתמר (24 מגה-הרץ) על החזה וסובבו את סמן המתמר לכתף ימין של העכברים. דמיינו את תצוגת הציר הארוך של עורק הריאה (PA) שהשתנתה באמצעות מצב B ומצב דופלר צבעוני.
    2. באמצעות מצב דופלר גל פועם, מודדים אותות זרימת דם ברשות הפלסטינית, כולל אינטגרל זמן המהירות (PA-VTI), קוטר מסתם הרשות הפלסטינית (PAD), זמן האצת עורקי הריאה (PAT) וזמן פליטת RV (RVET) (איור 2E,F ואיור 3A,B).
    3. מדוד את פרמטרי האולטרסאונד מהממוצע של שלוש מדידות רצופות. חשב את נפח שבץ RV (RVSV, מ"ל) ולחץ סיסטולי RV (RVSP, mmHg) באמצעות הנוסחאות הבאות20:
      RVSV [mL] =1/4 × πD2 × VTIPA
      RVSP [mmHg] = -83.7 × PAT/RVET - אינדקס + 63.7
      הערה: בהתחשב בהטיית מדידת האולטרסאונד, עלייה של >15% ב-RVSV או VTIPA בעכברי VO בהשוואה לעכברים בקבוצת הדמה נחשבה ל-VO בקרוואן (איור 2E,F).

תוצאות

שיעור הישרדות ופטנט AVF תוך 3 חודשים
30 (75%) עכברים בקבוצת VO ו-19 (95%) עכברים בקבוצת הדמה שרדו את ניתוח AVF (איור 4A). בקבוצת VO, שמונה עכברים מתו תוך יום אחד לאחר הניתוח עקב דימום מוגזם (n = 5) או קניבליזציה (n = 3), בעוד שני עכברים מתו מסיבות לא ידועות בגיל חודש.

מבי?...

Discussion

בעבר, מודל RV VO הקלאסי נוצר באמצעות regurgitationשסתום 21; עם זאת, בהשוואה ל- AVF, ניתוח מסתם לב פתוח עשוי לדרוש טכניקות מתוחכמות יותר ועשוי להיות קשור לתמותה גבוהה משמעותית, במיוחד בעכברים לאחר לידה. מכיוון שמחקרים בבעלי חיים הראו כי אותה השפעה של VO הושגה על ידי AVF22, ניתוח פי?...

Disclosures

אין ניגודי עניינים להצהיר.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי הקרן הלאומית למדע של סין (מס '82200309) ופרויקט החדשנות של צוות רפואי מכובד בנינגבו (מס '2022020405)

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
70% EthanolTiandz,Chia
ACETAMINOPHEN Oral SolutionVistaPharm, Inc. Largo, FL 33771, USANDC 66689-054-01
Anesthesia machineRWD Life Science,ChinaR550IP
Anesthesia maskRWD Life Science,China68680
C57BL/6 miceXipu’er-bikai Experimental Animal Co., Ltd (Shanghai, China)
Hair removal creamVeet, FranceVT-200
Hematoxylin and eosin Kit Beyotime biotech C0105M 
IsofluraneRWD Life Science,ChinaR510-22-10
Microscope Yuyan Instruments, ChinaSM-301
Surgical suture needlesNINGBO MEDICAL NEEDLE CO.,LTD, China
Thermostatic heating platformQingdao Juchuang Environmental Protection Group Co., Ltd, China
Ultrasound deviceFUJIFILM VisualSonics, Inc.Vevo 2100Image modes includes B-Mode, Color Doppler Mode and Pulsed Wave Doppler Mode
Ultrasound gelParker Laboratories,United StatesREF 01-08
Ultrasound transducerFUJIFILM VisualSonics, Inc.MS 400

References

  1. Sanz, J., Sanchez-Quintana, D., Bossone, E., Bogaard, H. J., Naeije, R. Anatomy, function, and dysfunction of the right ventricle: JACC state-of-the-art review. Journal of the American College of Cardiology. 73 (12), 1463-1482 (2019).
  2. Alonso-Gonzalez, R., Dimopoulos, K., Ho, S., Oliver, J. M., Gatzoulis, M. A. The right heart and pulmonary circulation (IX). The right heart in adults with congenital heart disease. Revista Española de Cardiología. 63 (9), 1070-1086 (2010).
  3. Kovacs, A., Lakatos, B., Tokodi, M., Merkely, B. Right ventricular mechanical pattern in health and disease: beyond longitudinal shortening. Heart Failure Reviews. 24 (4), 511-520 (2019).
  4. Ye, L., et al. Role of blood oxygen saturation during postnatal human cardiomyocyte cell cycle activities. JACC: Basic to Translational Science. 5 (5), 447-460 (2020).
  5. Ye, L., et al. Pressure overload greatly promotes neonatal right ventricular cardiomyocyte proliferation: a new model for the study of heart regeneration. Journal of the American Heart Association. 9 (11), e015574 (2020).
  6. Geraets, I. M. E., Glatz, J. F. C., Luiken, J., Nabben, M. Pivotal role of membrane substrate transporters on the metabolic alterations in the pressure-overloaded heart. Cardiovascular Research. 115 (6), 1000-1012 (2019).
  7. Burns, K. M., et al. New mechanistic and therapeutic targets for pediatric heart failure: report from a National Heart, Lung, and Blood Institute working group. Circulation. 130 (1), 79-86 (2014).
  8. Shaddy, R. E., et al. Carvedilol for children and adolescents with heart failure: a randomized controlled trial. Journal of the American Medical Association. 298 (10), 1171-1179 (2007).
  9. Flaim, S. F., Minteer, W. J., Nellis, S. H., Clark, D. P. Chronic arteriovenous shunt: evaluation of a model for heart failure in rat. American Journal of Physiology. 236 (5), H698-H704 (1979).
  10. Liu, Z., Hilbelink, D. R., Crockett, W. B., Gerdes, A. M. Regional changes in hemodynamics and cardiac myocyte size in rats with aortocaval fistulas. 1. Developing and established hypertrophy. Circulation Research. 69 (1), 52-58 (1991).
  11. Scheuermann-Freestone, M., et al. A new model of congestive heart failure in the mouse due to chronic volume overload. European Journal of Heart Failure. 3 (5), 535-543 (2001).
  12. Du, Y., Plante, E., Janicki, J. S., Brower, G. L. Temporal evaluation of cardiac myocyte hypertrophy and hyperplasia in male rats secondary to chronic volume overload. The American Journal of Pathology. 177 (3), 1155-1163 (2010).
  13. Wu, J., Luo, X., Huang, Y., He, Y., Li, Z. Hemodynamics and right-ventricle functional characteristics of a swine carotid artery-jugular vein shunt model of pulmonary arterial hypertension: An 18-month experimental study. Experimental Biology and Medicine. 240 (10), 1362-1372 (2015).
  14. Sun, S., et al. Postnatal right ventricular developmental track changed by volume overload. Journal of the American Heart Association. 10 (16), e020854 (2021).
  15. Wang, S., et al. Metabolic maturation during postnatal right ventricular development switches to heart-contraction regulation due to volume overload. Journal of Cardiology. 79 (1), 110-120 (2022).
  16. Zhou, C., et al. Downregulated developmental processes in the postnatal right ventricle under the influence of a volume overload. Cell Death Discovery. 7 (1), 208 (2021).
  17. Cui, Q., et al. Volume overload initiates an immune response in the right ventricle at the neonatal stage. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 8, 772336 (2021).
  18. Cheng, H. W., et al. Assessment of right ventricular structure and function in mouse model of pulmonary artery constriction by transthoracic echocardiography. Journal of Visualized Experiments. (84), e51041 (2014).
  19. Sawada, H., et al. Ultrasound imaging of the thoracic and abdominal aorta in mice to determine aneurysm dimensions. Journal of Visualized Experiments. (145), e59013 (2019).
  20. Thibault, H. B., et al. Noninvasive assessment of murine pulmonary arterial pressure: validation and application to models of pulmonary hypertension. Circulation: Cardiovascular Imaging. 3 (2), 157-163 (2010).
  21. Mori, Y., et al. A new dynamic three-dimensional digital color doppler method for quantification of pulmonary regurgitation: validation study in an animal model. Journal of the American College of Cardiology. 40 (6), 1179-1185 (2002).
  22. Bossers, G. P. L., et al. Volume load-induced right ventricular dysfunction in animal models: insights in a translational gap in congenital heart disease. European Journal of Heart Failure. 20 (4), 808-812 (2018).
  23. Yamamoto, K., et al. The mouse aortocaval fistula recapitulates human arteriovenous fistula maturation. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 305 (12), H1718-H1725 (2013).
  24. Jouannic, J. M., et al. The effect of a systemic arteriovenous fistula on the pulmonary arterial blood pressure in the fetal sheep. Prenatal Diagnosis. 22 (1), 48-51 (2002).
  25. Jouannic, J. M., et al. Systemic arteriovenous fistula leads to pulmonary artery remodeling and abnormal vasoreactivity in the fetal lamb. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 285 (3), L701-L709 (2003).
  26. Patel, M. D., et al. Echocardiographic assessment of right ventricular afterload in preterm infants: maturational patterns of pulmonary artery acceleration time over the first year of age and implications for pulmonary hypertension. Journal of the American Society of Echocardiography. 32 (7), 884-894 (2019).
  27. Habash, S., et al. Normal values of the pulmonary artery acceleration time (PAAT) and the right ventricular ejection time (RVET) in children and adolescents and the impact of the PAAT/RVET-index in the assessment of pulmonary hypertension. The International Journal of Cardiovascular Imaging. 35 (2), 295-306 (2019).
  28. Arkles, J. S., et al. Shape of the right ventricular Doppler envelope predicts hemodynamics and right heart function in pulmonary hypertension. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 183 (2), 268-276 (2011).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

RVRV

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved